JP2010095445A - Ｉｌ−６アンタゴニストを有効成分とする炎症性筋疾患治療剤 - Google Patents

Abstract

【課題】筋線維における異常な炎症細胞浸潤等の炎症性筋疾患の症状を顕著に抑制することができ、かつ全般的な免疫力低下等の既存薬の欠点を有さない、優れた炎症性筋疾患治療剤を提供すること。
【解決手段】ＩＬ−６アンタゴニストを有効成分とすることを特徴とする炎症性筋疾患治療剤である。前記炎症性筋疾患治療剤においては、ＩＬ−６アンタゴニストがＩＬ−６受容体に対する抗体である態様、ＩＬ−６アンタゴニストがモノクローナル抗体である態様などが好ましい。
【選択図】なし

Description

本発明は、ＩＬ−６アンタゴニストを有効成分とする炎症性筋疾患治療剤に関する。

ＩＬ−６はＢ細胞刺激因子２（ＢＳＦ２）或いはインターフェロンβ２とも呼称されたサイトカインである。ＩＬ−６は、Ｂリンパ球系細胞の活性化に関与する分化因子として発見され（非特許文献１）、その後、種々の細胞の機能に影響を及ぼす多機能サイトカインであることが明らかになった（非特許文献２）。ＩＬ−６は、Ｔリンパ球系細胞の成熟化を誘導することが報告されている（非特許文献３）。

ＩＬ−６は、細胞上で二種の蛋白質を介してその生物学的活性を伝達する。一つは、ＩＬ−６が結合する分子量約８０ｋＤのリガンド結合性蛋白質のＩＬ−６受容体である（非特許文献４、５）。ＩＬ−６受容体は、細胞膜を貫通して細胞膜上に発現する膜結合型の他に、主にその細胞外領域からなる可溶性ＩＬ−６受容体としても存在する。
もう一つは、非リガンド結合性のシグナル伝達に係わる分子量約１３０ｋＤの膜蛋白質ｇｐ１３０である。ＩＬ−６とＩＬ−６受容体はＩＬ−６／ＩＬ−６受容体複合体を形成し、次いでｇｐ１３０と結合することにより、ＩＬ−６の生物学的活性が細胞内に伝達される（非特許文献６）。

ＩＬ−６アンタゴニストは、ＩＬ−６の生物学的活性の伝達を阻害する物質である。これまでに、ＩＬ−６に対する抗体（抗ＩＬ−６抗体）、ＩＬ−６受容体に対する抗体（抗ＩＬ−６受容体抗体）、ｇｐ１３０に対する抗体（抗ｇｐ１３０抗体）、ＩＬ−６改変体、ＩＬ−６又はＩＬ−６受容体部分ペプチド等が知られている。
抗ＩＬ−６受容体抗体に関しては、いくつかの報告がある（非特許文献７、８、特許文献１〜３）。その一つであるマウス抗体ＰＭ−１（非特許文献９）の相捕性決定領域（ＣＤＲ；ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ）をヒト抗体へ移植することにより得られたヒト化ＰＭ−１抗体が知られている（特許文献４）。

ところで多発性筋炎は、骨格筋の広範な炎症性変化が認められ、力が入らなくなる、疲れやすい、筋肉が痛くなる等を基本的な症状とする疾患であり、ヘリオトロープ疹等の特徴的な皮膚症状を伴う場合には、皮膚筋炎と呼ばれる。このような炎症性筋疾患とＩＬ−６との関係についての詳細は明らかではないが、これまでに、炎症筋組織内にＩＬ−６を発現する単核球が存在する多発性筋炎例があることが報告されている（非特許文献１０）。しかしながら、この報告では、ＩＬ−１などの他の炎症性サイトカインと比べるとむしろ発現量は少ないとされている。また、筋芽細胞においてＩＬ−６が発現することが報告されてはいるが、成熟した筋細胞からはその発現が確認されていない（非特許文献１１）。その一方で、ＩＬ−６が、最近、自己反応性Ｔ細胞の主要な細胞群と考えられているＴｈ１７細胞を誘導するのに必要であることが明らかとなった（非特許文献１２、１３）。しかし、自己免疫性筋炎におけるＴｈ１７細胞の役割は、不明である。このように、炎症性筋疾患とＩＬ−６との関連について示唆する報告はあるものの、ＩＬ−６の発現や機能の阻害が、炎症性筋疾患に対し、治療的効果を示すか否かについては、依然として不明であった。

なお、本出願の発明に関連する先行技術文献情報を以下に示す。
Ｈｉｒａｎｏ，Ｔ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９８６）３２４，７３−７６ Ａｋｉｒａ，Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ａｄｖ．ｉｎ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９９３）５４，１−７８ Ｌｏｔｚ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．（１９８８）１６７，１２５３−１２５８ Ｔａｇａ，Ｔ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．（１９８７）１６６，９６７−９８１ Ｙａｍａｓａｋｉ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９８８）２４１，８２５−８２８ Ｔａｇａ，Ｔ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ（１９８９）５８，５７３−５８１ Ｎｏｖｉｃｋ，Ｄ．ｅｔ ａｌ．，Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ（１９９１）１０，１３７−１４６ Ｈｕａｎｇ，Ｙ．Ｗ．ｅｔ ａｌ．，Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ（１９９３）１２，６２１−６３０ Ｈｉｒａｔａ，Ｙ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９８９）１４３，２９００−２９０６ Ｌｕｎｄｂｅｒｇ，Ｉ．ｅｔ ａｌ．，Ａｒｔｈｒｉｔｉｓ Ｒｈｅｕｍ（１９９７）４０（５），８６５−８７４ Ｄｅ Ｒｏｓｓｉ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｉｎｔ Ｉｍｍｕｎｏｌ（２０００）１２（９），１３２９−１３３５ Ｙｏｉｃｈｉｒｏ，Ｉ．ａｎｄ Ｈａｒｕｍｉｃｈｉ，Ｉ．，Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ（２００６）１１６（５）１２１８−１２２２ Ｍａｒｃ，Ｖ．ｅｔ ａｌ．，Ｉｍｍｕｎｉｔｙ（２００６）２４，１７９−１８９ 国際公開第９５−０９８７３号パンフレット フランス特許出願公開第２６９４７６７号明細書 米国特許第５２１６１２８号明細書 国際公開第９２−１９７５９号パンフレット

これまでの多発性筋炎・皮膚筋炎等の炎症性筋疾患の治療には、副腎皮質ステロイド薬や免疫抑制薬が使われてきたが、前者は、全般的な免疫力低下に加えて、精神症状、糖尿病、骨代謝異常、胃潰瘍、筋萎縮、白内障などさまざま副作用があり、また、後者も強力かつ全般的な免疫力低下による感染症が致命的副作用としておこりうる。本発明の目的は、単一分子を標的にすることにより、前期の欠点を有さない新たな炎症性筋疾患治療剤を提供することにある。

本発明者らは、多発性筋炎・皮膚筋炎のモデルマウスを利用して、その治療効果を有する分子の探索につき鋭意研究した結果、ＩＬ−６の機能を抑制する分子が、筋線維における異常な炎症細胞浸潤等の炎症性筋疾患の症状を顕著に抑制しうることを見出し、本発明を完成するに至った。
即ち、本発明は、ＩＬ−６を標的とした炎症性筋疾患の治療剤に関し、より詳しくは、
（１）ＩＬ−６アンタゴニストを有効成分とすることを特徴とする炎症性筋疾患治療剤、
（２）ＩＬ−６アンタゴニストがＩＬ−６受容体に対する抗体又はＩＬ−６に対する抗体である、（１）に記載の炎症性筋疾患治療剤、
（３）抗体がモノクローナル抗体である、（２）に記載の炎症性筋疾患治療剤、
（４）抗体が組換え型抗体である、（２）に記載の炎症性筋疾患治療剤、
（５）抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体、又はヒト抗体である、（２）に記載の炎症性筋疾患治療剤、
（６）炎症性筋疾患が多発性筋炎又は皮膚筋炎である、（１）から（５）のいずれかに記載の炎症性筋疾患治療剤、
（７）筋線維における異常な炎症細胞浸潤を抑制する作用を有する、（１）から（６）のいずれかに記載の炎症性筋疾患治療剤、を提供するものである。

多発性筋炎・皮膚筋炎のモデルマウスにおいて、ＩＬ−６の機能を抑制することにより、筋線維での炎症細胞浸潤が顕著に抑制された。従って、本発明に係る、抗ＩＬ−６受容体モノクローナル抗体をはじめとするＩＬ−６アンタゴニストは、筋肉における異常な炎症細胞浸潤の抑制作用を有する新たな炎症性筋疾患治療剤として有用である。

（炎症性筋疾患治療剤）
本発明は、ＩＬ−６アンタゴニストを有効成分とする炎症性筋疾患治療剤を提供する。

＜ＩＬ−６アンタゴニスト＞
本発明において「ＩＬ−６アンタゴニスト」とは、ＩＬ−６によるシグナル伝達を遮断し、ＩＬ−６の生物学的活性を阻害する物質である。ＩＬ−６アンタゴニストは、好ましくはＩＬ−６、ＩＬ−６受容体、及びｇｐ１３０のいずれかの結合に対する阻害作用を有する物質である。
本発明におけるＩＬ−６アンタゴニストとしては、例えば、抗ＩＬ−６抗体、抗ＩＬ−６受容体抗体、抗ｇｐ１３０抗体、ＩＬ−６改変体、可溶性ＩＬ−６受容体改変体、或いはＩＬ−６又はＩＬ−６受容体の部分ペプチド、及び、これらと同様の活性を示す蛋白質（例えば、Ｃ３２６ Ａｖｉｍｅｒ；Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｖｏｌ．２３，Ｎｕｍｂｅｒ １２，Ｄｅｃｅｍｂｅｒ ２００５）や低分子物質が挙げられるが、特に限定されるものではない。中でも、本発明におけるＩＬ−６アンタゴニストとしては、好ましくはＩＬ−６受容体を認識する抗体（抗ＩＬ−６受容体抗体）を挙げることができる。
本発明における抗体の由来は特に限定されるものではないが、好ましくは哺乳動物由来であり、より好ましくはヒト由来の抗体を挙げることができる。

−抗ＩＬ−６抗体−
本発明で使用される抗ＩＬ−６抗体は、公知の手段を用いてポリクローナル又はモノクローナル抗体として得ることができる。本発明で使用される抗ＩＬ−６抗体として、特に哺乳動物由来のモノクローナル抗体が好ましい。哺乳動物由来のモノクローナル抗体としては、ハイブリドーマに産生されるもの、及び遺伝子工学的手法により抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した宿主に産生されるものがある。この抗体はＩＬ−６と結合することにより、ＩＬ−６のＩＬ−６受容体への結合を阻害してＩＬ−６の生物学的活性の細胞内への伝達を遮断する。
このような抗体としては、ＭＨ１６６（Ｍａｔｓｕｄａ，Ｔ．ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９８８）１８，９５１−９５６）やＳＫ２抗体（Ｓａｔｏ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，第２１回 日本免疫学会総会、学術記録（１９９１）２１，１６６）等が挙げられる。

抗ＩＬ−６抗体産生ハイブリドーマは、基本的には公知技術を使用し、以下のようにして作製できる。すなわち、ＩＬ−６を感作抗原として使用して、これを通常の免疫方法にしたがって免疫し、得られる免疫細胞を通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合させ、通常のスクリーニング法により、モノクローナルな抗体産生細胞をスクリーニングすることによって作製できる。
具体的には、抗ＩＬ−６抗体を作製するには次のようにすればよい。例えば、抗体取得の感作抗原として使用されるヒトＩＬ−６は、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ（１９８７）１６８，５４３−５５０、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９８８）１４０，１５３４−１５４１、或いはＡｇｒ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９９０）５４，２６８５−２６８８に開示されたＩＬ−６遺伝子／アミノ酸配列を用いることによって得られる。
ＩＬ−６の遺伝子配列を公知の発現ベクター系に挿入して適当な宿主細胞を形質転換させた後、その宿主細胞中、又は、培養上清中から目的のＩＬ−６蛋白質を公知の方法で精製し、この精製ＩＬ−６蛋白質を感作抗原として用いればよい。また、ＩＬ−６蛋白質と他の蛋白質との融合蛋白質を感作抗原として用いてもよい。

−抗ＩＬ−６受容体抗体−
本発明で使用される抗ＩＬ−６受容体抗体は、公知の手段を用いてポリクローナル又はモノクローナル抗体として得ることができる。本発明で使用される抗ＩＬ−６受容体抗体として、特に哺乳動物由来のモノクローナル抗体が好ましい。哺乳動物由来のモノクローナル抗体としては、ハイブリドーマに産生されるもの、及び遺伝子工学的手法により抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した宿主に産生されるものがある。この抗体はＩＬ−６受容体と結合することにより、ＩＬ−６のＩＬ−６受容体への結合を阻害してＩＬ−６の生物学的活性の細胞内への伝達を遮断する。
このような抗体としては、ＭＲ１６−１抗体（Ｔａｍｕｒａ，Ｔ．ｅｔ ａｌ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９９３）９０，１１９２４−１１９２８）、ＰＭ−１抗体（Ｈｉｒａｔａ，Ｙ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９８９）１４３，２９００−２９０６）、ＡＵＫ１２−２０抗体、ＡＵＫ６４−７抗体、或いはＡＵＫ１４６−１５抗体（国際公開第９２−１９７５９号パンフレット）などが挙げられる。これらのうちで、ヒトＩＬ−６受容体に対する好ましいモノクローナル抗体としてはＰＭ−１抗体が例示され、またマウスＩＬ−６受容体に対する好ましいモノクローナル抗体としてはＭＲ１６−１抗体が挙げられる。

抗ＩＬ−６受容体モノクローナル抗体産生ハイブリドーマは、基本的には公知技術を使用し、以下のようにして作製できる。すなわち、ＩＬ−６受容体を感作抗原として使用して、これを通常の免疫方法にしたがって免疫し、得られる免疫細胞を通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合させ、通常のスクリーニング法により、モノクローナルな抗体産生細胞をスクリーニングすることによって作製できる。
具体的には、抗ＩＬ−６受容体抗体を作製するには次のようにすればよい。例えば、抗体取得の感作抗原として使用されるヒトＩＬ−６受容体は、欧州特許出願公開第３２５４７４号明細書に、マウスＩＬ−６受容体は日本特許出願公開特開平３−１５５７９５号公報に開示されたＩＬ−６受容体遺伝子／アミノ酸配列を用いることによって得られる。
ＩＬ−６受容体蛋白質は、細胞膜上に発現しているものと細胞膜より離脱しているもの（可溶性ＩＬ−６受容体）（Ｙａｓｕｋａｗａ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．（１９９０）１０８，６７３−６７６）との二種類がある。可溶性ＩＬ−６受容体抗体は細胞膜に結合しているＩＬ−６受容体の実質的に細胞外領域から構成されており、細胞膜貫通領域、或いは細胞膜貫通領域と細胞内領域が欠損している点で膜結合型ＩＬ−６受容体と異なっている。ＩＬ−６受容体蛋白質は、本発明で用いられる抗ＩＬ−６受容体抗体の作製の感作抗原として使用されうる限り、いずれのＩＬ−６受容体を使用してもよい。
ＩＬ−６受容体の遺伝子配列を公知の発現ベクター系に挿入して適当な宿主細胞を形質転換させた後、その宿主細胞中、又は、培養上清中から目的のＩＬ−６受容体蛋白質を公知の方法で精製し、この精製ＩＬ−６受容体蛋白質を感作抗原として用いればよい。また、ＩＬ−６受容体を発現している細胞やＩＬ−６受容体蛋白質と他の蛋白質との融合蛋白質を感作抗原として用いてもよい。

−抗ｇｐ１３０抗体−
本発明で使用される抗ｇｐ１３０抗体は、公知の手段を用いてポリクローナル又はモノクローナル抗体として得ることができる。本発明で使用される抗ｇｐ１３０抗体として、特に哺乳動物由来のモノクローナル抗体が好ましい。哺乳動物由来のモノクローナル抗体としては、ハイブリドーマに産生されるもの、及び遺伝子工学的手法により抗体遺伝子を含む発現ベクターで形質転換した宿主に産生されるものがある。この抗体はｇｐ１３０と結合することにより、ＩＬ−６／ＩＬ−６受容体複合体のｇｐ１３０への結合を阻害してＩＬ−６の生物学的活性の細胞内への伝達を遮断する。
このような抗体としては、ＡＭ６４抗体（特開平３−２１９８９４号公報）、４Ｂ１１抗体及び２Ｈ４抗体（米国特許第５５７１５１３号明細書）、Ｂ−Ｓ１２抗体及びＢ−Ｐ８抗体（特開平８−２９１１９９号公報）などが挙げられる。

抗ｇｐ１３０モノクローナル抗体産生ハイブリドーマは、基本的には公知技術を使用し、以下のようにして作製できる。すなわち、ｇｐ１３０を感作抗原として使用して、これを通常の免疫方法にしたがって免疫し、得られる免疫細胞を通常の細胞融合法によって公知の親細胞と融合させ、通常のスクリーニング法により、モノクローナル抗体産生細胞をスクリーニングすることによって作製できる。
具体的には、モノクローナル抗体を作製するには次のようにすればよい。例えば、抗体取得の感作抗原として使用されるｇｐ１３０は、欧州特許出願公開第４１１９４６号明細書に開示されたｇｐ１３０遺伝子／アミノ酸配列を用いることによって得られる。
ｇｐ１３０の遺伝子配列を公知の発現ベクター系に挿入して適当な宿主細胞を形質転換させた後、その宿主細胞中、又は、培養上清中から目的のｇｐ１３０蛋白質を公知の方法で精製し、この精製ｇｐ１３０蛋白質を感作抗原として用いればよい。また、ｇｐ１３０を発現している細胞やｇｐ１３０蛋白質と他の蛋白質との融合蛋白質を感作抗原として用いてもよい。

−抗体作製−
前記したような各感作抗原で免疫される哺乳動物としては、特に限定されるものではないが、細胞融合に使用する親細胞との適合性を考慮して選択するのが好ましく、一般的にはげっ歯類の動物、例えば、マウス、ラット、ハムスター等が使用される。
感作抗原を動物に免疫するには、公知の方法にしたがって行われる。例えば、一般的方法として、感作抗原を哺乳動物の腹腔内、又は、皮下に注射することにより行われる。具体的には、感作抗原をＰＢＳ（Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ−Ｂｕｆｆｅｒｅｄ Ｓａｌｉｎｅ）や生理食塩水等で適当量に希釈、懸濁したものを、所望により通常のアジュバント、例えば、フロイント完全アジュバントを適量混合し、乳化後、哺乳動物に４〜２１日毎に数回投与するのが好ましい。また、感作抗原免疫時に適当な担体を使用することができる。
このように免疫し、血清中に所望の抗体レベルが上昇するのを確認した後に、その抗血清をそのままポリクローナル抗体として使用してもよいし、また、モノクローナル抗体を作製する場合であれば、哺乳動物から免疫細胞が取り出され、細胞融合に付される。細胞融合に付される好ましい免疫細胞としては、特に脾細胞が挙げられる。

前記免疫細胞と融合される他方の親細胞としての哺乳動物のミエローマ細胞は、すでに、公知の種々の細胞株、例えば、Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８．６５３（Ｋｅａｒｎｅｙ，Ｊ．Ｆ．ｅｔ ａｌ．Ｊ．Ｉｍｍｎｏｌ．（１９７９）１２３，１５４８−１５５０）、Ｐ３Ｘ６３Ａｇ８Ｕ．１（Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｔｏｐｉｃｓ ｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（１９７８）８１，１−７）、ＮＳ−１（Ｋｏｈｌｅｒ．Ｇ．ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９７６）６，５１１−５１９）、ＭＰＣ−１１（Ｍａｒｇｕｌｉｅｓ．Ｄ．Ｈ．ｅｔ ａｌ．，Ｃｅｌｌ（１９７６）８，４０５−４１５）、ＳＰ２／０（Ｓｈｕｌｍａｎ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７８）２７６，２６９−２７０）、ＦＯ（ｄｅ Ｓｔ．Ｇｒｏｔｈ，Ｓ．Ｆ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９８０）３５，１−２１）、Ｓ１９４（Ｔｒｏｗｂｒｉｄｇｅ，Ｉ．Ｓ．Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．（１９７８）１４８，３１３−３２３）、Ｒ２１０（Ｇａｌｆｒｅ，Ｇ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７９）２７７，１３１−１３３）等が知られており、これらが適宜使用される。

前記免疫細胞とミエローマ細胞の細胞融合は基本的には公知の方法、例えば、ミルシュタインらの方法（Ｋｏｈｌｅｒ．Ｇ．ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｃ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｅｎｚｙｍｏｌ．（１９８１）７３，３−４６）等に準じて行うことができる。
より具体的には、前記細胞融合は例えば、細胞融合促進剤の存在下に通常の栄養培養液中で実施される。融合促進剤としては、例えば、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、センダイウィルス（ＨＶＪ）等が使用され、更に所望により、融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤を添加使用することもできる。

前記免疫細胞とミエローマ細胞との使用割合は、例えば、ミエローマ細胞に対して免疫細胞を１〜１０倍とするのが好ましい。前記細胞融合に用いる培養液としては、例えば、前記ミエローマ細胞株の増殖に好適なＲＰＭＩ１６４０培養液、ＭＥＭ培養液、その他、この種の細胞培養に用いられる通常の培養液が使用可能であり、更に、牛胎児血清（ＦＣＳ）等の血清補液を併用することもできる。

細胞融合は、前記免疫細胞とミエローマ細胞との所定量を前記培養液中でよく混合し、予め、３７℃程度に加温したＰＥＧ溶液、例えば、平均分子量１，０００〜６，０００程度のＰＥＧ溶液を、通常３０〜６０％（ｗ／ｖ）の濃度で添加し、混合することによって目的とする融合細胞（ハイブリドーマ）が形成される。続いて、適当な培養液を逐次添加し、遠心して上清を除去する操作を繰り返すことにより、ハイブリドーマの生育に好ましくない細胞融合剤等を除去できる。

当該ハイブリドーマは、通常の選択培養液、例えば、ＨＡＴ培養液（ヒポキサンチン、アミノプテリン、及びチミジンを含む培養液）で培養することにより選択される。当該ＨＡＴ培養液での培養は、目的とするハイブリドーマ以外の細胞（非融合細胞）が死滅するのに十分な時間、通常数日〜数週間継続する。次いで、通常の限界希釈法を実施し、目的とする抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニング及びクローニングが行われる。

また、ヒト以外の動物に抗原を免疫して上記ハイブリドーマを得る他に、ヒトリンパ球を、ｉｎ ｖｉｔｒｏで所望の抗原蛋白質又は抗原発現細胞で感作し、感作Ｂリンパ球をヒトミエローマ細胞、例えばＵ２６６と融合させ、所望の抗原又は抗原発現細胞への結合活性を有する所望のヒト抗体を得ることもできる（特公平１−５９８７８号公報参照）。更に、ヒト抗体遺伝子のレパートリーを有するトランスジェニック動物に抗原又は抗原発現細胞を投与し、前述の方法に従い所望のヒト抗体を取得してもよい（国際公開第９３／１２２２７号パンフレット、国際公開第９２／０３９１８号パンフレット、国際公開第９４／０２６０２号パンフレット、国際公開第９４／２５５８５号パンフレット、国際公開第９６／３４０９６号パンフレット、国際公開第９６／３３７３５号パンフレット参照）。

このようにして作製されるモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマは、通常の培養液中で継代培養することが可能であり、また、液体窒素中で長期保存することが可能である。

当該ハイブリドーマからモノクローナル抗体を取得するには、当該ハイブリドーマを通常の方法にしたがい培養し、その培養上清として得る方法、或いはハイブリドーマをこれと適合性がある哺乳動物に投与して増殖させ、その腹水として得る方法などが採用される。前者の方法は、高純度の抗体を得るのに適しており、一方、後者の方法は、抗体の大量生産に適している。

例えば、抗ＩＬ−６受容体抗体産生ハイブリドーマの作製は、特開平３−１３９２９３号公報に開示された方法により行うことができる。ＰＭ−１抗体産生ハイブリドーマをＢＡＬＢ／ｃマウスの腹腔内に注入して腹水を得、この腹水からＰＭ−１抗体を精製する方法や、本ハイブリドーマを適当な培地、例えば、１０％ウシ胎児血清、５％ＢＭ−Ｃｏｎｄｉｍｅｄ Ｈ１（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ Ｍａｎｎｈｅｉｍ製）含有ＲＰＭＩ１６４０培地、ハイブリドーマＳＦＭ培地（ＧＩＢＣＯ−ＢＲＬ製）、ＰＦＨＭ−ＩＩ培地（ＧＩＢＣＯ−ＢＲＬ製）等で培養し、その培養上清からＰＭ−１抗体を精製する方法で行うことができる。

また、本発明には、モノクローナル抗体として、抗体遺伝子をハイブリドーマからクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを宿主に導入し、遺伝子組換え技術を用いて産生させた組換え型抗体を用いることができる（例えば、Ｂｏｒｒｅｂａｅｃｋ Ｃ．Ａ．Ｋ．ａｎｄ Ｌａｒｒｉｃｋ Ｊ．Ｗ．ＴＨＥＲＡＰＥＵＴＩＣ ＭＯＮＯＣＬＯＮＡＬ ＡＮＴＩＢＯＤＩＥＳ，Ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｉｎ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｋｉｎｇｄｏｍ ｂｙ ＭＡＣＭＩＬＬＡＮ ＰＵＢＬＩＳＨＥＲＳ ＬＴＤ，１９９０参照）。
具体的には、目的とする抗体を産生する細胞、例えばハイブリドーマから、抗体の可変（Ｖ）領域をコードするｍＲＮＡを単離する。ｍＲＮＡの単離は、公知の方法、例えば、グアニジン超遠心法（Ｃｈｉｒｇｗｉｎ，Ｊ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ（１９７９）１８，５２９４−５２９９）、ＡＧＰＣ法（Ｃｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉ，Ｐ．ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．（１９８７）１６２，１５６−１５９）等により全ＲＮＡを調製し、ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）等を使用してｍＲＮＡを調製する。また、ＱｕｉｃｋＰｒｅｐ ｍＲＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ製）を用いることによりｍＲＮＡを直接調製することができる。

得られたｍＲＮＡから逆転写酵素を用いて抗体Ｖ領域のｃＤＮＡを合成する。ｃＤＮＡの合成は、ＡＭＶ Ｒｅｖｅｒｓｅ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ Ｆｉｒｓｔ−ｓｔｒａｎｄ ｃＤＮＡ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ Ｋｉｔ等を用いて行うことができる。また、ｃＤＮＡの合成及び増幅を行うには５’−Ａｍｐｌｉ ＦＩＮＤＥＲ ＲＡＣＥ Ｋｉｔ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ製）及びＰＣＲを用いた５’−ＲＡＣＥ法（Ｆｒｏｈｍａｎ，Ｍ．Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ（１９８８）８５，８９９８−９００２；Ｂｅｌｙａｖｓｋｙ，Ａ．ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９８９）１７，２９１９−２９３２）を使用することができる。得られたＰＣＲ産物から目的とするＤＮＡ断片を精製し、ベクターＤＮＡと連結する。更に、これより組換えベクターを作製し、大腸菌等に導入してコロニーを選択して所望の組換えベクターを調製する。目的とするＤＮＡの塩基配列を公知の方法、例えば、デオキシ法により確認する。
目的とする抗体のＶ領域をコードするＤＮＡが得られれば、これを所望の抗体定常領域（Ｃ領域）をコードするＤＮＡと連結し、これを発現ベクターへ組み込む。又は、抗体のＶ領域をコードするＤＮＡを、抗体Ｃ領域のＤＮＡを含む発現ベクターへ組み込んでもよい。

本発明で使用される抗体を製造するには、後述のように抗体遺伝子を発現制御領域、例えば、エンハンサー、プロモーターの制御のもとで発現するよう発現ベクターに組み込む。次に、この発現ベクターにより宿主細胞を形質転換し、抗体を発現させることができる。

本発明では、ヒトに対する異種抗原性を低下させること等を目的として人為的に改変した遺伝子組換え型抗体、例えば、キメラ（Ｃｈｉｍｅｒｉｃ）抗体、ヒト化（Ｈｕｍａｎｉｚｅｄ）抗体、ヒト（ｈｕｍａｎ）抗体を使用できる。これらの改変抗体は、既知の方法を用いて製造することができる。
キメラ抗体は、前記のようにして得た抗体Ｖ領域をコードするＤＮＡをヒト抗体Ｃ領域をコードするＤＮＡと連結し、これを発現ベクターに組み込んで宿主に導入し産生させることにより得られる（欧州特許出願公開第１２５０２３号明細書、国際公開第９２−１９７５９号パンフレット参照）。この既知の方法を用いて、本発明に有用なキメラ抗体を得ることができる。

ヒト化抗体は、再構成（ｒｅｓｈａｐｅｄ）ヒト抗体又はヒト型化抗体とも称され、ヒト以外の哺乳動物、例えばマウス抗体の相補性決定領域（ＣＤＲ）をヒト抗体の相補性決定領域へ移植したものであり、その一般的な遺伝子組換え手法も知られている（欧州特許出願公開第１２５０２３号明細書、国際公開第９２−１９７５９号パンフレット参照）。具体的には、マウス抗体のＣＤＲとヒト抗体のフレームワーク領域（ＦＲ；ｆｒａｍｅｗｏｒｋ ｒｅｇｉｏｎ）を連結するように設計したＤＮＡ配列を、末端部にオーバーラップする部分を有するように作製した数個のオリゴヌクレオチドからＰＣＲ法により合成する。得られたＤＮＡを、ヒト抗体Ｃ領域をコードするＤＮＡと連結し、次いで発現ベクターに組み込んで、これを宿主に導入し産生させることにより得られる（欧州特許出願公開第２３９４００号明細書、国際公開第９２−１９７５９号パンフレット参照）。

ＣＤＲを介して連結されるヒト抗体のＦＲは、相補性決定領域が良好な抗原結合部位を形成するものが選択される。必要に応じ、再構成ヒト抗体の相補性決定領域が適切な抗原結合部位を形成するように抗体の可変領域のフレームワーク領域のアミノ酸を置換してもよい（Ｓａｔｏ，Ｋ．ｅｔ ａｌ．，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．（１９９３）５３，８５１−８５６）。

キメラ抗体、ヒト化抗体には、ヒト抗体Ｃ領域が使用される。ヒト抗体Ｃ領域としては、Ｃγが挙げられ、例えば、Ｃγ１、Ｃγ２、Ｃγ３又はＣγ４を使用することができる。また、抗体又はその産生の安定性を改善するために、ヒト抗体Ｃ領域を修飾してもよい。
キメラ抗体はヒト以外の哺乳動物由来抗体の可変領域とヒト抗体由来のＣ領域からなり、ヒト化抗体はヒト以外の哺乳動物由来抗体の相補性決定領域とヒト抗体由来のフレームワーク領域及びＣ領域からなり、ヒト体内における抗原性が低下しているため、本発明に使用される抗体として有用である。
本発明に使用されるヒト化抗体の好ましい具体例としては、ヒト化ＰＭ−１抗体が挙げられる（国際公開第９２−１９７５９号パンフレット参照）。

また、ヒト抗体の取得方法としては先に述べた方法のほか、ヒト抗体ライブラリーを用いて、パンニングによりヒト抗体を取得する技術も知られている。例えば、ヒト抗体の可変領域を一本鎖抗体（ｓｃＦｖ）としてファージディスプレイ法によりファージの表面に発現させ、抗原に結合するファージを選択することもできる。選択されたファージの遺伝子を解析すれば、抗原に結合するヒト抗体の可変領域をコードするＤＮＡ配列を決定することができる。抗原に結合するｓｃＦｖのＤＮＡ配列が明らかになれば、当該配列を適当な発現ベクターを作製し、ヒト抗体を取得することができる。これらの方法は既に衆知であり、国際公開第９２／０１０４７号パンフレット、国際公開第９２／２０７９１号パンフレット、国際公開第９３／０６２１３号パンフレット、国際公開第９３／１１２３６号パンフレット、国際公開第９３／１９１７２号パンフレット、国際公開第９５／０１４３８号パンフレット、国際公開第９５／１５３８８号パンフレットを参考にすることができる。

前記のように構築した抗体遺伝子は、公知の方法により発現させ、取得することができる。哺乳類細胞の場合、常用される有用なプロモーター、発現される抗体遺伝子、その３’側下流にポリＡシグナルを機能的に結合させたＤＮＡ或いはそれを含むベクターにより発現させることができる。例えばプロモーター／エンハンサーとしては、ヒトサイトメガロウィルス前期プロモーター／エンハンサー（ｈｕｍａｎ ｃｙｔｏｍｅｇａｌｏｖｉｒｕｓ ｉｍｍｅｄｉａｔｅ ｅａｒｌｙ ｐｒｏｍｏｔｅｒ／ｅｎｈａｎｃｅｒ）を挙げることができる。

また、その他に本発明で使用される抗体発現に使用できるプロモーター／エンハンサーとして、レトロウィルス、ポリオーマウィルス、アデノウィルス、シミアンウィルス４０（ＳＶ４０）等のウィルスプロモーター／エンハンサーやヒトエロンゲーションファクター１α（ＨＥＦ１α）などの哺乳類細胞由来のプロモーター／エンハンサーを用いればよい。
例えば、ＳＶ４０プロモーター／エンハンサーを使用する場合、Ｍｕｌｌｉｇａｎらの方法（Ｍｕｌｌｉｇａｎ，Ｒ．Ｃ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９７９）２７７，１０８−１１４）、また、ＨＥＦ１αプロモーター／エンハンサーを使用する場合、Ｍｉｚｕｓｈｉｍａらの方法（Ｍｉｚｕｓｈｉｍａ，Ｓ．ａｎｄ Ｎａｇａｔａ，Ｓ．Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９９０）１８，５３２２）に従えば容易に実施することができる。

大腸菌の場合、常用される有用なプロモーター、抗体分泌のためのシグナル配列、発現させる抗体遺伝子を機能的に結合させて発現させることができる。例えばプロモーターとしては、ｌａｃＺプロモーター、ａｒａＢプロモーターを挙げることができる。ｌａｃＺプロモーターを使用する場合、Ｗａｒｄらの方法（Ｗａｒｄ，Ｅ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９８９）３４１，５４４−５４６；Ｗａｒｄ，Ｅ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．ＦＡＳＥＢ Ｊ．（１９９２）６，２４２２−２４２７）、ａｒａＢプロモーターを使用する場合、Ｂｅｔｔｅｒらの方法（Ｂｅｔｔｅｒ，Ｍ．ｅｔ ａｌ．Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９８８）２４０，１０４１−１０４３）に従えばよい。
抗体分泌のためのシグナル配列としては、大腸菌のペリプラズムに産生させる場合、ｐｅｌＢシグナル配列（Ｌｅｉ，Ｓ．Ｐ．ｅｔ ａｌ Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．（１９８７）１６９，４３７９−４３８３）を使用すればよい。ペリプラズムに産生された抗体を分離した後、抗体の構造を適切にリフォールド（ｒｅｆｏｌｄ）して使用する（例えば、国際公開第９６／３０３９４号パンフレットを参照）。
複製起源としては、ＳＶ４０、ポリオーマウィルス、アデノウィルス、ウシパピローマウィルス（ＢＰＶ）等の由来のものを用いることができ、更に、宿主細胞系で遺伝子コピー数増幅のため、発現ベクターは選択マーカーとして、アミノグリコシドホスホトランスフェラーゼ（ＡＰＨ）遺伝子、チミジンキナーゼ（ＴＫ）遺伝子、大腸菌キサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ（Ｅｃｏｇｐｔ）遺伝子、ジヒドロ葉酸還元酵素（ｄｈｆｒ）遺伝子等を含むことができる。

本発明で使用される抗体の製造のために、任意の産生系を使用することができる。抗体製造のための産生系は、ｉｎ ｖｉｔｒｏ及びｉｎ ｖｉｖｏの産生系がある。ｉｎ ｖｉｔｒｏの産生系としては、真核細胞を使用する産生系や原核細胞を使用する産生系が挙げられる。
真核細胞を使用する場合、動物細胞、植物細胞、又は真菌細胞を用いる産生系がある。動物細胞としては、（１）哺乳類細胞、例えば、ＣＨＯ、ＣＯＳ、ミエローマ、ＢＨＫ（ｂａｂｙ ｈａｍｓｔｅｒ ｋｉｄｎｅｙ）、ＨｅＬａ、Ｖｅｒｏなど、（２）両生類細胞、例えば、アフリカツメガエル卵母細胞、或いは（３）昆虫細胞、例えば、ｓｆ９、ｓｆ２１、Ｔｎ５などが知られている。植物細胞としては、ニコチアナ・タバクム（Ｎｉｃｏｔｉａｎａ ｔａｂａｃｕｍ）由来の細胞が知られており、これをカルス培養すればよい。真菌細胞としては、酵母、例えば、サッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属、例えばサッカロミセス・セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、糸状菌、例えばアスペルギルス属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ）属、例えばアスペルギルス・ニガー（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｎｉｇｅｒ）などが知られている。

原核細胞を使用する場合、細菌細胞を用いる産生系がある。細菌細胞としては、大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）、枯草菌が知られている。
これらの細胞に、目的とする抗体遺伝子を形質転換により導入し、形質転換された細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで培養することにより抗体が得られる。培養は、公知の方法に従い行う。例えば、培養液として、ＤＭＥＭ、ＭＥＭ、ＲＰＭＩ１６４０、ＩＭＤＭを使用することができ、牛胎児血清（ＦＣＳ）等の血清補液を併用することもできる。また、抗体遺伝子を導入した細胞を動物の腹腔等へ移すことにより、ｉｎ ｖｉｖｏにて抗体を産生してもよい。

一方、ｉｎ ｖｉｖｏの産生系としては、動物を使用する産生系や植物を使用する産生系が挙げられる。動物を使用する場合、哺乳類動物、昆虫を用いる産生系などがある。
哺乳類動物としては、ヤギ、ブタ、ヒツジ、マウス、ウシなどを用いることができる（Ｖｉｃｋｉ Ｇｌａｓｅｒ，ＳＰＥＣＴＲＵＭ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，１９９３）。また、昆虫としては、カイコを用いることができる。植物を使用する場合、例えばタバコを用いることができる。
これらの動物又は植物に抗体遺伝子を導入し、動物又は植物の体内で抗体を産生させ、回収する。例えば、抗体遺伝子をヤギβカゼインのような乳汁中に固有に産生される蛋白質をコードする遺伝子の途中に挿入して融合遺伝子として調製する。抗体遺伝子が挿入された融合遺伝子を含むＤＮＡ断片をヤギの胚へ注入し、この胚を雌のヤギへ導入する。胚を受容したヤギから生まれるトランスジェニックヤギ又はその子孫が産生する乳汁から所望の抗体を得る。トランスジェニックヤギから産生される所望の抗体を含む乳汁量を増加させるために、適宜ホルモンをトランスジェニックヤギに使用してもよい。（Ｅｂｅｒｔ，Ｋ．Ｍ．ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（１９９４）１２，６９９−７０２）。

また、カイコを用いる場合、目的の抗体遺伝子を挿入したバキュロウィルスをカイコに感染させ、このカイコの体液より所望の抗体を得る（Ｍａｅｄａ，Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ（１９８５）３１５，５９２−５９４）。更に、タバコを用いる場合、目的の抗体遺伝子を植物発現用ベクター、例えばｐＭＯＮ５３０に挿入し、このベクターをＡｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｍｅｆａｃｉｅｎｓのようなバクテリアに導入する。このバクテリアをタバコ、例えばＮｉｃｏｔｉａｎａ ｔａｂａｃｕｍに感染させ、本タバコの葉より所望の抗体を得る（Ｊｕｌｉａｎ，Ｋ．−Ｃ．Ｍａ ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９９４）２４，１３１−１３８）。

上述のようにｉｎ ｖｉｔｒｏ又はｉｎ ｖｉｖｏの産生系にて抗体を産生する場合、抗体重鎖（Ｈ鎖）又は軽鎖（Ｌ鎖）をコードするＤＮＡを別々に発現ベクターに組み込んで宿主を同時形質転換させてもよいし、或いはＨ鎖及びＬ鎖をコードするＤＮＡを単一の発現ベクターに組み込んで、宿主を形質転換させてもよい（国際公開第９４−１１５２３号パンフレット参照）。

本発明で使用される抗体は、本発明に好適に使用され得るかぎり、抗体の断片やその修飾物であってもよい。例えば、抗体の断片としては、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ又はＨ鎖とＬ鎖のＦｖを適当なリンカーで連結させたシングルチェインＦｖ（ｓｃＦｖ）が挙げられる。
具体的には、抗体を酵素、例えば、パパイン、ペプシンで処理し、抗体断片を生成させるか、又は、これらの抗体断片をコードする遺伝子を構築し、これを発現ベクターに導入した後、適当な宿主細胞で発現させる（例えば、Ｃｏ，Ｍ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．（１９９４）１５２，２９６８−２９７６、Ｂｅｔｔｅｒ，Ｍ．＆ Ｈｏｒｗｉｔｚ，Ａ．Ｈ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１７８，４７６−４９６、Ｐｌｕｅｃｋｔｈｕｎ，Ａ．＆ Ｓｋｅｒｒａ，Ａ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１７８，４７６−４９６、Ｌａｍｏｙｉ，Ｅ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１２１，６５２−６６３、Ｒｏｕｓｓｅａｕｘ，Ｊ．ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９８９）１２１，６６３−６６、Ｂｉｒｄ，Ｒ．Ｅ．ｅｔ ａｌ．，ＴＩＢＴＥＣＨ（１９９１）９，１３２−１３７参照）。

ｓｃＦｖは、抗体のＨ鎖Ｖ領域とＬ鎖Ｖ領域を連結することにより得られる。このｓｃＦｖにおいて、Ｈ鎖Ｖ領域とＬ鎖Ｖ領域はリンカー、好ましくは、ペプチドリンカーを介して連結される（Ｈｕｓｔｏｎ，Ｊ．Ｓ．ｅｔ ａｌ．、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．（１９８８）８５，５８７９−５８８３）。ｓｃＦｖにおけるＨ鎖Ｖ領域及びＬ鎖Ｖ領域は、上記抗体として記載されたもののいずれの由来であってもよい。Ｖ領域を連結するペプチドリンカーとしては、例えばアミノ酸１２〜１９残基からなる任意の一本鎖ペプチドが用いられる。
ｓｃＦｖをコードするＤＮＡは、前記抗体のＨ鎖、又はＨ鎖Ｖ領域をコードするＤＮＡ、及びＬ鎖、又はＬ鎖Ｖ領域をコードするＤＮＡを鋳型とし、それらの配列のうちの所望のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ部分を、その両端を規定するプライマー対を用いてＰＣＲ法により増幅し、次いで、更にペプチドリンカー部分をコードするＤＮＡ及びその両端を、各々Ｈ鎖、Ｌ鎖と連結されるように規定するプライマー対を組み合せて増幅することにより得られる。
また、一旦ｓｃＦｖをコードするＤＮＡが作製されれば、それらを含有する発現ベクター、及び該発現ベクターにより形質転換された宿主を常法に従って得ることができ、また、その宿主を用いて、常法に従ってｓｃＦｖを得ることができる。

これら抗体の断片は、前記と同様にしてその遺伝子を取得し発現させ、宿主により産生させることができる。本発明でいう「抗体」にはこれらの抗体の断片も包含される。
抗体の修飾物として、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）等の各種分子と結合した抗体を使用することもできる。本発明でいう「抗体」にはこれらの抗体修飾物も包含される。このような抗体修飾物を得るには、得られた抗体に化学的な修飾を施すことによって得ることができる。これらの方法はこの分野においてすでに確立されている。

前記のように産生、発現された抗体は、細胞内外、宿主から分離し、均一にまで精製することができる。本発明で使用される抗体の分離、精製は、例えばアフィニティークロマトグラフィーにより行うことができる。アフィニティークロマトグラフィーに用いるカラムとしては、例えば、プロテインＡカラム、プロテインＧカラムが挙げられる。プロテインＡカラムに用いる担体として、例えば、ＨｙｐｅｒＤ、ＰＯＲＯＳ、ＳｅｐｈａｒｏｓｅＦ．Ｆ．等が挙げられる。その他、通常のタンパク質で使用されている分離、精製方法を使用すればよく、何ら限定されるものではない。
例えば、上記アフィニティークロマトグラフィー以外のクロマトグラフィー、フィルター、限外濾過、塩析、透析等を適宜選択、組み合わせれば、本発明で使用される抗体を分離、精製することができる。クロマトグラフィーとしては、例えば、イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー、ゲルろ過等が挙げられる。これらのクロマトグラフィーはＨＰＬＣ（Ｈｉｇｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｌｉｑｕｉｄ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）に適用し得る。また、逆相ＨＰＬＣ（ｒｅｖｅｒｓｅ ｐｈａｓｅ ＨＰＬＣ）を用いてもよい。

上記で得られた抗体の濃度測定は、吸光度の測定、又はＥＬＩＳＡ等により行うことができる。すなわち、吸光度の測定による場合には、ＰＢＳ（−）で適当に希釈した後、２８０ｎｍの吸光度を測定し、１ｍｇ／ｍｌを１．３５ＯＤとして算出する。また、ＥＬＩＳＡによる場合は以下のように測定することができる。すなわち、０．１Ｍ重炭酸緩衝液（ｐＨ９．６）で１μｇ／ｍｌに希釈したヤギ抗ヒトＩｇＧ（ＴＡＧ製）１００μｌを９６穴プレート（Ｎｕｎｃ製）に加え、４℃で一晩インキュベーションし、抗体を固相化する。ブロッキングの後、適宜希釈した本発明で使用される抗体又は抗体を含むサンプル、或いは標品としてヒトＩｇＧ（ＣＡＰＰＥＬ製）１００μｌを添加し、室温にて１時間インキュベーションする。
洗浄後、５，０００倍希釈したアルカリフォスファターゼ標識抗ヒトＩｇＧ（ＢＩＯ ＳＯＵＲＣＥ製）１００μｌを加え、室温にて１時間インキュベートする。洗浄後、基質溶液を加えインキュベーションの後、ＭＩＣＲＯＰＬＡＴＥ ＲＥＡＤＥＲ Ｍｏｄｅｌ ３５５０（Ｂｉｏ−Ｒａｄ製）を用いて４０５ｎｍでの吸光度を測定し、目的の抗体の濃度を算出する。

−ＩＬ−６改変体、可溶性ＩＬ−６受容体改変体−
本発明で使用されるＩＬ−６改変体は、ＩＬ−６受容体との結合活性を有し、且つＩＬ−６の生物学的活性を伝達しない物質である。即ち、ＩＬ−６改変体はＩＬ−６受容体に対しＩＬ−６と競合的に結合するが、ＩＬ−６の生物学的活性を伝達しないため、ＩＬ−６によるシグナル伝達を遮断する。
ＩＬ−６改変体は、ＩＬ−６のアミノ酸配列のアミノ酸残基を置換することにより変異を導入して作製される。ＩＬ−６改変体のもととなるＩＬ−６はその由来を問わないが、抗原性等を考慮すれば、好ましくはヒトＩＬ−６である。
具体的には、ＩＬ−６のアミノ酸配列を公知の分子モデリングプログラム、例えば、ＷＨＡＴＩＦ（Ｖｒｉｅｎｄ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｇｒａｐｈｉｃｓ（１９９０）８，５２−５６）を用いてその二次構造を予測し、更に置換されるアミノ酸残基の全体に及ぼす影響を評価することにより行われる。適切な置換アミノ酸残基を決定した後、ヒトＩＬ−６遺伝子をコードする塩基配列を含むベクターを鋳型として、通常行われるＰＣＲ法によりアミノ酸が置換されるように変異を導入することにより、ＩＬ−６改変体をコードする遺伝子が得られる。これを必要に応じて適当な発現ベクターに組み込み、前記組換え型抗体の発現、産生及び精製方法に準じてＩＬ−６改変体を得ることができる。
ＩＬ−６改変体の具体例としては、Ｂｒａｋｅｎｈｏｆｆ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．（１９９４）２６９，８６−９３、及びＳａｖｉｎｏ ｅｔ ａｌ．，ＥＭＢＯ Ｊ．（１９９４）１３，１３５７−１３６７、国際公開第９６−１８６４８号パンフレット、国際公開第９６−１７８６９号パンフレットに開示されている。
また、本発明で使用される可溶性ＩＬ−６受容体改変体は、ＩＬ−６との結合活性を有し、且つＩＬ−６の生物学的活性を伝達しない物質である。即ち、可溶性ＩＬ−６受容体改変体はＩＬ−６に対しＩＬ−６受容体と競合的に結合するが、ＩＬ−６の生物学的活性を伝達しないため、ＩＬ−６によるシグナル伝達を遮断する。
可溶性ＩＬ−６受容体改変体は、例えば、前記したＩＬ−６改変体の作製方法に準じて、適宜作製することができる。

−ＩＬ−６部分ペプチド、ＩＬ−６受容体部分ペプチド−
本発明で使用されるＩＬ−６部分ペプチド又はＩＬ−６受容体部分ペプチドは、各々ＩＬ−６受容体或いはＩＬ−６との結合活性を有し、且つＩＬ−６の生物学的活性を伝達しない物質である。即ち、ＩＬ−６部分ペプチド又はＩＬ−６受容体部分ペプチドは、ＩＬ−６受容体又はＩＬ−６に結合し、これらを捕捉することによりＩＬ−６のＩＬ−６受容体への結合を特異的に阻害する。その結果、ＩＬ−６の生物学的活性を伝達しないため、ＩＬ−６によるシグナル伝達を遮断する。
ＩＬ−６部分ペプチド又はＩＬ−６受容体部分ペプチドは、ＩＬ−６又はＩＬ−６受容体のアミノ酸配列においてＩＬ−６とＩＬ−６受容体との結合に係わる領域の一部又は全部のアミノ酸配列からなるペプチドである。このようなペプチドは、通常１０〜８０、好ましくは２０〜５０、より好ましくは２０〜４０個のアミノ酸残基からなる。

ＩＬ−６部分ペプチド又はＩＬ−６受容体部分ペプチドは、ＩＬ−６又はＩＬ−６受容体のアミノ酸配列において、ＩＬ−６とＩＬ−６受容体との結合に係わる領域を特定し、その一部又は全部のアミノ酸配列を、通常知られる方法、例えば遺伝子工学的手法又はペプチド合成法により作製することができる。
ＩＬ−６部分ペプチド又はＩＬ−６受容体部分ペプチドを遺伝子工学的手法により作製するには、所望のペプチドをコードするＤＮＡ配列を発現ベクターに組み込み、前記組換え型抗体の発現、産生及び精製方法に準じて得ることができる。
ＩＬ−６部分ペプチド又はＩＬ−６受容体部分ペプチドをペプチド合成法により作製するには、ペプチド合成において通常用いられている方法、例えば固相合成法又は液相合成法を用いることができる。
具体的には、続医薬品の開発第１４巻ペプチド合成 監修矢島治明廣川書店１９９１年に記載の方法に準じて行えばよい。固相合成法としては、例えば有機溶媒に不溶性である支持体に、合成しようとするペプチドのＣ末端に対応するアミノ酸を結合させ、α−アミノ基及び側鎖官能基を適切な保護基で保護したアミノ酸をＣ末端からＮ末端方向の順番に１アミノ酸ずつ縮合させる反応と、樹脂上に結合したアミノ酸又はペプチドのα−アミノ基の該保護基を脱離させる反応を交互に繰り返すことにより、ペプチド鎖を伸長させる方法が用いられる。固相ペプチド合成法は、用いられる保護基の種類によりＢｏｃ法とＦｍｏｃ法に大別される。

このようにして目的とするペプチドを合成した後、脱保護反応及びペプチド鎖の支持体からの切断反応をする。ペプチド鎖との切断反応には、Ｂｏｃ法ではフッ化水素又はトリフルオロメタンスルホン酸を、又、Ｆｍｏｃ法ではＴＦＡを通常用いることができる。Ｂｏｃ法では、例えばフッ化水素中で上記保護ペプチド樹脂をアニソール存在下で処理する。次いで、保護基の脱離と支持体からの切断をし、ペプチドを回収する。これを凍結乾燥することにより、粗ペプチドが得られる。一方、Ｆｍｏｃ法では、例えばＴＦＡ中で上記と同様の操作で脱保護反応及びペプチド鎖の支持体からの切断反応を行うことができる。
得られた粗ペプチドは、ＨＰＬＣに適用することにより分離、精製することができる。その溶出にあたり、蛋白質の精製に通常用いられる水−アセトニトリル系溶媒を使用して最適条件下で行えばよい。得られたクロマトグラフィーのプロファイルのピークに該当する画分を分取し、これを凍結乾燥する。このようにして精製したペプチド画分について、マススペクトル分析による分子量解析、アミノ酸組成分析、又はアミノ酸配列解析等により同定する。

ＩＬ−６部分ペプチド及びＩＬ−６受容体部分ペプチドの具体例は、特開平２−１８８６００号公報、特開平７−３２４０９７号公報、特開平８−３１１０９８号公報及び米国特許第５２１００７５号明細書に開示されている。

本発明に使用する抗体は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、放射性物質、トキシン等の各種分子と結合したコンジュゲート抗体でもよい。このようなコンジュゲート抗体は、得られた抗体に化学的な修飾を施すことによって得ることができる。なお、抗体の修飾方法はこの分野においてすでに確立されている。本発明における「抗体」にはこれらのコンジュゲート抗体も包含される。

本発明で使用されるＩＬ−６アンタゴニストのＩＬ−６シグナル伝達阻害活性は、通常用いられる方法により評価することができる。具体的には、ＩＬ−６依存性ヒト骨髄腫株（Ｓ６Ｂ４５，ＫＰＭＭ２）、ヒトレンネルトＴリンパ腫細胞株ＫＴ３、或いはＩＬ−６依存性細胞ＭＨ６０．ＢＳＦ２を培養し、これにＩＬ−６を添加し、同時にＩＬ−６アンタゴニストを共存させることによりＩＬ−６依存性細胞の３Ｈ−チミジン取込みを測定すればよい。また、ＩＬ−６受容体発現細胞であるＵ２６６を培養し、１２５Ｉ標識ＩＬ−６を添加し、同時にＩＬ−６アンタゴニストを加えることにより、ＩＬ−６受容体発現細胞に結合した１２５Ｉ標識ＩＬ−６を測定する。上記アッセイ系において、ＩＬ−６アンタゴニストを存在させる群に加えＩＬ−６アンタゴニストを含まない陰性コントロール群をおき、両者で得られた結果を比較すればＩＬ−６アンタゴニストのＩＬ−６阻害活性を評価することができる。

＜治療剤＞
本発明の炎症性筋疾患治療剤は、投与により、炎症性筋疾患を罹患した対象において、筋線維における異常な炎症細胞浸潤を抑制する作用を有する。炎症性筋疾患としては、好ましくは多発性筋炎又は皮膚筋炎である。投与される対象は哺乳動物であり、哺乳動物は、好ましくはヒトである。
本発明の炎症性筋疾患治療剤は、医薬品の形態で投与することが可能であり、経口的又は非経口的に全身或いは局所的に投与することができる。例えば、点滴などの静脈内注射、筋肉内注射、腹腔内注射、皮下注射、坐薬、注腸、経口性腸溶剤などを選択することができ、患者の年齢、症状により適宜投与方法を選択することができる。有効投与量は、一回につき体重１ｋｇあたり０．０１ｍｇから１００ｍｇの範囲で選ばれる。或いは、患者あたり１〜１，０００ｍｇ、好ましくは５〜５０ｍｇの投与量を選ぶことができる。好ましい投与量、投与方法は、例えば抗ＩＬ−６受容体抗体の場合には、血中にフリーの抗体が存在する程度の量が有効投与量であり、具体的な例としては、体重１ｋｇあたり、１ヶ月（４週間）に０．５ｍｇから４０ｍｇ、好ましくは１ｍｇから２０ｍｇを、１回から数回に分けて、例えば２回／週、１回／週、１回／２週、１回／４週などの投与スケジュールで、点滴などの静脈内注射、皮下注射などの方法で、投与する方法などである。投与スケジュールは、投与後状態の観察及び血液検査値の動向を観察しながら２回／週、或いは１回／週から１回／２週、１回／３週、１回／４週のように投与間隔を延ばしていくなど調整することも可能である。
また、本発明の炎症性筋疾患治療剤は、治療的に投与されてもよいし、予防的に投与されてもよい。

本発明において炎症性筋疾患治療剤には、保存剤や安定剤等の製剤上許容しうる担体が添加されていてもよい。製剤上許容しうるとは、それ自体は上記の筋炎抑制効果を有する材料であってもよいし、当該抑制効果を有さない材料であってもよく、上記の抑制剤とともに投与可能な製剤上許容される材料を意味する。また、筋炎抑制効果を有さない材料であっても、ＩＬ−６アンタゴニストと併用することによって相乗的若しくは相加的な安定化効果を有する材料であってもよい。
製剤上許容される材料としては、例えば、滅菌水や生理食塩水、安定剤、賦形剤、緩衝剤、防腐剤、界面活性剤、キレート剤（ＥＤＴＡ等）、結合剤等を挙げることができる。

本発明において、界面活性剤としては非イオン界面活性剤を挙げることができ、例えばソルビタンモノカプリレート、ソルビタンモノラウレート、ソルビタンモノパルミテート等のソルビタン脂肪酸エステル；グリセリンモノカプリレート、グリセリンモノミリテート、グリセリンモノステアレート等のグリセリン脂肪酸エステル；デカグリセリルモノステアレート、デカグリセリルジステアレート、デカグリセリルモノリノレート等のポリグリセリン脂肪酸エステル；ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート、ポリオキシエチレンソルビタンモノステアレート、ポリオキシエチレンソルビタンモノパルミテート、ポリオキシエチレンソルビタントリオレエート、ポリオキシエチレンソルビタントリステアレート等のポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル；ポリオキシエチレンソルビットテトラステアレート、ポリオキシエチレンソルビットテトラオレエート等のポリオキシエチレンソルビット脂肪酸エステル；ポリオキシエチレングリセリルモノステアレート等のポリオキシエチレングリセリン脂肪酸エステル；ポリエチレングリコールジステアレート等のポリエチレングリコール脂肪酸エステル；ポリオキシエチレンラウリルエーテル等のポリオキシエチレンアルキルエーテル；ポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコール、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンプロピルエーテル、ポリオキシエチレンポリオキシプロピレンセチルエーテル等のポリオキシエチレンポリオキシプロピレンアルキルエーテル；ポリオキシエチエレンノニルフェニルエーテル等のポリオキシエチレンアルキルフェニルエーテル；ポリオキシエチレンヒマシ油、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油（ポリオキシエチレン水素ヒマシ油）等のポリオキシエチレン硬化ヒマシ油；ポリオキシエチレンソルビットミツロウ等のポリオキシエチレンミツロウ誘導体；ポリオキシエチレンラノリン等のポリオキシエチレンラノリン誘導体；ポリオキシエチレンステアリン酸アミド等のポリオキシエチレン脂肪酸アミド等のＨＬＢ６〜１８を有するもの、等を典型的例として挙げることができる。

また、界面活性剤としては陰イオン界面活性剤も挙げることができ、例えばセチル硫酸ナトリウム、ラウリル硫酸ナトリウム、オレイル硫酸ナトリウム等の炭素原子数１０〜１８のアルキル基を有するアルキル硫酸塩；ポリオキシエチレンラウリル硫酸ナトリウム等の、エチレンオキシドの平均付加モル数が２〜４でアルキル基の炭素原子数が１０〜１８であるポリオキシエチレンアルキルエーテル硫酸塩；ラウリルスルホコハク酸エステルナトリウム等の、アルキル基の炭素原子数が８〜１８のアルキルスルホコハク酸エステル塩；天然系の界面活性剤、例えばレシチン、グリセロリン脂質；スフィンゴミエリン等のフィンゴリン脂質；炭素原子数１２〜１８の脂肪酸のショ糖脂肪酸エステル等を典型的例として挙げることができる。

本発明の炎症性筋疾患治療剤には、これらの界面活性剤の１種又は２種以上を組み合わせて添加することができる。本発明の製剤で使用する好ましい界面活性剤は、ポリソルベート２０、４０、６０又は８０などのポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステルであり、ポリソルベート２０及び８０が特に好ましい。また、ポロキサマー（プルロニックＦ−６８（登録商標）など）に代表されるポリオキシエチレンポリオキシプロピレングリコールも好ましい。
界面活性剤の添加量は使用する界面活性剤の種類により異なるが、ポリソルベート２０又はポリソルベート８０の場合では、一般には０．００１〜１００ｍｇ／ｍＬであり、好ましくは０．００３〜５０ｍｇ／ｍＬであり、更に好ましくは０．００５〜２ｍｇ／ｍＬである。

本発明において緩衝剤としては、リン酸、クエン酸緩衝液、酢酸、リンゴ酸、酒石酸、コハク酸、乳酸、リン酸カリウム、グルコン酸、カプリル酸、デオキシコール酸、サリチル酸、トリエタノールアミン、フマル酸、他の有機酸等、或いは、炭酸緩衝液、トリス緩衝液、ヒスチジン緩衝液、イミダゾール緩衝液等を挙げることができる。
また、溶液製剤の分野で公知の水性緩衝液に溶解することによって溶液製剤を調製してもよい。緩衝液の濃度は一般には１〜５００ｍＭであり、好ましくは５〜１００ｍＭであり、更に好ましくは１０〜２０ｍＭである。

また、本発明の炎症性筋疾患治療剤は、その他の低分子量のポリペプチド、血清アルブミン、ゼラチンや免疫グロブリン等の蛋白質、アミノ酸、多糖及び単糖等の糖類や炭水化物、糖アルコールを含んでいてもよい。

本発明においてアミノ酸としては、塩基性アミノ酸、例えばアルギニン、リジン、ヒスチジン、オルニチン等、又はこれらのアミノ酸の無機塩（好ましくは、塩酸塩、リン酸塩の形、すなわちリン酸アミノ酸）を挙げることができる。遊離アミノ酸が使用される場合、好ましいｐＨ値は、適当な生理的に許容される緩衝物質、例えば無機酸、特に塩酸、リン酸、硫酸、酢酸、蟻酸又はこれらの塩の添加により調整される。この場合、リン酸塩の使用は、特に安定な凍結乾燥物が得られる点で特に有利である。調製物が有機酸、例えばリンゴ酸、酒石酸、クエン酸、コハク酸、フマル酸等を実質的に含有しない場合、或いは対応する陰イオン（リンゴ酸イオン、酒石酸イオン、クエン酸イオン、コハク酸イオン、フマル酸イオン等）が存在しない場合に、特に有利である。好ましいアミノ酸は、アルギニン、リジン、ヒスチジン、又はオルニチンである。更に、酸性アミノ酸、例えばグルタミン酸及びアスパラギン酸、及びその塩の形（好ましくはナトリウム塩）或いは中性アミノ酸、例えばイソロイシン、ロイシン、グリシン、セリン、スレオニン、バリン、メチオニン、システイン、又はアラニン、或いは芳香族アミノ酸、例えばフェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、又は誘導体のＮ−アセチルトリプトファンを使用することもできる。

本発明において、多糖及び単糖等の糖類や炭水化物としては、例えばデキストラン、グルコース、フラクトース、ラクトース、キシロース、マンノース、マルトース、スクロース，トレハロース、ラフィノース等を挙げることができる。
本発明において、糖アルコールとしては、例えばマンニトール、ソルビトール、イノシトール等を挙げることができる。

本発明の炎症性筋疾患治療剤を注射用の水溶液とする場合には、例えば生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液、例えば、Ｄ−ソルビトール、Ｄ−マンノース、Ｄ−マンニトール、塩化ナトリウムが挙げられ、適当な溶解補助剤、例えばアルコール（エタノール等）、ポリアルコール（プロピレングリコール、ＰＥＧ等）、非イオン性界面活性剤（ポリソルベート８０、ＨＣＯ−５０）等と併用してもよい。
本発明の炎症性筋疾患治療剤は、所望により、更に希釈剤、溶解補助剤、ｐＨ調整剤、無痛化剤、含硫還元剤、酸化防止剤等を含有してもよい。

本発明において、含硫還元剤としては、例えば、Ｎ−アセチルシステイン、Ｎ−アセチルホモシステイン、チオクト酸、チオジグリコール、チオエタノールアミン、チオグリセロール、チオソルビトール、チオグリコール酸及びその塩、チオ硫酸ナトリウム、グルタチオン、並びに炭素原子数１〜７のチオアルカン酸等のスルフヒドリル基を有するもの等を挙げることができる。

また、本発明において酸化防止剤としては、例えば、エリソルビン酸、ジブチルヒドロキシトルエン、ブチルヒドロキシアニソール、α−トコフェロール、酢酸トコフェロール、Ｌ−アスコルビン酸及びその塩、Ｌ−アスコルビン酸パルミテート、Ｌ−アスコルビン酸ステアレート、亜硫酸水素ナトリウム、亜硫酸ナトリウム、没食子酸トリアミル、没食子酸プロピルあるいはエチレンジアミン四酢酸二ナトリウム（ＥＤＴＡ）、ピロリン酸ナトリウム、メタリン酸ナトリウム等のキレート剤を挙げることができる。

また、本発明の炎症性筋疾患治療剤は、必要に応じ、有効成分をマイクロカプセル（ヒドロキシメチルセルロース、ゼラチン、ポリ［メチルメタクリル酸］等のマイクロカプセル）に封入したり、コロイドドラッグデリバリーシステム（リポソーム、アルブミンミクロスフェア、マイクロエマルジョン、ナノ粒子及びナノカプセル等）とすることもできる（“Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ １６ｔｈ ｅｄｉｔｉｏｎ”，Ｏｓｌｏ Ｅｄ．，１９８０等参照）。更に、薬剤を徐放性の薬剤とする方法も公知であり、本発明に適用し得る（Ｌａｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｍａｔｅｒ．Ｒｅｓ．１９８１，１５：１６７−２７７；Ｌａｎｇｅｒ，Ｃｈｅｍ．Ｔｅｃｈ．１９８２，１２：９８−１０５；米国特許第３，７７３，９１９号明細書；欧州特許出願公開第５８，４８１号明細書；Ｓｉｄｍａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ １９８３，２２：５４７−５５６；欧州特許第１３３，９８８号明細書）。使用される製剤上許容しうる担体は、剤型に応じて上記の中から適宜或いは組合せて選択されるが、これらに限定されるものではない。

＜治療方法＞
本発明は、ＩＬ−６アンタゴニストを、炎症性筋疾患を発症した対象に投与する工程を含む、対象において炎症性筋疾患を治療する方法にも関する。本発明において、「対象」とは、本発明の炎症性筋疾患治療剤を投与する生物体、該生物体の体内の一部分をいう。生物体は、特に限定されるものではないが、動物（例えば、ヒト、家畜動物種、野生動物）を含む。本発明において、「投与する」とは、経口的、或いは非経口的に投与することが含まれる。経口的な投与としては、経口剤という形での投与を挙げることができ、経口剤としては、顆粒剤、散剤、錠剤、カプセル剤、溶剤、乳剤、或いは懸濁剤等の剤型を選択することができる。非経口的な投与としては、注射剤という形での投与を挙げることができ、注射剤としては、点滴などの静脈注射、皮下注射剤、筋肉注射剤、或いは腹腔内注射剤等を挙げることができる。また、投与すべきオリゴヌクレオチドを含む遺伝子を遺伝子治療の手法を用いて生体に導入することにより、本発明の方法の効果を達成することができる。また、炎症性筋疾患の公知の治療法、例えば、リハビリテーション、理学療法、副腎皮質ステロイドホルモン剤投与、アザチオプリン、メトキセレートなどの免疫抑制剤投与と同時に又は時間を隔てて本発明の薬剤が投与されてもよい。

以下に本発明の実施例を説明するが、本発明は、これらの実施例に何ら限定されるものではない。

［実施例１：プロテインＣ誘導性筋炎（ＣＩＭ）の誘導及び臨床的評価］
本実施例に用いたＣ５７ＢＬ／６Ｊマウス（８週齢、雌）は、チャールズリバージャパンから購入した。処理する前のマウスは、免疫・アレルギー科学総合研究センター（独立行政法人理化学研究所）のＳＰＦ（特定病原体不在）実験動物施設にて飼育した。
また、本実施例に用いたプロテインＣは、次の通り調製した。マウス速筋線維由来プロテインＣの相補的ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）をマウス骨格筋由来のｃＤＮＡライブラリーからＰＣＲにて増幅した。用いたプライマーの配列は、５’−ＧＧＧＡＧＧＡＴＣＣＧＡＣＣＴＴＣＣＴＣＴＣＡＡＧＴＧＧ−３’（配列番号：１）、５’−ＡＴＴＡＡＡＧＣＴＴＡＧＣＣＡＧＧＴＡＧＣＡＧＴＧＧＧ−３’（配列番号：２）である（下線部は、ｐＱＥ３０ベクター（キアゲン）へサブクローニングする際に用いた制限酵素認識部位）。プロテインＣ発現ベクターをＴＯＰ１０Ｆ’大腸菌株（インビトロゲン）に導入し、取り扱い説明書に従い、組み換えプロテインＣタンパク質断片を精製した。組み換えプロテインＣタンパク質断片の可溶性画分はｐＨ７．４、ＰＢＳ緩衝液（０．５Ｍ アルギニン、２ｍＭ 還元グルタチオン、０．２ｍＭ 酸化グルタチオン含有）を用いて透析した。
上記マウス及びプロテインＣを用いて、次の通り、マウスにおけるＣＩＭの誘導を行った。上記マウスに、皮下投与にて２００μｇプロテインＣタンパク質断片含有完全フロイントアジュバント（ＣＦＡ）を導入し、免疫処理を行った（ＣＦＡは、１００μｇの熱処理したＭｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｕｔｙｒｉｃｕｍ（デフコ）を含む）。抗原を背中と足踵部の複数箇所に導入すると同時に、ＰＢＳに溶かした２μｇ百日咳毒素（生化学工業）を腹腔内に注射した。免疫処理から２１日後、マウスから採取した近位筋（膝屈曲筋と大腿四頭筋）をパラフィン切片（１０μｍ）にし、ヘマトキシリン＆エオシン（Ｈ＆Ｅ）染色を施したものについて、筋線維における単核細胞浸潤及び壊死の有無を組織学的に観察した。各筋肉ブロックにおける炎症の組織学的重症度（組織学的スコア）は、以下の４つのカテゴリーに分けて評価を行った。
＜組織学的スコア＞
グレード １：１から５未満の筋線維で炎症細胞浸潤が観察される。
グレード ２：５から３０の筋線維で炎症細胞浸潤が観察される。
グレード ３：筋束で炎症細胞浸潤が観察される。
グレード ４：びまん性の広範な炎症細胞浸潤が観察される。
（筋肉ブロックにおいて同程度の炎症細胞浸潤が複数箇所観察された場合は、グレードに０．５を追加する。）

［実施例２：筋炎モデルマウスの血清アミロイドＡ（ＳＡＡ）濃度に対する抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体の効果］
本実施例で用いた抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体（ラットＩｇＧ１）はＭＲ１６−１ハイブリドーマ細胞株から精製した。抗ジニトロフェノールモノクローナル抗体（ラットＩｇＧ１）はＫＨ−５ハイブリドーマ細胞株から精製した。両ハイブリドーマ細胞株は、中外製薬株式会社から提供を受けた。
プロテインＣ免疫を実施例１の通り行い、同日に４ｍｇ又は２ｍｇの各モノクローナル抗体（抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体（ＩＬ−６Ｒ ｍＡｂ）、又はそのコントロールとして抗ジニトロフェノールモノクローナル抗体（対照 ｍＡｂ））をマウスの腹腔内に投与し、その５日後に顔面静脈からの採血を行い、ＳＡＡ濃度の測定を行った。ＳＡＡの濃度測定は、マウスＳＡＡ ＥＬＩＳＡキット（ＢｉｏＳｏｕｒｓｅ）を用い、付属の取り扱い説明書に従って行った。
その結果、免疫処理と同時に抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体４ｍｇを投与した群のＳＡＡ濃度は、コントロール抗体４ｍｇ投与群に対して、統計的に有意な減少が認められた。抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体２ｍｇ投与群のＳＡＡ濃度は、コントロール抗体２ｍｇ投与群に対して、有意差は認められなかったものの、減少傾向が認められた（図１）。

［実施例３：ＣＩＭにおける抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体の治療効果（１）］
マウスに対し、プロテインＣ免疫を実施例１の通り行い、同日に４ｍｇ又は２ｍｇの各モノクローナル抗体（抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体（ＩＬ−６Ｒ ｍＡｂ）、又はそのコントロールとして抗ジニトロフェノールモノクローナル抗体（対照 ｍＡｂ））の腹腔内投与を行い、続けて免疫処理後３週間の間、０．１ｍｇ各モノクローナル抗体を１週間に２回投与した。
その結果、無治療群、コントロール抗体投与群、及び抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体投与群の全てのマウスにおいて、免疫処理後２１日目に組織学的な筋炎が確認された。組織学的スコアの平均は、無治療群が１．９２±０．３８（±ＳＤ）、コントロール抗体４ｍｇ投与群では２．１±０．２２、２ｍｇ投与群では１．９３±０．２４であった。一方、抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体４ｍｇ投与群では１．１３±０．３２、２ｍｇ投与群では１．５５±０．５４であった。抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体の４ｍｇ投与群では、コントロール抗体の４ｍｇ投与群に比して、組織学的スコアが有意に減少していた（表１、図２）。

［実施例４：ＣＩＭにおける抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体の治療効果（２）］
本発明者らは、ＣＩＭの繰り返しの観察により、免疫処理後７日目で既にＣＩＭが発症することを確認していたため、次の通り、免疫処理後７日目に各モノクローナル抗体の投与を行い、その治療効果の検証を行った。
プロテインＣ免疫を実施例１の通り行い、免疫処理後７日目に４ｍｇ又は２ｍｇの各モノクローナル抗体（抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体（ＩＬ−６Ｒ ｍＡｂ）、又はそのコントロールとして抗ジニトロフェノールモノクローナル抗体（対照 ｍＡｂ））の腹腔内投与を行い、続けて免疫処理後３週間目までの間、０．１ｍｇ各モノクローナル抗体を１週間に２回投与した。
その結果、無治療群、コントロール抗体投与群、及び抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体投与群の全てのマウスにおいて、免疫処理後２１日目に組織学的な筋炎が確認された。抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体４ｍｇ投与群においてはＣＩＭの発現は４０％であった。組織学的スコアの平均は、無治療群が１．２５±０．７１、コントロール抗体４ｍｇ投与群では１．４３±０．３８、２ｍｇ投与群では１．６５±０．２９であった。一方、抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体４ｍｇ投与群では０．２±０．２７、２ｍｇ投与群では０．７５±０．４３であった。抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体２ｍｇ又は４ｍｇ投与群では、コントロール抗体投与群に比して組織学的スコアが有意に減少していた（表２、図３）。

以上の実施例の結果より、ＣＩＭにおける、抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体の治療効果を確認することができた。

本発明は、ＩＬ−６を標的とした、炎症性筋疾患を治療するための薬剤であり、筋線維における異常な炎症細胞浸潤を効果的に抑制しうる薬剤として有用である。

図１は、ＥＬＩＳＡの結果を示す図である。プロテインＣ免疫処理後５日目のマウスにおいて、抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体４ｍｇ又は２ｍｇの投与によるＳＡＡ濃度の減少が認められた。全群ｎ＝３、＊ｐ＜０．０５である。 図２は、免疫処理と同時に抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体投与を行い、免疫処理後２１日目のＣＩＭの発症を組織学的に確認した結果を示す図である。表１をグラフに書き直したものであり、＊ｐ＜０．０５である。 図３は、免疫処理後７日目に抗マウスＩＬ−６受容体モノクローナル抗体投与を行い、免疫処理後２１日目のＣＩＭの発症を組織学的に確認した結果を示す図である。表２をグラフに書き直したものであり、＊ｐ＜０．０５である。

Claims (7)

1. ＩＬ−６アンタゴニストを有効成分とすることを特徴とする炎症性筋疾患治療剤。
2. ＩＬ−６アンタゴニストがＩＬ−６受容体に対する抗体又はＩＬ−６に対する抗体である、請求項１に記載の炎症性筋疾患治療剤。
3. 抗体がモノクローナル抗体である、請求項２に記載の炎症性筋疾患治療剤。
4. 抗体が組換え型抗体である、請求項２に記載の炎症性筋疾患治療剤。
5. 抗体がキメラ抗体、ヒト化抗体、又はヒト抗体である、請求項２に記載の炎症性筋疾患治療剤。
6. 炎症性筋疾患が多発性筋炎又は皮膚筋炎である、請求項１から５のいずれかに記載の炎症性筋疾患治療剤。
7. 筋線維における異常な炎症細胞浸潤を抑制する作用を有する、請求項１から６のいずれかに記載の炎症性筋疾患治療剤。