JP2009527471A - 分子インプリントポリマの改良した調製方法 - Google Patents

Abstract

一の態様は、分子インプリントポリマ（ＭＩＰ）粒子の改良された調製方法であり、ここで、不溶性ＭＩＰ粒子を具える開始組成物は、特定標的分子に結合するＭＩＰ粒子の濃度を上昇させ、最終的な組成物から結合していない（非結合性）粒子および結合力の弱い粒子を排除する。濃度上昇は、特定の物質を分離することができるクロマトグラフィ法または凝集手段の使用を介して通常達成される。他の態様は、未精製のＭＩＰ粒子の拡張された延長の使用によって、改善された不溶性ＭＩＰの調製で、ＭＩＰ粒子の質量単位あたりの多数の結合部位に暴露される。好適な実施例において、二つの態様が組み合わされる。最終的な改良されたＭＩＰは、診断、分析、治療用に使用され、特に、胃腸管におけるコレステロール、胆汁酸および胆汁酸塩などの物質に結合できる経口投与された薬剤として使用される。
【選択図】なし

Description

本発明は、分子インプリントポリマ（ＭＩＰ）の調製における改良に関し、特に、本発明は、製薬学的製剤において捕捉剤として使用可能なように、ＭＩＰの結合能力および特異性を増加させる方法に関し、具体的には、このような製薬学的製剤は、例えばコレステロール、胆汁酸および胆汁酸塩など、胃腸管における標的分子に結合する。さらに、ＭＩＰ製剤の本発明の改良は、前記ＭＩＰを特徴化する手段として役立つ。

合成ポリマの分子インプリンティングは、官能基を有するクロスリンクモノマが、分子テンプレートとして作用する標的分子の存在下で共重合化されるプロセスである。重合化前に、官能基を有するモノマは、非共有結合性相互作用を介してテンプレートを有する複合体を形成するか、または、テンプレートの重合可能な誘導体を形成するように、共有結合的に結合される。重合化後、これらのモノマの官能基は、高度のクロスリンクポリマ構造によって、配置される。次に、溶媒抽出および／または化学分解によるテンプレート除去によって、寸法および形状において標的分子に相補的な結合部位が明らかになる。このように、分子記憶は、非常に高い特異性で標的に再結合可能であるポリマ（「分子インプリントポリマ」または「ＭＩＰ」）に導入される。

ＭＩＰは、元来、特にキラル分離に関して、ＨＰＬＣの固定相として用いられる。これに続き、ＭＩＰの使用は、薄層クロマトグラフィ、キャピラリ電気泳動、固相抽出および免疫分析型の結合分析などの他の分析技術に拡大されている。これらの結合部位は、抗体−抗原システムを用いる親和性、および、選択性を有する場合が多い。これらの模倣体（ｍｉｍｉｃ）は、検出技術に対する実際の抗体よりも明らかな優位性を示す。架橋の性質が大きいので、ＭＩＰは、本質的に安定で強固であり、酸、塩基または金属イオン、有機溶媒中、あるいは、高温高圧の存在下の過酷な環境における適用を容易にする。さらに、ＭＩＰは、生成するのに安価であり、長い時間室温の乾燥状態で貯蔵することができる。

従って、原則的に、全てのＭＩＰは、以下のように作製される：モノマおよび標的（もしくはテンプレート）分子は混合され、自己集成が生じ、クロスバインダが添加され、重合化が開始される。重合化後、ポリマは小さなフラクションに分解され、標的分子が抽出される。ＭＩＰが、標的分子の溶液に入れられた場合、これらはＭＩＰに再結合するであろう（Ｙｕ Ｃｏｎｇ；Ｌｅｉｆ ＳｃｈｗｅｉｔｚおよびＩｏａｎａ Ｗａｒｎｍａｒｋ−Ｓｕｒｕｇｉｕ参照）。

ＭＩＰ製剤の一般的な技術の段階が、図１に概略的に示されている。

ＭＩＰの歴史
ＭＩＰ製剤の最初の例の１つは、色素を選択的に認識するためにシリカ（珪酸ナトリウム）の一種を使用して、早くも１９４９年（Ｄｉｃｋｅｙ）に開示されている。しばらくした後に、ネットワークを構築するための他の種類の自己組織化システムが記載されており、ここで、特異的に標的／検体が結合することが可能となった（Ｒａｍｓｔｒｏｍ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｈｗｅｉｔｚ ｅｔ ａｌ．，およびＶｌａｔａｋｉｓ ｅｔ ａｌ．）。

モノマの選択および重合化
１９７０年代および１９８０年代において（Ｓｈｅａ １９８６、Ｓｈｅａ １９９０ および Ｗｕｌｆｆ １９８７参照）、プラットフォームを構築するために使用されるポリマに直接、テンプレート／標的分子を共有結合的に結合させるコンセプトが開示されている。これは、直接結合することによって、ポリマに亘り結合部位がより均等に分配されるようになったことを示唆する。しかしながら、これと同時に、重合化後にテンプレートを除去する問題が残った。テンプレートを除去するためには、ポリマのミクロ化および化学結合の切断の両方が必要である。

重合化中に使用されるモノマの１つにテンプレートを拘束（ｔｅｔｈｅｒｉｎｇ）させずにＭＩＰを調製することによって、優れたＭＩＰとなる。しかしながら、多量の結合部位は、特異性の少ない分子の一部において、テンプレート／検体と結合する傾向がある結合部位を含み、最終的なＭＩＰの所望の特異性を得ることができないことが、文献中の経験としてある。このことは、分子の立体異性体を分けることが目的の場合は特に、分析目的に用いられるＭＩＰには非常に重要であるが、主な目的が、最終的なＭＩＰの全体の結合能力を促進する目的の場合において、重要性は比較的低い。

所定の分析条件において、テンプレートは、同一性（アイデンティティ）が異なっていなくてはならず、すなわち、実際のテンプレートを用いる代わりに、作製されたＭＩＰは、分析されるサンプルに不純物を混入させないために、テンプレートの「模倣体」に構築される。検体とＭＩＰとの間の特異的な結合を確実にすることが可能なテンプレート模倣体を発見することは、非常に難しい仕事であることは明らかである。

ＭＩＰを調製する全く別の方法は、モノマ、クロスバインダ、およびテンプレート（またはテンプレート模倣体）を、エマルジョン状の特定のフォーマットで保持しながら、混合液を重合化することであり、このようにして、分子としての最終的なＭＩＰを直接得る（Ｆｕｎｋｅ ｅｔ ａｌ）。このプロセスで作製されたＭＩＰの粒径は、他の事項、モノマ濃度および撹拌速度（エマルジョン中の液滴の寸法を決定する）に関連するであろう。（１μｍ以上の粒径を得るためには、１０００ｒｐｍ以上で溶液を撹拌する必要がある）。参考文献によると、この種の方法に付随する不利益は、調整期間が長く、収率が低いことである。

一般的に、先行技術は、再現性のあるＭＩＰを調製することの難しさを記載していることが多く、結合能力および特異性の双方は、折り合わない（従って、所望するより低い）。今まで、高い結合能力を有するＭＩＰ組成物の、信頼性および実現性のある調製方法は、開示されていない（Ｓｅｌｌｅｇｒｅｎ １９９８）。

有益な粒径の取得
バルク形成重合化プロセスは、ＭＩＰを調製するために使用するとき、高程度のクロス結合は、テンプレート分子の抽出がなされる前に、ポリマを非常に小さい粒径にミクロ化する必要がある。ミクロ化の方法は、セメント業界（ｍｍサイズの粒子を形成）から小型ボールミル業界（圧膜ペースト調製（電子回路用のμｍ粒径の粒子））にわたって、非常に異なる産業で使用されている。このようなミクロ化プロセスは、ＭＩＰの機能性（特異性および能力の両方）の重要な部分であるにも関わらず、選択される実際の方法は、ほとんどのＭＩＰ文献において詳細な記載はなく、ＭＩＰからのテンプレートの抽出の前に、得られたバルクポリマが研磨され、（分類される粒径で）篩にかけられると記載されているのみである。

テンプレート除去
ほとんどの文献において、テンプレート分子の除去は、このプロセスが最終的なＭＩＰの機能性に重要であるにもかかわらず、十分に記載されていない。このプロセスは、１つまたはそれ以上の特別に命名された溶媒を用いて、非特異的な洗浄工程としてのみ記載されていることがほとんである。特に、ＭＩＰが、例えば、検体を予め濃縮するツールとして、固相抽出（ＳＰＥ）用に開発された場合、テンプレートの残量でさえ、ＭＩＰの有用性を阻害するであろう。テンプレート除去に使用されるマトリックスからＭＩＰを分類することは、多くの場合、ろ過または遠心分離によってなされる。

ＭＩＰを改良する周知の効果
米国特許第４，１１１，８６３号は、「非膨潤性の三次元ポリマが、光学活性を有する化合物の残基である組成を有し、残基は、前記ポリマの物理構造を残すように、前記ポリマから化学的に除去可能であり、ボイドは、光学活性を有する化合物の前記残基の寸法および形状に対応し、前記ポリマのボイド内の特定の立体配置は、光学活性を有する化合物の前記残基の化学構造に対応し、「前記光学活性を有する化合物」は、ＭＩＰがその後結合可能であるテンプレートである」ことを開示している。

米国特許第５，１１０，８３３号において、「合成酵素または合成抗体の作製方法は、プリント分子の周囲のモノマの配位、クロスリンクの負荷、ポリマへの重合化、これに続くプリント分子の除去を具え、従って、前記プリント分子に対応するポリマにキャビティが形成される」ことが、クレームされており、これにより、テンプレート分子に対するＭＩＰの特異性を上げている。すなわち、米国特許第５，１１０，８３３号にクレームされた性能改良は、重合化前に、テンプレート分子とモノマユニットとの間の接触を最適化することに基づいている。

米国特許第６，８８１，８０４号において、ＭＩＰにおける孔（ｐｏｒｏｓｉｔｙ）を導入することが、テンプレートと相互作用するように意図されたボイドへのアクセスを増加させることによって、ＭＩＰの性能を上昇させる手段として開示されている。

米国特許第６，６３８，４９８号において、胆汁酸特異的なＭＩＰの作製する特別に選択されたモノマがクレームされており、米国特許出願公開番号第２００４／０１５７２０９Ａ１において、重合化前に、支持体材料の上のテンプレート分子を固定することが提案されている。ＭＩＰの性能を改良するためのこれらの提案の全ては、ＭＩＰの調製前もしくは調整中に行われる、モノマの化学特性または、ＭＩＰの構造について記載している。

米国特許第５，９９４，１１０号は、テンプレート分子に相補的な構造を含む、小さいポリマ／オリゴマをインサイチュウで形成するように製造されたＭＩＰを開示している。これらのポリマまたはオリゴマは、生体分子の周囲にコーティングまたはイメージを形成し、コーティングまたはイメージは、生体分子から除去され、分離した構成要素は、生体分子から得られ、例えば治療用薬剤または予防用薬剤、すなわち製剤として使用できる。この種類の作製工程であるため、米国特許第５，９９４，１１０号では、従来のＭＩＰ粒子の調製のように、ミクロ化ステップを使用しない。米国特許第５，９９４，１１０号は、非結合剤からＭＩＰを分離することを提案しているが、しかしながら、提案された方法は全て、例えば、ＭＩＰが可溶性である場合にのみクロマトグラフィを介して作製された極めて小さいサイズのＭＩＰに依存している。米国特許第５，９９４，１１０号に従う治療的に活性のあるＭＩＰは、１〜２００ｋＤａ範囲の下端の分子量を示すことが、具体的に示唆されている。さらに、米国特許第５，９９４，１１０号は、懸濁された非可溶性ＭＩＰの一方を「優れた結合剤」に、他方を「比較的効果の低いまたは非結合剤」に分ける手段については、一切開示していない。

十分に高い結合能力を有するＭＩＰ組成物を得て、この組成物を可溶性レセプタおよび抗体の代替として薬学的応用に使用可能なように、ＭＩＰを調製する改良方法を提供することを本発明の目的とする。さらに、先行技術のＭＩＰ組成物よりも改良された特性を有するＭＩＰ組成物を提供することが目的である。

ＭＩＰの調製に関する従来技術を改良しようとする上述の試みにも関わらず、例えば、特定の標的分子の本体を取り除くことが治療の一部である治療方法において、抗体および可溶性レセプタなどの代替物として、治療に使用され得るＭＩＰ組成物を調製する試みは今日まで成功してこなかった。

本発明は、ＭＩＰが所定のリガンドに対して極めて高い親和力を有する場合であっても、例えば、ミクロ化／粉砕化したＭＩＰの組成物が、リガンドに対する結合親和力の大きなばらつきを示し、従って、例えば、臨床的に使用するためには、全体の結合能力が不十分で不安定であり、または換言すると、通常、標的リガンドに対する周知のＭＩＰ組成物の結合能力は、ＭＩＰを治療用の可溶性レセプタと抗体の代替とするには非常に低い。

本発明は、さらに、ＭＩＰ組成物の全体的な結合能力に関するＭＩＰ粒径の影響についての研究は（例えあっても）わずかであることに着目している。

従って、本発明は、テンプレートまたはテンプレート類似体に結合する能力獲得後、ＭＩＰ粒子を分類することによって、ＭＩＰの性能をさらに改良し、これによって、標的に結合するＭＩＰの濃度を上昇させることを教示している。このような機能的分類または精製プロセスによって、選択されたテンプレートまたはその類似体に適宜に結合する能力を有するボイドまたはキャビティがあるＭＩＰ粒子のフラクションが生成され、ＭＩＰとテンプレートとの間の平均親和力を改良し、従って、ＭＩＰの結合能力を改良する。

さらに、本発明は、ＭＩＰ組成物の性能が今日まで使用されてきたミクロ化ステップを改良することによって簡単に改良され、従って、より小さい平均粒径のＭＩＰ粒子となり、これによりＭＩＰ粒子は、結合部位と結合量の比率が改善されたことを示した。

従って、第１の態様において、本発明は、標的分子に対する高い結合性能および特異性を有する分子インプリントポリマ（ＭＩＰ）を具える組成物を調製する方法に関し、当該方法は、
ａ）標的分子に結合する不溶性ＭＩＰの懸濁液を得るステップであって、当該不溶性ＭＩＰは、テンプレート分子としての標的分子またはその模倣体を用いて調製される、ステップと、
ｂ）懸濁されたＭＩＰを親和性精製工程にかけるステップであって、テンプレート分子、そのフラグメントまたはその模倣体が、捕捉剤として使用される、ステップと、
ｃ）親和性精製工程において前記捕捉剤に結合するＭＩＰを回収し、一方で、回収された生成物から捕捉剤、および、捕捉剤に結合していないＭＩＰを実質的に排除する、ステップと、
ｄ）回収されたＭＩＰと任意選択のキャリア、ビークル、または希釈剤を組合せ、前記組成物を得るステップと、を具える。

第２の態様において、本発明は、標的分子に対する高い結合能力を有するＭＩＰを調製する方法を提供し、この方法は、標的分子またはその模倣体からなるテンプレート分子を具える未精製のＭＩＰをミクロ化の第１の段階にかけ、テンプレート分子を除去できるのに十分小さいＭＩＰ粒径を得る、ステップと、実質的に全てのテンプレート分子を除去するステップと、このようにして得られたＭＩＰをミクロ化の第２段階にかけるステップと、を具え、ミクロ化の第１段階および第２段階によって、５０μｍ未満の平均直径のＭＩＰが得られる。

第３の態様において、本発明は、以下の特性の少なくとも１つを有する不溶性ＭＩＰの組成物を与える：
１）ＭＩＰの平均直径が２０μｍ未満であること；
２）平均標的分子結合能力が、ＭＩＰの１０質量単位に対して少なくとも標的の１質量単位であること；
３）前記組成物中の実質的に全てのＭＩＰが、同一の標的分子に結合し、選択的に、前記組成物が、標的分子に対する結合部位の全てを含まないこと。

第４の態様において、本発明は、循環器疾患、高血圧、アステローム硬化症、胆石症、胆汁うっ滞性肝疾患、高コレステロール血漿、肥満症、寄生虫あるいは例えばバクテリアおよび真菌など微生物由来の感染症、経口由来の毒による中毒、の治療、予防または回復用の治療製剤の調製において、本発明の組成物を使用することに関する。

最後に、第５の態様において、本発明は、循環器疾患、高血圧、アステローム硬化症、胆石症、胆汁うっ滞性肝疾患、高コレステロール血漿、肥満症、寄生虫あるいは例えばバクテリアおよび真菌など微生物由来の感染症、経口由来の毒による中毒、からなる群から選択される疾患の治療、予防またはリスクを低減する方法に関し、この方法は、治療等を必要とする対象に本発明の組成物の有効量を投与するステップを具える。

下記において、多くの用語は、本発明の範囲を確実に正しく理解するために規定されている。

「分子インプリントポリマ」（ＭＩＰ）は、１つまたはそれ以上のテンプレート分子の少なくとも一部に対応するキャビティ（またはボイド）を具えるポリマであり、この１つまたはそれ以上のテンプレート分子は、重合化前にクロスリンクしているモノマを含むモノママトリックスに組み込まれる。重合化後に得られたポリマは、テンプレート分子の形状に対応する多数のキャビティを含む。通常、ＭＩＰは、小さな粒子に分離（ｓｅｑｕｅｓｔｅｒ）され、従って、テンプレートの除去を促進し、テンプレート分子に類似または同一の標的分子と相互作用する部分的なキャビティが形成される。本明細書および特許請求の範囲において、ＭＩＰという用語は、通常、ＭＩＰの特定の形状を指し、用語「ＭＩＰ」および「（複数の）ＭＩＰ」は、ＭＩＰ粒子および（複数の）ＭＩＰ粒子という表現と交換可能に使用される。

本発明に使用されるＭＩＰは、不溶性の分子／成分（ｅｎｔｉｔｉｅｓ）である。この不溶性は、胃腸管から身体（例えば、循環系）内への経路を制限または阻止するので、特に、胃腸管において使用するため薬剤として好適である。すなわち、経口投与されると、本発明に用いられるＭＩＰは、糞便で***されるまで、実質的に胃腸管に閉じ込められたままである。

「未精製のＭＩＰ」は、まだ一度もミクロ化にかけられていないＭＩＰであり、依然としてテンプレート分子、または、少なくともＭＩＰ構造中のキャビティのテンプレート分子由来のデブリ、が組み込まれている。

「ミクロ化」は、テンプレートを保持しているＭＩＰをより小さな粒子に分離するプロセスのことをいう。この目的に好適な方法を使用することができる。

「標的分子」は、本明細書において、ＭＩＰが結合可能な分子である。

「テンプレート分子」は、通常、標的分子と同一であり、しかしながら、標的分子の模倣体でもよい（すなわち、少なくとも部分的に同一の３次元構造、およびプロフィール（断面）を有する分子でもよく、すなわち、模倣体は、例えば、標的分子のフラグメントによって構成される）。このテンプレートは、後に標的分子に結合するようになるＭＩＰ構造におけるボイドの「発生装置」として機能する。

「親和性精製」は、物質と、結合する相手物質と、の間の特別な結合に使用される物質を精製するあらゆる方法のことをいう。これらの方法の多くは、物質を捕捉する固相支持体（クロマトグラフィマトリックス）に結合される捕捉剤を利用する。当業者に周知の典型的な例は、捕捉剤として抗体を用いる親和性精製であり、この捕捉剤としての抗体は、抗体に結合する抗原を精製するクロマトグラフィ用ビーズに結合する。本発明によって用いられる親和性精製の方法は、本明細書に開示された寸法を有する、懸濁された不溶性ＭＩＰ粒子を、捕捉可能な方法である。従って、通常の親和性精製方法は、当業者に周知な膨張ベッド吸着（ＥＢＡ）に拡張される。

「固相（ｓｏｌｉｄ ｐｈａｓｅ）」は、本明細書において、共有結合または非共有結合の手段で捕捉剤をしっかり固定するために使用される物質のことである。従って、クロマトグラフィ用材料の調製において従来使用される（可塑性ポリマ、糖、金属、ガラス、シリカ、ゴムなど）あらゆる材料は、固相として使用できる。このような固相物質は、問題となる物質に捕捉剤を結合させる好適な官能基を含有してもよい。このような誘導体化された物質は、タンパク質や他の高分子のクロマトグラフィ精製の技術分野の当業者に周知である。さらに、固相は、ＭＩＰなどの（タンパク質など単一生体分子と比較した場合）相対的に大きく不溶性の粒子を捕捉できる物理形状を有することができる。従って、固相は、ファイバ状（好ましくは中空）、クロマトグラフィ用マトリックス状（好ましくは、ＥＢＡに適したマトリックス）、ビーズ状（好ましくは、電磁石を用いた手段によって隔離される）、または他の好適な形状でもよく、下記の記載を参照されたい。

本発明による精製の様態の実施例
上述のように、第１の態様における本発明は、標的分子に対する高い結合能力および特異性を有する分子インプリントポリマを具える組成物の調製方法に関し、この方法は、
ａ）標的分子に結合する不溶性ＭＩＰの懸濁液を得るステップであって、この不溶性ＭＩＰは、テンプレート分子として標的分子またはその模倣体を用いて調製される、ステップと、
ｂ）懸濁されたＭＩＰを親和性精製工程にかけるステップであって、テンプレート分子、そのフラグメントまたはその模倣体が、捕捉剤として使用される、ステップと、
ｃ）アフィニティ精製工程において前記捕捉剤に結合するＭＩＰを回収し、回収された生成物から捕捉剤に結合しない捕捉剤およびＭＩＰを実質的に排除する、ステップと、
ｄ）前記組成物を得るために、回収されたＭＩＰと、選択的に、キャリア、ビークルまたは希釈剤と、を混合するステップと（キャリア、ビークルおよび希釈剤は、通常、小さな寸法の固体粒子を具えた薬剤組成の調製において、薬学的に許容され、当業者に周知なもののなから選択される。）、を具える。

すなわち、この態様は、標的分子（または標的分子の適切なフラグメントなど標的分子の代替物）に対して所望のような十分に高い親和性を示すＭＩＰの濃度上昇（ｕｐ−ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ）に依存している。しかしながら、この態様は、さらに、元々の未精製のＭＩＰの非結合性フラグメントが、ＭＩＰ組成物から除去される効果を有し、このこと自体により、ＭＩＰ粒子の組成物の質量単位あたりの結合能力を大幅に上昇させる（実験例４および付随する図４参照）。本発明は、当業者に周知な方法によって調製された不溶性ＭＩＰの組成物が、非結合性粒子の大きなフラクションを含み、このような組成物の質量単位あたりの結合能力が、結合していない結合剤（非結合性結合剤）を除去することによって劇的に改善されるということを初めて示すものである。従って、不溶性ＭＩＰの調製は、精製ステップｂ）を行ってもよく、従って、本発明の第１の態様は、不溶性ＭＩＰを調製する周知の方法を、高い結合能力および／または高い特異性を有する手段を含む周知な方法と組合せてもよい。

下記において、ＭＩＰ組成物用に設計された精製スキームの様々な実施例が、詳細に記載される。

精製スキームの第１の群は、捕捉剤が、共有結合的または非共有結合的に固相（クロマトグラフィ用マトリックスなど）に結合されることを具える。すなわち、このような精製スキームの群は、典型的なクロマトグラフィ精製方法を含む。従って、クロマトグラフィおよび同様の方法で有用な物質は、有用であり、好適な固相は、クロスバインドされた炭化水素、合成ポリマ、金属粒子またはこれらの組合せである。

精製スキームの第２の重要な群は、捕捉剤が、可溶性化学成分からなるか、またはその一部である（凝集手段によって精製する）。好適な実施例は、可溶性化学成分毎に複数の捕捉剤を露出するために、デンドリマ、置換基を有する炭化水素、および、ポリビニルアルコールおよびポリエチレングリコールなど置換基を有する可溶性ポリマから選択される部分に、捕捉剤が、共有結合的または非共有結合的に結合することを具える。

１つまたは他の群の精製スキームのいずれかが選択されるにも関わらず、本発明の第１の態様のいくつかの実施例は、テンプレート分子に結合する能力のある、ステップａ）で定義されるＭＩＰの結合部位のフラクションにのみ結合する捕捉剤を有することを具える。換言すると、この実施例においては、確実に、所望の結合特異性または結合親和性を有するＭＩＰだけが精製プロセスに保持され、一方、例えば、非特異性または弱い結合部位を有するＭＩＰは、精製段階で排除される。

精製プロセスにおける非特異的結合部位を排除する１つの方法は、親和性精製において、テンプレート分子のフラグメントである捕捉剤を用いることを具える。この方法を選択することによって、捕捉剤において、ＭＩＰへの結合性に関して他の分子と競合することがあるテンプレートの一部を取り除くことができる。これは、ＭＩＰが無関係な標的に結合してしまう推測上のクロス反応結合部位を、標的分子が含むような場合に、特に有効である。例としては、黄体化ホルモンに結合するＭＩＰ組成物を調製したい場合、ＬＨ、ＦＳＨ、ＴＳＨおよびｈＣＧのαサブユニットは同一であるので、テンプレートにおける上記ホルモン分子のαサブユニットを排除することに関連している。

この方法の代替例は、以下の構成を利用することであり、ここで、捕捉剤が、捕捉剤の一部のＭＩＰへの暴露を実質的に避けるために特定の配位性で、固相支持体またはその部分に捕捉剤を選択された官能基で結合することによって、固相面またはその部分の適用できる方に結合したテンプレート分子、その模倣体またはそのフラグメントを具え、結合された捕捉剤の配向性が、結合する全ての相手分子と実質的に同一となる。捕捉剤の一部は、ＭＩＰへの結合性に関してアクセスできず、従って、このように捕捉剤のアクセス不可能な部分に結合可能なＭＩＰは、全体の精製工程から排除することが可能となる。このような精製方法の生成物は、従って、ＭＩＰ粒子の組成物となり、この組成物の実質的に全てのＭＩＰ粒子が、特定の標的分子に結合し、標的分子の少なくとも１つの結合部位は、組成物のＭＩＰ粒子によって結合されない。

代替としては、捕捉剤とＭＩＰとの間の結合性が制限されることを、望まないか、あるいは、そのことが評価可能なほど有利であるか、またはその必要性がある場合、本発明の精製方法の１つは、捕捉剤の実質的に全ての部分がＭＩＰに暴露されるように、非特異的な配位性において、必要に応じて固相表面またはその部分に固定される捕捉分子がテンプレート分子、その模倣体、または、そのフラグメントを、具えることである。

捕捉剤は、固相支持体に結合される場合、親和性精製は、固相面への捕捉剤の結合に関連する好適な精製技術から選択することができる。しかしながら、精製工程は、膨張ベッド吸着（ＥＢＡ）、常時性ビーズ分離、および、中空ファイバ精製からなる群から選択される。

膨張ビーズ吸着（ＥＢＡ）
コラム中に入れられたベッドを用いる従来のクロマトグラフィの方法は、通常、ベッドの定位にあるボイド内に非特異的に捕獲される粒子の性質により、特定の物質を単離するのに使用されない。

ＥＢＡ内の主な原理は、クロマトグラフィ用ろ過物質（「固相」）を流動化し続けることであり、それにより、上述したように、粒子がカラムを通過できる。ＥＢＡ技術を用いる利点は、未精製の原材料をカラムに入れる前に、ろ過または遠心分離などのプレカラム清浄化ステップなしで、未精製の原材料または培養細胞からほとんどの場合タンパク質またはペプチドである可溶性物質を精製可能であることである（ｖａｎ Ｒｅｉｓ ＆ Ｚａｐａｔａ；Ｌｉｈｍｅ ｅｔ ａｌ）。このアイデアは、細胞デブリや沈殿物などの不要物または特定の物質が洗浄されると同時に、ベッドの固相に標的分子を結合させることである。このように、これらのプロセスの時間と費用は減少し、従って、ＥＢＡは、非常に多くの分子を精製するための経済的で推奨される価値ある技術である。しかしながら、ベッドが膨張されると、ベッドの定位のボイド量が増加することによって、特定の物質が通過でき、従って、ベッドの固相と適切に接触し、その結果、対象となる特定の物質と、ベッドの固相と、の間の結合親和性が、必要であれば達成される。この場合、ＥＢＡは、細胞と他の特定の物質を選択するのに使用可能であり（Ｕｊａｍ ｅｔ ａｌ）、ここで、抹消血からのモノサイトは、未精製の血球と混合されたビオチン化されたアンチＣＤ１４抗体を用いて単離され、続いて、ベッド粒子にストレプトアビジンが供給されるＥＢＡシステムに適用された。

本発明は、ＥＢＡシステムの固相またはベッド粒子が、前記ＭＩＰを作製するために使用されたテンプレートに類似するか、または同一の化学構造に暴露された場合、ＭＩＰ技術によって調製された粒子が、同様の方法において、ＥＢＡによって分類または精製できると結論づけている。ベッド粒子がＥＢＡシステムの流体の一部の流れとともに輸送されるが、ＭＩＰ粒子が比較的一定の膨張量で保持されることは重要であるので、比較的に高密度（＞２ｇ／ｍｌ）のベッド粒子は、流体化プロセスにおいてベッドに結合したＭＩＰから結合していないＭＩＰを分離するために、優れていることが明らかになるだろう。このように高密度のビーズの例は、Ｕｊａｍらによって開示されている。ベッド粒子が非多孔性であるか、制限された多孔率を示すことが好ましい（参照Ｃｈａｓｅ ｉｎｆｒａ）。コレステロールや胆汁酸などのテンプレートは、好ましくは、テンプレート分子の構造特性および化学特性に暴露される配向で、ベッド粒子および調製されたＭＩＰにカップリング（結合）され、０．２〜５０μｍ（下記参照）の好ましいサイズのものが、流体化ベッドに適用され、適宜な反応時間後、未結合ＭＩＰを含む流体相の再循環させ、未結合のＭＩＰは、例えば、流速を増加させることによって、または単純にＥＢＡシステムに洗浄用緩衝液を適用することによって洗浄し、この流れを排出させる。結合したＭＩＰは、可溶性テンプレートを適用すること、熱、イオン強度を増大させること、または、ビーズに物理的ストレスを与えることによって、ベッド粒子から放出される。上述したように、非多孔性または制限された多孔率のベッド粒子を使用することも可能である（Ｃｈａｓｅ参照）。

貫流（ｆｌｏｗ−ｔｈｒｏｕｇｈ）によるベッドの膨張化または流体化に代替して、ベッドは、機械的な撹拌、転倒型混合、振とう、超音波および他の対流／質量輸送方法によって、膨張できる。続いて、ベッド粒子に結合したＭＩＰ粒子の分離は、貫流相を介してベッドの適宜な流体化によってなされる。代替として、結合したＭＩＰと、結合していないＭＩＰと、は、密度、寸法、形状、光学特性の違いによって、または、遠心分離、半導体、ろ過、捕捉によって分離でき、あるいは、寸法および／または重量、密度、形状、色、光放出、光散乱、膨張係数を利用する他の手段によって分離できる。

従って、精製の従来技術において記載したように、粒子をＥＢＡ手段によって分類または精製可能であり、本発明によれば、このことは、ＥＢＡシステムの固相またはベッド粒子がＭＩＰを作製するのに使用されるテンプレートに類似する化学構造に暴露された場合、ＭＩＰ技術によって調製された粒子に有利に適用することができる。

磁性粒子に結合させることによる分離
Ｄｙｎａｌ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）および他の会社は、通常タンパク質、ペプチドまたはＤＮＡである可溶性分子を主に精製するために、常時性ビーズを用いる技術を開発し、例えば、常時性ビーズに固定した抗体に特異的に結合することによって、細胞および細胞小器官を単離することも実現した。より大きなビーズＭ４５０（４５０μｍ）は、細胞など特定の材料などの単離に推奨される。磁性ビーズが捕捉分子を保持した後、通常、細胞の膜タンパク、および、１つの細胞や他の特定材料などの標的に特異的な抗体を、適宜な時間長さで接触させ、この段階で、抗体を介して細胞に結合している常時性粒子を、磁場をサンプルコンテナにかけることによって、固定する。結合していない細胞は、常時性ビーズが固定され、磁場を常時性ビーズから除くと、洗い流される。これらのビーズは、例えば、トシル、エポキシ、カルボキシおよびアミンなど様々な種類の活性（因子）とともにＤｙｎａｌから商業的に入手可能であり、上記の様々な因子は、抗体、もしくは、ＭＩＰ合成のテンプレート分子など、他の捕捉分子を結合するのに使用可能である。

コレステロールまたは胆汁酸などテンプレートを、上記の常時性粒子に結合させることによって、テンプレート反応性ＭＩＰは、常時性粒子に結合し、特異的な膜タンパク質を保持する細胞を単離するのと同様に、磁場を当てることによって、テンプレートに結合したＭＩＰと結合していないＭＩＰを分けることができる。

凝集（ａｇｇｌｕｔｉｎａｔｉｏｎ）による分離
凝集は、分子および粒子や細胞が、溶解度または懸濁特性の変化によるネットワーク形成とともに複数の相互作用が形成される場合に生じる事象であり、ネットワークの形成は、例えば、光学特性または顕微鏡観察における変化によって、検出可能である。凝集は、迅速なポイントオブケア（ＰＯＣＴ）試験における診断目的で主に使用される。例えば赤血球間のクロスリンクを促進するように可溶性成分は、多くの場合、２つの（ジ−）抗体または複数の抗体（Ｐｌａ ｅｔ ａｌ．）、レクチン、または用途特異的な抗原である（Ｒｏｇｅｒｓ ｅｔ ａｌ）。

例えば、コレステロールまたは胆汁酸などに付与されるデンドリマ状構造体など、複数のテンプレートまたはテンプレート類似分子に暴露される可溶性分子は、ＭＩＰ集合体に適用され、ＭＩＰ集合体は、例えば、機械的撹拌、転倒混合、振とう、超音波、流体相流などによって、流体化または懸濁液状態を保持する。これらのテンプレート反応性ＭＩＰは、例えば、デンドリマの上に露出され、好ましくは、ネットワークを形成するテンプレート分子と相互作用し、ここで、テンプレート分子を露出するデンドリマ構造体は、クロスリンク剤として作用する。

結合していないＭＩＰ粒子は、密度、寸法、形状、光学特性における明確な差異によって、遠心分離、半導体、ろ過、フローサイトメトリ、捕捉によって、または、寸法および／または重量、密度、形状、色、光放出、光散乱、膨張係数を利用して分離する他の手段によって、凝集またはネットワークで統合されたＭＩＰ粒子から分離される。続いて、テンプレート反応性ＭＩＰ粒子は、熱、有機溶媒、振とうを凝集またはネットワークに与えることによって、または、過剰に可溶性テンプレートに当てることによって、単一の粒子として抽出される。

ＭＩＰのミクロ化に関連した実施例
コレステロール特異的なＭＩＰを調製するための先行技術として既に行われた試みにおいて、能力は、ＭＩＰ１ｇあたり１７ｍｇのコレステロールに制限されるが、しかしながら、同様に調製された未インプリントＭＩＰは、ＭＩＰ１ｇあたり１３ｍｇのコレステロールに結合した（Ｓｅｌｌｅｒｇｒｅｎ １９９８）。他の試みは、ＭＩＰ１ｇあたり１ｍｇのコレステロール未満の能力を得る（Ｗｈｉｔｃｏｍｂｅ１９９５）。

本願の発明者達は、ＭＩＰ粒子組成物における有効なバインダを濃縮しなかった結果として、十分な結合力を得ることについての先行技術の問題点を把握した。

ＭＩＰのテンプレート結合能力に対する最も単純なモデルは、ピュアエリアである。ＭＩＰ粒子表面積の関数としてのテンプレート（例えば、コレステロール）によって占有されるこのエリアは、粒径および結合効率（１つのテンプレートによって覆われるＭＩＰ表面の割合）に対する要求を決定する基準として使用することができる。

理論的な観点
下記の結果に示される以下の計算例は、球形ポリマ粒子のテンプレートコレステロールに関する。コレステロールは、分子直径１６Å（１．６ｎｍ）を有すると仮定される。

標的分子（コレステロール）によって被覆される面積Ａは、円とみなすことができる。この面積は、
Ａ_Ｔ＝π×ｒ_Ｔ ^２（ｒ_Ｔは、標的分子の分子半径である）
によって与えられる。

球形面積（ＭＩＰ粒子）は、
Ａ_ＭＩＰ＝π×ｄ_ＭＩＰ ^２（ｄ_ＭＩＰは、ＭＩＰ球面の直径である）
によって与えられる。

どのくらいのＭＩＰ（質量）を、十分な量のコレステロールと結合するのに必要か評価するために、使用されるポリマの密度が必要である。選択される密度は、限界にさらされる。

ＭＩＰの結合能力は、所定量のＭＩＰ（ｍ_ＭＩＰ）によって結合可能な標的（ｍ_Ｔ）の質量である。

ＣＡは、標的によりＭＩＰ面の被覆された面積（Ｃｏｖｅｒｅｄ Ａｒｅａ）である。これは、さらに

縮小され：
数学用語において、直感的に予想される結果を提供する。
・標的の寸法がより小さくなると、能力が増加する。
・ＭＩＰ粒子がより小さくなくと、能力が増加する。
・ＭＩＰ密度がより小さくなると、能力が増加する。

結合に関連するＭＩＰ粒子の表面の記述は、各々の粒子の同士間に起因する。

通常５０ｍＭの加えられるテンプレート分子が、重合化前に全容積に均等に分配されると仮定される場合、粒径の関数としてＭＩＰ粒子中の理論的なテンプレート分子の数は、計算可能である。テンプレート分子の数、および、従って、所定量における可能性のある結合部位の数（例えば、粉砕された粒子）は、所定の標準偏差を有する標準的な部分によって記述可能である。理論的に、これは、

によって、粒子上の２つのサイト間の標準偏差ｓ_ｘが与えられる粒子のばらつきに影響を与えないであろう。ここで、Δｒは、２つのサイトの実際の距離であり、

は、２つの結合部位の間の所定の中間距離であり、粒子中のテンプレート分子の配置によって決定される。ｎは、各粒子の結合部位の数を表す。

およびｎの双方が、粒径の減少とともに増加すると、ｓ_ｘは、粒子のミクロ化によって変更されない。例えば１０^−８ｍ未満（表１参照）など、粒子が極めて小さいときであって、粒子中に大きな相違性（ｄｉｓｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ）があれば、平均は粒子あたりの１テンプレート分子未満である。実際には、このような相違性は、おそらく、１０^−８ｍより大きな粒子を含むように「上方に」「拡張」され、また、この相違性は粒径が増大するにつれ減少し、多くの結合部位を有するより大きな粒子の場合、重要になる。

一方、テンプレート分子の配向は、相違性を生じさせる。テンプレート分子の長手方向は、粒子の垂直方向に配向される場合、原則として、配向の２つの方向を有し、垂直方向位置のテンプレート分子は、長手方向軸の周りを回転する場合、異なる結合部位を生じさせないと仮定される。しかしながら、テンプレート分子の長手方向が、粒子面と平行に配向される場合、テンプレート分子が自身の長手方向軸の周りを回転するときに、異なる結合部位が生じる。すなわち、この場合の自由度の数（テンプレート分子が湿ることができる可能な位置）は、無限にあり、長手方向軸の周りを回転させる結果として、各々の新しい配向は、原則として、他のサイト全てと異なる結合部位を形成する。全体として、このことは、テンプレート分子の配向が無数の各種結合部位を生じさせることを意味している。

これらの結合部位は、テンプレート分子に対する結合定数Ｋｄによって特徴付けられる。いくつかの配向は、異なる場合であっても、同一のＫｄを有する結合部位を明らかに生じさせるが、大幅に異なるＫｄの結合部位もあり、以下の説明により明らかになる。

結果と評価
表１は、
・粒径の関数として、０．９ｎｍの厚さの球状シェルにテンプレート分子数の計算、
・発見されることが予想される結合部位の総数の計算、
・予測される高親和性結合部位数の計算、
を示す。

２つのコラムにおける数値は、公開された観測値に基づいて計算される（Ｋｅｍｐｅ ａｎｄ Ｍｏｓｂａｃｈ １９９１，Ｒａｍｓｔｒｏｍ ｅｔ ａｌ １９９４，１９９６ ＩＩ，Ｌｉｕ，Ｍｏｓｂａｃｈ １９９７ ａｎｄ １９９８，Ａｎｄｅｒｓｓｏｎ ｅｔ ａｌ １９９５）。球状シェルの厚さは、動的量の半径として選択され、例えば、コレステロール（Ｄａｖｉｄｓｏｎ ａｎｄ Ｈａｙｅｓ，２００２）など、１．８ｎｍの長さを有する分子が有すると仮定される。通常、ＭＩＰは、ＭＩＰ１ｇあたり２０μｍｏｌの結合部位を含有するが、結合定数（Ｋｄ）のばらつきは、１０^−３〜１０^−９Ｍと非常に大きく、上述した仮定とともに一致し；高親和性結合部位の共有は、結合部位の総数の１％未満を示す（Ｒａｍｓｔｒｏｍ ｅｔ ａｌ １９９６ ＩＩ，Ａｎｄｅｒｓｓｏｎ ｅｔ ａｌ １９９５）。例えば、異なる副腎皮質ステロイド（例えば、コレステロールに構造的に類似する分子）に対するＭＩＰを記述したＲａｍｓｔｒｏｍ ｅｔ ａｌ １９９６ ＩＩは、高親和性結合部位（＜１０^−６Ｍ）の占有率（ｓｈａｒｅ）は、各々、０．０７５％および０．２８％である。表１の計算において、高親和性結合部位は０．５％と仮定される。ここで参照される粒子において、粒径は、通常、２５μｍである。この寸法は、手を使って乳鉢でポリマを処置することによって相対的に容易に結合される。

実際に、１０μｍとなる結合部位の最大数は、３，７００，０００であることがわかった（表１）。１０μｍの粒子を１μｍの粒子に粉砕する場合、新規な１μｍ粒子は、３７，０００結合部位を有し、すなわち、もともとの１０μｍ粒子の１％である。原則として、１０μｍ粒子から結合部位が、１００個の新しい１μｍ粒子に分配される。非常に多くの異なる結合部位があるので、新しく作製された１μｍ粒子においてばらつきが間違いなくあり、１０μｍ粒子に存在した「異なる」結合部位の１％を含む。同様の結果は、高親和性のある結合部位のフラクションのみ、すなわち総数の０．５％が使用される場合に得られる。しかしながら、結合部位数は少なくなるので、結合部位がほとんどない結果（セクション１に記載）は、各々の粒子間の相違性にさらに役立つと仮定される。

粒子の「ホール」が結合部位として規定されるとき、限界には疑問の余地があるが、１０^−５Ｍより大きいＫｄを有する結合部位は、治療用途の使用において、関連性をほとんど有しない。アメリカで製薬学的に好ましいモノクロナール抗体は、１０^−７Ｍ（Ｃａｒｔｅｒ ２００６）未満のＫｄ値を有する。

粒子中のテンプレート分子の分配（所定の対応する標準偏差）は、重合化中の混合物の温度、速度、テンプレート分子の寸法、溶媒および他のモノマとの相互作用の間、などのパラメータにさらに依存するが、これらのパラメータは、位置および配向を記述するために本明細書に使用されるアセスメントと同様に、一般的ではない。これらのプロセスパラメータの使用は、粉砕化された粒子間の相違性を促進する点において、関係性がある。

上記の記載において、自由度の数は、各テンプレート分子の位置のみをいい；テンプレート分子の配向にリンクした自由度の数は、おそらく、低親和性および高親和性結合部位の配置に直接反映される。高い特異性と結合能力の粒子組成物を作製するために計画する際、我々は分離における適宜な高い厳密性（ｓｔｒｉｎｇｅｎｃｙ）を使用し、厳密性が、主に、分類され選択される高い親和性結合部位である。関係性の数、すなわち、高親和性結合部位が、ある寸法に達し、このパラメータ（数値）が、言及するのは難しいが、相違性を決定するのに、適宜な予測値は、おそらく約１μｍである。

チャネルを有する非常に固い粒子を作製する方法が提供され、このチャネルは十分に広いので、流体は、粒子の外側面ですぐに利用可能なさらなる結合部位に暴露することを望む場合は、分散速度を制限せずに、チャネルを介して流れる。この方法は、Ｐｏｒｏｓ^ＴＭマトリックスとして周知なクロマトグラフィシステム（例えば、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍによって提供される）において使用され、粒子を介した流体流は、粒子の周囲の流体の粒子と同じであるので、溶解度に影響がないように流れを速くすることが可能である。

腸管のぜん動を利用し、コレステロールまたは胆汁酸結合ＭＩＰとの接触を増加させるように、チャネルを有する粒子は有利である。ゲルを使用する場合、腸管の「交換」は、ゲルへの拡散速度に限定される可能性がある。グルコースが特異的なサイトに結合すると、ゲルオープニングによって作用するドラッグ放出システム（例えば、インシュリン放出）の主な目的で、ＭＩＰゲルを作製した。このことによって、ゲルを有するＭＩＰを作製するのが実際に可能であることが明らかになった（Ｗｉｚｅｍａｎ ａｎｄ Ｋｏｆｉｎａｓ ２００１，Ｓｅｏｎｇ ｅｔ ａｌ ２００２）。

ミクロ化の態様の実際の実施
従って、上記から明らかなように、本発明の第２の態様は、標的分子に対する高い結合能力および特異性を有するＭＩＰを調製する方法を含む。前記方法は、標的分子またはその模倣体からなるテンプレート分子を具える未精製のＭＩＰ（すなわち、重合化クロスリンクＭＩＰであり、ここで、テンプレートの実質的な抽出またはＭＩＰ構造のミクロ化は、まだ実施されていない）を、ミクロ化の第１段階にかけ、テンプレート分子を除去／抽出可能なほど十分小さいＭＩＰ粒子を得るステップと、実質的に全てのテンプレート分子を除去／抽出するステップと、得られたＭＩＰ粒子をミクロ化の選択的な第２段階にかけるステップと、を具え、ミクロ化の前記第１段階および選択的な第２段階は、ほとんど２５μｍのＭＩＰの平均直径を与える。従って、この方法を使用することによって、体積と暴露される結合部位との間の優れた比率を有するＭＩＰが得られる。テンプレート分子を除去可能であるので、所望の小さなＭＩＰ粒径を得るために、第１段階のミクロ化のみを使用するので十分である（最も単純）が、しかしながら、ＭＩＰからテンプレートの分離は、２つのミクロ化段階を有することによって推進される状況がイメージされ得る。

ミクロ化段階後のＭＩＰの平均直径は、１５μｍ未満、１０μｍ未満、５μｍ未満、１μｍ未満、９００ｎｍ未満、８００ｎｍ未満、７００ｎｍ未満、６００ｎｍ未満、５００ｎｍ未満、４００ｎｍ、３００ｎｍ、２００ｎｍなど、２０μｍ未満である。

あらゆる比率で、所定の組成物のＭＩＰは、ミクロ化の後、実質的に、直径が５０μｍ（４０、３０、２０、１０または１μｍより大きいなど）より大きい粒子を実質的に含まない。

ミクロ化は、ＭＩＰ寸法を最小化する適宜の方法による手段、すなわち、グリンディング、ミリング、破裂（ｅｘｐｌｏｓｉｏｎ）、ハンマ、ボールミリング、クリオグリンディング（ｃｒｙｏ ｇｒｉｎｄｉｎｇ）およびコロイジョンホモジナイズ、ならびに、これらの方法の組合せた方法、によって得られる。

上述したことから明らかなように、本発明の非常に重要な実施例は、本発明の第１および第２の様態の組合せを具え、すなわち、本発明による小型のＭＩＰ粒子のミクロ化を具えるＭＩＰの第１の調製であり、本発明の第１の態様について詳細に説明された親和性精製スキームが続く。

ほとんどの場合、ＭＩＰは、クロマトグラフィ用システムにおける分析目的に使用されるか、センサにおけるタンパク質置換体として使用される。このような用途におけるＭＩＰ粒子の寸法は、通常、２５〜１００μｍの範囲である。これらのＭＩＰ寸法は、上述したように、非常に大きいので、例えば、経口使用などＭＩＰ組成物を補助する際に、所望の結合能力を得にくく、さらに、これらの大きなＭＩＰは、従来の細胞精製方法の手段によって、選択／精製できない。

適宜な能力を得るために、ＭＩＰ粒子の寸法は重要である。ＭＩＰの所定の質量における能力を増加させる方法は、上記のように、容積に対する面積比を増加させることによって、（すなわち、ＭＩＰ粒子をより小さくする）、および／または、「活性」領域を促進させることによって（所望の検体を結合させることができるＭＩＰの領域）なされる。レシプロ的な直径、すなわち、直径を半分にし、容積に対する面積比を倍にするように、容積に対する面積を増加させた。これは、ＭＩＰの質量単位あたり粒子直径を２５μｍから０．４μｍに縮小することによって、結合能力において６４倍の上昇したことを意味する。

本発明によれば、０．５μｍ範囲の直径を有するＭＩＰは、テンプレート結合ベッド粒子を用いるＥＢＡシステムにおいて機能的選択／精製によって能力（フラクションを結合する面積）に対して最適化され得ることが考慮される（本発明の第１の態様に関する記述参照）。ＭＩＰ粒子などは、ＥＢＡシステムにおいて表面特性によって単離されることが知られている細胞と、同様の寸法範囲である。粒径を所望のように小さくるために、様々な寸法間隔に最適とするような各種方法によって、複数の方法でグリンディング／ミリングすることが必要である（下記参照）。

バルクポリマから所望の粒径を得るために、多くの場合、１つ以上のグリンディング方法を用いる必要である。ｍｍ程度からサブミクロン程度まで全てのポリマをミリングできる今日の技術は存在しない。

ポリマと相性のよい水膨張物質を挿入し、湿潤方法および凍結方法（例えば、ＣｒｙｏＧｒｉｎｄ^ＴＭ技術）を用いることによる小型化によって、効率的にポリマは２００μｍ未満のより小さい粒子に分解（ブレーク）される。このプロセスを容易にするために、ポリマ中の多孔構造は、ファイバ（例えば、セルロース、酢酸セルロース）をポリマ内に加えることによってなされる。

高濃度テンプレートを用いることは、高い結合能力のポリマおよび容易に小型化できる構造的に脆弱なポリマの両方を提供することができる小さなポリマドメインを形成できる。

サブミクロン粒子へのさらなる小型化は、ナノミリング／グリンディング（例えば、ＮＥＴＺＳＣＨビーズミル）、すなわち、２０μｍから４０〜２００ｎｍ程度に粒子をグリンディングトップダウンするによって実施可能である（このような粒子のタイプは、医薬品に使用される）。

空気ジェット、液体ジェットまたは同様の方法の助力でＭＩＰを加速し、この高速流のＭＩＰおよびその担体を衝突力を用いて固体ターゲットにぶつけ、ＭＩＰをより小さい粒径に分解することによって、ＭＩＰを小型化することが可能である。

最終的に、ＭＩＰの物理的なグリンディングの例示的な利用に示されるように、例えば、単純な乳鉢において、多数のＭＩＰに対する有効性が証明された。

本発明に関連するさらなるポイント
ＭＩＰ用のポリマの選択
２つの物質間で優れた接着を得るために、ぬれ張力は、低くなければならない。すなわち、いかなる反発力もポリマ面のリガンド吸収に対して作用してはならない。ＭＩＰに対して正しい物質を選択するために、適宜なポリマに対するモノマを選択しなければならない場合、ハンセン溶解パラメータ（ＨＳＰ）（Ｈａｎｓｅｎ ＣＭ参照）を考慮する。

コレステロールの場合、このＨＳＰは、化合物に対して決定され、ポリマの配列（テーブル）を研究することによって、強力な疎水性ポリマが、コレステロールに結合可能なＭＩＰを調製するのに良い選択となることがわかった。コレステロールのＨＳＰは、（δＤ、δＰ、δＨ、Ｒ）＝（２０．４；２．８；９．４；１２．６）であり、コレステロールのＨＳＰスフェアと重なるＭＩＰに対するポリマのリストは、高密度ポリエチレン（ＨＤＰＥ）＞ポリ塩化ビニル（ＰＶＣ）＞ポリアクリロニトリル（ＰＡＮ）＞ポリプロピレン（ＰＰ）＞テフロン（登録商標）（ＰＴＦＥ）＞ポリ酢酸ビニル（ＰＶＡｃ）＞ポリスチレン（ＰＳ）＞ポリブチルメタアクリレート（ＰＢＭＡ）＞ポリカーボネート（ＰＣ）＞ポリスチレン−ポリメタクリル酸（ＰＳ／ＰＭＡＡコポリマ）＞ポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴＰ）＞ポリウレタン（ＰＵＲ）＞ポリスチレンアクリロニトリル（ＳＡＮ）＞ポリメチルメタクリレート（ＰＭＭＡ）＞ポリアミド（例えばナイロン６６）＞ポリビニルジフルオライド（ＰＶＤＦ）＞ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）である。これらのポリマの全てが、クロスバインダおよびテンプレートとともに容易に重合化されるわけではないが、上記のリストは、最も適したポリマを与えるモノマおよびクロスバインダの選択のための都合の良い開始ポイントである。コポリマ、ブロックポリマおよびコブロックポリマ（など）も、所定の標的リガンドに対してＨＳＰが適合するように作製可能である。

テンプレート抽出
ＭＩＰからのテンプレート除去は、小型化プロセス後で精製段階前に行わなければならない。小型化プロセス中に冷却が必要な場合、テンプレートを十分に溶解する溶媒は、冷媒として優れた選択である。

テンプレート除去は、溶媒および溶媒混合液を利用することによって、単独で、または、熱、増大または減少したイオン強度と組合せて行うことが可能である。使用される方法の一般的なものの１つはソックスレー（ｓｏｘｈｌｅｔ）抽出方法であり、ＭＩＰは、半連続的な状態で、新鮮な蒸留した溶媒（または混合液を使用する場合、アゼオトロープ）で洗浄される。最終的な（およびクロス結合される）ＭＩＰは、熱安定的であり（テンプレート分子は熱安定的でない）、抽出前の発熱性の工程は、テンプレートを破壊するように適用することができ、従って、例えば、テンプレートを溶解するために使用されるのに一般的でない溶媒の使用などによって、除去するのが容易になる。

本発明の調製の様態に関する発見
本願の発明者達は、高能力を有するＭＩＰを調製するために、ＭＩＰ調製、ミクロ化、テンプレートの除去、および利用可能なＭＩＰの選択は、ミクロ化および選択技術に特に集中して、使用される。

従って、従来のＭＩＰ調製および精製方法を、細胞および／またはタンパク質分野で周知の選択および精製方法と組合せる場合、優れた結果が得られる。

例は、ＭＩＰ技術「モノマの選択」から、ミクロ化、抽出および篩は、ＥＢＡなどの機能的精製と組合せられる。膨張ベッドの官能基を有するマトリックス／表面に結合させる能力に従ってＭＩＰ粒子を分類することによって、従来の「上流」ＭＩＰ製品は、「下流」の選択段階および精製段階で捕捉して完全なものとなる。

上述のように組合せられたプロセスの極めて簡略化した概要は、図２にみられる。

本発明のＭＩＰ組成物に関する有用な標的分子（もしくはテンプレート分子）の典型的な例は、ヒト胃腸管などの胃腸管でみられる。特に好ましい標的分子は、病理学的に関連したモノである。特に好ましい標的分子は、コレステロール、胆汁酸または胆汁酸塩であり、さらに、毒物、毒素（細菌、ウィルス、真菌および寄生虫の毒素）ならびに細菌、ウィルス、真菌および寄生虫などの病原体にみられる抗原およびレセプタが、本発明によって調製されるＭＩＰ組成物用の対象となる標的／テンプレートである。

本発明による組成物および薬学的利用
本発明の手段によって得られるＭＩＰ組成物の少なくともいくつかは、新規な組成物であると考えられる。従って、本発明は、以下の特性の少なくとも１つを有するＭＩＰ組成物に関連する。
１）ＭＩＰの平均直径が２０μｍ未満である；
２）標的結合の平均が、ＭＩＰの１０質量単位に対して少なくとも標的の１質量単位である；
３）組成物中の実質的に全てのＭＩＰは同一標的分子に結合し、組成物は標的分子に対する結合部位の全てを含まない。

これらの特徴の１）、２）、または３）は、本発明の組成物によって充填され、特徴１のみ、特徴１および、特徴２または特徴３の一方、特徴２単独、特徴２および特徴３、特徴３単独、特徴１、２および３の３つ全てを有することが望ましい。

ＭＩＰの平均直径は、１０μｍ未満、５μｍ未満、１μｍ未満、９００ｎｍ未満、８００ｎｍ未満、７００ｎｍ未満、６００ｎｍ未満、さらに５００ｎｍ未満、４００ｎｍ、３００ｎｍ、および２００ｎｍなど１５μｍ未満であることが望ましい。

あらゆる比率で、本発明の所定の組成物が、５０μｍより大きい直径（４０、３０、２０、１０または１μｍより大きい直径）を実質的に含まないことが望ましい。

本発明の好適な組成物は、上述した標的分子、すなわち「有用な標的分子の典型的例」である１つに結合する。

本発明の組成物（および本発明によって調製された組成物）は、薬剤として有用であり、抗体組成物を使用するのと同じような多くの方法において使用できる。しかしながら、これらの安定性により、ＭＩＰ組成物は、経口投与に適しており、組成物は、抗体および多くの可溶なタンパク質レセプタとは違い、小腸におけるタンパク質分解に対して安定である。さらに、胃腸上皮を横切ることができない物質から調製することができるという事実より、胃腸管に制限される病理学関連分子／因子に有用である。適宜な標的は、コレステロール、胆汁酸および胆汁酸塩であり、胃腸管における病原体にみられる各種毒物または抗原／リガンドでも可能である。

しかしながら、ＭＩＰが適宜な生物学的適合性および／または生物学的分解ポリマから調製される場合（例えば、ポリ乳酸（ＰＬＡ）、ポリグリコール酸（ＰＬＧ））、これらは、非経口薬剤としても使用でき、この薬剤に対する望まない免疫応答の上昇に関する危険性は、抗体または可溶性レセプタなどの投与と比べた場合減少する。このような実施例において、抗体または可溶性レセプタに対する適宜な標的である実質的に全ての標的分子は、本発明のＭＩＰ組成物の標的となり得る。

従って、好適な実施例において、本発明は、循環器疾患、高血圧、アステローム硬化症、心臓疾患、胆石症、胆汁うっ滞性肝疾患、高コレステロール血症、肥満、寄生虫、ウィルスまたは微生物（例えば、細菌、真菌）由来の感染、口から入った毒に由来する中毒からなる群から選択される疾患の治療、改善またはそのリスクを低減する方法に関連し、本発明の組成物、または本発明に従って調製された組成物の有効量を必要とする対象に投与することを具える。本発明の実施例は、循環器疾患、高血圧、アステローム硬化症、胆石症、胆汁うっ滞性肝疾患、高コレステロール血症、肥満、肥満、寄生虫、ウィルスまたは微生物（例えば、細菌、真菌）由来の感染、口から入った毒に由来する中毒の治療、予防、改善のための製剤の調製における組成物の使用を具える。通常、経口投与は、ポイントである。

本発明の組成物または本発明に従って調製されるＭＩＰ組成物の予測される１日量は、１日あたりおおよそ４０ｇであるが、ＭＩＰの標的への高い結合能力により、１日あたりおおよそ３０ｇ、２０ｇ、１０ｇ、５ｇ、１ｇなど、より少ない１日量でもよい。

ＭＩＰは、当業者に周知な標準的な方法に従って、特に経口用に製剤化されてもよく、ＭＩＰは、粉末、エマルジョン、封入化エマルジョン、ピルおよびタブレットの形状、ならびに、食料中の成分として投与され、ＭＩＰは、実質的に食品または食料中に分散される。

組成物などにおけるＭＩＰの製剤に関して、参照することによって本明細書に組み込まれるＭａｒｋ Ｇｉｂｓｏｎ、ＣＲＣ ｐｒｅｓｓ ２００１を参照されたい。

もちろん、本発明のＭＩＰ組成物および本発明に従って調製されたＭＩＰ組成物は、用途の全ての種類において使用され、ＭＩＰは、先行技術における特別の結合相手として提案されている。従って、本発明が、本発明のＭＩＰ組成物の医学的使用に着目しているが、このことによって、分析装置およびそれ自体は周知な方法において、本発明で開示されたＭＩＰ組成物の使用を排除されることはしない。従って、本発明は、その範囲内に、サンプル中の標的分子の量的または定性的な決定方法を含み、この方法は、本発明の組成物または本発明に従って調製される組成物とサンプルを接触させるステップと、組成物中のＭＩＰは、標的分子に特異的に結合し、続いて、前記組成物に結合する標的分子の量的または定性的評価を行うステップと、を具える。ＭＩＰの通常の調製および使用に関するこれまでの開示は、参照することによって全て本明細書に組み込まれる。

実施例のプレアンブル

分子インプリントポリマの通常の作製方法
ＭＩＰの調製は、官能基を有するモノマを、適宜な溶媒中でプリント分子および架橋性モノマと混合する一般的な反応方法の後に続く。モノマの選択は、プリント分子が配列されるようにモノマの能力に従ってなされるが、これは、当業者にとってはルーチンである。重合化は、適宜な濃度のイニシエータ（開始剤）を添加することによって始まり、例えば、ＵＶ光（ＵＶイニシエータ）または熱（熱分解性イニシエータ）などで撹拌される。

重合化後、（多くの場合）、固体および収縮したポリマは、所望の寸法にミクロ化され、プリント分子、結合していないモノマおよびクロスリンカ、開始剤の残りは、抽出によって除去されるか、直接洗浄および／または所定時間で溶媒を還流することによって除去される。

実施例１
テンプレートとしてのフルオレセインを有するＭＩＰ
１００ｍｌフラスコに、１．４ｍｌのモノマメタクリル酸（ＭＡＡ）、９．５ｍｌのエチレングリコールジメタクリル酸（ＥＧＤＭＡ）、５０ｍｇのフルオレセイン、および、１０ｍｌのテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）を高温浴（約４０℃）で３０分間混合する。２ｇの１，１−アゾビス（シクロヘキサン−カルボニトリル）（ＡＣＨＣＮ）をゆっくり添加する。溶解後、溶液をＡｒ（ＴＨＦ飽和）で１５分間パージする。４８時間、連続的にＵＶ光（３６５ｎｍ、９Ｗ）をあてることによって重合化を開始する。得られたポリマは、黄色のクリスプ（ｃｒｉｓｐ）であり、手を使って乳鉢で１０〜２５μｍの粒径にミクロ化した。粉末を、ＴＨＦ中で３０分間還流し、エタノール／ＴＨＦ（７５：２５）で数回洗浄してろ過する。白色粉末が残り、空気乾燥する。

実施例２
テンプレートとしてのコール酸を有するＭＩＰ
１００ｍｌフラスコに、１．４ｍｌのモノマーメタクリル酸（ＭＡＡ）、９．５ｍｌのエチレングリコールジメタクリル酸（ＥＧＤＭＡ）、２ｇのコール酸および１２ｍｌのテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）を高温浴で３０分間混合する。０．２ｇの２，２’−アゾビスイソブチロニトリル／２，２’アゾビス（２−メチルプロピオニトリル）（ＡＩＢＮ）をゆっくり添加する。溶解後、溶液をＡｒで１５分間パージする。氷浴で２４時間連続的にＵＶ光をあてることによって重合を開始する。得られたポリマは、黄色で固く、手を使って乳鉢で２５〜５０μｍの粒径にミクロ化する。粉末をＴＨＦ中で３０分間（１回）還流し、エタノール／ＴＨＦ（７５：２５）で４回洗浄してろ過した。オフホワイトの粉末が残り、一晩空気乾燥する。

実施例３
テンプレートとしてのコール酸を有するＭＩＰ
１００ｍｌのフラスコに、２．８ｍｌのモノマ２−（ジメチルアミノ）−エチルメタアクリル酸（ＤＭＡ−ＥＭＡＡ）、９．５ｍｌのエチレングリコールジメタンアクリル酸（ＥＧＤＭＡ）、２ｇのコール酸および１２ｍｌのテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）は、高温浴で３０分間混合する。０．８ｇの２，２’−アゾビスイソブチロニトリル／２，２’−アゾビス（２−メチルプロピオニトリル）（ＡＩＢＮ）をゆっくり添加する。溶解後、溶液を１５分間Ａｒでパージする。氷浴で２４時間連続的にＵＶ光（３６５ｎｍ、９Ｗ）を当てることによって重合化を開始する。得られたポリマはオフホワイトのクリスプで、手で乳鉢において１０〜２５μｍの粒径にミクロ化する。粉末を３０〜６０分間ＴＨＦ中で２回還流し、エタノール／ＴＨＦ（７５：２５）で３回洗浄してろ過する。白色粉末が残り、一晩空気乾燥する。

実施例４
各ＭＩＰ粒子の結合能力
粉末状のＭＩＰ粒子間の結合能力／特性の違いを評価するために、結合試験を最も単純な形態で行った。実施例１からのＭＩＰは、フルオレセインに対する結合能力に関して試験した。

フルオレセインに対する１．９ｍｇのＭＩＰを３８０μｌエタノール（９６％）に懸濁し、５μｌのフルオレセイン溶液（０．０５ｍｇ／μｌのエタノール）を追加し、５分間混合した。懸濁液は、遠心分離され、上澄み液を除去した。次いで、粒子を３００μｌのエタノールで３回洗浄した。洗浄した粒子を、顕微鏡ガラスプレートの上で拡散させ、結合能力分析を、白色光の粒子（全粒子）、および、ＵＶ光（３６５ｎｍ）に暴露された場合緑色蛍光を発する粒子（ＭＩＰ結合粒子）を視覚的に粒子を数えることによって行った。ＵＶ光の使用により、エミッションフィルタは、緑色蛍光をみるために必要ではない。

図４に示される粒子は、白色光およびＵＶ光で撮られる２つの写真を重ねたものである。白点は、白色光で照らされた粒子であり、黒点は、ＵＶで照らされた緑色蛍光粒子である。図４から、白色光で照らされた粒子（白点）は、ＵＶ光に照らされるときの緑色蛍光の粒子（黒点）より数が多いことは明らかである。２つの異なる光源下で視認される粒子数の違いは、ＭＩＰをミクロ化することで、結合ＭＩＰ粒子の個体群および結合していない（非結合性）ＭＩＰ粒子（＝デブリ）の個体群が生じることを示している。従って、親和性特性に基づいた結合ＭＩＰ粒子の選択は、使用されるＭＩＰ重量単位あたりの使用されるテンプレートへの結合能力として測定される結合能力を効率的に上昇させる。

図示された写真は、緑色蛍光粒子は、粒径に関係なく異なる程度（強度）の緑色蛍光を示すという我々の観察を説明することができない。このような観察結果は、異なる結合ＭＩＰ粒子間の結合能力の違いに対応している。この強度（蛍光）の差は、ＭＩＰ粒子は異なる結合能力を有しないことを例示しており、従って、ＭＩＰの結合能力は、この実施例においては、最も高い蛍光強度を有するＭＩＰ粒子を選択することによって増加される。

このことをまとめると、本実施例は、ＭＩＰ粒子組成物の結合能力が、結合しない粒子を除去することによって上昇することを示している。結合能力は、高親和性および／または標的分子に結合する複数の露出される結合ポケットを有するＭＩＰ粒子の濃度を高めることによって改良可能である。

参考文献リスト
１）Ｙｕ Ｃｏｎｇ、博士論文：“インプリンティング技術に基づいた分子認識研究”、純正および応用生化学学部、ルンド大学、スウェーデン １９９８。
２）Ｌｅｉｆ Ｓｃｈｗｅｉｔｚ、博士論文：“電気クロマトグラフィ用分子インプリントマトリックス”、Ｔｅｃｈｎｉｃａｌ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、ルンド大学、スウェーデン ２００１。
３）Ｉｏａｎａ Ｗａｒｎｍａｒｋ−Ｓｕｒｕｇｉｕ、博士論文：“結合アッセイにおける抗体および光源模倣体”純正および応用生化学学部、ルンド大学、スウェーデン ２００２
４）Ｄｉｃｋｅｙ ＦＨ“Ｔｈｅ ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｂｓｏｒｂｅｎｔ”Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．３５（１９４９）２２７−２２９
５）Ｒａｍｓｔｒｏｍ Ｏ ｅｔ ａｌ Ｊ． Ｍｏｌ． Ｒｅｃｏｇ．９（１９９６）６９１−６９６
６）Ｓｃｈｗｅｉｔｚ Ｌ ｅｔ ａｌ Ｊ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇ．Ａ７９２（１９９７）４０１−４０９
７）Ｖｌａｔａｋｉｓ Ｇ ｅｔ ａｌ“Ｄｒｕｇ Ａｓｓａｙ Ｕｓｉｎｇ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｍｉｍｉｃｓ Ｍａｄｅ ｂｙ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｐｒｉｎｔｉｎｇ”Ｎａｔｕｒｅ ３６１（１９９３）６４５−６４７
８）Ｆｕｎｋｅ，Ｗ．ｅｔ ａｌ、Ａｄｖ．Ｐｏｌｙｍ．Ｓｃｉ．１３６（１９９８）１３９−２４３
９）Ｖａｎ Ｒｅｉｓ ａｎｄ Ｚａｐａｔａ 米国特許第６，０２７，６５０号
１０）Ｌｉｈｍｅ Ａ ｅｔ ａｌ 米国特許第６，６２０，３２６号
１１）Ｕｊａｍ ｅｔ ａｌ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ Ｂｉｏｅｎｇ ８３（２００３）５５４−６、Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｏｎｏｃｙｔｅｓ ｆｒｏｍ ｈｕｍａｎ ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ ｂｌｏｏｄ。
１２）Ｃｈａｓｅ Ｊ．Ｍｏｌ． Ｒｅｃｏｇｎｉｔ １１（１９９８）２１７−２２１
１３）Ｐｌａ ｅｔ ａｌ Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．２７７（２０００）３８１−５
１４）Ｒｏｄｇｅｒｓ ｅｔ ａｌ Ａｎｎ．ＮＹ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８４９（１９９８）２８２−９２
１５）Ｈａｎｓｅｎ ＣＭ、“Ｈａｎｓｅｎ Ｓｏｌｕｂｉｌｉｔｙ Ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ、Ａ Ｕｓｅｒｓ Ｈａｎｄｂｏｏｋ ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ”（ＩＳＢＮ ０−８４９３−１５２５−５）
１６）Ｓｈｅａ ＫＪ ａｎｄ Ｄｏｇｈｅｒｔｙ ＴＫ、Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１０８（１９８６）１０９１−１０９３
１７）Ｓｈｅａ ＫＪ、Ｓｔｏｄｄａｒｄ ＧＪ、Ｓｈａｖｅｌｌｅ ＤＭ、Ｗａｋｕｉ Ｆ ａｎｄ Ｃｈｏａｔｅ ＲＭ Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ２３（１９９０）４４９７−４５０７
１８）Ｗｕｌｆｆ Ｇ ａｎｄ Ｐｏｌｌ ＨＧ Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｃｈｅｍ．１８８（１９８７）７４１−７４８
１９）Ｓｅｌｌｅｒｇｒｅｎ、Ｂ．ｅｔ ａｌ、Ｃｈｅｍ．Ｍａｔｅｒ．１０；４０３７−４６
２０）Ｗｈｉｔｃｏｍｂｅ，ＭＪ．ｅｔ ａｌ（１９９５）Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１７；７１０５−１１
２１）Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｐｒｅｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ ｆｒｏｍ Ｃａｎｄｉｄａｔｅ Ｄｒｕｇ Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ ｔｏ Ｃｏｍｍｅｒｃｉａｌ Ｄｏｓａｇｅ Ｆｏｒｍ、Ｍａｒｋ Ｇｉｂｓｏｎ、ＣＲＣ ｐｒｅｓｓ、２００１
２２）Ｋｅｍｐｅ ａｎｄ Ｍｏｓｂａｃｈ（１９９１）、Ａｎａｌ．Ｌｅｔｔ．２４、１１３７−４５
２３）Ｒａｍｓｔｒｏｍ ｅｔ ａｌ（１９９４）、Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ：Ａｓｙｍｍｅｔｒｉ ５、６４９−５６
２４）Ｒａｍｓｔｒｏｍ ｅｔ ａｌ（１９９６ Ｉ）、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｒｅｃｏｇｎ．９、６９１−６
２５）Ｒａｎｓｔｒｏｍ ｅｔ ａｌ（１９９６ ＩＩ）、Ｃｈｅｍ．Ｂｉｏｌ．３、４７１−７
２６）Ｌｉｕ ａｎｄ Ｍｏｓｂａｃｈ（１９９７）、Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｒａｐｉｄ．Ｃｏｍｍｕｎ．１８、６０９−２５
２７）Ｌｉｕ ａｎｄ Ｍｏｓｂａｃｈ（１９９８）、Ｍａｃｒｏｍｏｌ．Ｒａｐｉｄ．Ｃｏｍｍｕｎ．１９、６７１−４
２８）Ｄａｖｉｄｓｏｎ ａｎｄ Ｈａｙｅｓ（２００２）、Ｃｕｒｒｅｎｔ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．６、２６５−２８１
２９）Ａｎｄｅｒｓｓｏｎ ｅｔ ａｌ（１９９５）、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９２、４７８８−９２
３０）Ｃａｒｔｅｒ（２００６）、Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．６、３４３−５７
３１）Ｗｉｚｅｍａｎ ａｎｄ Ｋｏｎｆｉｎａｓ（２００１）、Ｂｉｏｍａｔ．２２、１４８５−９１
３２）Ｓｅｏｎｇ ｅｔ ａｌ（２００２）、Ｊ．Ｂｉｏｍａｔｅｒ．Ｓｃｉ．Ｐｏｌｙｍ．Ｅｄ．１３、６３７−４９

図１は、ＭＩＰ調製工程の概略図である。 図２は、本明細書に記載される本発明の工程の簡単な要約である。 図３のパートＩは、拡張ベッド吸着による精製または分類を示す。結合しないＭＩＰは、通過し、排出される一方、ベッド粒子に結合されたコレステロール様分子など、テンプレートに結合するＭＩＰは、保持される。図３のパートＩＩは、機能的に精製されたＭＩＰを示す。ベッド粒子のテンプレート分子に結合するＭＩＰは、続いて、抽出することができる。これらの抽出されたＭＩＰは、結合性ＭＩＰと非結合性ＭＩＰとを含む未精製のＭＩＰ集合よりも、より高い結合能力を有する。 図４は、重ね合わされた画像における実験例４のＭＩＰ粒子を示す。重ね合わされた例画像は、可視光の白色およびＵＶ光で、それぞれ撮影された２つの画像から構成される。白色スポットは、白色光で照射された粒子を示し、黒点は、ＵＶで照射された緑色蛍光粒子を示す。

Claims (30)

1. 標的分子に対する高い結合能力および高い特異性を有する分子インプリントポリマ（ＭＩＰ）を具える組成物の調製方法であって、この方法が、
   ａ）前記標的分子に結合する不溶性ＭＩＰの懸濁液を得るステップであって、前記不溶性ＭＩＰは、テンプレート分子として標的分子またはその模倣体を用いて調製される、ステップと、
   ｂ）前記懸濁されたＭＩＰを親和性精製工程にかけるステップであって、前記テンプレート分子、そのフラグメントまたはその模倣体は捕捉剤として使用される、ステップと、
   ｃ）前記親和性精製工程において前記捕捉剤に結合するＭＩＰを回収し、回収された生成物から前記捕捉剤および前記捕捉剤に結合しないＭＩＰを実質的に排除するステップと、
   ｄ）回収されたＭＩＰと、選択的に、キャリア、ビークルまたは希釈剤を混合し、前記組成物を得るステップと、
   を具えることを特徴とする方法。
2. 前記捕捉剤が固相に共有結合的にまたは非共有結合的に結合することを特徴とする請求項１に記載の方法。
3. 前記固相が、クロスバインドされた炭化水素のマトリックス、合成ポリマまたはこれらの組合せからなる群から選択されることを特徴とする請求項２に記載の方法。
4. 前記捕捉剤が、可溶性化学成分からなるか、または、可溶性化学成分の一部であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
5. 前記捕捉剤が、可溶性化学成分あたり複数の捕捉剤に暴露されるために、デンドリマ、実質的な炭化水素ならびにポリビニルアルコールおよびポリエチレングリコールなどの置換基を有する可溶性ポリマから選択される部分に対して、共有結合的または非共有結合的に結合されることを特徴とする請求項４に記載の方法。
6. 前記捕捉剤のみが、前記テンプレート分子に結合する、ステップａ）のＭＩＰの結合部位のフラクションに結合することを特徴とする請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
7. 前記捕捉剤が、前記テンプレート分子のフラグメントであることを特徴とする請求項１〜６のいずれか一項に記載の方法。
8. 前記捕捉剤が、前記捕捉剤の一部のＭＩＰに暴露されるのを実質的に避けるために、特定の配位性において、必要に応じて前記固相表面またはその部分に結合したテンプレート分子、その模倣体またはそのフラグメントを具えることを特徴とする請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
9. 前記捕捉剤は、前記捕捉剤の全ての部分がＭＩＰに暴露されるように非特異的な配位性において、必要に応じて前記固相表面またはその部分に結合したテンプレート分子、その模倣体またはそのフラグメントを具えることを特徴とする請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
10. 前記親和性精製工程が、膨張ベッド吸収（ＥＢＡ）、常時性ビーズ分離、中空ファイバ精製、および、凝集からなる群から選択されることを特徴とする請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
11. 標的分子に対して高い結合能力を有するＭＩＰの調製方法であって、前記方法が、
    前記標的分子またはその模倣体からなるテンプレート分子を具える未精製のＭＩＰを、テンプレート分子を除去できるほど十分に小さいＭＩＰの粒径を得るように第一段階のミクロ化にかけるステップと、
    実質的に全てのテンプレート分子を除去し、このようにして得られたＭＩＰをミクロ化の第２段階にかけるステップと、を具え、
    ミクロ化の前記第１段階および選択的な第２段階によって、５０μｍ未満のＭＩＰ平均直径が得られることを特徴とする方法。
12. ミクロ化の前記第１段階のみを行うことを特徴とする請求項１１に記載の方法。
13. 前記ミクロ化が、グリンディング、ミリング、破裂、ハンマリング、ボールミリング、クリオグリンディング、または、衝突均質化処理によってなされることを特徴とする請求項１１または１２に記載の方法。
14. 請求項１〜１０のいずれか一項の方法に得られたＭＩＰを適用することを具える請求項１１〜１３のいずれか一項に記載の方法。
15. 前記標的分子が、ヒト胃腸管など、胃腸管にみられる分子であることを特徴とする請求項１１〜１４のいずれか一項に記載の方法。
16. 前記標的分子が、病理学的に関連のある分子であることを特徴とする請求項１５に記載された方法。
17. 前記標的分子が、コレステロール、胆汁酸または胆汁酸塩から選択されることを特徴とする請求項１〜１６のいずれか一項に記載の方法。
18. 不溶性ＭＩＰの組成物であって、
    １）ＭＩＰの平均直径が２０μｍ未満であること、
    ２）標的分子の平均結合能が、ＭＩＰの１０質量単位に対して少なくとも標的分子の１質量単位であること、
    ３）前記組成物中の実質的に全てのＭＩＰが、同一の標的分子に結合し、選択的に、前記組成物が、標的分子に対する結合部位の全てを含まないこと、
    の少なくとも１つの特性を有することを特徴とする不溶性ＭＩＰの組成物。
19. 特性１）を有することを特徴とする請求項１８に記載の組成物。
20. 特性２）を有することを特徴とする請求項１８または１９に記載の組成物。
21. 特性３）を有することを特徴とする請求項１８〜２０に記載の組成物。
22. 請求項１〜１７のいずれか一項に記載の方法に従って調製される請求項１８〜２１のいずれか一項に記載の組成物。
23. 前記組成物中の前記ＭＩＰが、コレステロール、胆汁酸または胆汁酸塩に結合することを特徴とする請求項１８〜２２のいずれか一項に記載の組成物。
24. 製剤として利用する目的の請求項１８〜２３のいずれか一項に記載の組成物。
25. 循環器疾患、高血圧、アステローム硬化症、胆石症、胆汁うっ滞性肝疾患、高コレステロール血漿、肥満症、寄生虫、ウィルスあるいは例えばバクテリアおよび真菌など微生物由来の感染症、経口由来の毒による中毒、の治療、予防または回復用の薬学的製剤の調製において、請求項１８〜２３のいずれか一項に記載の組成物の使用。
26. 前記薬学的製剤の調製が、経口投与用であることを特徴とする請求項２５に記載の使用。
27. 循環器疾患、高血圧、アステローム硬化症、胆石症、胆汁うっ滞性肝疾患、高コレステロール血漿、肥満症、寄生虫、ウィルスあるいは例えばバクテリアおよび真菌など微生物由来の感染症、経口由来の毒による中毒、からなる群から選択される疾患の治療、予防またはリスクを低減する方法であって、請求項１８〜２３のいずれか一項に記載の組成物の有効量を、これを必要とする対象に投与するステップを具えることを特徴とする方法。
28. 前記有効量は、１日あたり４０ｇ未満であることを特徴とする請求項２７に記載の方法。
29. 前記有効量が、経口投与されることを特徴とする請求項２７または２８に記載の方法。
30. サンプル中の標的分子の量的または定性的な決定方法であって、この方法が、請求項１８〜２４のいずれか一項に記載の組成物または請求項１〜１７のいずれか一項に記載に従って調製された組成物と、サンプルを接触させるステップを具え、組成物中のＭＩＰは、前記標的分子に特異的に結合し、続いて、前記組成物に結合する標的分子の量的または定性的評価を行うことを特徴とする方法。

Images