JP2008125440A - Method for culturing coral - Google Patents

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Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a series of methods for culturing coral, using a method for preparing coral larvae, and to provide a method for producing coral seedlings. <P>SOLUTION: This series of methods for culturing the coral is provided by combining the method for preparing the coral larvae, which comprises a process of collecting coral colonies from the sea, a process of housing the collected coral colonies in an aquarium, a process of adding hydrogen peroxide (H<SB>2</SB>O<SB>2</SB>), as necessary, to an aquarium that houses the coral colonies, a maintaining process of maintaining the coral colonies under water flow after the hydrogen peroxide-addition process, and a light-shielding process for adjusting oviposition time by shielding the light after performing the maintaining process for an optional period of time; with the method for producing the coral seedlings by culturing for rooting the produced planula larvae and by mix-culturing them with algae-eating marine snails to improve their survival rate, after their metamorphosis into polyps (young corals). <P>COPYRIGHT: (C)2008,JPO&INPIT

Description

本発明は、サンゴ礁修復に関わる技術に関する。より詳しくは、サンゴ幼生作出方法と、サンゴ種苗生産方法を用いた一連のサンゴ養殖方法に関する。   The present invention relates to a technique related to coral reef restoration. More specifically, the present invention relates to a coral larva production method and a series of coral culture methods using a coral seed production method.

近年、海洋汚染、海洋生物の乱獲、森林伐採や農地開発に起因する表土の海洋への流出等によるサンゴ礁の破壊が問題となっている。サンゴ礁は、天然の防波堤となって台風等による災害を緩和し、海洋生物の産卵と生育の場となっているほか、海洋環境浄化や漁場の維持、生物多様性の保全などに貢献する。また、最近では、サンゴ礁が二酸化炭素循環機能（ＣＯ２吸収機能）や、薬剤の原料となる種々の化学物質を含む多様な生物種を生息させる場であることも分かってきた。   In recent years, coral reef destruction due to marine pollution, overfishing of marine organisms, deforestation and outflow of topsoil caused by agricultural land development has become a problem. Coral reefs serve as natural breakwaters to mitigate disasters caused by typhoons, etc., and serve as a place for spawning and growing marine organisms, as well as contributing to the purification of marine environments, the maintenance of fishing grounds, and the preservation of biodiversity. Recently, it has also been found that coral reefs are a place to inhabit various biological species including carbon dioxide circulation function (CO2 absorption function) and various chemical substances used as raw materials for drugs.

このように多々の機能を有するサンゴ礁を修復するために、上記のような人的活動を自粛するとともに、サンゴ養殖技術を向上させ、サンゴ礁の修復を促進することが大変重要視されている。   In order to repair coral reefs having such various functions, it is very important to refrain from the above-mentioned human activities, improve coral aquaculture technology, and promote restoration of coral reefs.

ここで、図８を用いて、自然界におけるサンゴ礁の形成過程を説明する。図８は、自然界におけるサンゴ礁形成過程を示す模式図である。   Here, the formation process of the coral reef in nature will be described with reference to FIG. FIG. 8 is a schematic diagram showing a coral reef formation process in nature.

図８中（Ｉ）の符号Ｒは、サンゴ礁を模式的に示す。サンゴ礁Ｒは、サンゴＣなどの石灰質の硬い組織を作る生物が、その骨格を積み重ねて形成した地形をいう。まず、サンゴ礁Ｒを形成するサンゴＣから、卵Ｘと***Ｙが放出される（図８中（Ｉ）参照）。次に、卵Ｘと***Ｙが受精する（図８中（II）参照）。受精卵を符号Ｆで示す。一般に、別々のサンゴ群体から放出された卵Ｘと***Ｙが受精する場合が多く、自家受精はほとんど起こらない。受精卵Ｆからは、プラヌラ幼生Ｌが誕生する（有性生殖）（図８中（III）参照）。このプラヌラ幼生Ｌは約２〜１０日間、海洋中を浮遊して生活する。その後、プラヌラ幼生Ｌが岩盤などに着生し、ポリプＰへと変態する（図８中（IV）参照）。この状態でポリプＰ（稚サンゴ）はクローンを増やし（無性生殖）、群体を形成して、サンゴＣの形状に近づく（図８中（Ｖ）参照）。やがて、石灰質の骨格を積み重ねてサンゴ礁Ｒを形成していく（図８中（Ｉ）参照）。   A symbol R in (I) of FIG. 8 schematically shows a coral reef. The coral reef R is a topography formed by stacking the skeletons of organisms that make a hard calcareous tissue such as the coral C. First, egg X and sperm Y are released from coral C forming coral reef R (see (I) in FIG. 8). Next, egg X and sperm Y fertilize (see (II) in FIG. 8). A fertilized egg is indicated by the symbol F. In general, eggs X and sperm Y released from different coral colonies are often fertilized, and self-fertilization hardly occurs. From the fertilized egg F, a planula larva L is born (sexual reproduction) (see (III) in FIG. 8). This planula larva L floats in the ocean for about 2 to 10 days. Thereafter, the planula larva L grows on the bedrock and transforms into polyp P (see (IV) in FIG. 8). In this state, the polyp P (female coral) increases the number of clones (asexual reproduction), forms a colony, and approaches the shape of the coral C (see (V) in FIG. 8). Soon, calcareous skeletons are stacked to form a coral reef R (see (I) in FIG. 8).

サンゴの海上養殖方法として、特許文献１には、プラヌラ幼生が着生してからポリプへと変態し、稚サンゴに成長するまで（図８中（IV）、（V））の保護手段を備えた装置を用いた養殖方法が開示されている。また、特許文献２には、サンゴ幼少期等における生存率を高めることができるサンゴ幼少の付着基盤が開示されている。
特開２００５−１６０３１６号公報。 特開２００５−２１０９４５号公報。 As a method for sea coral aquaculture, Patent Document 1 includes a protective means (plans (IV) and (V) in FIG. 8) until a planula larva grows up to a polyp and grows into a juvenile coral. An aquaculture method using the apparatus is disclosed. Patent Document 2 discloses a coral juvenile adhesion base that can increase the survival rate in a coral juvenile period.
JP-A-2005-160316. Japanese Patent Application Laid-Open No. 2005-210945.

サンゴの養殖方法は、多くの研究が進められているが、まだまだ改良の余地を残すものが多い。特に、前述のように、プラヌラ幼生が基盤に着生後の技術は多数開示されているが変態した後の稚サンゴが生残し、群体に生育することは今日まで極めて少なく、手法の開発が強く望まれている。また、プラヌラ幼生が着生する前の過程については、更なる開発が期待される。   A lot of research has been done on coral culture methods, but there are still many ways to improve them. In particular, as mentioned above, many techniques have been disclosed after the establishment of the planula larvae, but after the transformation, juvenile corals survive and grow into a colony to date. It is rare. Further, further development is expected for the process before the planula larvae settle.

そこで、本発明では、産卵からサンゴへの成長に係る全ての工程を好条件で行うことが可能なサンゴ養殖方法を提供することを主目的とする。   Therefore, the main object of the present invention is to provide a coral culture method that can perform all the steps related to growth from egg laying to coral under favorable conditions.

本願発明者は、新規サンゴ養殖方法について鋭意研究を進めた結果、サンゴ養殖の各工程において、好適な方法を開発した。   The inventor of the present application has developed a suitable method in each step of coral aquaculture as a result of diligent research on a new coral aquaculture method.

まず、海中よりサンゴ群体を採取する採取工程と、採取した前記サンゴ群体を水槽に収容する収容工程と、前記サンゴ群体が収容された水槽に過酸化水素（Ｈ２Ｏ２）を添加する過酸化水素添加工程と、前記過酸化水素添加工程後に、前記サンゴ群体を流水中で維持する維持工程と、前記維持工程を任意の時間行った後に、前記サンゴ群体を遮光することにより産卵時刻を調整する遮光工程と、を少なくとも含むサンゴ幼生作出方法を用いたサンゴ養殖方法を提供する。 First, a collecting step of collecting coral colonies from the sea, a containing step of containing the collected coral colonies in a water tank, and a peroxide that adds hydrogen peroxide (H 2 O 2 ) to the water tank containing the coral colonies After the hydrogenation step, after the hydrogen peroxide addition step, a maintenance step for maintaining the coral colonies in running water, and after performing the maintenance step for an arbitrary time, the spawning time is adjusted by shading the coral colonies. A coral culturing method using a coral larvae production method comprising at least a light shielding step.

サンゴの産卵は、午後８時から１１時頃の時間帯に起こる。即ち日没から１時間から３時間後に産卵が起こる。これを利用して、本願発明者は、産卵時刻を調整する技術を開発した。   Coral egg laying occurs between 8pm and 11am. That is, egg laying occurs 1 hour to 3 hours after sunset. Using this, the present inventor has developed a technique for adjusting the egg-laying time.

次に受精卵を産出する媒精工程を行う。サンゴの産卵誘発から媒精工程までの流れが、サンゴ幼生作出方法である。   Next, a mutilation process for producing fertilized eggs is performed. The flow from coral spawning induction to the nymph process is the coral larva production method.

本発明に係るサンゴ養殖方法では、受精卵より産生したプラヌラ幼生を室内又は及び野外で飼育した後、基盤に着生させる。着生基盤は、特に限定されないが、例えば、海中に任意の期間放置した基盤に着生させることもできる。その際、必要ならば神経ペプチドＨｙｍ−２４８（配列番号１）をプラヌラ幼生含有海水中へ添加することにより、プラヌラ幼生の着生を促進させることができる。   In the coral culture method according to the present invention, planula larvae produced from fertilized eggs are bred indoors and outdoors and then allowed to grow on the base. The substrate is not particularly limited, but for example, the substrate can be grown on a substrate left in the sea for an arbitrary period. At that time, if necessary, the neuropeptide Hym-248 (SEQ ID NO: 1) can be added to the sea water containing planula larvae to promote the establishment of the planula larvae.

また、本発明に係るサンゴ養殖方法では、次のサンゴ種苗生産方法を採用することができる。プラヌラ幼生を飼育するプラヌラ幼生飼育工程、さらにプラヌラ幼生を基盤に着生させ、ポリプ（稚サンゴ）に変態させる稚サンゴ作出工程を経て、特殊な育成カゴを考案してこれを水中に垂下し、その中に稚サンゴが着生した基盤を入れ、藻食性巻貝と混養して生残率を著しく高める（サンゴ育成工程）。このサンゴ育成工程で１年以上サンゴを飼育し、サンゴ種苗が一定の大きさに成長した段階で実海域に移植する（サンゴ移植工程）。この幼生飼育工程から稚サンゴ育成工程までの流れが、サンゴ種苗生産方法である。   In the coral cultivation method according to the present invention, the following coral seed production method can be employed. Planura larva rearing process for breeding planula larvae, and further, through the process of producing juvenile corals that are transformed into polyps (female corals) after being born on the basis of the planula larvae, a special breeding basket is devised and drooped into the water, The base on which the juvenile coral has grown is put in it and mixed with the algal eating snails to remarkably increase the survival rate (coral breeding process). In this coral breeding process, corals are bred for one year or more and transplanted to the actual sea area when the coral seedlings grow to a certain size (coral transplantation process). The flow from the larva breeding process to the juvenile coral breeding process is the coral seed production method.

本発明に係るサンゴ養殖方法を用いれば、サンゴを安定的に育成することができ、更には、サンゴ礁の修復に貢献することができる。   By using the coral cultivation method according to the present invention, the coral can be stably cultivated, and further, it can contribute to the restoration of the coral reef.

以下、本発明を実施するための好適な形態について図面を参照しながら説明する。なお、以下に説明する実施形態は、本発明の代表的な実施形態の一例を示したものであり、これにより本発明の範囲が狭く解釈されることはない。   DESCRIPTION OF EXEMPLARY EMBODIMENTS Hereinafter, preferred embodiments for carrying out the invention will be described with reference to the drawings. In addition, embodiment described below shows an example of typical embodiment of this invention, and, thereby, the range of this invention is not interpreted narrowly.

＜サンゴ幼生作出方法＞
図１を用いて、本発明に係るサンゴ幼生作出方法について説明する。 <How to make coral larvae>
The coral larva production method according to the present invention will be described with reference to FIG.

図１は、本発明に係るサンゴ幼生作出方法の各工程を示すフロー図である。図１中（Ｉ）はサンゴ群体採取工程、（II）はサンゴ群体収容工程、（III）は必要に応じ適用される過酸化水素添加工程、（IV）は流水中維持工程をそれぞれ示す。それぞれの工程の詳細を以下、説明する。   FIG. 1 is a flowchart showing each step of the coral larva production method according to the present invention. In FIG. 1, (I) shows a coral colony collecting process, (II) shows a coral colony accommodation process, (III) shows a hydrogen peroxide addition process applied as necessary, and (IV) shows a running water maintenance process. Details of each step will be described below.

（Ｉ）サンゴ群体採取工程
まず、海中よりサンゴ群体１を採取する。この時、採取するサンゴ群体１は、１種類のサンゴにつき、５群体以上を採取して産卵を待ち、採卵して媒精に用いることが望ましい。一般的にサンゴは自家受精を起こさず、また受精効果が伴わない群体が混在するからである。 (I) Coral colony collecting step First, the coral colony 1 is collected from the sea. At this time, it is desirable that the coral colony 1 to be collected is collected for five or more colonies per one type of coral, waiting for egg laying, egg-collecting, and used for meditation. This is because corals generally do not cause self-fertilization, and colonies that do not have fertilization effects are mixed.

（II）サンゴ群体収容工程
採取したサンゴ群体１を、水槽２などに収容する。収容したサンゴ群体１は、図示しないが、過酸化水素添加開始まで、流水中で維持することが望ましい。 (II) Coral colony accommodation process The collected coral colony 1 is accommodated in a water tank 2 or the like. Although not shown, the accommodated coral colony 1 is desirably maintained in running water until the start of hydrogen peroxide addition.

（III）過酸化水素添加工程
条件がよければ、サンゴ群体は水槽中で産卵を始めるが、必要に応じてサンゴ群体１を収容した水槽２に、過酸化水素（Ｈ２Ｏ２）を添加して産卵時間を調節できる。過酸化水素での処理中に、サンゴ群体１から粘液の分泌や褐虫藻の放出などが起こり、サンゴ群体１に大きなダメージを与え、最悪の場合サンゴ群体１が死亡することもある。このような過酸化水素によるダメージは、サンゴ群体１の状態や種類によって異なるため、過酸化水素処理中のサンゴ群体１の様子を随時観察し、過酸化水素の濃度や添加時間を加減することが望ましい。 (III) Hydrogen peroxide addition process If the conditions are good, the coral colonies start laying eggs in the aquarium, but if necessary, hydrogen peroxide (H 2 O 2 ) is added to the aquarium 2 containing the coral colonies 1. Can adjust the egg-laying time. During the treatment with hydrogen peroxide, secretion of mucus, release of zooxanthellae, etc. occur from the coral colonies 1, causing severe damage to the coral colonies 1, and in the worst case the coral colonies 1 may die. Since damage caused by hydrogen peroxide varies depending on the state and type of the coral colony 1, the state of the coral colony 1 during the hydrogen peroxide treatment can be observed at any time to adjust the concentration and addition time of the hydrogen peroxide. desirable.

過酸化水素濃度、及び添加時間の一例を挙げると、コリンボーズ状のAcropora属のサンゴ群体１では２ｍＭで３時間、又は５ｍＭで２時間、テーブル状のMontipora属のサンゴ群体１では２ｍＭで２時間程度の過酸化水素処理が好適である。これらのサンゴ群体１であっても、その収容状態によって過酸化水素によるダメージが異なるため、例示した処理条件には限定されない。   For example, the concentration of hydrogen peroxide and the addition time are 2 mM at 2 mM for Corbose-shaped Corropora coral colonies 1 or 2 hours at 5 mM, and 2 mM at 2 mM for Table-shaped Montipora coral colonies 1 for about 2 hours. The hydrogen peroxide treatment is preferred. Even these coral colonies 1 are not limited to the exemplified processing conditions because damage due to hydrogen peroxide varies depending on the accommodation state.

（IV）流水中維持工程
任意の条件下で過酸化水素処理したサンゴ群体１を、流水中で維持する。維持時間は、少なくとも９時間以上、より好ましくは１６時間程度である。より高い確率で産卵を起させるためである。 (IV) Flowing water maintenance process Coral colony 1 treated with hydrogen peroxide under arbitrary conditions is maintained in running water. The maintenance time is at least 9 hours or more, more preferably about 16 hours. This is to lay eggs with a higher probability.

また、サンゴの産卵は、自然光条件の下では一般的に、午後８時から１１時の時間帯に起こる。即ち日没から約１時間から３時間後に産卵が起こる。従って、人為的に光条件を操作すれば、任意の時間にサンゴ産卵を誘発させることが可能である。本発明では、前記サンゴ群体収容工程（II）または流水中維持工程（IV）後に、水槽２を暗箱等で囲うなどして、サンゴ群体１を遮光し、遮光から約１時間から３時間後に産卵時間を調節する遮光工程方法を採用する。   Coral spawning generally occurs in the 8 to 11 o'clock time zone under natural light conditions. That is, egg laying occurs about 1 to 3 hours after sunset. Therefore, coral spawning can be induced at an arbitrary time by artificially manipulating the light conditions. In the present invention, after the coral colony housing step (II) or the running water maintenance step (IV), the coral colony 1 is shielded from light by, for example, surrounding the water tank 2 with a dark box or the like, and about 1 to 3 hours after being shielded from laying eggs. Adopt the light shielding process method to adjust the time.

＜サンゴ養殖方法＞
図２を用いて、サンゴ養殖方法を説明する。図２は、本発明に係るサンゴ養殖方法の工程フロー図である。 <Coral culture method>
The coral culture method will be described with reference to FIG. FIG. 2 is a process flow diagram of the coral cultivation method according to the present invention.

従来のサンゴ養殖方法では、海洋中から産卵後の卵・胚を採取する方法が用いることが多かった。従来の方法では、産卵日の予想や採取場所の特定が困難であるため、毎年安定して、産卵後の卵・胚を採取できるとは限らなかった。また、採取した卵・胚の状態が悪く、採卵した卵が割球等により多量に死亡することがあった。このため、サンゴ幼生作出の過程において、効率の良いサンゴ養殖を行うことが困難であった。   In the conventional coral culture method, a method of collecting eggs / embryos after spawning from the ocean is often used. With conventional methods, it is difficult to predict the egg-laying date and to specify the collection location, so it has not always been possible to collect eggs and embryos after egg-laying stably every year. In addition, the collected eggs / embryos were in poor condition, and the collected eggs sometimes died due to blastomeres. For this reason, it was difficult to perform efficient coral culture in the process of coral larva production.

一方、前記サンゴ幼生作出方法を、サンゴ養殖方法の一方法として用いれば、産卵時期自体を管理することが可能である。そのため、サンゴ養殖初期（サンゴ幼生作出方法）において、計画的に効率の良いサンゴ養殖を行うことができる。   On the other hand, if the coral larvae production method is used as one method of the coral culture method, the egg-laying time itself can be managed. Therefore, in the early stage of coral culture (coral larva production method), efficient coral culture can be performed systematically.

１.サンゴ幼生作出方法
（Ｉ）サンゴの産卵を誘発し、（II）媒精工程で卵と***を混ぜて媒精するまでがサンゴ生作出方法である（図２中（Ｉ）５工程と（II）１工程）。媒精すると、受精卵（胚）からプラヌラ幼生が誕生する。 1. Coral larva production method (I) Coral spawning is induced, and (II) the coral production method is until the egg and sperm are mixed and sperm in the sperm process ((I) in FIG. (II) 1 step). When the fertilization occurs, a planula larva is born from a fertilized egg (embryo).

２.サンゴ種苗生産方法
（III）プラヌラ幼生飼育工程
次に、プラヌラ幼生を飼育する（図２中（III）工程）。プラヌラ幼生の飼育方法は、公知の方法を採用できる。プラヌラ幼生の飼育密度は、海水１Ｌあたり２００個以下が望ましい。胚やプラヌラ幼生の海水中の密度は、飼育海水を０．１Ｌ程度採水して、採水中に含まれるプラヌラ幼生の数を推定することができるが、発生初期のプラヌラ幼生胚は、海水表面に偏ることが多く、水面の照度や風にも影響されるため、全体の水をよく攪拌した上で、少なくとも３回から５回の採水を行って調べることが望ましい。 2. Coral seedling production method (III) Planula larva rearing process Next, the planula larvae are reared (process (III) in FIG. 2). A known method can be adopted as a method for raising the planula larvae. The breeding density of the planula larvae is desirably 200 or less per liter of seawater. The density of embryos and planula larvae in seawater can be estimated by taking about 0.1L of the breeding seawater and estimating the number of planula larvae contained in the collected water. Therefore, it is desirable to collect water at least 3 to 5 times and investigate after thoroughly stirring the whole water.

小規模な実験研究等の目的であれば、ボウル等を用いて飼育することが可能である。この場合は、１日１回程度の割合で、ピペット等を用いて、プラヌラ幼生を新鮮な浄化海水を満たした新しいボウルに移すことが望ましい。状態の良いプラヌラ幼生を維持するためには、常に新鮮な飼育海水を供給することが肝要である。   For the purpose of small-scale experimental research, it is possible to raise using a bowl or the like. In this case, it is desirable to transfer the planula larvae to a new bowl filled with fresh purified seawater using a pipette or the like at a rate of about once a day. In order to maintain a well-planar larva, it is important to always supply fresh breeding seawater.

海上に生簀を浮かべ、大量のプラヌラ幼生を飼育することもできる。生簀を用いたプラヌラ幼生の飼育方法の一例について、図３、及び図４を用いて説明する。   You can float a ginger on the sea and raise a large number of Planula larvae. An example of a method for raising planula larvae using ginger will be described with reference to FIGS.

図３は、海面に設置したプラヌラ幼生飼育用生簀の側面図である。図３中符号Ｓは海面を示し、符号Ｂは海底を示す。   FIG. 3 is a side view of a ginger for raising planula larvae installed on the sea surface. In FIG. 3, symbol S indicates the sea surface and symbol B indicates the sea bottom.

浮き３に固定した小割生簀用筏４に養鰻用のビニール製シートを上方開口の略直方体となるように張り、プラヌラ幼生飼育用水槽５とする。プラヌラ幼生飼育用水槽５の海面より上部内側面には、一定間隔に散水口６１を設けた海水散水用ホース６を張り巡らす。該海水散水用ホース６の一端には、水中ポンプ７が設置されており、生簀付近の海中から海水を吸水する。吸水された海水は、海水散水用ホース６の散水口６１から、プラヌラ幼生飼育用水槽５の内側面に向かって散水される。プラヌラ幼生が水槽のシートに付着しないようにするためである。   A plastic sheet for sericulture is stretched on the small ginger cage 4 fixed to the float 3 so as to form a substantially rectangular parallelepiped with an upper opening, thereby forming a planula larva breeding tank 5. A seawater sprinkling hose 6 provided with sprinkling ports 61 at regular intervals is stretched from the sea surface of the planula larva breeding tank 5 to the upper inner surface. An underwater pump 7 is installed at one end of the seawater sprinkling hose 6 to absorb seawater from the sea near the ginger. The absorbed seawater is sprinkled from the water spout 61 of the seawater sprinkling hose 6 toward the inner surface of the water tank 5 for breeding the planula larvae. This is to prevent the planula larvae from adhering to the water tank sheet.

プラヌラ幼生飼育用水槽５の側面、及び底面には、ネット状の通水窓５１を設ける。該通水窓５１を設けることにより、海水を循環させることができる。   A net-shaped water flow window 51 is provided on the side surface and the bottom surface of the water tank 5 for raising the planula larvae. By providing the water flow window 51, seawater can be circulated.

図４は、プラヌラ幼生飼育用水槽５の上方斜視図である。プラヌラ幼生飼育用水槽５の幅Ｗ、及び深さＨは、自由に設計することができる。一例を挙げると、幅Ｗを２ｍ、深さＷを１ｍのプラヌラ幼生飼育用水槽５を８つ用いた生簀では、約３００万個以上のプラヌラ幼生を飼育することができる。   FIG. 4 is an upper perspective view of the planula larva rearing tank 5. The width W and the depth H of the planula larva rearing tank 5 can be designed freely. As an example, in a ginger using eight planula larvae rearing tanks 5 having a width W of 2 m and a depth W of 1 m, about 3 million or more planula larvae can be bred.

プラヌラ幼生がポリプへと変態可能なまでに成長させるには、水温を２６℃以上３０℃未満に保つことが望ましい。より好ましい水温は、２７℃程度である。プラヌラ幼生がポリプへと変態可能なまでに成熟するのに要する時間は、水温２６℃で産卵後約６日、水温２７℃で産卵後約５日である。   It is desirable to keep the water temperature at 26 ° C. or higher and lower than 30 ° C. so that the planula larvae can grow into a polyp. A more preferable water temperature is about 27 ° C. It takes about 6 days after egg laying at a water temperature of 26 ° C. and about 5 days after egg laying at a water temperature of 27 ° C. until the planula larvae can mature into a polyp.

プラヌラ幼生の成熟度は、公知の方法により調べることができる。一例を挙げると、石灰藻の付いた基盤又はサンゴ石の断片を用いて、幼生の着生能力を確かめることによって調べることができる。   The maturity of the planula larvae can be examined by a known method. For example, it can be examined by confirming the ability of larvae to settle using a base with lime algae or a piece of coral stone.

（IV）稚サンゴ作出工程
次に、ポリプへと変態可能なまでに成熟したプラヌラ幼生を、基盤に着生させる（図２中（IV）工程）。プラヌラ幼生は、通常、５〜１０日程度、着生能力を維持することができる。プラヌラ幼生の着生能力が最も高まるのは、着生開始後、１〜２日である。 (IV) Juvenile coral production process Next, the planula larvae matured until they can be transformed into polyps are allowed to grow on the base (process (IV) in FIG. 2). Planula larvae can usually maintain their ability to settle for about 5 to 10 days. It is 1 to 2 days after the start of the epiphysis that the planula larvae have the greatest ability to settle.

着生基盤は、自由に選定することができる。例えば、コンクリート、素焼きタイル、貝殻、陶石タイル、陶器、スレート板など様々な材料で形成された基盤を用いることができる。また、多くのプラヌラ幼生は、角の内側や窪みに着生することから、溝などの立体的な構造をもつ基盤を採用してもよい。   The settlement base can be freely selected. For example, a base made of various materials such as concrete, unglazed tile, shell, pottery stone tile, pottery, and slate plate can be used. In addition, since many planula larvae grow on the inside of the corner or in the depression, a base having a three-dimensional structure such as a groove may be employed.

これらの基盤は、予め、海中に任意の時間放置した後に用いることがより好ましい。表面に他の生物をある程度付着させた後に用いた方が、プラヌラ幼生が多く着生するからである。   These bases are more preferably used after leaving in the sea for an arbitrary time in advance. This is because the planula larvae grow more when they are used after some other organisms adhere to the surface.

着生したプラヌラ幼生は、やがてポリプへと変態する（図２中（IV）工程）。プラヌラ幼生の着生、及びポリプへの変態は自然に任せてもよいが、着生、及び変態を人為的に促進させることもできる。例えば、紅藻サンゴモの一種であるHydrolithon reinboldii 、又は紅藻類イワノカワ科に属するPeyssonnelia sp. の藻体の表面をナイフ等で削って作成したチップを添加すれば、約６時間から７２時間でプラヌラ幼生の着生が起こる。これらのチップは、抗生物質であるリファンピシン水溶液（２ｍｇ／Ｌ）の入ったビーカー等に浸して洗浄した後、濾紙などで水分を取り除き冷凍保存すれば、約１年以上の保存が可能である。   The grown planula larvae eventually transform into polyps (step (IV) in FIG. 2). Although the epiphysis of the planula larvae and the transformation to polyps may be left to nature, the epiphysis and transformation can be artificially promoted. For example, if you add a chip made by cutting the surface of the algal body of Hydrolithon reinboldii, which is a kind of red algae coral, or Peyssonnelia sp. Will occur. These chips can be stored for about one year or longer if they are immersed in a beaker or the like containing rifampicin aqueous solution (2 mg / L), which is an antibiotic, and then washed with water after removing water with filter paper.

また、神経ペプチドＨｙｍ−２４８（配列番号１）を用いれば、より高く安定した着生を誘導することができる。神経ペプチドＨｙｍ−２４８は、淡水ヒドラHydra magnipapillata から単離可能であるが、人為的な合成も可能である。神経ペプチドＨｙｍ−２４８の添加濃度は、プラヌラ幼生の状態などに合わせて自由に設定することができる。一例を挙げると、プラヌラ幼生を含有する濾過海水中に、神経ペプチドＨｙｍ−２４８を１×１０-6Ｍの濃度で添加すると、約１２時間以内にほぼ１００％の確率で着生が終了する。 In addition, if the neuropeptide Hym-248 (SEQ ID NO: 1) is used, higher and more stable formation can be induced. The neuropeptide Hym-248 can be isolated from the freshwater hydra Hydra magnipapillata, but can also be artificially synthesized. The addition concentration of the neuropeptide Hym-248 can be freely set according to the state of the planula larvae. For example, when the neuropeptide Hym-248 is added at a concentration of 1 × 10 −6 M in the filtered seawater containing the planula larvae, the establishment is completed with a probability of almost 100% within about 12 hours.

着生後、プラヌラ幼生はポリプへと変態していく。神経ペプチドＨｙｍ−２４８を添加することによって、プラヌラ幼生の着生だけでなく、ポリプへの変態も促進させることができる。   After settlement, the planula larvae transform into polyps. By adding the neuropeptide Hym-248, it is possible to promote not only the formation of planula larvae but also the transformation into polyps.

（Ｖ）稚サンゴ育成工程
ポリプへの変態後は、ポリプから稚サンゴへと成長させ、稚サンゴを育成する（図２中（Ｖ）工程）。ポリプから稚サンゴへの成長、及び稚サンゴの育成は、自然環境で行うことも可能であるが、着生直後のポリプは、直径１ｍｍ以下と小さいため、自然環境下では、他の付着生物に覆われて死亡してしまうことが多い。特に藻類は、サンゴと同様に、光と空間を必要とするため、サンゴにとっては棲み場をめぐる競争者となる。また、藻類が繁茂すると、基盤には多量の堆積物が積もり、サンゴの死亡原因ともなる。さらに、貝類や魚類のような海洋生物の中には、サンゴを食べたり削ったりする生物も存在する。 (V) Juvenile coral upbringing process After transformation to polyp, it grows from polyp to juvenile coral and nurtures juvenile coral (process (V) in FIG. 2). The growth from polyps to juvenile corals and the breeding of juvenile corals can also be carried out in a natural environment, but polyps immediately after their establishment are as small as 1 mm or less in diameter. Often covered and killed. Algae in particular, like corals, require light and space, making them a competitor for stagnation. Also, when algae grows, a large amount of sediment accumulates on the base, causing coral death. In addition, some marine organisms such as shellfish and fish also eat and cut corals.

稚サンゴを高確率で育成させることは、今日まできわめて困難であった。しかし、本願発明者は、特殊な稚サンゴ育成カゴを設計制作し、これを水中に垂下し、その中で藻食性巻貝と混養することで、藻類を巻貝の摂食活動によって除去して稚サンゴを外敵から保護し、生残率を上げることができることを見出した。具体的な一例を、図５から図７を用いて説明する。   It has been extremely difficult to grow juvenile corals with high probability. However, the inventor of the present application designed and produced a special juvenile coral-raising cage, suspended it in water, and mixed it with algal-eating snails to remove algae through the feeding activities of snails. We found that we can protect coral from foreign enemies and increase the survival rate. A specific example will be described with reference to FIGS.

図５は、海面に設置した稚サンゴ育成装置の側面図である。図５中符号Ｓは海面を示し、符号Ｂは海底を示す。   FIG. 5 is a side view of the juvenile coral cultivation device installed on the sea surface. In FIG. 5, symbol S indicates the sea surface, and symbol B indicates the sea bottom.

浮き３に固定した小割生簀用筏４から垂下した海中に、サンゴ育成カゴ８を吊るす。該サンゴ育成カゴ８の中に、稚サンゴが着生した基盤と藻食性巻貝を一緒に入れ、混養する。藻食性巻貝は、稚サンゴの周辺に生えた藻類を摂餌するため、藻類の繁茂に伴なう稚サンゴの死亡を防止することができる。また、稚サンゴをサンゴ育成カゴ８に入れた状態で育成するため、海洋中からの他の貝類、及び魚類の侵入を防ぐことができ、貝類や魚類のような海洋生物による被害を防ぐことが可能である。   The coral cultivation cage 8 is suspended in the sea suspended from the small ginger cage 4 fixed to the float 3. The base on which the juvenile coral has grown and the algal eating snail are put together in the coral cultivation cage 8 and mixed. Since the algalivorous snails feed on the algae grown around the juvenile coral, it is possible to prevent the death of the juvenile coral accompanying the overgrowth of the algae. Moreover, since the juvenile coral is cultivated in the coral cultivation cage 8, it is possible to prevent the invasion of other shellfish and fish from the ocean, and to prevent damage from marine organisms such as shellfish and fish. Is possible.

図６は、サンゴ育成カゴ８の上方斜視図である。サンゴ育成カゴ８の形状、大きさなどは自由に設計することができる。図６では、約縦８０ｃｍ、横８０ｃｍ、高さ１６ｃｍの直方体のカゴ８を一例として挙げている。サンゴ育成カゴ８の目合いの大きさも自由に設定することが可能である。一例としては、約１０ｍｍの目合いにすると、海洋生物の侵入防止、藻食性巻貝の脱走防止、及び海水循環の維持等において好適である。   FIG. 6 is an upper perspective view of the coral growing cage 8. The shape and size of the coral cultivation basket 8 can be designed freely. In FIG. 6, a rectangular parallelepiped cage 8 having a length of about 80 cm, a width of 80 cm, and a height of 16 cm is taken as an example. The size of the scale of the coral cultivating basket 8 can be set freely. As an example, a mesh size of about 10 mm is suitable for preventing invasion of marine organisms, preventing escape of seaweed snails, maintaining seawater circulation, and the like.

小さい藻食性巻貝の脱走を防ぐために、例えば、藻食性巻貝がある程度成長するまでの間、サンゴ育成カゴ８の内側に図示しないが目合いの小さい網などを取り付けることも可能である。この網は、藻食性巻貝の成長に伴って交換、若しくは撤去すればよい。   In order to prevent the escape of the small algal eating snails, for example, a net with a small mesh size (not shown) can be attached to the inside of the coral growing cage 8 until the algal eating snails grow to some extent. This net may be replaced or removed as the algal eating snail grows.

サンゴ育成カゴ８には、稚サンゴが着生した基盤９と、藻食性巻貝１０を一緒に入れて混養する。基盤９の素材、形状、大きさなどは、自由に設計することができる。また、基盤９の設置方法も、自由に設計することが可能である。一例としては、基盤９の平面部をサンゴ育成カゴ８の底面と垂直に設置することが望ましい。海洋中の堆積物防止のためである。また、基盤９とサンゴ育成カゴ８の底面は接触させておくことが望ましい。藻食性巻貝１０が、基盤９に容易に這い登れるようにするためである。   In the coral cultivation cage 8, the base 9 on which the juvenile coral has grown and the algal eating snail 10 are put together and mixed. The material, shape, size, etc. of the base 9 can be designed freely. Moreover, the installation method of the base 9 can be designed freely. As an example, it is desirable to install the plane portion of the base 9 perpendicularly to the bottom surface of the coral cultivation cage 8. This is to prevent sediments in the ocean. Moreover, it is desirable that the base 9 and the bottom surface of the coral growing cage 8 are in contact with each other. This is because the seaweed snail 10 can be easily climbed on the base 9.

また、基盤９の配置方法も自由に設計することができる。図６では、基盤９の配置方法の一例として、基盤９の中心に基盤串１１を通し、一定間隔で複数の基盤９を連結して、サンゴ育成カゴ８内に配置している。操作性の向上と、基盤９が倒れてしまうのを防止するためである。この他にも図示しないが、サンゴ育成カゴ８の底面に、一定間隔で基盤９の固定具を取り付け、該固定具によって基盤９を固定するなどの方法をとることも自由である。   Moreover, the arrangement | positioning method of the base | substrate 9 can also be designed freely. In FIG. 6, as an example of the arrangement method of the base 9, the base skewer 11 is passed through the center of the base 9, and a plurality of bases 9 are connected at regular intervals, and are arranged in the coral cultivation basket 8. This is for improving the operability and preventing the base 9 from falling down. In addition to this, although not shown in the drawings, it is also possible to freely attach the base 9 to the bottom surface of the coral cultivating cage 8 at regular intervals and fix the base 9 with the fixture.

基盤９の設置間隔は、自由に設計することができる。稚サンゴの成長により各基盤９間の空間が狭くなること、及び藻食性巻貝１０が成長することを考慮した上で、藻食性巻貝１０が通過できる程度に設計することが望ましい。   The installation interval of the base 9 can be designed freely. Considering that the space between the bases 9 is narrowed by the growth of juvenile corals and that the algal erodible snail 10 grows, it is desirable to design to the extent that the algal vegetative snail 10 can pass.

図７は、稚サンゴ育成カゴ８に設置した基盤９上の様子を示す模式図である。稚サンゴＣが着生した基盤９上に繁茂した藻類１２を、基盤９上を自由に這い回る藻食性巻貝１０が摂餌する（図７中（Ｉ）参照）。そのため、藻類１２に育成を妨げられることなく、稚サンゴＣを成長させることができる（図７中（II）参照）。   FIG. 7 is a schematic diagram showing a state on the base 9 installed in the juvenile coral cultivation basket 8. The algal edible snails 10 that freely crawl on the base 9 feed on the algae 12 that grew on the base 9 where the juvenile coral C has grown (see (I) in FIG. 7). Therefore, juvenile coral C can be grown without being prevented from growing by the algae 12 (see (II) in FIG. 7).

（VI）サンゴ移植工程
前記稚サンゴ育成工程（Ｖ）を経て、成長した稚サンゴを海洋へ移植する（図２中（VI）工程）。移植した稚サンゴは、クローンを増やして群体に成長する。そして石灰質の骨格を積み重ねていき、やがてサンゴ礁を形成する。 (VI) Coral transplantation step After the juvenile coral cultivation step (V), the grown juvenile coral is transplanted into the ocean (step (VI) in FIG. 2). Transplanted juvenile corals grow into colonies by increasing their clones. Then, the calcareous skeletons are stacked, and eventually a coral reef is formed.

実施例１では、本発明に係るサンゴ養殖方法を用いて着生した稚サンゴを、藻食性巻貝と混養した。   In Example 1, juvenile corals grown using the coral cultivation method according to the present invention were mixed with algal eating snails.

海面に設置された浮きから、水深３ｍに垂下した縦８０ｃｍ、横８０ｃｍ、高さ１６ｃｍ、目合い１０ｍｍの稚サンゴ育成カゴ内に、稚サンゴが着生した基盤３０枚を配置した。前記稚サンゴ育成カゴに、藻食性巻貝としてサラサバティ（タカセガイ）を５０個体入れ、１年間混養した。   Thirty bases with juvenile coral were placed in a juvenile coral breeding cage that was 80 cm long, 80 cm wide, 16 cm high, and 10 mm in size, suspended from a float placed on the sea surface. The juvenile coral-growing cage was filled with 50 Sarasabati (Takagai) as an algal eating snail and mixed for 1 year.

その結果、直径４〜５ｃｍ程のサンゴが、一基盤あたり１０群体程度、カゴ１個あたりでは３００群体程度、育成することができた。   As a result, corals having a diameter of about 4 to 5 cm were able to grow up to about 10 colonies per base and about 300 colonies per cage.

実施例１では、稚サンゴを藻食性巻貝と混養すると、サンゴの育成の妨げとなる藻類を藻食性巻貝が摂餌するため、サンゴの育成過程を保護できることが分かった。   In Example 1, when the juvenile coral was mixed with the algal vegetative snails, it was found that the algal edible snails feed on the algae that hinder the growth of the corals, and therefore the coral nurturing process can be protected.

本発明に係るサンゴ養殖方法は、産卵からサンゴへの成長に係る全ての過程を好条件で行うことが可能である。そのため、サンゴを計画的、及び安定的に育成することができ、サンゴ礁の修復に貢献することができる。サンゴ礁が修復されると、更には、水産資源生物の涵養、漁獲量の増大、生物多様性の上昇、海洋環境の浄化、天災の防止、新規薬剤等の開発等にも貢献できる。   The coral cultivation method according to the present invention can perform all processes related to growth from egg laying to coral under favorable conditions. Therefore, corals can be cultivated in a planned and stable manner, and can contribute to the restoration of coral reefs. When coral reefs are restored, they can further contribute to the recharge of aquatic resources, increased catch, increased biodiversity, purification of the marine environment, prevention of natural disasters, and development of new drugs.

本発明に係るサンゴ産卵誘発方法の各工程を示すフロー図である。It is a flowchart which shows each process of the coral spawning induction method which concerns on this invention. 本発明に係るサンゴ養殖方法の工程フロー図である。It is a process flow figure of the coral cultivation method concerning the present invention. 海面に設置したプラヌラ幼生飼育用生簀の側面図である。It is a side view of the ginger for Planula larva breeding installed in the sea surface. プラヌラ幼生飼育用水槽５の上方斜視図である。It is an upper perspective view of the water tank 5 for raising planula larvae. 海面に設置した稚サンゴ育成装置の側面図である。It is a side view of the juvenile coral cultivation device installed on the sea surface. サンゴ育成カゴ８の上方斜視図である。It is an upper perspective view of the coral cultivation basket 8. 稚サンゴ育成カゴ８に設置した基盤９上の様子を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the mode on the base | substrate 9 installed in the juvenile coral cultivation basket 8. FIG. 自然界におけるサンゴ礁形成過程を示す模式図である。It is a schematic diagram which shows the coral reef formation process in nature.

符号の説明Explanation of symbols

１ サンゴ群体
２ 水槽
３ 浮き
４ 小割生簀用筏
５ プラヌラ幼生飼育用水槽
５１ 通水窓
６ 海水散水用ホース
６１ 散水口
７ 水中ポンプ
８ サンゴ育成カゴ
９ 基盤
１０ 藻食性巻貝
１１ 基盤串
１２ 藻類
Ｓ 海面
Ｂ 海底
Ｒ サンゴ礁
Ｘ 卵
Ｙ ***
Ｆ 受精卵
Ｌ プラヌラ幼生
Ｐ ポリプ
Ｃ サンゴ、稚サンゴ DESCRIPTION OF SYMBOLS 1 Coral group 2 Aquarium 3 Float 4 Small trout ginger 5 Planura larva breeding tank 51 Water flow window 6 Sea water sprinkling hose 61 Sprinkling port 7 Submersible pump 8 Coral breeding cage 9 Base 10 Algae-eating conch 11 Base skewer 12 Algae S Sea surface B Seabed R Coral reef X Egg Y Sperm F Fertilized egg L Planula larva P Polyp C Coral, fry coral

Claims (4)

海中よりサンゴ群体を採取する採取工程と、
採取した前記サンゴ群体を水槽に収容する収容工程と、
前記サンゴ群体が収容された水槽に過酸化水素（Ｈ２Ｏ２）を添加する過酸化水素添加工程と、
前記過酸化水素添加工程後に、前記サンゴ群体を流水中で維持する維持工程と、
前記維持工程を任意の時間行った後に、前記サンゴ群体を遮光することにより、産卵時刻を調整する遮光工程と、
を少なくとも含むサンゴ幼生作出方法を用いるサンゴ養殖方法。 A collection process for collecting coral colonies from the sea;
A housing step of housing the collected coral colonies in a water tank;
A hydrogen peroxide addition step of adding hydrogen peroxide (H 2 O 2 ) to a water tank containing the coral colonies;
A maintenance step of maintaining the coral colonies in running water after the hydrogen peroxide addition step;
After performing the maintenance step for an arbitrary time, by shielding the coral colony, a light shielding step of adjusting the spawning time;
Coral culture method using coral larva production method including at least. 受精卵より産生したプラヌラ幼生を室内又は／及び野外で飼育し、海中に任意の期間放置した基盤に着生させることを特徴とする請求項１記載のサンゴ養殖方法。   The coral culturing method according to claim 1, wherein planula larvae produced from fertilized eggs are bred indoors and / or outdoors and allowed to grow on a base left in the sea for an arbitrary period. 神経ペプチドＨｙｍ−２４８（配列番号１）をプラヌラ幼生含有海水中へ添加することにより、プラヌラ幼生の着生を促進させることを特徴とする請求項２記載のサンゴ養殖方法。   The coral culture method according to claim 2, wherein the neuropeptide Hym-248 (SEQ ID NO: 1) is added to the sea water containing planula larvae to promote the establishment of the planula larvae. 着生したプラヌラ幼生がポリプへと変態後に、藻食性巻貝と混養することを特徴とする請求項２又は３記載のサンゴ養殖方法。   The coral culturing method according to claim 2 or 3, wherein the grown planula larvae are mixed with algalivorous snails after being transformed into polyps.
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