JP2007166946A - 標的遺伝子の発現を抑制するための組成物 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】 連続した複数個のアルギニン残基を含む第1のペプチドを表面に有するリポソームと、標的遺伝子の発現を抑制し得るDNA又はRNAとを含む、標的遺伝子の発現を抑制するための組成物であって、前記DNAは、プロタミン又はその誘導体により凝集化された状態で、前記リポソームに封入されており、前記RNAは、連続した複数個のアルギニン残基を含む第2のペプチド又は疎水性基で修飾されたその誘導体により凝集化された状態で、前記リポソームに封入されている組成物を提供する。
【選択図】 なし
Description
(1)連続した複数個のアルギニン残基を含む第1のペプチドを表面に有するリポソームと、標的遺伝子の発現を抑制し得るDNA又はRNAとを含む、標的遺伝子の発現を抑制するための組成物であって、前記DNAは、プロタミン又はその誘導体により凝集化された状態で、前記リポソームに封入されており、前記RNAは、連続した複数個のアルギニン残基を含む第2のペプチド又は疎水性基で修飾されたその誘導体により凝集化された状態で、前記リポソームに封入されている組成物。
(2)前記第1のペプチドが、連続した4〜20個のアルギニン残基を含む4〜35個のアミノ酸残基からなるペプチドである前記(1)記載の組成物。
(3)前記第1のペプチドがアルギニン残基のみからなる前記(1)又は(2)記載の組成物。
(4)前記第1のペプチドの量が、前記リポソームの脂質膜を構成する総脂質に対して2%(モル比)以上である前記(1)〜(3)のいずれかに記載の組成物。
(5)前記第2のペプチドが、連続した4〜20個のアルギニン残基を含む4〜35個のアミノ酸残基からなるペプチドである前記(1)〜(4)のいずれかに記載の組成物。
(6)前記第2のペプチドがアルギニン残基のみからなる前記(1)〜(5)のいずれかに記載の組成物。
(7)前記第2のペプチドを修飾する疎水性基がステアリル基である前記(1)〜(6)のいずれかに記載の組成物。
(8)前記リポソームの脂質膜を構成する総脂質に対するカチオン性脂質の割合が0〜40%(モル比)である前記(1)〜(7)のいずれかに記載の組成物。
(9)前記第1のペプチドが疎水性基又は疎水性化合物で修飾されており、前記疎水性基又は前記疎水性化合物が前記リポソームの脂質膜に挿入され、前記ペプチドが前記リポソームの脂質膜から露出している前記(1)〜(8)のいずれかに記載の組成物。
(10)前記第1のペプチドを修飾する疎水性基がステアリル基である前記(9)記載の組成物。
(11)前記DNAがアンチセンスDNAであり、前記RNAがsiRNAである前記(1)〜(10)のいずれかに記載の組成物。
リポソームは脂質膜(脂質二重膜)を有する閉鎖小胞である。リポソームの脂質膜の数は特に限定されるものではなく、多重膜リポソーム(MLV)であってもよいし、SUV(small unilamella vesicle)、LUV(large unilamella vesicle)、GUV(giant unilamella vesicle)等の一枚膜リポソームであってもよい。リポソームのサイズは特に限定されるものではないが、直径100〜500nmであることが好ましく、直径150〜300nmであることがさらに好ましい。
[リン脂質]
ホスファチジルコリン(例えば、ジオレオイルホスファチジルコリン、ジラウロイルホスファチジルコリン、ジミリストイルホスファチジルコリン、ジパルミトイルホスファチジルコリン、ジステアロイルホスファチジルコリン等)、ホスファチジルグリセロール(例えば、ジオレオイルホスファチジルグリセロール、ジラウロイルホスファチジルグリセロール、ジミリストイルホスファチジルグリセロール、ジパルミトイルホスファチジルグリセロール、ジステアロイルホスファチジグリセロール等)、ホスファチジルエタノールアミン(例えば、ジラウロイルホスファチジルエタノールアミン、ジミリストイルホスファチジルエタノールアミン、ジパルミトイルホスファチジルエタノールアミン、ジステアロイルホスファチジエタノールアミン等)、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジン酸、カルジオリピン、スフィンゴミエリン、セラミドホスホリルエタノールアミン、セラミドホスホリルグリセロール、セラミドホスホリルグリセロールホスファート、1,2−ジミリストイル−1,2−デオキシホスファチジルコリン、プラスマロゲン、卵黄レシチン、大豆レシチン、これらの水素添加物等。
グリセロ糖脂質(例えば、スルホキシリボシルグリセリド、ジグリコシルジグリセリド、ジガラクトシルジグリセリド、ガラクトシルジグリセリド、グリコシルジグリセリド)、スフィンゴ糖脂質(例えば、ガラクトシルセレブロシド、ラクトシルセレブロシド、ガングリオシド)等。
動物由来のステロール(例えば、コレステロール、コレステロールコハク酸、コレスタノール、ラノステロール、ジヒドロラノステロール、デスモステロール、ジヒドロコレステロール)、植物由来のステロール(フィトステロール)(例えば、スチグマステロール、シトステロール、カンペステロール、ブラシカステロール)、微生物由来のステロール(例えば、チモステロール、エルゴステロール)等。
パルミチン酸、オレイン酸、ステアリン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸等の炭素数12〜20の飽和又は不飽和の脂肪酸等。
脂質膜の構成成分である脂質と、疎水性基又は疎水性化合物で修飾された第1のペプチドとを有機溶剤に溶解した後、有機溶剤を蒸発除去することにより脂質膜を得る。この際、有機溶剤としては、例えば、ペンタン、ヘキサン、ヘプタン、シクロヘキサン等の炭化水素類;塩化メチレン、クロロホルム等のハロゲン化炭化水素類;ベンゼン、トルエン等の芳香族炭化水素類;メタノール、エタノール等の低級アルコール類;酢酸メチル、酢酸エチル等のエステル類;アセトン等のケトン類等が挙げられ、これらを単独で又は2種以上を組み合わせて使用することができる。次いで、脂質膜を水和させ、攪拌又は超音波処理することにより、第1のペプチドを表面に有するリポソームを製造することができる。
脂質膜の構成成分である脂質を有機溶剤に溶解した後、有機溶剤を蒸発除去することにより脂質膜を得、この脂質膜を水和させ、攪拌又は超音波処理することによりリポソームを製造する。次いで、このリポソームの外液に、疎水性基又は疎水性化合物で修飾された第1のペプチドを添加することにより、リポソームの表面に上記ペプチドを導入することができる。
多機能性エンベロープ型ナノ構造体(MEND)はプラスミドDNAの効率的なデリバリーシステムとして開発されている(Kogure, K.等., Journal of Controlled Release, 2004年, 第98巻, p.317-323)。また、膜透過性ペプチドとして有用であるステアリルオクタアルギニン(stearyl octaargine,STR−R8)をコンデンス試薬として用いてアンチセンスオリゴDNA(アンチセンスODN)をMENDにパッケージすることには既に成功している(Yamada, Y.等, Biol. Pharm. Bull. 2005年, 第28巻, p.1939-1942)。そこで、本研究では、アンチセンスODN封入MENDの機能向上のための構造最適化を目的として実験をおこなった。
(1)試薬
1,2−ジオレイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(1,2-Dioleoyl-sn-Glycero-3-phosphoethanolamine(DOPE))は、AVANTI Polar Lipids社から購入した。コレステリルヘミスクシネート(Cholesteryl Hemisuccinate(CHEMS))、ポリ−L−リジン(Poly-L-lysine(PLL),分子量27400)は、SIGMA-Aldrich社から購入した。ステアリルオクタアルギニン(Stearyl octaarginine(STR−R8))は、公知の方法(S. Futaki等, Bioconjug. Chem. 12 (2001) 1005-1011.)に従って合成した。硫酸プロタミンは、Calbiochem社から購入した。ルシフェラーゼ遺伝子に対するアンチセンスオリゴDNA(アンチセンスODN)(5'- aaccgcttccccgacttcc -3'(配列番号1))は、SIGMA-Aldrich社から購入した(配列は、Xu等の論文(Xu Y, Zhang HY等, Biochem Biophys Res Commun. 306 (2003) 712-717.)を参照した)。NIH3T3細胞は、American Type Culture Collectionから入手した。
MENDの調製工程は、以下の3工程からなる。
(a)ポリカチオン(PLL,STR−R8,硫酸プロタミン)によるDNAの凝集化
DNA及びポリカチオンをそれぞれ10mM HEPES緩衝液(pH7.4)に溶解し、DNA溶液(0.1mg/mL)及びポリカチオン溶液(0.1mg/mL)をボルテックス下、室温にて混合し、DNAを凝集化した。N/P(nitrogen/phosphate)比2.4で調製したDNA/PLL複合体(DPC)懸濁液、N/P比2.9で調製したDNA/STR−R8複合体(DPC)懸濁液、及びN/P比2.2で調製したDNA/硫酸プロタミン複合体(DPC)懸濁液のDNA量は、いずれも0.05mg/mLであった。なお、DNAは、ルシフェラーゼ遺伝子及びその上流にCMVプロモーターを有する全長7037bpのプラスミドDNA(CMVプロモーターを有するpcDNA3.1プラスミドにルシフェラーゼ遺伝子を組み込んだもの)、及びルシフェラーゼ遺伝子に対するアンチセンスODNの混合物である。
DNAの凝集化の後、DPC懸濁液0.25mLを脂質膜に加え、10分間インキュベーションして水和した。脂質膜は、137.5nmol(DOPE/CHEMS=9:2(モル比))のクロロホルム溶液をガラス試験管に収容し、溶媒を除去することにより形成した。脂質の最終濃度は0.55mMであった。
DPCを脂質でコーティングするために、ガラス試験管を超音波槽(125 W, Branson Ultrasonics)で約1分間超音波処理し、脂質膜の表面に膜透過性ペプチドであるオクタアルギニン(R8)を結合させるために、STR−R8溶液(脂質の5モル%)を懸濁液に加え、混合物を室温で30分間インキュベーションした。流体力学的直径は準弾性光散乱方法によって測定し、ゼータ電位は、電気泳動的光散乱分光測光器(ELS-8000, Otsuka electronics)によって分析した。
FITC標識化DNA(総DNAの15%)及びローダミン標識化DOPE(総脂質の1モル%)を含有するMENDを不連続ショ糖密度勾配(0−60%)上に重層し、20℃、160,000gの条件で2時間遠心した。上部から1mLずつ画分を回収し、FITC及びローダミンの蛍光強度を測定した。不連続ショ糖密度勾配遠心によって回収された画分のうち、DNA含量の高い画分をリポソーム含有画分とした。リポソーム含有画分は、ショ糖30〜60%の境界から回収することができた。さらに、FITC及びローダミン間のFRET(fluorescence resonance energy transfer)を測定した。各フラクションは、1%SDSで溶解し、蛍光強度の測定に使用した。封入効率は、次式:
封入効率=(Σリポソーム含有画分のODN量/回収した総ODN量)×100
に従って算出した。
DNA0.04μgを含むサンプル(プラスミドDNA:ODN=1:748(モル比))又はリポフェクトアミン2000で処理したDNA0.04μg(プラスミドDNA:ODN=1:748(モル比))をDMEM(血清及び抗生物質を含まない)0.25mLに懸濁し、4×104個のNIH3T3細胞に加え、37℃で3時間インキュベートした。次いで、10%ウシ胎仔血清を含むDMEM 1mLを加え、さらに5、13、21及び45時間インキュベートした。その後、細胞を洗浄し、reporter lysis buffer(Promega社)で溶解し、細胞溶解液 20μLにルシフェラーゼアッセイ試薬(Promega社)100μLを加えて、ルミノメーター(Luminescencer-PSN)によりルシフェラーゼ活性を測定した。また、BCAプロテインアッセイキット(PIERCE社)により細胞溶解液中のタンパク質量を測定した。
ルシフェラーゼ発現プラスミドDNAとそれに対応するアンチセンスODNとを一緒にSTR−R8で凝集化した後、MENDに封入し、脂質膜をSTR−R8で修飾してアンチセンスODN封入MENDを調製し、これをNIH3T3細胞にコトランスフェクションしてルシフェラーゼ発現抑制率を調べた。その結果、コトランスフェクション後8時間のルシフェラーゼ発現抑制率は30%であり、ルシフェラーゼ発現抑制効果はあまり高くなかった。また、コトランスフェクション後16時間からはルシフェラーゼ発現抑制効果は観察されなかった。
実施例1と同様にして、PLL、硫酸プロタミン又はSTR−R8を用いてルシフェラーゼ発現プラスミド及びルシフェラーゼ遺伝子に対するsiRNA(5'- gcgcugcuggugccaaccctt -3'(配列番号2)及び5'- ggguuggcaccagcagcgctt -3'(配列番号3))を凝集化し、MENDへパッケージングした。すなわち、ポリカチオン及びsiRNAを10mM HEPES緩衝液(pH7.4)に溶解し、ボルテックス条件下にて、ポリカチオン溶液(0.1mg/mL)0.2mLに、siRNA溶液(0.1mg/mL)0.1mLを添加することで、siRNAを凝縮化し、プラス荷電を有する粒子を調製した。試験管にジオレオイルフォスファチジルエタノールアミン(DOPE)とコレステロールコハク酸(CHEMS)(DOPE:CHEMS=9:2(モル比))を137.5nmol含むクロロホルム溶液を分取し、窒素ガスを吹き付けることで蒸発乾固させ、マイナス荷電を有する脂質膜を形成した。凝集化siRNA懸濁液0.25mLを、脂質膜に添加し、室温で10分以上放置することで、脂質膜を水和させるとともに、凝縮化siRNA粒子を脂質膜に結合させた。水和後、超音波槽中で10〜30秒間、超音波処理することによって凝縮化siRNAを脂質膜でコートした。得られた脂質コート凝縮化siRNA懸濁液に、STR−R8(2mg/mL)溶液を全脂質量の5モル%になるように添加し、室温で30分放置することで、凝縮化siRNAをコートしている脂質膜にSTR−R8を分配させ、表面をR8ペプチドで修飾した。
Claims (11)
- 連続した複数個のアルギニン残基を含む第1のペプチドを表面に有するリポソームと、標的遺伝子の発現を抑制し得るDNA又はRNAとを含む、標的遺伝子の発現を抑制するための組成物であって、
前記DNAは、プロタミン又はその誘導体により凝集化された状態で、前記リポソームに封入されており、
前記RNAは、連続した複数個のアルギニン残基を含む第2のペプチド又は疎水性基で修飾されたその誘導体により凝集化された状態で、前記リポソームに封入されている組成物。 - 前記第1のペプチドが、連続した4〜20個のアルギニン残基を含む4〜35個のアミノ酸残基からなるペプチドである請求項1記載の組成物。
- 前記第1のペプチドがアルギニン残基のみからなる請求項1又は2記載の組成物。
- 前記第1のペプチドの量が、前記リポソームの脂質膜を構成する総脂質に対して2%(モル比)以上である請求項1〜3のいずれかに記載の組成物。
- 前記第2のペプチドが、連続した4〜20個のアルギニン残基を含む4〜35個のアミノ酸残基からなるペプチドである請求項1〜4のいずれかに記載の組成物。
- 前記第2のペプチドがアルギニン残基のみからなる請求項1〜5のいずれかに記載の組成物。
- 前記第2のペプチドを修飾する疎水性基がステアリル基である請求項1〜6のいずれかに記載の組成物。
- 前記リポソームの脂質膜を構成する総脂質に対するカチオン性脂質の割合が0〜40%(モル比)である請求項1〜7のいずれかに記載の組成物。
- 前記第1のペプチドが疎水性基又は疎水性化合物で修飾されており、前記疎水性基又は前記疎水性化合物が前記リポソームの脂質膜に挿入され、前記ペプチドが前記リポソームの脂質膜から露出している請求項1〜8のいずれかに記載の組成物。
- 前記第1のペプチドを修飾する疎水性基がステアリル基である請求項9記載の組成物。
- 前記DNAがアンチセンスDNAであり、前記RNAがsiRNAである請求項1〜10のいずれかに記載の組成物。
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