JP2007153769A - Monoclonal antibody to wheat-derived nonspecific lipid transport protein - Google Patents

Abstract

<P>PROBLEM TO BE SOLVED: To provide a method for highly easily and sharply examining the use or contamination of wheat materials in food, particularly to provide a method for examining such wheat materials, capable of detecting the presence of the materials highly sharply and accurately even after their denaturation by processing including fermentation and/or heating and also presenting no misjudgement between the wheat materials and analogous species such as barley. <P>SOLUTION: The monoclonal antibody to wheat-derived nonspecific lipid transport protein is such as to be produced by a hybridoma(FERM P-20687 or FERM P-20688). The method comprises detecting the presence of the above protein in food by the monoclonal antibody. <P>COPYRIGHT: (C)2007,JPO&INPIT

Description

本発明は、小麦由来非特異的脂質輸送蛋白質に対する抗体に関する。更に、本発明は、食品若しくは調味料中の小麦アレルゲンの検査方法及び当該方法への前記抗体の使用に関する。   The present invention relates to an antibody against a wheat-derived nonspecific lipid transport protein. Furthermore, this invention relates to the test | inspection method of the wheat allergen in a foodstuff or a seasoning, and use of the said antibody for the said method.

食品の安全性への関心が、近年、益々高まっている。特に食物アレルギーは、重度の場合、重篤な全身性アナフェラキシー（咽頭の水腫、重度の喘息或いは低血圧等）を引き起こし、時には致命的な障害をもたらす場合もあるため、これらの食物アレルギー症状を有する消費者のみならず食品製造業者・監督官庁にとっても食品の安全性を保全する立場から極めて重要な課題である。現在、当該食物アレルギーによる症状の発生を防止する最も有効な方法は、それらの食物アレルギー発症履歴を有するか潜在的に有する対象者がその食物アレルゲンと接触することを防止するものであるが、厚生労働省は、当該観点から「アレルギー物質を含む食品については、特定のアレルギー体質を持つ方の健康危害の発生を防止する観点から、食物アレルギーを引き起こすことが明らかになった食品のうち、特に発症数、重篤度から勘案して表示する必要性の高い小麦、そば、卵、乳及び落花生の５品目（以下「特定原材料」という。）を食品衛生法施行規則（昭和２３年厚生省令第２３号。以下「規則」という。）別表第５の２に掲げ、これらを含む加工食品については、規則第５条に定めるところにより当該特定原材料を含む旨を記載しなければならない」とし、当該５品目を含む食品に対して、それら原材料を含む旨の表示を製造者に義務づけている。   Interest in food safety has increased in recent years. In particular, food allergies can cause severe systemic anaferaxis (such as pharyngeal edema, severe asthma or hypotension) in severe cases, and sometimes fatal disorders. From the standpoint of preserving food safety, it is an extremely important issue not only for consumers who have food, but also for food manufacturers and regulatory authorities. Currently, the most effective method for preventing the occurrence of symptoms due to the food allergy is to prevent subjects who have or have a history of developing food allergies from coming into contact with the food allergen. The Ministry of Labor stated that, from the viewpoint of “foods that contain allergic substances, among foods that have been found to cause food allergies from the viewpoint of preventing the occurrence of health hazards for persons with a specific allergic constitution, The 5 items of wheat, buckwheat, egg, milk and peanuts (hereinafter referred to as “specific raw materials”), which are highly required to be considered in view of their severity, are enforced by the Food Sanitation Law Enforcement Regulations (Ministry of Health and Welfare Ordinance No. 23 of 1948) (Hereinafter referred to as “Rules”.) For processed foods listed in Schedule 5-2 and containing them, the fact that the specified raw materials are included as provided for in Article 5 of the Rules And mounting must "for foods containing the 5 items, obliges an indication containing them raw material manufacturer.

また、消費者の商品選択の幅を不当に狭めることのないよう、当該表示においては、「入っているかもしれません。」「入っている恐れがあります。」等の可能性表示を禁止し、製品への「特定原材料」混入の監視・検査義務を明確にしている。更に、食品を生産する際に、原材料としては使用していないにも関わらず、特定原材料等がごく微量混入（コンタミネーション）してしまう場合にも当該混入が必ず起こり得るならば表示を必要とし、消費者の高度の安全を確保する立場から原則として１０μｇ／ｇ以上程度の混入についても表示するよう求めている。従って、食品製造業者は、上記施行規則を遵守するのは勿論のこと、更なる消費者の安全と適切な商品選択の機会を提供すべく、自らの製品について十分な監視と検査を行うことが望まれている。   In addition, in order to avoid unduly narrowing the range of consumer product choices, it is prohibited to display possibility indications such as “may be included” or “may be included”. Clarifies the obligation to monitor and inspect the contamination of “specified raw materials” into products. In addition, when food is produced, even if it is not used as a raw material, even if a specific raw material, etc. is mixed in a very small amount (contamination), a label is required if such contamination can occur. From the standpoint of ensuring a high level of safety for consumers, as a general rule, it is also required to display contamination of about 10 μg / g or more. Therefore, food manufacturers should not only comply with the above enforcement regulations, but also monitor and inspect their products sufficiently to provide further consumer safety and appropriate product selection opportunities. It is desired.

ここで、小麦、そば、卵、乳及び落花生の５品目からなる原材料といっても、その組成や形態は勿論のこと、当該原材料を用いる食品類の製造方法は一様ではない。小麦を例にとると、酵母や麹菌等により発酵された調味料等も当該原材料に包含されるし、更に小麦自体が原材料として用いられたとしても、やはりそれも加熱や発酵といった、引き続く食品製造の段階で大幅に変性させられることのほうが寧ろ一般的であるから、完成した食品中に含まれる小麦原材料の存在を少なくとも１０μｇ／ｇの感度で検査するのは容易でない。   Here, even if it says the raw material which consists of five items of wheat, buckwheat, an egg, milk, and peanut, the composition and form as well as the manufacturing method of foods using the raw material are not uniform. Taking wheat as an example, seasonings fermented with yeast, koji molds, etc. are also included in the raw materials, and even if wheat itself is used as a raw material, it is still a continuous food manufacturing such as heating and fermentation Since it is more common to be greatly denatured at this stage, it is not easy to check the presence of wheat raw materials contained in the finished food with a sensitivity of at least 10 μg / g.

このような高度の検査を達成する検査方法としてはＰＣＲを用いた特異的遺伝子の増幅に基づく検査法があげられるが、当該方法は、現在までのところ、熟練した技術と高い費用や比較的長い検査時間を要し、製造現場での迅速且つ簡便な検査という観点から不利益がある。   As a test method for achieving such a high level test, a test method based on amplification of a specific gene using PCR can be mentioned. However, the method has so far been highly skilled and expensive and relatively long. Inspection time is required, which is disadvantageous from the viewpoint of quick and simple inspection at the manufacturing site.

当該検査を実行する際の他の有効な選択肢は、上記食品原材料に由来する成分に対する抗体を利用した免疫学的検査方法である。特に、免疫学的な検査方法はＥＬＩＳＡ法等として広く普及しており、その操作も高度の熟練を必要とせず、精度のよい結果も短時間で得られるので、当該検査の目的には好適である。しかしながら、上記のように、発酵等の引き続く食品製造の段階で大幅に変性させられることのほうが一般的な小麦においては、該免疫学的検査に用いる抗体を惹起する抗原として、いかなる蛋白質等を選択するかが極めて重要な問題となることは論を待たない。つまり、小麦において、引き続く発酵処理等で分解されてしまうにも拘わらず、単に含有量が高い等の理由から安易に特定の蛋白質を選択し、それを抗原として抗体を得たとしても、実際の測定に際しては、当該蛋白質がもはや発酵・加工後の食品中に十分に残存していないこともあり、しかして当該蛋白質に対する抗体での検査は陰性となる場合もあり得、一方で、特定のアレルギー患者に対するアレルゲンとなりうる他の蛋白質等は依然として抗原性を保持しているような場合には、当該検査の目的自体が没却されかねない。言い換えれば、そのような食品の発酵乃至加工処理中に減少してしまうような蛋白質は、食品中への小麦原材料の混入等を検査する指標としては不都合な場合があるのである。   Another effective option when performing the test is an immunological test method using an antibody against a component derived from the food raw material. In particular, an immunological test method is widely used as an ELISA method, and its operation does not require a high level of skill and an accurate result can be obtained in a short time. Therefore, it is suitable for the purpose of the test. is there. However, as described above, in wheat, which is generally denatured at the stage of subsequent food production such as fermentation, any protein or the like is selected as an antigen that elicits an antibody used in the immunological test. There is no doubt that it will be a very important issue. In other words, even if wheat is decomposed by subsequent fermentation treatment or the like, even if a specific protein is easily selected simply because of its high content and an antibody is obtained using it as an antigen, At the time of measurement, the protein may no longer remain in the fermented and processed food, and the antibody test against the protein may be negative. If other proteins that can be allergens for patients still retain antigenicity, the purpose of the test itself may be lost. In other words, such a protein that decreases during fermentation or processing of food may be inconvenient as an index for examining the mixing of wheat raw materials into the food.

更に、麦類は主要穀物であり、小麦の他、大麦、ライ麦等、極めて近縁の食用原材料を提供する。然るに、そのような近縁種間の交差反応に基づく誤判定は、例えば、本来、小麦に対してのみアレルギー症状を示す消費者の適切な商品選択の機会が損なわれ、また製造者にあっては、誤判定による検査の信頼性の低下と、他の長時間を要するような方法の採用といった損失を招き得るのである。   In addition, wheat is the main cereal and provides very close edible ingredients such as barley and rye in addition to wheat. However, a misjudgment based on such cross-reactions between closely related species, for example, is inherently impairing the opportunity for consumers to select appropriate products that are allergic only to wheat, and for manufacturers. This can lead to a loss of inspection reliability due to erroneous determination and the use of a method that requires another long time.

よって、小麦原材料を、発酵及び／又は加熱等の加工処理による変性後においてさえも極めて鋭敏且つ正確に検査でき、更に大麦等の近縁種との間で誤判定を示さない方法の確立が望まれていた。   Therefore, it is hoped that a wheat raw material can be inspected extremely sensitively and accurately even after denaturation by processing such as fermentation and / or heating, and that no misjudgment with related species such as barley is shown. It was rare.

同様な観点から、本発明者の一部の者は、先に大麦において上記の要件を満足するようなポリクローナル抗体の創出を報告している（非特許文献１）。当該抗体は、大麦由来の非特異的脂質輸送蛋白質（ｎｏｎ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ Ｌｉｐｉｄ Ｔｒａｎｓｆｅｒ Ｐｒｏｔｅｉｎ：以下、「ＬＴＰ」と略すことがある。）に対して惹起されたものであり、該抗体は、ビール製造時の発酵処理後においても当該大麦由来ＬＴＰ（以下、「大麦ＬＴＰ」と略すことがある。小麦由来ＬＴＰについても同じ。）を感度よく検出することが示され、また小麦等他の植物由来のＬＴＰとの交差反応も、所与の検査の許容範囲内であることが確認された。   From the same viewpoint, some of the inventors have previously reported the creation of polyclonal antibodies that satisfy the above requirements in barley (Non-patent Document 1). The antibody was raised against a non-specific lipid transfer protein (hereinafter sometimes abbreviated as “LTP”) derived from barley. The barley-derived LTP (hereinafter referred to as “barley LTP” may be abbreviated as well. The same applies to the wheat-derived LTP) is detected with high sensitivity even after the fermentation treatment, and LTP derived from other plants such as wheat. Was also confirmed to be within the tolerance of the given test.

しかしながら、上記食品衛生法施行規則における特定５品目にも掲げられる一方で、食品原材料としては極めて多様な形態で且つ一般的に流通し、従って、大麦等と比べても、時としては製造工程中に予期せずして混入する事態すら想定し得る小麦原材料については、それを更に高感度で検出することが望まれていた。
成田宏史等：「大麦アレルゲン・ＬＴＰの定量化」、日本食品科学工学会第５１回大会講演集第９２頁（２００４年） However, while it is listed in the 5 items specified in the Enforcement Regulations of the Food Sanitation Law, it is generally distributed as a food raw material in a wide variety of forms. Therefore, even compared to barley etc., it is sometimes in the manufacturing process. It has been desired to detect wheat raw materials with even higher sensitivity with regard to wheat raw materials that can be expected to be mixed in unexpectedly.
Hiroshi Narita et al .: “Quantification of barley allergens and LTP”, Proc. Of the 51st Annual Meeting of the Japan Society for Food Science and Technology, page 92 (2004)

従って、本発明は、発酵及び／又は加熱等の加工処理による変性後においてさえも極めて鋭敏且つ正確に小麦原材料の存在を検出でき、更に大麦等の近縁種との間で誤判定を示さない、当該原材料の検査方法を提供することを目的とする。とりわけ、食品原材料としては一般的であるにも拘わらず、食品アレルゲンとしていっそうの配慮が要求される小麦についての、極めて高感度な検査方法を提供することは意義深い。   Therefore, the present invention can detect the presence of wheat raw materials extremely sensitively and accurately even after denaturation by processing such as fermentation and / or heating, and does not show misjudgment with related species such as barley. An object of the present invention is to provide an inspection method for the raw materials. In particular, it is significant to provide an extremely sensitive test method for wheat, which is generally used as a food raw material, but requires further consideration as a food allergen.

小麦ＬＴＰに対して極めて特異的且つ高親和性である特定のモノクローナル抗体が得られた。当該抗小麦ＬＴＰモノクローナル抗体は、該ＬＴＰ蛋白質をラットに対する免疫原として使用して調製されたポリクローナル抗体に比べても、少なくとも１００００倍以上高い感度を有していた。また、サンドイッチＥＬＩＳＡ測定時において、当該モノクローナル抗体の小麦由来ＬＴＰに対する感度は、大麦由来のそれに対するそれの１００万倍高く、両者に対する当該抗小麦ＬＴＰモノクローナル抗体の交差反応性は、実質的に無視できるものであった。   Certain monoclonal antibodies were obtained that were very specific and high affinity for wheat LTP. The anti-wheat LTP monoclonal antibody was at least 10,000 times more sensitive than a polyclonal antibody prepared using the LTP protein as an immunogen for rats. Moreover, at the time of sandwich ELISA measurement, the sensitivity of the monoclonal antibody to wheat-derived LTP is one million times higher than that of barley-derived LTP, and the cross-reactivity of the anti-wheat LTP monoclonal antibody to both is substantially negligible. It was a thing.

更には、当該モノクローナル抗体の検出限界は、非特許文献１における大麦ＬＴＰ測定系で確認されたラット抗大麦ＬＴＰポリクローナル抗体の、当該大麦抗原に対する検出限界である０．３ｎｇ/ｍｌに比べても、少なくとも１００倍程度低く、より鋭敏なものであった。   Furthermore, the detection limit of the monoclonal antibody is higher than the detection limit of 0.3 ng / ml of the rat anti-barley LTP polyclonal antibody confirmed by the barley LTP measurement system in Non-Patent Document 1, which is the detection limit for the barley antigen. It was at least 100 times lower and more sensitive.

従って、本発明の第一の局面では、
（１）受託番号がＦＥＲＭ Ｐ−２０６８７又はＦＥＲＭ Ｐ−２０６８８であるハイブリドーマにより生産される、小麦由来非特異的脂質輸送蛋白質に対するモノクローナル抗体（抗小麦ＬＴＰモノクローナル抗体）が提供される。 Therefore, in the first aspect of the present invention,
(1) A monoclonal antibody (anti-wheat LTP monoclonal antibody) against a wheat-derived non-specific lipid transport protein produced by a hybridoma having a deposit number of FERM P-20687 or FERM P-20688 is provided.

上記抗体を用いることで、醤油やビール等の、発酵或いは発酵及び／又は加熱等の処理がなされた食品類に存在する小麦ＬＴＰが感度よく検出されることが示され、これは、当該抗体を用いる検査が、従来の小麦主要蛋白質の１つであるグリアジンに対する抗体でも検査が困難であったような特定の食品においても好適に適用できることを示している。とりわけ、現実的な食品アレルゲン表示においては、個々のアレルゲン蛋白質を網羅してそれらを個別に検査するのではなく、上記グリアジンのような代表的蛋白質の存在を「指標」として、食品への小麦原材料自体の使用・混入を一括的に検査・表示することが一般的である。その際、いっそう高感度の検出が必要な当該アレルゲン表示において、検査の際に抽出される溶液中に存在する含有量的には、高々、抽出前の小麦総蛋白質の約０．６重量％程度と見積もられる小麦ＬＴＰのみを指標成分として利用するためには、如何にそれが発酵や加熱に対して安定であったとしても、その十分な検出感度が確保されなければならないのであり、しかして、小麦ＬＴＰに対して極めて特異的且つ高親和性である上記特定のモノクローナル抗体の当該用途での意義は大きい。   By using the above-mentioned antibody, it is shown that wheat LTP present in foods treated with fermentation or fermentation and / or heating such as soy sauce and beer can be detected with high sensitivity. It shows that the test used can be suitably applied to a specific food that is difficult to test even with an antibody against gliadin, which is one of the main wheat proteins. In particular, in the real food allergen labeling, rather than covering individual allergen proteins and examining them individually, the presence of a representative protein such as gliadin as an “indicator” is used as an ingredient in wheat for food. It is common to inspect and display the use / mixing of itself. At that time, in the allergen display that requires more sensitive detection, the content present in the solution extracted at the time of inspection is at most about 0.6% by weight of the total wheat protein before extraction. In order to use only the wheat LTP estimated as an indicator component, no matter how stable it is for fermentation or heating, its sufficient detection sensitivity must be ensured, The specific monoclonal antibody having a very specific and high affinity for wheat LTP has great significance in this application.

従って、本発明の第二の局面では、
（２）発酵及び／又は加工食品中の小麦アレルゲンの検査方法であって、上記（１）のモノクローナル抗体により前記食品中の小麦由来非特異的脂質輸送蛋白質の存在を検出することを特徴とする方法が提供される。 Therefore, in the second aspect of the present invention,
(2) A method for examining wheat allergens in fermented and / or processed foods, characterized by detecting the presence of wheat-derived non-specific lipid transport proteins in the foods using the monoclonal antibody of (1) above. A method is provided.

上記検査においては、使用すべき本発明に係る抗体を含んだキットを用いることが簡便である。従って、本発明の第３においては、
（３）上記（１）のモノクローナル抗体を含む食品アレルゲン検査用キットが提供される。 In the above examination, it is convenient to use a kit containing the antibody according to the present invention to be used. Therefore, in the third aspect of the present invention,
(3) A food allergen test kit comprising the monoclonal antibody of (1) above is provided.

本発明においては、発酵及び／又は加工食品中の小麦アレルゲンの存在を、小麦原材料の使用或いは混入として検査する。しかして、本明細書で用いる「小麦アレルゲン」の用語は、小麦に対する食物アレルギー患者がアレルゲンとして認識するあらゆる小麦由来の成分を意味する。最も一般的な当該アレルゲンとしては、小麦の主要蛋白質であるグロブリン、アルブミン、グリアジン或いはグルテニンを例示することができ、また本発明の小麦ＬＴＰを認識する患者も存在し得るし、前記蛋白質以外の成分がアレルゲンとなりうる場合もある。   In the present invention, the presence of wheat allergens in fermented and / or processed foods is examined as the use or contamination of wheat raw materials. Thus, as used herein, the term “wheat allergen” means any wheat-derived component that food allergic patients to wheat recognize as an allergen. Examples of the most common allergen include globulin, albumin, gliadin or glutenin, which are the main proteins of wheat, and there may be patients who recognize the wheat LTP of the present invention. Can be an allergen.

ここで注意を要する点は、個別の食物アレルギー患者が認識するアレルゲンは必ずしも一様でなく、ある患者はグロブリンのみを単独のアレルゲンとして認識し得るし、またある患者はアルブミン、グリアジン、グルテニン又はＬＴＰ或いはそれらのうちの複数をアレルゲンとして認識する場合も想定されるということである。加えて、そのように具体的なアレルゲン蛋白質が特定されている患者はまだしも、それが十分には特定されていない患者も多い。更には、必ずしもこれらのアレルゲンが一様に小麦原材料を使用した食品内に存在するわけではなく、原材料の処理や食品製造工程の如何によっては、グロブリンが既に除かれていたりグリアジンが殆ど分解されていることも想定される。そうすると、このようなアレルギー現象や食品製造工程の多様性、そして広く消費者一般を対象とする食品流通の特性を考慮すれば、寧ろ、特定のアレルゲンを個別に検出するよりは、所与の食品への小麦原材料の使用・混入として小麦アレルゲンの存在を一括的に検査・表示する方が合理的であり且つ安全を期す上でも好適であると考えられ、従って、本発明において「小麦アレルゲンの検査」というときには、個々の小麦アレルゲン蛋白質の検出ではなく、食品内における小麦原材料の存在を検査することを意味するのである。   It should be noted that the allergens recognized by individual food allergic patients are not necessarily uniform, some patients may recognize only globulin as a single allergen, and some patients may have albumin, gliadin, glutenin or LTP. Or it is assumed that a plurality of them are recognized as allergens. In addition, there are still many patients for whom specific allergen proteins have been identified as such, but not enough. Furthermore, these allergens do not necessarily exist uniformly in foods using wheat raw materials. Depending on the processing of raw materials and the food production process, globulin has already been removed or gliadin has been almost completely degraded. It is also assumed that Then, given such allergic phenomena, the diversity of food manufacturing processes, and the characteristics of food distribution that is widely targeted at consumers in general, rather than detecting specific allergens individually, a given food It is considered that it is more reasonable and more suitable for safety to collectively check and display the presence of wheat allergens as the use / contamination of wheat raw materials. Therefore, in the present invention, “wheat allergen inspection” "Is not the detection of individual wheat allergen proteins, but the examination of the presence of wheat raw materials in food.

ここで更に注意を要するのは、一概に小麦原材料といっても、食物アレルゲンとしての観点からは、小麦の穀粒や、麦芽、更には全粒粉や製粉等の一般的な原材料のほか、それが更に高度に加工された形態も含まれなければならないという点である。例えば、味噌や醤油等の調味料は、それ自体で最終製品ではあるが、それが更に他の食品への風味付け等において原材料的に用いられているし、ビール等の酒類もまた同様に、例えばエキスや香味料等として用いられており、従って、本明細書における「食品」には、麺類、焼成食品のみならず、味噌や醤油等の調味料類やビール等の酒類も包含される一方で、それらの調味料類や酒類も「小麦原材料」に含められる場合がある。   What should be further noted here is that, in general, wheat raw materials, but from the viewpoint of food allergens, in addition to common raw materials such as wheat kernels, malt, and whole grains and milling, In addition, highly processed forms must also be included. For example, seasonings such as miso and soy sauce are end products by themselves, but they are further used as raw materials in flavoring other foods, and alcoholic beverages such as beer are also For example, it is used as an extract, a flavoring agent, etc. Therefore, the “food” in this specification includes not only noodles and baked foods, but also seasonings such as miso and soy sauce and alcoholic beverages such as beer. Such seasonings and liquors may also be included in the “wheat raw material”.

しかして、そのように多様な小麦原材料の使用・混入を検査し、消費者に対して表示するためには、小麦に固有の指標成分を定めてその存在を検査するのが最も簡便である。しかしながら、上記のとおり、食品原材料の組成や形態、食品製造方法は多様であり、特に小麦おいては当該原材料自体が発酵や酵素処理、加熱等の工程により著しく変性されることのほうが一般的であるから、その指標成分としては、発酵や酵素処理、或いは加熱等の処理において著しく変性若しくは減少するようなものを選択すべきではなく、例えば、醤油やビール等の発酵工程を経る食品における小麦原材料の指標成分は、少なくとも酵母や麹菌等或いは関連する蛋白質分解酵素等に対して耐性であるべきである。   Thus, in order to inspect the use / mixing of such various wheat raw materials and display it to the consumer, it is easiest to determine the index component unique to wheat and inspect its presence. However, as described above, the composition and form of food raw materials and food production methods are diverse. In particular, in wheat, it is more common that the raw materials themselves are significantly modified by processes such as fermentation, enzyme treatment, and heating. Therefore, the indicator component should not be selected so as to be significantly denatured or reduced in the treatment such as fermentation, enzyme treatment, or heating. For example, wheat raw materials in foods that undergo fermentation processes such as soy sauce and beer The indicator component should be resistant to at least yeast, Neisseria gonorrhoeae, etc. or related proteolytic enzymes.

以上に鑑みて、本発明においては、食品への小麦原材料の使用・混入を検査するにあたり、上記の指標成分として小麦ＬＴＰに着目した。ここで、ＬＴＰとは、アミラーゼ／プロテアーゼ・インヒビター・ファミリーに属するとの報告もあるし、また最近では、クチン（クチクラの主成分；脂肪酸の重合物質）の分泌・蓄積に関連する植物の防御蛋白質（ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ ｒｅｌａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ）の１つであるＰＲ−１４としても知られており、植物界に広く分布している。そしてＬＴＰそれ自体も汎アレルゲンとして問題となっている蛋白質である。より詳細に、当該蛋白質は、主に植物組織の表層細胞に分布して脂質膜を形成し、且つ抗カビ、抗微生物能を有する、小胞体から膜組織へリン脂質を輸送する生体防御蛋白質の一種であり、分子量約９ｋＤａで４対のＳ−Ｓ結合があり、熱や消化酵素に対して安定性があることが報告されている。このうち、小麦ＬＴＰについては、そのアミノ酸配列も既に明らかとなっている（ＮＣＢＩアクセッション番号Ｐ２４２９６及びＳ．Ｔａｓｓｉｎ，Ｗ．Ｆ．Ｂｒｏｅｋａｅｒｔ，Ｄ．Ｍａｒｉｏｎ，Ｄ．Ｐ．Ａｃｌａｎｄ，Ｍ．Ｐｔａｋ，Ｆ．Ｖｏｖｅｌｌｅ，Ｐ．Ｓｏｄａｎｏ；Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｖｏｌ．３７，ｐｐ．３６２３−３６３７，１９９８）。   In view of the above, in the present invention, in examining the use / mixing of wheat raw materials in foods, attention was paid to wheat LTP as the index component. Here, there are reports that LTP belongs to the amylase / protease inhibitor family, and recently, plant defense proteins related to the secretion and accumulation of cutin (the main component of cuticle; a polymer of fatty acids). It is also known as PR-14, one of the pathogenetic related proteins, and is widely distributed in the plant kingdom. And LTP itself is a protein that is a problem as a pan-allergen. More specifically, the protein is a biological defense protein that transports phospholipids from the endoplasmic reticulum to the membrane tissue, which is mainly distributed in the surface cells of the plant tissue to form a lipid membrane and has antifungal and antimicrobial properties. It is reported that it has a molecular weight of about 9 kDa, 4 pairs of S—S bonds, and is stable against heat and digestive enzymes. Among them, the amino acid sequence of wheat LTP has already been clarified (NCBI accession number P24296 and S. Tassin, WF Broekaert, D. Marion, D. P. Acland, M. Ptak, F. Vovelle, P. Sodano; Biochemistry, Vol. 37, pp. 3623-3637, 1998).

しかしながら、本発明における小麦ＬＴＰの検出は、該蛋白質に対して極めて特異的且つ高親和性である特定のモノクローナル抗体の使用により更に特徴付けられる。つまり、これまでに繰り返し記載した食品原材料の組成や形態及び食品製造方法の多様性にも拘わらず、いっそう高感度の検出が求められる食品アレルゲン表示において、当該原材料の主要成分であるようなグロブリン、アルブミン、グリアジン或いはグルテニンを検出するならまだしも、含有量的には指標成分として必ずしも十分とは言えない少数成分であるＬＴＰを利用するためには、その十分な検出感度が確保されなければ、如何にそれが発酵や加熱に対して安定であったとしても、なお完全ということはできないのである。   However, the detection of wheat LTP in the present invention is further characterized by the use of specific monoclonal antibodies that are very specific and high affinity for the protein. In other words, in spite of the variety of composition and form of food raw materials and food manufacturing methods that have been repeatedly described so far, in food allergen indications that require higher sensitivity detection, globulins that are the main components of the raw materials, If albumin, gliadin, or glutenin is detected, LTP, which is a minor component that is not necessarily sufficient as an indicator component in terms of content, can be used unless its sufficient detection sensitivity is secured. Even if it is stable to fermentation and heating, it cannot still be perfect.

従って、上記のとおり、本発明の小麦ＬＴＰの検出は、そのような高感度の検出を可能ならしめる特定の抗小麦ＬＴＰモノクローナル抗体の使用により特徴付けられるのであり、より特定的には、受託番号が「ＦＥＲＭ Ｐ−２０６８７」及び「ＦＥＲＭ Ｐ−２０６８８」として独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに寄託されたハイブリドーマにより生産され、夫々、以下に「５Ｇ」及び「７Ｅ」として呼称される２種類のモノクローナル抗体の使用により特定されるのである。この５Ｇ及び７Ｅは、小麦ＬＴＰ蛋白質をラットに対する免疫原として使用して調製されたポリクローナル抗体に比べても、少なくとも１００００倍以上高い感度を有する。また、サンドイッチＥＬＩＳＡ測定時において、当該モノクローナル抗体の小麦由来ＬＴＰに対する感度は、大麦由来のそれに対するものの１００万倍高く、従って、両者に対する５Ｇ及び７Ｅの交差反応性は、実質的に無視できるものであった。更には、５Ｇ及び７Ｅの検出限界は、前掲の非特許文献１における大麦ＬＴＰ測定系で確認されたラット抗大麦ＬＴＰポリクローナル抗体の、当該大麦抗原に対する検出限界である０．３ｎｇ/ｍｌに比べても、少なくとも１００倍程度低く、極めて鋭敏なものであった。しかして、それら特定の抗体の使用により、多様な食品での小麦アレルゲン検査における所与の目的が達成されることが確認されたのである。   Thus, as noted above, the detection of wheat LTP of the present invention is characterized by the use of a specific anti-wheat LTP monoclonal antibody that enables such sensitive detection, and more specifically, accession number. Are produced by hybridomas deposited at the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology Patent Biological Depositary as “FERM P-20687” and “FERM P-20688”, and are hereinafter referred to as “5G” and “7E”, respectively. It is specified by the use of two types of monoclonal antibodies. These 5G and 7E are at least 10,000 times more sensitive than polyclonal antibodies prepared using wheat LTP protein as an immunogen for rats. Moreover, at the time of sandwich ELISA measurement, the sensitivity of the monoclonal antibody to wheat-derived LTP is 1 million times higher than that of barley-derived LTP. Therefore, the cross-reactivity of 5G and 7E to both is substantially negligible. there were. Furthermore, the detection limits of 5G and 7E are higher than the detection limit of 0.3 ng / ml of the rat anti-barley LTP polyclonal antibody confirmed by the barley LTP measurement system in Non-Patent Document 1 described above, which is the detection limit for the barley antigen. Was at least 100 times lower and extremely sensitive. Thus, it has been confirmed that the use of these specific antibodies achieves a given purpose in wheat allergen testing in a variety of foods.

上記抗体を用いた小麦アレルゲン検査では、一般的に用いられるいずれの免疫学的手法をも用い得ることが容易に理解されよう。例えば、当該検査の非限定的な例としては、いわゆる競合アッセイ法やサンドイッチアッセイ法をあげることができる。当該サンドイッチアッセイの一例では、本発明の５Ｇ又は７Ｅのいずれか一方がウェル底面などの固相のコーティングに用いられてキャプチャー側抗体を提供し、同じ抗体或いは当該キャプチャー側抗体とは別のもう一方の抗体が放射性物質や着色粒子又は酵素で標識されて検出側抗体を提供する。   It will be readily understood that any commonly used immunological technique can be used in a wheat allergen test using the above antibodies. For example, a non-limiting example of the test can be a so-called competitive assay method or sandwich assay method. In one example of such a sandwich assay, either 5G or 7E of the present invention is used to coat a solid phase such as the bottom of a well to provide a capture antibody and the other antibody separate from the capture antibody. The antibody is labeled with a radioactive substance, colored particles or an enzyme to provide a detection-side antibody.

特に好ましいサンドイッチアッセイにおいては、後者の態様、すなわち、５Ｇをキャプチャー側抗体とした場合には７Ｅを検出側抗体に利用し、或いは７Ｅをキャプチャー側抗体とした場合には５Ｇを検出側抗体に利用する。そして、このような２種の抗体双方の使用はいっそう高い検出感度を与え得る点で有利である。   In a particularly preferred sandwich assay, the latter embodiment, ie, when 5G is used as the capture antibody, 7E is used as the detection antibody, or when 7E is used as the capture antibody, 5G is used as the detection antibody. To do. The use of both of these two types of antibodies is advantageous in that it can provide higher detection sensitivity.

次いで、上記のようなキャプチャー側抗体を有するウェル内に検査すべき食品ないしその抽出／希釈液が添加され、所定時間インキュベートされた後、該希釈液等をウェルから取り除き、好適な緩衝液等によりウェル内を充分に洗浄後、検出側の抗体がウェルに添加される。所定のインキュベーションの後、ウェル内を洗浄し、キャプチャー側抗体−小麦ＬＴＰ抗原−検出側抗体複合体の生成を検出する。検出は、検出側抗体に標識された標識物質の性質に依存し、放射性標識であれば放射線量が、着色粒子標識であれば発色量や吸光度が、また酵素標識（ＥＬＩＳＡ法）であれば、更に適当な基質をウェルに添加し、所定のインキュベーション後の吸光度が検出される。なお、上記ＥＬＩＳＡ法で酵素標識に用いる酵素に特に制限はなく、例えば西洋ワサビペルオキシダーゼやアルカリ性フォスファターゼ等の酵素が有利に使用される。西洋ワサビペルオキシダーゼで標識する場合は、当該酵素の基質として３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン等がその基質として利用可能である。アルカリ性フォスファターゼを使用する場合は、基質としてｐ−ニトロフェニル燐酸が基質としてあげられる。   Next, the food to be examined or its extraction / dilution solution is added to the well having the capture side antibody as described above, and after incubation for a predetermined time, the dilution solution is removed from the well, and a suitable buffer solution or the like is used. After thoroughly washing the inside of the well, the antibody on the detection side is added to the well. After predetermined incubation, the inside of the well is washed, and the formation of the capture side antibody-wheat LTP antigen-detection side antibody complex is detected. Detection depends on the nature of the labeling substance labeled on the detection-side antibody. If radioactive labeling, the radiation dose is colored, if colored particle labeling, the color development amount or absorbance, and if it is enzyme labeling (ELISA method), Further, an appropriate substrate is added to the well, and the absorbance after a predetermined incubation is detected. In addition, there is no restriction | limiting in particular in the enzyme used for an enzyme label by the said ELISA method, For example, enzymes, such as a horseradish peroxidase and alkaline phosphatase, are used advantageously. When labeling with horseradish peroxidase, 3,3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine or the like can be used as the substrate of the enzyme. When alkaline phosphatase is used, p-nitrophenyl phosphate is exemplified as a substrate.

なお、本発明の抗体として、上記５Ｇ及び７Ｅの他、当該抗体を酵素消化処理して得られるような該抗体の反応性フラグメントも用いることもできる。当該抗体フラグメントの例には、Ｆａｂフラグメント、Ｆａｂ’フラグメント、Ｆ（ａｂ’）_２フラグメント、Ｆ（ｖ）フラグメント、Ｈ鎖モノマー又はダイマー、Ｌ鎖モノマー又はダイマー、１個のＨ鎖及び１個のＬ鎖からなるダイマー等が含まれる。該フラグメントは、例えばペプシンやパパイン等のプロテアーゼにより完全な抗体を消化するか、消化後、必要に応じて還元剤で処理することにより得ることができる。Ｈ鎖及びＬ鎖モノマーは、完全な抗体をジチオスレイトール等の還元剤で処理した後、精製した鎖状体を分離することにより得ることもできる。 As the antibody of the present invention, in addition to the above 5G and 7E, a reactive fragment of the antibody obtained by enzymatic digestion of the antibody can also be used. Examples of such antibody fragments include Fab fragments, Fab ′ fragments, F (ab ′) ₂ fragments, F (v) fragments, H chain monomers or dimers, L chain monomers or dimers, one H chain and one Examples include dimers composed of L chains. The fragment can be obtained, for example, by digesting a complete antibody with a protease such as pepsin or papain, or by treating with a reducing agent as necessary after digestion. The H chain and L chain monomers can also be obtained by treating a complete antibody with a reducing agent such as dithiothreitol and then separating the purified chain.

本発明の小麦アレルゲン検査方法は、本発明の５Ｇ及び／又は７Ｅを含むキットを用いて容易に実施することができる。サンドイッチ法に基づくＥＬＩＳＡ用キットの例では、キャプチャー用としての本発明の抗体からなる試薬と、検出用としての酵素標識した本発明の抗体からなる試薬及び適切な酵素基質がキットに含まれ得る。洗浄用の緩衝液や、ウェルへの非特異的吸着を抑制するブロッキング用試薬等が更に含まれてもよい。そのようなキットの構成及びその製造方法は当業者にとって公知であろう。   The wheat allergen test method of the present invention can be easily carried out using a kit containing 5G and / or 7E of the present invention. In an example of an ELISA kit based on the sandwich method, a reagent comprising the antibody of the present invention for capture, a reagent comprising the enzyme-labeled antibody of the present invention for detection, and an appropriate enzyme substrate may be included in the kit. A buffer for washing, a blocking reagent that suppresses nonspecific adsorption to the well, and the like may further be included. The construction of such a kit and its manufacturing method will be known to those skilled in the art.

更に説明せずとも、これまでの説明を与えられた当業者は、本発明を充分に活用し得る。以下、説明のみの目的で実施例を与える。   Without further explanation, those skilled in the art given the above explanation can make full use of the present invention. The following examples are given for illustrative purposes only.

小麦ＬＴＰの精製方法
（１）粗精製
小麦全粒粉（日清フーズ製粉製）１５０ｇに５倍量（７５０ｍＬ）の蒸留水を加え、マグネチックスターラー（ＳＷ−４００Ｎ−１、ＮＩＳＳＩＮ社製）で攪拌しながら４℃で一晩（１５時間）抽出した。溶液を遠心管に移し、１０,０００ｘＧ、４℃、２０分間の条件で遠心分離（ＣＦ１５Ｒ、日立工機社製）を行った。上清を別の容器に移し取り、メスシリンダーで液量を測定したところ、５６５ｍＬの上清を得た。 Purification method of wheat LTP (1) Crude refining Five-fold amount (750 mL) of distilled water is added to 150 g of whole wheat flour (Nisshin Foods Flour Mills) and stirred with a magnetic stirrer (SW-400N-1, manufactured by NISSIN). Extracted overnight (15 hours) at 4 ° C. The solution was transferred to a centrifuge tube and centrifuged (CF15R, manufactured by Hitachi Koki Co., Ltd.) under conditions of 10,000 × G, 4 ° C., and 20 minutes. The supernatant was transferred to another container and the amount of the liquid was measured with a graduated cylinder to obtain 565 mL of the supernatant.

その上清に４０％飽和硫酸アンモニウム濃度になるように、硫酸アンモニウム（ナカライテスク社製）を１３７ｇ加え、４℃で一時間マグネチックスターラー（ＨＷ−１５、ＫＯＩＫＥ社製）で攪拌し、４℃で一晩放置した。溶液を遠心管に移し、１０,０００ｘＧ、４℃、２０分間の条件で遠心分離を行った。上清を別の容器に移し取り、メスシリンダーで液量を測定したところ、６０８ｍＬの上清を得た。その上清が８０％飽和硫酸アンモニウム濃度になるように、硫酸アンモニウム（ナカライテスク社製）を１７３ｇ加え、４℃で一晩マグネチックスターラー（ＳＷ−４００Ｎ−１、ＮＩＳＳＩＮ社製）で攪拌し、４℃で一晩放置した。溶液を遠心管に移し、１０,０００ｘＧ、４℃、２０分間の条件で遠心分離を行った。   137 g of ammonium sulfate (manufactured by Nacalai Tesque) was added to the supernatant so as to obtain a 40% saturated ammonium sulfate concentration, and the mixture was stirred with a magnetic stirrer (HW-15, manufactured by KOIKE) at 4 ° C. for 1 hour. Left overnight. The solution was transferred to a centrifuge tube and centrifuged at 10,000 × G, 4 ° C. for 20 minutes. The supernatant was transferred to another container and the amount of the liquid was measured with a graduated cylinder. As a result, 608 mL of the supernatant was obtained. 173 g of ammonium sulfate (manufactured by Nacalai Tesque) was added so that the supernatant became 80% saturated ammonium sulfate concentration, and the mixture was stirred at 4 ° C. overnight with a magnetic stirrer (SW-400N-1, NISSIN), and 4 ° C. Left overnight. The solution was transferred to a centrifuge tube and centrifuged at 10,000 × G, 4 ° C. for 20 minutes.

沈殿を回収し、透析チューブ（分画分子量３５００、Ｓｐｅｃｔｒｕｍ社製）に入れ、１Ｌの２０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ８．６）に対して４℃で８回の外液交換を行い透析した。透析した溶液を遠心管に移し、１０,０００ｘＧ、４℃、２０分間の条件で遠心分離を行ない、上清に粗精製物を得た。
（２）陰イオン交換カラムクロマトグラフィー
陰イオン交換樹脂（Ｑ−セファロース、１０ｍＬ、アマシャムバイオサイエンス社製）を直径１．６ｃｍ、高さ５ｃｍのカラム管に詰め、２０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ８．６）を１ｍＬ／ｍｉｎ．で流し平衡化を行った。そこに上記で得られた粗精製液１５ｍＬ（５．９ｍｇ／ｍＬ：８８ｍｇ蛋白質）をアプライし、その後１５ｍＬの平衡化緩衝液でカラムを洗浄し、非吸着画分を試験管に取り分けた。その後３５ｍＬの１Ｍの塩化ナトリウムを含有した平衡化緩衝液でカラムを洗浄し、吸着画分を試験管に取り分けた。当該クロマトグラムを図１に示した。
（３）ｐＨ調整
陰イオン交換カラムの非吸着画分に６Ｍ−ＨＣｌ（ナカライテスク社製）を加えｐＨを５に調整した。ｐＨはｐＨメーター（Ｆ−１２、ホリバ社製）で確認した。
（４）陽イオン交換カラムクロマトグラフィー
陽イオン交換樹脂（トヨパール ＣＭ ６５０Ｍ、９ｍＬ、東ソー社製）を直径１．６ｃｍ、高さ４．５ｃｍのカラム管に詰め、２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ５）を１．１７ｍＬ／ｍｉｎ．で流し平衡化を行った。そこに上記でｐＨを５に調整した溶液７９ｍＬ（１．１ｍｇ／ｍＬ：８５ｍｇ蛋白質）をアプライし、その後１５ｍＬの平衡化緩衝液でカラムを洗浄し、非吸着画分を試験管に取り分けた。その後平衡化緩衝液中の塩化ナトリウムの濃度０．１Ｍから０．３５Ｍに直線的に変化させ５４分かけて流すことにより吸着画分を２ｍＬずつ試験管に取り分けた。当該クロマトグラムを図２に示した。
（５）ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
陽イオン交換カラムで溶出した吸着画分を(1)、(2)及び(3)と分け（図２参照）ＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し（ＮｕＰＡＧＥ １０％Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ Ｇｅｌ、インビトロジェン）、ＣＲＯＳＳＰＯＷＥＲ１０００（アトー社製）８０ｍＡの定電流で４５分間電気泳動を行った。ゲルをクマシーブリリアントブルーＲ−２５０（ＣＢＢ）で染色しＬＴＰに相当するバンドがある(1)及び(2)画分をプールした。
（６）疎水クロマトグラフィー
上記の陽イオン交換カラムの溶出画分(1)及び(2)の２４ｍＬに終濃度１．６Ｍになるように硫酸アンモニウム５．８ｇを加えた。疎水性クロマト樹脂（トヨパール Ｂｕｔｙｌ ６５０Ｍ、５ｍＬ、東ソー社製）を直径１．６ｃｍ、高さ２．５ｃｍのカラム管に詰め、１．６Ｍ硫酸アンモニウム／２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７）を１ｍＬ／ｍｉｎ．で流し平衡化を行った。そこに上記で硫酸アンモニウム濃度を１．６Ｍに調整した溶液２５ｍＬ（１．６ｍｇ／ｍＬ：４０ｍｇ蛋白質）をアプライしその後１０ｍＬの平衡化緩衝液でカラムを洗浄し、非吸着画分を試験管に取り分けた。その後平衡化緩衝液中の硫酸アンモニウム濃度を６０分かけ１．６Ｍから０Ｍに直線的に変化させ吸着画分を２ｍＬずつ試験管に取り分けた。当該クロマトグラムを図３に示した。
（７）ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
上記の疎水クロマトカラムで溶出した画分を(1)、(2)及び(3)と分け（図３参照）ＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し電気泳動を行った。ゲルをクマシーブリリアントブルーＲ−２５０で染色しＬＴＰに相当するバンドがある(1)画分をプールした。
（８）アミノ酸配列の解析
上記の(1)画分５μＬをプロテインシーケンサー（Ｐｒｏｃｉｓｅ ４９１ＨＴ、アプライドバイオシステムズ社製）に供し、Ｎ末１８残基のアミノ酸配列の解析を行ったところ、小麦ＬＴＰのアミノ酸配列と一致した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥでの分子量とアミノ酸配列より得られた(1)画分は小麦ＬＴＰであると判断した。 The precipitate was collected, put into a dialysis tube (fractionated molecular weight 3500, manufactured by Spectrum), and dialyzed by exchanging the external solution 8 times at 4 ° C. against 1 L of 20 mM Tris-HCl buffer (pH 8.6). The dialyzed solution was transferred to a centrifuge tube, and centrifuged at 10,000 × G, 4 ° C. for 20 minutes to obtain a crude product in the supernatant.
(2) Anion exchange column chromatography Anion exchange resin (Q-Sepharose, 10 mL, manufactured by Amersham Biosciences) was packed in a column tube having a diameter of 1.6 cm and a height of 5 cm, and 20 mM Tris-HCl buffer (pH 8. 6) at 1 mL / min. And equilibrated. 15 mL (5.9 mg / mL: 88 mg protein) of the crude purified solution obtained above was applied thereto, and then the column was washed with 15 mL of equilibration buffer, and the non-adsorbed fraction was separated into test tubes. The column was then washed with equilibration buffer containing 35 mL of 1M sodium chloride and the adsorbed fraction was separated into test tubes. The chromatogram is shown in FIG.
(3) pH adjustment 6M-HCl (manufactured by Nacalai Tesque) was added to the non-adsorbed fraction of the anion exchange column to adjust the pH to 5. The pH was confirmed with a pH meter (F-12, manufactured by Horiba).
(4) Cation exchange column chromatography Cation exchange resin (Toyopearl CM 650M, 9 mL, manufactured by Tosoh Corporation) was packed in a column tube having a diameter of 1.6 cm and a height of 4.5 cm, and 20 mM phosphate buffer (pH 5) was added. 1.17 mL / min. And equilibrated. Thereto, 79 mL (1.1 mg / mL: 85 mg protein) of the solution whose pH was adjusted to 5 was applied, and then the column was washed with 15 mL of equilibration buffer, and the non-adsorbed fraction was separated into test tubes. Thereafter, the concentration of sodium chloride in the equilibration buffer was linearly changed from 0.1 M to 0.35 M, and the mixture was allowed to flow over 54 minutes, whereby the adsorbed fraction was divided into 2 mL portions in a test tube. The chromatogram is shown in FIG.
(5) SDS-PAGE
The adsorbed fraction eluted from the cation exchange column is divided into (1), (2) and (3) (see FIG. 2) and subjected to SDS-PAGE (NuPAGE 10% Bis-Tris Gel, Invitrogen), CROSSPOWER1000 (Ato Corporation) Manufactured) Electrophoresis was performed at a constant current of 80 mA for 45 minutes. The gel was stained with Coomassie Brilliant Blue R-250 (CBB), and the fractions (1) and (2) having a band corresponding to LTP were pooled.
(6) Hydrophobic chromatography 5.8 g of ammonium sulfate was added to 24 mL of the elution fractions (1) and (2) of the above cation exchange column to a final concentration of 1.6M. Hydrophobic chromatographic resin (Toyopearl Butyl 650M, 5 mL, manufactured by Tosoh Corporation) was packed in a column tube having a diameter of 1.6 cm and a height of 2.5 cm, and 1.6 M ammonium sulfate / 20 mM phosphate buffer (pH 7) was added at 1 mL / min. And equilibrated. Then, 25 mL (1.6 mg / mL: 40 mg protein) of the solution adjusted to 1.6 M ammonium sulfate concentration was applied thereto, and then the column was washed with 10 mL of equilibration buffer, and the non-adsorbed fraction was separated into test tubes. It was. Thereafter, the ammonium sulfate concentration in the equilibration buffer was linearly changed from 1.6 M to 0 M over 60 minutes, and 2 mL of the adsorbed fraction was divided into test tubes. The chromatogram is shown in FIG.
(7) SDS-PAGE
The fraction eluted with the above hydrophobic chromatographic column was divided into (1), (2) and (3) (see FIG. 3) and subjected to SDS-PAGE for electrophoresis. The gel was stained with Coomassie Brilliant Blue R-250 and there was a band corresponding to LTP. (1) Fractions were pooled.
(8) Analysis of amino acid sequence (1) 5 μL of the above fraction was applied to a protein sequencer (Procise 491HT, manufactured by Applied Biosystems), and the amino acid sequence of N-terminal 18 residues was analyzed. Matched the sequence. It was judged that the fraction (1) obtained from the molecular weight and amino acid sequence by SDS-PAGE was wheat LTP.

モノクローナル抗体の作製
（１）免疫脾臓細胞の調製
６−８週令の雌ＢＡＬＢ／ｃマウスの腹腔内に、抗原として上記で得られた小麦ＬＴＰ１００μｇと完全フロイントアジュバント（Ｆｒｅｕｎｄ’ｓ ｃｏｍｐｌｅｔｅ ａｄｊｕｖａｎｔ、Ｄｉｆｃｏ社製）とのエマルジョン（１容：１容）を投与した。２週間後、上記の抗原１００μｇと不完全フロイントアジュバント（Ｆｒｅｕｎｄ’ｓ ｉｍｃｏｍｐｌｅｔｅ ａｄｊｕｖａｎｔ、Ｄｉｆｃｏ社製）とのエマルジョン（１容：１容）を腹腔内に投与し、さらに２週間後抗原２５μｇを含むリン酸緩衝生理食塩水（以下、「ＰＢＳ」と略す。）を腹腔内に投与した。その３日後にマウスを屠殺し、脾臓を摘出してこれをほぐし、基本培地（ＲＰＭＩ−１６４０培地（ナカライテスク社製）に１００ｍＭピルビン酸ナトリウム（ＧＩＢＣＯ社製）、結晶ペニシリンＧカリウム１万単位／Ｌ、ストレプトマイシン１０ｍｇ／Ｌを加えた培地）に懸濁した後、脾臓細胞を遠心分離で回収した。
（２）細胞融合とＨＡＴ選択
上記で調製した脾臓細胞と１０％ウシ胎仔血清添加基本培地（以下、「血清添加培地」と略す。）で培養した対数増殖期のマウスミエローマ細胞Ｐ３Ｕ１を１０：１の比率になるように混合し、基本培地で２回洗浄した。遠心分離により細胞を回収し、細胞ペレットに平均分子量１５００の５０％ポリエチレングリコール溶液（ベーリンガーマンハイム山之内製薬）１ｍＬを１分かけて添加し、その後１分間静置した。さらに２０ｍＬの基本培地を１０分間かけて添加し、細胞液を希釈した後、遠心分離により細胞を回収した。この細胞を４０ｍＬのＨＡＴ培地（４×１０^−７Ｍアミノプテリン、１．６×１０^−５Ｍチミジン、及び１×１０^−４Ｍヒポキサンチンを含む血清添加培地）に懸濁し、９６穴プレート４枚に分注し、湿度１００％、炭酸ガス５％、３７℃で培養を開始した。培養開始の翌日、ＨＡＴ培地を各ウェルに１００μＬ添加し、以後２ないし３日ごとに半量の培地を新たなＨＡＴ培地と交換し、培養を続けた。その結果、ほとんどすべてのウェルでハイブリドーマの増殖が認められた。
（３）抗体産生ハイブリドーマの取得
小麦ＬＴＰに結合する抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニングはＥＬＩＳＡにより行った。５μｇ／ｍＬの小麦ＬＴＰを５０μＬずつＥＬＩＳＡ用９６穴プレートに加え、３７℃で１時間吸着させた後、プレートをＰＢＳで３回洗浄した。各ウェルに１％牛血清アルブミンを含むＰＢＳ溶液（以下、「ＢＳＡ−ＰＢＳ」と略す。）を２００μＬ添加し、３７℃で１時間吸着させ、蛋白質の非特異的吸着がおこらないように各ウェルを完全にブロックし、さらにプレートをＰＢＳで３回洗浄した。各ウェルに前述で得られたハイブリドーマの培養上清５０μＬを添加し、３７℃で１時間抗原抗体反応を行った。このプレートをトリス−塩酸緩衝液（１５０ｍＭ塩化ナトリウムを含む１０ｍＭトリス−塩酸緩衝液（ｐＨ７．４）：以下、「ＴＢＳ」と略す。）で１回、０．０５％ツイーン２０（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社製、ＥＬＩＳＡ ｇｒａｄｅ）含有ＴＢＳ（以下、「Ｔｗｅｅｎ２０−ＴＢＳ」と略す。）で５回、さらにＴＢＳで１回洗浄し、未反応の抗体を除去した。次に、各ウェルに０．１％ＢＳＡを含むＴｗｅｅｎ２０−ＴＢＳ（以下０．１％ＢＳＡ−Ｔｗｅｅｎ２０−ＴＢＳ）で５０００倍に希釈したアルカリフォスファターゼ標識抗マウス免疫グロブリンＧ抗血清（カッペル社製）を５０μＬ添加し、３７℃で１時間反応させ、ＴＢＳで１回、Ｔｗｅｅｎ２０−ＴＢＳで５回、ＴＢＳで１回洗浄し、ついで各ウェルに基質であるｐ−ニトロフェニルリン酸を１ｍｇ／ｍＬ含むジエタノールアミン緩衝液（１０％ジエタノールアミン、０．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、ｐＨ９．８）を１００μＬ添加し、３７℃で１時間反応させ、マイクロプレートリーダー（Ｍｏｄｅｌ ３５５０、Ｂｉｏ−Ｒａｄ社製）を用いて反応液の４０５ｎｍにおける吸光度を測定し、固相抗原と結合した抗体を検出した。その結果３ウェルにおいての陽性が確認できた。
（４）ハイブリドーマのクローニング
抗体産生陽性ウェル３個中の細胞を、限界希釈法によりクローニングした。増殖培地として、１０％ＦＢＳ ＲＰＭＩ−１６４０培地に増殖因子としてのＯＲＩＧＥＮ（ＩＧＥＮ社製のＢ細胞増殖因子を含む溶液）を１０％になるように添加したものを用いた。なお抗体産生細胞のスクリーニングは前述と同様のＥＬＩＳＡを行い、陽性クローンを再度クローニングすることにより、小麦ＬＴＰ固相に結合するモノクローナル抗体を産生する２種の細胞株５Ｇ及び７Ｅを樹立した。
（５）モノクローナル抗体の免疫グロブリンのサブクラスの決定
モノクローナル抗体産生細胞株が培養上清液中に分泌するモノクローナル抗体について、その免疫グロブリンのサブクラスを、マウスモノクローナル抗体アイソタイピングキット（アマシャムバイオサイエンス社製）を用いて調べた。モノクローナル抗体はすべてＩｇＧ１であり、軽鎖はκであった。 Preparation of monoclonal antibody (1) Preparation of immune spleen cells Into the abdominal cavity of 6-8 week old female BALB / c mice, 100 μg of wheat LTP obtained above as an antigen and complete Freund's adjuvant (Freund's complete adjuvant, Difco) Emulsions (1 volume: 1 volume). Two weeks later, an emulsion (1 volume: 1 volume) of 100 μg of the antigen described above and incomplete Freund's adjuvant (manufactured by Difco) was administered intraperitoneally, and two weeks later, a phosphorous containing 25 μg of antigen was contained. Acid buffered saline (hereinafter abbreviated as “PBS”) was administered intraperitoneally. Three days later, the mice were sacrificed, the spleen was removed and loosened, and 100 mM sodium pyruvate (GIBCO) and crystalline penicillin G potassium 10,000 units / basic medium (RPMI-1640 medium (Nacalai Tesque)) were used. L and a medium supplemented with 10 mg / L of streptomycin), and then spleen cells were collected by centrifugation.
(2) Cell fusion and HAT selection Logarithmically growing mouse myeloma cells P3U1 cultured in the above-prepared spleen cells and 10% fetal bovine serum-supplemented basic medium (hereinafter abbreviated as “serum-added medium”) are 10: 1. Were mixed and washed twice with the basic medium. Cells were collected by centrifugation, and 1 mL of a 50% polyethylene glycol solution (Boehringer Mannheim Yamanouchi Pharmaceutical Co., Ltd.) having an average molecular weight of 1500 was added to the cell pellet over 1 minute, and then allowed to stand for 1 minute. Further, 20 mL of basic medium was added over 10 minutes to dilute the cell solution, and then the cells were collected by centrifugation. The cells were suspended in 40 mL of HAT medium (serum supplemented with serum containing 4 × 10 ⁻⁷ M aminopterin, 1.6 × 10 ⁻⁵ M thymidine, and 1 × 10 ⁻⁴ M hypoxanthine). The culture was dispensed on a plate and the culture was started at a humidity of 100%, carbon dioxide gas of 5%, and 37 ° C. On the next day after the start of the culture, 100 μL of HAT medium was added to each well, and thereafter, half of the medium was replaced with a new HAT medium every 2 to 3 days, and the culture was continued. As a result, the growth of hybridoma was observed in almost all wells.
(3) Acquisition of antibody-producing hybridomas Screening for hybridomas producing antibodies that bind to wheat LTP was performed by ELISA. 50 μL of 5 μg / mL wheat LTP was added to each 96-well plate for ELISA and adsorbed at 37 ° C. for 1 hour, and then the plate was washed 3 times with PBS. 200 μL of PBS solution containing 1% bovine serum albumin (hereinafter abbreviated as “BSA-PBS”) is added to each well and adsorbed at 37 ° C. for 1 hour to prevent nonspecific protein adsorption. Were completely blocked and the plate was further washed 3 times with PBS. 50 μL of the hybridoma culture supernatant obtained above was added to each well, and an antigen-antibody reaction was performed at 37 ° C. for 1 hour. This plate was treated once with Tris-HCl buffer (10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.4) containing 150 mM sodium chloride: hereinafter abbreviated as “TBS”), 0.05% Tween 20 (Bio-Rad). Manufactured by ELISA grade) -containing TBS (hereinafter abbreviated as “Tween20-TBS”), and then washed once with TBS to remove unreacted antibodies. Next, alkaline phosphatase-labeled anti-mouse immunoglobulin G antiserum (manufactured by Kappel) diluted 5000 times with Tween 20-TBS containing 0.1% BSA in each well (hereinafter 0.1% BSA-Tween 20-TBS). Add 50 μL, react at 37 ° C. for 1 hour, wash once with TBS, 5 times with Tween20-TBS and once with TBS, and then each well contains diethanolamine containing 1 mg / mL of p-nitrophenyl phosphate as a substrate. 100 μL of buffer solution (10% diethanolamine, 0.5 mM MgCl ₂ , pH 9.8) was added, reacted at 37 ° C. for 1 hour, and the reaction solution was 405 nm using a microplate reader (Model 3550, manufactured by Bio-Rad). The antibody bound to the solid phase antigen was detected. As a result, positive in 3 wells could be confirmed.
(4) Cloning of hybridoma Cells in three antibody-producing positive wells were cloned by the limiting dilution method. As a growth medium, a 10% FBS RPMI-1640 medium added with ORIGEN as a growth factor (a solution containing B cell growth factor manufactured by IGEN) to 10% was used. The antibody-producing cells were screened by the same ELISA as described above, and the positive clones were recloned to establish two cell lines 5G and 7E that produced monoclonal antibodies that bind to the wheat LTP solid phase.
(5) Determination of immunoglobulin subclass of monoclonal antibody For the monoclonal antibody secreted into the culture supernatant of the monoclonal antibody-producing cell line, the immunoglobulin subclass is determined by mouse monoclonal antibody isotyping kit (manufactured by Amersham Biosciences). It investigated using. All monoclonal antibodies were IgG1 and the light chain was kappa.

ＥＬＩＳＡの系の開発
（１）抗体の精製方法
ＢＡＬＢ／ｃマウスに腹水癌を誘導するために０．５ｍｌのプリスタンを腹腔内投与し、投与３〜１０日後に１×１０^７個のモノクローナル抗体産生細胞を腹腔内に移植した。約２週間後に腹水を採取し、これをプロテインＧ セファロース（アマシャムバイオサイエンス社製）を用いて純化し、ＰＢＳに対して透析後、４℃で保存した。腹水１ｍＬあたり約５ｍｇの精製抗体を得た。
（２）サンドイッチ定量系の確立
モノクローナル抗体５Ｇ（５μｇ／ｍＬ ＰＢＳ溶液）５０μｌをそれぞれＥＬＩＳＡプレートに固相化したのち、ＰＢＳで３回洗浄した。各ウェルにＢＳＡ−ＰＢＳの２００μＬを添加し、３７℃で１時間ブロッキングした。その後、各ウェルをＰＢＳで３回洗浄し、希釈液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）５０μＬ中の小麦ＬＴＰを０、０．００１、０．００３、０．０１、０．０３、０．１、０．３、１、３、１０、３０、１００、３００又は１０００ｎｇ／ｍＬの濃度で添加し、３７℃で１時間放置した。洗浄液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）で６回洗浄後、ペルオキシダーゼ標識モノクローナル抗体「７Ｅ」、ペルオキシダーゼ標識ウサギポリクローナル抗体又はペルオキシダーゼ標識ラットポリクローナル抗体／希釈液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）を５０μＬずつ添加し、３７℃で１時間放置した。その後、洗浄液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）で６回洗浄後、３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン（ＴＭＢ）溶液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）１００μＬを添加し、室温で２０分間反応させ、反応停止液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）１００μＬの添加により反応停止を行い、４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。また、同様の実験をモノクローナル抗体７Ｅで固相化した場合についても行い、その際、ペルオキシダーゼ標識モノクローナル抗体５Ｇで試験した。結果を図４に示した。図から、モノクローナル抗体同士のサンドイッチが成立した上、５Ｇ、７Ｅのどちらを固相化した場合でも検量線の立ち上がりが０．００３ｎｇ／ｍＬと、他の抗体と比較して抜きん出て（少なくとも１００００倍以上）感度の高いことが確認できた。 Development of ELISA system (1) Antibody purification method In order to induce ascites tumor in BALB / c mice, 0.5 ml of pristane was intraperitoneally administered, and 1 × 10 ⁷ monoclonal antibodies were produced 3 to 10 days after administration. Cells were transplanted intraperitoneally. About 2 weeks later, ascites was collected, purified using protein G Sepharose (manufactured by Amersham Biosciences), dialyzed against PBS, and stored at 4 ° C. About 5 mg of purified antibody was obtained per mL of ascites.
(2) Establishment of sandwich quantification system 50 μl of monoclonal antibody 5G (5 μg / mL PBS solution) was immobilized on an ELISA plate and washed 3 times with PBS. 200 μL of BSA-PBS was added to each well and blocked at 37 ° C. for 1 hour. Thereafter, each well was washed 3 times with PBS, and 0, 0.001, 0.003, 0.01, 0.03 of wheat LTP in 50 μL of a diluted solution (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories) was used. , 0.1, 0.3, 1, 3, 10, 30, 100, 300 or 1000 ng / mL, and left at 37 ° C. for 1 hour. After washing 6 times with a washing solution (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories), peroxidase-labeled monoclonal antibody “7E”, peroxidase-labeled rabbit polyclonal antibody or peroxidase-labeled rat polyclonal antibody / diluent (wheat gliadin kit, Morinaga Bioscience) 50 μL each) was added and allowed to stand at 37 ° C. for 1 hour. Then, after washing 6 times with a washing solution (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Institute), 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine (TMB) solution (wheat gliadin kit, Morinaga Bioscience Institute) 100 μL) was added and reacted at room temperature for 20 minutes. The reaction was stopped by adding 100 μL of a reaction stop solution (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories), and the absorbance at 450 nm was measured. In addition, the same experiment was performed for the case where the solid phase was immobilized with the monoclonal antibody 7E, and the test was performed with the peroxidase-labeled monoclonal antibody 5G. The results are shown in FIG. From the figure, a sandwich between monoclonal antibodies was established, and even when 5G or 7E was solid-phased, the rising of the calibration curve was 0.003 ng / mL, which was extracted compared to other antibodies (at least 10,000 times). Above) It was confirmed that the sensitivity was high.

なお、上記のペルオキシダーゼ標識ウサギポリクローナル抗体及びペルオキシダーゼ標識ラットポリクローナル抗体は、常法によりウサギ又はラットに免疫して抗体を作製し、抗原固相化カラムを通すことにより抗原特異的抗体を得、その特異的抗体を中根法で酵素標識することで調製した。
（３）大麦ＬＴＰに対する交差反応性（競合ＥＬＩＳＡ実験）
５μｇ／ｍｌの小麦ＬＴＰを５０μＬずつＥＬＩＳＡ用９６穴プレートに加え、３７℃で１時間固相化させた後、ＰＢＳで３回洗浄した。各ウェルにＢＳＡ−ＰＢＳの２００μＬを添加し、３７℃で１時間ブロッキングした。プレートをＰＢＳで３回洗浄した後、モノクローナル抗体５Ｇ又は７Ｅの１μｇ／ｍＬ溶液を５０μＬと、小麦ＬＴＰ又は大麦ＬＴＰ溶液（０、１、３、１０、３０、１００、３００又は１０００μｇ／ｍＬ／０．１％ＢＳＡ−Ｔｗｅｅｎ２０−ＴＢＳ）を５０μＬずつ添加し、３７℃で１時間反応を行った。次にＴＢＳで１回、Ｔｗｅｅｎ２０−ＴＢＳで５回、ＴＢＳで１回洗浄後、各ウェルに０．１％ＢＳＡ−Ｔｗｅｅｎ２０−ＴＢＳで５０００倍に希釈したアルカリフォスファターゼ標識抗マウス免疫グロブリンＧ抗血清を５０μＬ添加し、３７℃で１時間反応させ、ＴＢＳで１回、Ｔｗｅｅｎ２０−ＴＢＳで５回、ＴＢＳで１回洗浄し、ついで各ウェルにｐ−ニトロフェニルリン酸を１ｍｇ／ｍＬ含むジエタノールアミン緩衝液（１０％ジエタノールアミン、０．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、ｐＨ９．８）を１００μＬ添加し、３７℃で１時間反応させ、４０５ｎｍにおける吸光度を測定した。結果を図５に示した。図には、本発明のモノクローナル抗体に関する、固相抗原小麦ＬＴＰに対しての遊離抗原小麦ＬＴＰ及び大麦ＬＴＰの競合反応が示されており、その結果、大麦ＬＴＰでは阻害（競合）が全くかからず、本発明のモノクローナル抗体５Ｇ及び７Ｅでは、大麦ＬＴＰとの交差反応性がないことが確認できた。 The above-mentioned peroxidase-labeled rabbit polyclonal antibody and peroxidase-labeled rat polyclonal antibody are prepared by immunizing rabbits or rats by a conventional method to obtain an antigen-specific antibody by passing through an antigen-immobilized column. Specific antibodies were prepared by enzyme labeling by the Nakaroot method.
(3) Cross reactivity to barley LTP (competitive ELISA experiment)
50 μL each of 5 μg / ml wheat LTP was added to a 96-well plate for ELISA, solidified at 37 ° C. for 1 hour, and then washed 3 times with PBS. 200 μL of BSA-PBS was added to each well and blocked at 37 ° C. for 1 hour. After washing the plate 3 times with PBS, 50 μL of 1 μg / mL solution of monoclonal antibody 5G or 7E and wheat LTP or barley LTP solution (0, 1, 3, 10, 30, 100, 300 or 1000 μg / mL / 0 .1% BSA-Tween20-TBS) was added in an amount of 50 μL each and reacted at 37 ° C. for 1 hour. Next, after washing once with TBS, 5 times with Tween20-TBS, and once with TBS, alkaline phosphatase-labeled anti-mouse immunoglobulin G antiserum diluted 5000 times with 0.1% BSA-Tween20-TBS was added to each well. 50 μL was added, reacted at 37 ° C. for 1 hour, washed once with TBS, 5 times with Tween20-TBS, and once with TBS, and each well was then added with a diethanolamine buffer solution containing 1 mg / mL of p-nitrophenyl phosphate ( 100 μL of 10% diethanolamine, 0.5 mM MgCl ₂ , pH 9.8) was added, reacted at 37 ° C. for 1 hour, and the absorbance at 405 nm was measured. The results are shown in FIG. The figure shows the competitive reaction of free antigen wheat LTP and barley LTP to solid phase antigen wheat LTP with respect to the monoclonal antibody of the present invention. As a result, inhibition (competition) is completely absent in barley LTP. In addition, it was confirmed that the monoclonal antibodies 5G and 7E of the present invention have no cross-reactivity with barley LTP.

なお、大麦ＬＴＰは、上記小麦ＬＴＰの精製方法に準じて調製した。
（４）モノクローナル抗体同士のサンドイッチＥＬＩＳＡ
モノクローナル抗体５Ｇ又は７ＥのＰＢＳ溶液（５μｇ／ｍＬ）５０μｌをそれぞれＥＬＩＳＡプレートに固相化したのち、ＰＢＳで３回洗浄した。各ウェルにＢＳＡ−ＰＢＳの２００μＬを添加し、３７℃で１時間ブロッキングした。その後、ＰＢＳで３回洗浄し、各ウェルに小麦ＬＴＰを０、０．００１、０．００３、０．０１、０．０３、０．１、０．３、１、３、１０、３０、１００、３００又は１０００ｎｇ／ｍＬ／希釈液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）として、或いは大麦ＬＴＰを０、０．００１、０．００３、０．０１、０．０３、０．１、０．３、１、３、１０、３０、１００、３００、１０００、３０００、１００００、３００００、１０００００、３０００００又は１００００００ｎｇ／ｍＬ／希釈液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）として５０μＬずつ添加し、３７℃で１時間放置した。洗浄液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所）で６回洗浄後、ペルオキシダーゼ標識モノクローナル抗体７Ｅ又は５Ｇ／希釈液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）を５０μＬずつ添加し、３７℃で１時間放置した。洗浄液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）で６回洗浄後、ＴＭＢ（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）の１００μＬを添加し、室温で２０分間反応させ、反応停止液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）１００μＬの添加により反応停止を行い、４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。結果を図６に示した。図から、小麦に比べて大麦の検出は１／１００万程度も感度が鈍く、従って競合ＥＬＩＳＡ同様に交差性が実質的に無視でき、一方で、小麦ＬＴＰでの検量線の立ち上がりが０．００３ｎｇ／ｍＬと、極めて鋭敏な検出が可能なことが判る。
（５）ウエスタン解析
小麦粗抽出液１０μｇ及び小麦ＬＴＰ５μｇをＳＤＳ−ＰＡＧＥに供し、電気泳動を行った後、ゲル上の蛋白質を１７０ｍＡの定電流で９０分間ポリビニリデンジフルオリド（ＰＶＤＦ）膜（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社製）に転写し、５％スキムミルクを含むＰＢＳによるブロッキングを室温で１時間行った。その後、ＰＢＳで３回洗浄し、モノクローナル抗体５Ｇ及び７Ｅそれぞれ１μｇ／ｍＬを室温、１時間で反応させた。次に、ＴＢＳで１回、Ｔｗｅｅｎ２０−ＴＢＳで５回、ＴＢＳで１回洗浄し、０．１％ＢＳＡ−Ｔｗｅｅｎ２０−ＴＢＳ溶液で１０００倍に希釈したアルカリフォスファターゼ標識抗マウス免疫グロブリンＧ抗血清で室温、１時間の反応を行った。その後、ＴＢＳで１回、Ｔｗｅｅｎ２０−ＴＢＳで５回、ＴＢＳで１回洗浄し、アルカリフォスファターゼ発色キット（ナカライテスク社製）による発色を行った。結果を図７に示した。図中のバンドの染色パターンからも本発明の抗体が小麦ＬＴＰ特異的抗体であることが確認された。また、ウエスタンでも使用可能であることから、これらの抗体は一次構造認識であることがわかる。 In addition, barley LTP was prepared according to the said purification method of wheat LTP.
(4) Sandwich ELISA between monoclonal antibodies
After 50 μl of a monoclonal antibody 5G or 7E solution in PBS (5 μg / mL) was immobilized on an ELISA plate, each was washed three times with PBS. 200 μL of BSA-PBS was added to each well and blocked at 37 ° C. for 1 hour. Thereafter, the plate was washed 3 times with PBS, and wheat LTP was added to each well at 0, 0.001, 0.003, 0.01, 0.03, 0.1, 0.3, 1, 3, 10, 30, 100. , 300 or 1000 ng / mL / diluent (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories) or barley LTP at 0, 0.001, 0.003, 0.01, 0.03, 0.1, 50 μL each as 0.3, 1, 3, 10, 30, 100, 300, 1000, 3000, 10000, 30000, 100,000, 300,000 or 1000000 ng / mL / diluent (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories) Added and left at 37 ° C. for 1 hour. After washing 6 times with a washing solution (wheat gliadin kit, Morinaga Bioscience Laboratories), add 50 μL of peroxidase-labeled monoclonal antibody 7E or 5G / diluent (wheat gliadin kit, Morinaga Bioscience Laboratories) at 37 ° C. Left for 1 hour. After washing 6 times with a washing solution (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories), 100 μL of TMB (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories) is added and reacted at room temperature for 20 minutes to stop the reaction. (Wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Research Institute) The reaction was stopped by adding 100 μL, and the absorbance at 450 nm was measured. The results are shown in FIG. From the figure, the sensitivity of barley detection is less than 1 / 1,000,000, compared to wheat, and therefore, the crossing property can be substantially ignored like the competitive ELISA, while the rise of the calibration curve with wheat LTP is 0.003 ng. / ML, it can be seen that extremely sensitive detection is possible.
(5) Western analysis After 10 μg of wheat coarse extract and 5 μg of wheat LTP were subjected to SDS-PAGE and electrophoresis, the protein on the gel was subjected to polyvinylidene difluoride (PVDF) membrane (Bio-) for 90 minutes at a constant current of 170 mA. Rad) and blocking with PBS containing 5% skim milk was performed at room temperature for 1 hour. Thereafter, the cells were washed 3 times with PBS, and reacted with 1 μg / mL of each of monoclonal antibodies 5G and 7E at room temperature for 1 hour. Next, it was washed once with TBS, 5 times with Tween20-TBS, once with TBS, and diluted 1000-fold with 0.1% BSA-Tween20-TBS solution at room temperature with an alkaline phosphatase-labeled anti-mouse immunoglobulin G antiserum. The reaction was performed for 1 hour. Thereafter, the plate was washed once with TBS, five times with Tween20-TBS, and once with TBS, and color development was performed using an alkaline phosphatase color development kit (manufactured by Nacalai Tesque). The results are shown in FIG. The staining pattern of the band in the figure also confirmed that the antibody of the present invention was a wheat LTP-specific antibody. Moreover, since it can be used also in Western, it turns out that these antibodies are primary structure recognition.

測定系の応用
（１）サンプル調製
食品１ｇに対して希釈液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）１９ｍＬを加え、ミルサー（ミルサー７００Ｇ、岩谷産業社製）で１０秒間×３の抽出を行い、その混合液を遠心管に移し、３，０００ｘＧ、４℃、２０分間の条件で遠心分離を行った。遠心上清をろ過し（Ｎｏ．２、アドバンテック社製）、そのろ液を食品サンプルとした。
（２）ＥＬＩＳＡによる食品の定量
モノクローナル抗体５ＧのＰＢＳ溶液（５μｇ／ｍＬ）５０μｌをそれぞれＥＬＩＳＡプレートに固相化したのち、ＰＢＳで３回洗浄した。各ウェルにＢＳＡ−ＰＢＳの２００μＬを添加し、３７℃で１時間ブロッキングした。その後、洗浄液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）で６回洗浄し、各ウェルに小麦ＬＴＰを０、０．００１、０．００３、０．０６２５、０．０１２５、０．０２５又は０．０５ｎｇ／ｍＬ／希釈液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）の５０μＬとして、或いは上記の食品サンプル（市販の醤油及びビールより調製）を５０μＬずつ添加し、３７℃で１時間放置した。洗浄液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）で６回洗浄後、ペルオキシダーゼ標識モノクローナル抗体７Ｅを５０μＬずつ添加し、３７℃で１時間放置した。洗浄液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）で６回洗浄後、ＴＭＢ（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）１００μＬを添加し、室温で２０分間反応させ、反応停止液（小麦グリアジンキット、森永生科学研究所社製）１００μＬの添加により反応停止を行い、４５０ｎｍにおける吸光度を測定した。結果を表１に示す。なお、小麦ＬＴＰから小麦蛋白質への換算値は０．００６（標準小麦試料中で検出された小麦ＬＴＰの量を、該試料中の既知小麦蛋白質の量で除して見積もった係数）で除した値で示した。また、比較としてグリアジンキット（森永生科学研究所社製）プロトコールに準じて行った測定結果を示している。 Application of measurement system (1) Sample preparation Add 19 mL of diluent (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Seikagaku Co., Ltd.) to 1 g of food, and extract for 3 seconds with Milser (Milcer 700G, manufactured by Iwatani Corporation). The mixture was transferred to a centrifuge tube and centrifuged at 3,000 × G, 4 ° C. for 20 minutes. The centrifugal supernatant was filtered (No. 2, manufactured by Advantech), and the filtrate was used as a food sample.
(2) Quantification of food by ELISA After 50 μl of a monoclonal antibody 5G in PBS (5 μg / mL) was immobilized on an ELISA plate, each was washed 3 times with PBS. 200 μL of BSA-PBS was added to each well and blocked at 37 ° C. for 1 hour. Then, it was washed 6 times with a washing solution (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories), and wheat LTP was added to each well at 0, 0.001, 0.003, 0.0625, 0.0125, 0.025 or Add 50 μL of 0.05 ng / mL / diluent (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories) or 50 μL of the above food sample (prepared from commercially available soy sauce and beer) at 37 ° C. for 1 hour. I left it alone. After washing 6 times with a washing solution (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories), 50 μL of peroxidase-labeled monoclonal antibody 7E was added and allowed to stand at 37 ° C. for 1 hour. After washing 6 times with a washing solution (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories), 100 μL of TMB (wheat gliadin kit, manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories) is added and reacted at room temperature for 20 minutes. The reaction was stopped by adding 100 μL of wheat gliadin kit (manufactured by Morinaga Bioscience Laboratories), and the absorbance at 450 nm was measured. The results are shown in Table 1. The conversion value from wheat LTP to wheat protein was divided by 0.006 (coefficient estimated by dividing the amount of wheat LTP detected in the standard wheat sample by the amount of known wheat protein in the sample). Indicated by value. Moreover, the measurement result performed according to the gliadin kit (made by Morinaga Bioscience Research Institute) protocol is shown as a comparison.

本発明のモノクローナル抗体に依れば、小麦原材料の使用・混入を極めて簡便且つ鋭敏に検査することができるので、各種の食品に対して当該検査を適用でき、しかしてそれらの食品製造業において有用である。   According to the monoclonal antibody of the present invention, the use / mixing of wheat raw materials can be inspected very easily and sensitively, so that the inspection can be applied to various foods and is useful in the food manufacturing industry. It is.

図１は、小麦ＬＴＰ精製時の陰イオン交換カラムクロマトグラフィーにおけるクロマトグラムである。縦軸は２８０ｎｍでの吸光度を、横軸は溶出体積（ｍＬ）を示している。FIG. 1 is a chromatogram in anion exchange column chromatography during the purification of wheat LTP. The vertical axis represents the absorbance at 280 nm, and the horizontal axis represents the elution volume (mL). 図２は、小麦ＬＴＰ精製時の陽イオン交換カラムクロマトグラフィーにおけるクロマトグラムである。縦軸は２８０ｎｍでの吸光度を、横軸は溶出体積（ｍＬ）を示している。FIG. 2 is a chromatogram in cation exchange column chromatography during the purification of wheat LTP. The vertical axis represents the absorbance at 280 nm, and the horizontal axis represents the elution volume (mL). 図３は、小麦ＬＴＰ精製時の疎水クロマトグラフィーにおけるクロマトグラムである。縦軸は２８０ｎｍでの吸光度を、横軸は溶出体積（ｍＬ）を示している。FIG. 3 is a chromatogram in hydrophobic chromatography during the purification of wheat LTP. The vertical axis represents the absorbance at 280 nm, and the horizontal axis represents the elution volume (mL). 図４は、本発明の抗小麦ＬＴＰモノクローナル抗体とポリクローナル抗体（比較）の小麦ＬＴＰに対する反応性の相違を表す。縦軸は４５０ｎｍにおける吸光度を、横軸は小麦ＬＴＰの濃度（ｎｇ／ｍＬ）を示している。FIG. 4 shows the difference in reactivity of the anti-wheat LTP monoclonal antibody of the present invention and the polyclonal antibody (comparative) to wheat LTP. The vertical axis indicates the absorbance at 450 nm, and the horizontal axis indicates the concentration of wheat LTP (ng / mL). 図５は、本発明の抗小麦ＬＴＰモノクローナル抗体の大麦ＬＴＰに対する交差反応性を表す競合ＥＬＩＳＡの結果である。縦軸は４０５ｎｍにおける吸光度を、横軸は各ＬＴＰの濃度（ｎｇ／ｍＬ）を示している。FIG. 5 shows the results of a competitive ELISA showing the cross-reactivity of the anti-wheat LTP monoclonal antibody of the present invention to barley LTP. The vertical axis represents the absorbance at 405 nm, and the horizontal axis represents the concentration (ng / mL) of each LTP. 図６は、本発明の抗小麦ＬＴＰモノクローナル抗体同士のサンドイッチＥＬＩＳＡ実験結果と、該実験での大麦ＬＴＰに対する交差反応を表す。縦軸は４５０ｎｍにおける吸光度を、横軸は各ＬＴＰの濃度（ｎｇ／ｍＬ）を示している。FIG. 6 shows the results of sandwich ELISA experiments between the anti-wheat LTP monoclonal antibodies of the present invention and the cross-reaction with barley LTP in the experiments. The vertical axis indicates the absorbance at 450 nm, and the horizontal axis indicates the concentration (ng / mL) of each LTP. 図７は、本発明の抗小麦ＬＴＰモノクローナル抗体によるウエスタン解析結果を表す図面代用写真である。FIG. 7 is a drawing-substituting photograph showing the results of Western analysis using the anti-wheat LTP monoclonal antibody of the present invention.

Claims (3)

受託番号がＦＥＲＭ Ｐ−２０６８７又はＦＥＲＭ Ｐ−２０６８８であるハイブリドーマにより生産される、小麦由来非特異的脂質輸送蛋白質に対するモノクローナル抗体。   A monoclonal antibody against a wheat-derived non-specific lipid transport protein produced by a hybridoma having a deposit number of FERM P-20687 or FERM P-20688. 発酵及び／又は加工食品中の小麦アレルゲンの検査方法であって、該方法は、請求項１に記載のモノクローナル抗体により前記食品中の小麦由来非特異的脂質輸送蛋白質の存在を検出することを特徴とする、前記方法。   A method for testing wheat allergens in fermented and / or processed foods, characterized in that the method detects the presence of wheat-derived non-specific lipid transport proteins in the foods using the monoclonal antibody according to claim 1. And said method. 請求項１に記載のモノクローナル抗体を含む食品アレルゲン検査用キット。   A food allergen test kit comprising the monoclonal antibody according to claim 1.

Images