JP2004518615A - 癌の処置に有用なインドール化合物 - Google Patents

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Abstract

本発明は、癌細胞を阻害するか、あるいは化学療法剤、放射線または他の抗癌処置に癌細胞を感受性にするのに有用な下記式(I)の化合物およびその薬学的に許容される塩に関する:
【化1】
Figure 2004518615

{式中、Rは、低級アルキル、低級アルケニル、(ヒドロキシ)低級アルキル、低級アルキニル、フェニル、ベンジルまたは2−チエニルであり、R、R、R、Rは、同一または相違して各々水素または低級アルキルであり、各Rは、独立的に水素、低級アルキル、ヒドロキシ、(ヒドロキシ)低級アルキル、低級アルコキシ、ベンジルオキシ、低級アルカノイルオキシ、ニトロまたはハロであり、nは、1−3であり、Rは、水素、低級アルキルまたは低級アルケニルであり、Xは、オキシまたはチオであり、Yは、カルボニル(CH1−3、(CH1−3C(O)または(CH1−3SOであり、Zは、(ω−(4−ピリジル)(C−Cアルコキシ)、(ω−((R)(R)アミノ)(C−Cアルコキシ)[うち、R および R は各々H、(C−C)アルキルまたはNと一緒に1−3N(R)、Sもしくは非過酸化物Oを含む5または6員の複素環である]、(ω−(OH)(C−C))アルコキシのアミノ酸エステル、N(R)CH(R)COH、1’−D−グルクロニルオキシであり、Y−Zは、(CH1−3[うち、Rは、OH、(C−C)アシルオキシ、SOH、PO、N(NO)(OH)、SONH、PO(OH)NHまたはテトラゾール]である}。

Description

【0001】
(技術分野)
関連出願の参照
本出願は、米国特許出願09/360,020(1999年7月23日出願)の部分継続であり、米国特許仮出願60/189,976(2000年3月16日出願)に基づく優先権を享受する(両出願を出典明示により本明細書の一部とする)。
【0002】
発明の背景
本発明は、米国保健研究所により授与された許可番号5ROI GM23200−24での政府支援でなされた。政府が本発明になんらかの権利を有する。
【0003】
前立腺癌は、米国における男性の癌による死亡の第2番目に大きい原因である。1998年で約185,000人が前立腺癌と診断され、この疾患で39,000人以上が死亡したと推測される。参照、S. H. Landies et al., Cancer Statistics, CA Cancer J. Clin., 48, 6 (1998)。前立腺癌の生存率は早期診断ではよいが、進行した疾患の治療はホルモン剥離法および姑息的な処置に限られている。ホルモン剥離法(精巣切除および抗アンドロゲン処置)は一般的に疾患の一時的な軽減をもたらすのみである。通常、1−3年で再発し、再発腫瘍はその成長および生存にアンドロゲンを必要としない。D. G. Tang et al., Prostate, 32, 284 (1997)。プロゲステロン、エストラムスチン、ビンブラスチンなどの通常の化学療法剤での治療は、疾患の進行を止めるのに効果を示していない。
【0004】
非ステロイド性抗炎症剤(NSAID)の数が別個の分類を要するほど増加している。アスピリンに加えて米国で市販のNSAIDに、関節炎についてメクロフェナム酸ナトリウム、オキシフェンブタゾン、フェニルブタゾン、インドメタシン、ピロキシカム、スリンダク、トルメチン;疼痛についてメフェナム酸、ゾメピラック;疼痛および関節炎についてイブプロフェン、フェノプロフェン、ナプロキセンがある。イブプロフェン、メフェナム酸、ナプロキセンは、月経困難症の手当てにも有用である。
【0005】
NSAIDの臨床上の有用性は、多くの有害作用により制限を受ける。フェニルブタゾンは肝ネクローシスや肉芽腫症に関係し、スリンダク、インドメタシン、イブプロフェン、ナプロキセンは肝炎や胆汁うっ滞性肝炎に関係する。血清アミノトランスフェラーゼ、特にアラニン・アミノトランスフェラーゼの一時的な増加が報告されている。アスピリンを含むこれらの薬剤のすべてがシクロオキシゲナーゼを阻害し、順にプロスタグランジンの合成を阻害する。プロスタグランジンは、糸球体ろ過および腎のナトリウムと水の排出を調節するのを助ける。このように、NSAIDは液体停留を起こし、ナトリウムの***を低下することがあり、ついで高カリウム血症、減尿症、無尿症が生じる。さらに、これらの薬剤のすべてが胃潰瘍を起こすことがある。参照、Remington’s Pharmaceutical Sciences, Mack Pub. Co., Easton, PA (18th ed., 1990) 1115−1122。
【0006】
癌、特に大腸癌に対するNSAIDの作用について、多くの文献がある。例えば、参照、H. A. Weiss et al., Scand J. Gastroent., 31, 137 (1996) (suppl. 220) および Shiff et al., Exp. Cell Res., 222, 179 (1996)。さらに最近、B. Bellosillo et al., Blood, 92, 1406 (1998) によると、アスピリンおよびサリチル酸塩はインビトロでB細胞、CLL細胞の生存能を減少せしめるが、インドメタシン、ケトララック、NS−398はそうではない。
【0007】
C. P. Duffy et al., Eur. J. Cancer, 34, 1250 (1998) によると、ある種の化学療法剤の細胞毒性が、ある種の非ステロイド性抗炎症剤との併用で増加する。ヒト肺癌細胞およびヒト白血病細胞に対する作用は、高度に特異的であり、予測できない。すなわち、あるNSAIDと薬剤との併用は効果的であり、また他の併用は効果的でない。結論として言えることは、この作用がNSAIDのシクロオキシゲナーゼ阻害活性によるものでないことである。
【0008】
Duffy グループは、抗癌剤となり得る「MRSの基質」と抗癌剤の強さを増加し得るNSAIDとの組合せについて、1997年10月24日にPCT出願を行った(WO98/18490)。請求項に揚げられているNSAIDは、アセメタシン、インドメタシン、スリンダク、スリンダクスルフィド、スリンダクスルホン、トルメチン、ゾメピラックである。ナプロキセンおよびピロキシカンは活性がないとされている。
【0009】
最近の報告、Wechter et al., Cancer Res., 60, 2203 (2000) によると、NSAID、R−フルルビプロフェンが前立腺癌モデルであるTRAMPマウスにおいて前立腺癌の進行を阻害した。Wechter グループは、R(−)エトドラクおよびR−フルルビプロフェンを含むR−NSAIDで前立腺癌を治療できることを開示して、1997年9月8日にPCT出願を行った(WO98/09603)。R(−)エトドラクに反して、フルルビプロフェンのR−エナンチオマーや他の(R)−2−アリールプロピオン酸塩NSAIDは体内で抗炎症性S−エナンチオマーに転換され、従ってNSAIDのプロドラッグである。なお、R(−)エトドラクはそれ自体NSAIDでない。従って、これらの予備的知見を用いて、前立腺癌などの癌を含む腫瘍性疾患を治療する新規化合物を開発することについて、継続的な必要性が存在する。
【0010】
発明の要旨
本発明は、下記式(I)の化合物およびその薬学的に許容される塩に関する。
【化3】
Figure 2004518615
式中、Rは、低級アルキル、低級アルケニル、(ヒドロキシ)低級アルキル、低級アルキニル、フェニル、ベンジルまたは2−チエニルであり、R、R、R、Rは、同一または相違して各々水素または低級アルキルであり、各Rは、独立的に水素、低級アルキル、ヒドロキシ、(ヒドロキシ)低級アルキル、低級アルコキシ、ベンジルオキシ、低級アルカノイルオキシ、ニトロまたはハロであり、nは、1−3であり、Rは、水素、低級アルキルまたは低級アルケニルであり、Xは、オキシまたはチオであり、Yは、カルボニル(CH1−3、(CH1−3C(O)または(CH1−3SOであり、Zは、(ω−(4−ピリジル)(C−Cアルコキシ)、(ω−((R)(R)アミノ)(C−Cアルコキシ)[うち、R および R は各々H、(C−C)アルキルまたはNと一緒に1−3N(R)、Sもしくは非過酸化物Oを含む5または6員の複素環である]、(ω−(OH)(C−C))アルコキシ、N(R)CH(R)COH、1’−D−グルクロニルオキシのアミノ酸エステルであり、Y−Zは、(CH1−3[うち、Rは、OH、(C−C)アシルオキシ、SOH、PO、N(NO)(OH)、SONH、PO(OH)NHまたはテトラゾール]である。
【0011】
本発明はまた、癌細胞の成長を阻害し、および/または癌細胞を化学療法剤による阻害に敏感にする治療方法に関する。この方法は、癌細胞を有効量の式(I)の化合物に、好ましくは薬学的に許容される担体と組合せて、接触せしめることを含む。本発明化合物を用いて、ヒト癌患者などの癌罹患の哺乳動物を処置できる。好ましくは、本発明化合物を、アルキル化剤や抗アンドロゲンなどの化学療法剤、放射線および/または他の抗癌治療法と合わせて、投与する。
【0012】
本発明化合物は、慢性リンパ球性白血病(CLL)および多発性骨髄腫(MM)を含む白血病および骨髄癌などの造血性癌に対して効果がある。本発明化合物は予想外にも、高レベルの核ホルモン受容体、ペルオキシソム増殖物質活性化受容体−γ(PPAR−γ)、および/または高レベルの抗アポトーシスタンパク質、Mcl−1および/またはBag−1を発現する癌細胞に対して効果がある。このような癌細胞は、少なくともいくつかの型の前立腺癌細胞を含む。
【0013】
活性PPAR−γは、コアクチベーター・タンパク質(CBP)、ホルモン抵抗性前立腺癌において過発現されることが知られているアンドロゲン受容体のコアクチベーターを結合する。従って、本発明化合物は、通常の抗アンドロゲン治療の効果を高め、前立腺癌の拡大を阻害するのに作用し得る。
【0014】
本発明は、ラセミのエトドラクが精製CLLまたはMM細胞の生存能を、正常な末梢血リンパ球(PBL)の生存能を阻害しない濃度で、阻害することを本発明者が見出したことに基づく。予想外にも、エトドラクのR(−)エナンチオマーがS(+)エナンチオマーと同様にCLL細胞に対して毒性であることが分かった。次いで、エトドラクがフルダラビンおよび2−クロロアデノシンと相乗的に相互作用して、化学療法剤単独では不活性である濃度でCLL細胞を殺すことが分かった。最後に、両R(−)およびS(+)エトドラクが多くの前立腺癌細胞系を阻害することが分かった。さらに、R(−)エナンチオマーがS(+)「抗炎症性」エナンチオマーと少なくとも同等に効果的であった。このことは予想外であった。なぜなら、エトドラクのR(−)エナンチオマーが意味のある抗炎症活性を有していないし、またS(+)エナンチオマーにインビボで有意な量に転換されないからである。上記のように、他のR−2−アリールプロピオン酸塩NSAIDのR−エナンチオマーは「活性」抗炎症性S−エナンチオマーにインビボで転換され、NSAIDのプロドラッグとして機能する。
【0015】
阻害の程度は、細胞系によるPPAR−γの発現レベルに非常に関係する。高いレベルのPPAR−γ発現を有する細胞系が、比較的低いレベルでPPAR−γを発現する細胞系よりも非常に効果的に阻害される。このことは参考例に開示する。
【0016】
式(I)の化合物は、いくつかのNSAIDがもたらすシクロオキシゲナーゼ(COX)の阻害による望ましくない生物活性を発揮しないような本発明の治療法に好ましい。しかし、式(I)の好ましい化合物は、顕著な抗炎症活性を示さないので、当技術分野でNSAIDとみるべきでない。
【0017】
本発明はまた、前立腺癌などの特定の癌患者が式(I)の化合物による処置に適用できるかどうかを決定する方法を提供する。この方法は、癌細胞を単離し、PPAR−γおよび/またはMcl−1および/またはBag−1の相対的レベルをインビトロで、式(I)の化合物による処置に感受的であることが知られている前立腺癌細胞系などの癌細胞系におけるレベルと比較して評価することを含む。
【0018】
本発明はまた、前立腺癌などの癌細胞を阻害する試験薬剤の能力を決定する方法を提供する。この方法は、前立腺癌細胞系などに由来する癌細胞の集団を該薬剤に接触せしめ、薬剤がPPAR−γの発現を増加するか、またはMcl−1および/またはBag−1の発現を減少するか(または両者)どうかを測定することを含む。本発明はまた、エトドラク同族体や他のNSAIDなどの薬剤を、癌、好ましくは、前立腺癌、CLL、MMなどのエトドラク感受性癌を阻害する能力について評価する一般的な多レベルスクリーニング法を提供する。陽性活性を示す、R(−)エトドラクの活性に少なくとも等しい薬剤、または陰性活性を示さない、すなわちR(−)エトドラクを越える活性でない薬剤を次ぎのスクリーニングに移す。
【0019】
試験薬剤について、エトドラク、例えば、放射標識されたR(−)エトドラクの、CLL細胞などのエトドラク感受性癌細胞上のその受容体との結合を競合的に阻害する能力を検査する。細胞上のエトドラク結合部位についてR(−)エトドラクと効果的に競合し得る薬剤は、CLL細胞などの癌細胞におけるCa+2取りこみを、好ましくは、R(−)エトドラクと同様に効果的に、増加し得るかを測定するアッセイで検査する。細胞内Ca+2取りこみを誘導し得る薬剤のスクリーニングを行い、B−CLLリンパ球などのリンパ球集団における化学運動性活性(化学運動性または化学走化性)を、好ましくは、R(−)エトドラクと同様に効果的に、その薬剤が誘導し得るかを調べる。ついで、このスクリーニングで陽性である薬剤を検査して、CLLやエトドラクに対する感受性が知られている他の癌細胞などの癌細胞におけるアポトーシスやプロアポトーシス因子、例えばカスパーゼ活性の増加を、少なくともR(−)エトドラクと同様に効果的に、誘導し得るかどうかを調べる。
【0020】
このスクリーニングで陽性であった薬剤について、マウスでリンパ球を欠失する能力を検査し、ついでR(−)エトドラク以上の活性でない薬剤を癌の動物モデルで検査して、癌の誘発または拡大を阻害できるかどうかを調べる。
【0021】
癌および癌細胞に関しての使用において、用語「阻害」または「阻害する」は、細胞増殖の減少、細胞増殖の遮断、該細胞のいくつかまたはすべてを殺すことを含む。すなわち、この用語は、癌の発生を防止する予防的処置または発生している癌の拡大を阻止または遅延する治療の両方の意味で使用し得る。エトドラク処置に感受性のマーカーの発現レベルがエトドラクまたはそのアナログでの処置を継続するのに十分高いかどうかを、下記するように、抵抗性および感受性の癌細胞系における該マーカーの相対的レベルの比較により決定する。
【0022】
図面の簡単な説明
図1は、正常な末梢性血リンパ球(PBL)のラセミ・エトドラクに対する感受性を表示するグラフである。
図2は、CLLのラセミ・エトドラクに対する感受性を表示するグラフである。
図3は、ラセミ・エトドラクとフルダラビンの併用のCLL細胞に対する相乗作用を表示するグラフである。
図4は、50μMのエトドラクと10μMの2CdAまたは10mMのフルダラの併用のCLL細胞に対する相乗作用を表示するグラフである。
図5は、CLL細胞のS−およびR−エトドラクに対する感受性を表示するグラフである。
【0023】
図6および7は、エトドラク投与の前と後での2患者に由来するCLL細胞の生存能を表示する。
図8は、エトドラク投与の前と後でのCLL細胞についてのフローサイトメトリー分析を表示する。
図9および10は、R(−)エトドラクの2患者由来のMM細胞に対する選択的作用を表示する。
【0024】
図11は、MG−132により遮断されるMcl−1(パネルA)およびBag−1(パネルB)における急速な下方調整をエトドラクが誘導することを示すSDS−PAGEゲルの写真である。
図12は、7癌細胞系によるPPAR−γ発現を表示するSDS−PAGEゲルの写真である。
図13は、エトドラクおよびインドメタシンによるPPAR−γ発現の誘導を表示するグラフである。
図14は、ヒト単球におけるTPAの存在または不存在で、エトドラクおよびTGZにより誘導されるCD36の発現を表示するグラフである。
図15は、エトドラクで非処置(A)および処置(B、C、D)の前立腺癌組織切片の写真である。
【0025】
本発明のインドール化合物は、下記式(I)の化合物またはその薬学的に許容される塩、例えば、有機酸または無機酸との塩を含む。
【化4】
Figure 2004518615
式中、Rは、低級アルキル、低級アルケニル、(ヒドロキシ)低級アルキル、低級アルキニル、フェニル、ベンジルおよび2−チエニルよりなる群から選ばれ、R、R、R、Rは、同一または相違して各々水素および低級アルキルよりなる群から選ばれ、各Rは、独立的に水素、低級アルキル、ヒドロキシ、(ヒドロキシ)低級アルキル、低級アルコキシ、ベンジルオキシ、低級アルカノイルオキシ、ニトロおよびハロよりなる群から選ばれ、nは、1−3であり、Rは、水素、低級アルキルおよび低級アルケニルよりなる群から選ばれ、Xは、オキシおよびチオよりなる群から選ばれ、Yは、カルボニル(CH1−3、(CH1−3C(O)および(CH1−3SOよりなる群から選ばれ、Zは、ヒドロキシ、低級アルコキシ{OH、4−ピリジル、アミノ、低級アルキルアミノ、ジ(低級アルキル)アミノまたはN−モルホリノで選択的に置換されている}、アミノ、低級アルキルアミノ、[(カルボキシ)(低級アルキル)]アミノ、ジ(低級)アルキルアミノおよびフェニルアミノよりなる群から選ばれ、Y−Zは、(CH1−3[うち、Rは、OH、(C−C)アシルオキシ、SOH、PO、N(NO)(OH)、SONH、PO(OH)NHまたはテトラゾール]である。低級アルキル、アルケニル、アルカノイルなどは、分枝、環状または直鎖のC−C基、好ましくはC−C基を意味し、シクロアルキルおよび(シクロアルキル)アルキルを含む。(ヒドロキシ)低級アルキルまたはアルコキシは、好ましくは1−または2−ヒドロキシエチルである。
【0026】
上記で説明したように、エトドラクのR(−)エナンチオマーの比較的低い水溶性が、経口投与または水性運搬体での投与のときに、癌に対する有用性を低くすることがある。従って、本発明はまた、エトドラクの遊離酸または簡単なアルキルエステルを越える高い水溶性および/またはバイオアベイラビリティを発揮する新規のインドール化合物を提供する。このようなアナログには、エトドラクの(ピリジニル)低級アルキルエステル、(アミノ)低級アルキルエステル、(ヒドロキシ)低級アルキルエステル、1’−D−グルクロン酸エステル、例えば、式(II)の化合物がある。式中、(a)Yはカルボニル、および(b)Zは、(ω−(4−ピリジル)(C−Cアルコキシ)、(ω−((R)(R)アミノ)(C−Cアルコキシ)[うち、R および R は、各々H、(C−C)アルキルまたはNと一緒に1−3N(R)、Sもしくは非過酸化物Oを含む5または6員の複素環である]、(ω−(OH)(C−C))アルコキシのアミノ酸エステル、例えば、2−ヒドロキシエトキシ、1’−D−グルクロニルオキシのL−バレリンまたはL−グリシン・エステルである。水溶性の増加した他のアナログには、アミノ酸アミドがあり、Yがカルボニルであり、ZがN(R)CH(R)COOHである。
【0027】
このような化合物は、下記文献に開示のように調製できる。米国特許3,843,681、米国特許出願09/313,048、ドイツ特許2,226,340(Amer. Home Products)、R. R. Nartel et al., Can. J. Pharmacol., 54, 245 (1976)、Demerson et al., J. Med. Che., 19, 391 (1976)、PCT出願US/00/13410、米国特許4,337,760(Rubin)。
【0028】
式(I)のラセミ化合物の分割は、通常の手段、例えば、光学活性分割アミンとのジアステレオマー塩の形成などを用いて行い得る。参照、例えば、”Stereochemistry of carbon Compounds,” by E. L. Eliel (McGraw Hill, 1962); C. H. Lochmuller et al., J Chromatog., 113, 283 (1975); ”Enantiomers, Racemates and Resolutions,” by J. Jacques, A. Collet, and S. H. Wilen, (Wiley−Interscience, New York, 1981); S. H. Wilen, A. Collet and J. Jacques, Tetrahedron, 33, 2725 (1977)。例えば、ラセミ体の分割は、光学活性1−フェニルエチルアミンを用いるRS−エトドラクの分別結晶により行われ、HPLCを用いて、尿中のエトドラクと2ヒドロキシ化代謝体のラセミ・エトドラクとエナンチオマーの比率が測定されている(U. Becker−Scharfenkamp et al., J. Chromatog., 621, 199 (1993)。B. M. Adger et al.(米国特許5,811,558)は、グルタミンとN(C−Cアルキル)グルタミン塩を用いるエトドラクの分割を開示している。
【0029】
エトドラク自体(1,8−ジエチル−1,3,4,9−テトラヒドロ[3,4−6]インドール−1−酢酸は、ピラノカルボン酸類のNSAIDであり、1970年代の前半に開発された。その構造を下記に式(II)で示す。式中(*)はキラル中心である。参照、The Merck Index (11th ed.) 608 頁。
【化5】
Figure 2004518615
【0030】
エトドラクの薬物動態は、D. R. Brocker et al., Clin. Pharmacokinet., 26, 256 (1994) に詳細に総説されている。エトドラクはラセミ体で市販されている。エナンチオマーの絶対立体配置はS(+)およびR(−)であることが知られており、多くの他のNSAIDと同じである。しかし、Demerson et al., J. Med. Chem., 26, 1778 (1983) によると、アジュバント多関節炎のラットの足掌量の減少および薬物のプロスタグランジン・シンテアーゼ阻害活性による測定で、エトドラクのS(+)エナンチオマーがラセミ体のほとんどすべての抗炎遮症活性を保有していた。抗炎症活性が(−)エナンチオマーでは認められず、このものがインビボでS(+)エナンチオマーに有意に転換していない。しかし、下記するように、R(−)エトドラクは、S(+)エナンチオマーに少なくとも同等の、癌細胞に対する活性を有することが分かった。
【0031】
エトドラクは、その立体選択的薬物動態からして、いくつかの特殊な配置特性を有する。血漿において、RS−エトドラク投与後、「不活性」R−エナンチオマーの濃度が活性S−エナンチオマーの濃度よりも約10倍高い。このことはキラルNSAIDで新しいことである。参照、D. R. Brockers et al., Clin. Pharmacokinet., 26, 256 (1994)。6人の高齢患者に200mgを投与後、血漿でのR−エナンチオマーの濃度が約33μMであった。一方、S−エナンチオマーの濃度は5倍低かった。エトドラクのラセミ混合物の典型的な用量は400mgBIDであり、その消失半減期は6−8時間である。さらに、精製されたR−エナンチオマーの投与が、シクロオキシゲナーゼ(COX)阻害剤に関連する副作用、潰瘍や腎不全を示さないようである。従って、かなりの高用量で投与できる。それにもかかわらず、R(−)エトドラクの比較的低い水溶性が、ヒトで癌細胞、特に前立腺癌細胞を阻害し得るような血漿レベルを保持するのに障害になることがある。しかし、式(I)の化合物は、水などの水性媒体中に、R(−)エトドラクよりも実質的に高い濃度で溶解し得る。
【0032】
式(I)の化合物はまた、その薬学的に許容される塩または薬学的に許容されない塩の形態で調製できる。薬学的に許容されない塩は、薬学的に許容される塩の製造の中間体として有用である。薬学的に許容される塩は、親化合物の望ましい生物活性を保持する塩であり、望ましくない毒性作用を有しない。このような塩の例には、(a)無機酸、例えば、塩酸、臭化水素酸、硫酸、リン酸、硝酸などとの酸付加塩;および有機酸、例えば、酢酸、シュウ酸、酒石酸、コハク酸、マレイン酸、フマル酸、グルコン酸、クエン酸、リンゴ酸、アスコルビン酸、安息香酸、タンニン酸、パルミチン酸、アルギニン酸、ポリグルタミン酸、ナフタレンスルホン酸、メタンスルホン酸、p−トルエンスルホン酸、ナフタレンジスルホン酸、ポリグルクロン酸などと形成される塩、(b)元素性アニオン、例えば、塩素、臭素、ヨウ素から形成される塩がある。好ましいカルボン酸塩は親水性アミンのもので、例えば、グルカミンやN−(C−C)アルキルグルカミンである(参照、Adger et al.の米国特許5,811,558)。
【0033】
癌、すなわち前立腺癌の急性または慢性的処置における式(I)化合物の予防または治療用量の大きさは、癌の型および/または段階、使用された補助の化学療法剤などの抗癌治療、投与経路により変ってくる。用量および投与頻度も個々の患者の年齢、体重、状態、反応により変わる。一般的に、式(I)の化合物の全1日用量は、本明細書に記載の状態について、単回または分割投与で約50mgから約5000mgである。好ましくは、1日用量は、単回または分割投与で約100mgから約4000mgである。さらに好ましくは、約1000mgから約3000mgであり、例えば、6時間ごとに750mgを経口投与する。これにより、約500−750μMの血漿濃度が得られ、癌細胞を殺すのに効果的であり得る。患者を処置する場合に、治療を低い量から始め、患者の全身的状態に応じて増量する。さらに、幼児、小児、65歳以上の患者および腎や肝の機能に障害のある患者には、特にCOX阻害活性を保持するアナログの低量で始め、その全身的応答および血中レベルに基づいて用量を定めることが推奨される。ある場合には、この範囲外の用量が必要となることもある。さらに、臨床家や担当医が個々の患者の反応に応じて、どのように、いつ治療を中断、調整、中止するのかを知っているであろう。用語「有効な阻害量」または「有効な感受量」は、上記の投与量および投与頻度スケジュールに含まれる。
【0034】
式(I)の化合物の有効量を患者に与えるために、適当な投与経路を用い得る。例えば、経口、経直腸、非経口(皮下、静脈内、筋肉内)、鞘内、経皮などの投与形態をとることができる。用量形態には、錠剤、トローチ、分散剤、懸濁液、溶液、カプセル、パッチなどがある。化合物の投与は、化学療法剤の投与の前、同時または後に、または継続的に1日量で、化学療法の全体または一部分として行い得る。ある場合、抗癌化学療法剤の運搬に使用されるのと同じ担体または運搬体と組合すことができる。
【0035】
すなわち、本発明化合物は、例えば経口で、不活性稀釈剤または適応性の担体などの薬学的に許容される運搬体と組合せて、全身的に投与できる。本発明化合物は、硬または軟カプセルとすることも、錠剤に打錠することも、患者の食物に直接入れることもできる。経口治療での投与では、活性化合物を1以上の賦形剤と組合せ、服用錠、口腔錠、トローチ、カプセル、エリキシル、懸濁液、シロップ、ウェファーなどとし得る。このような組成物および製剤は、活性化合物を少なくとも0.1%含有する。この組成物および製剤の%は、もちろん変るものであって、通常は所定の単位用量形態の重量の約2〜60%である。この治療上有用な組成物中の活性化合物の量は、有効な用量レベルが得られるであろう量である。
【0036】
錠剤,トローチ、丸剤、カプセルは、下記のものも含有し得る:トラガントガム、アラビアゴム、トウモロコシデンプン、ゼラチンなどの結合剤;ステアリン酸マグネシウムなどの滑沢剤;スクロース、フルクトース、ラクトース、アスパラテームなどの甘味剤;ペパミント、アカモノ油、チェリーフレイバーなどの香料。単位用量形態がカプセルの場合、上記のものに加えて、植物油やポリエチレングリコールなどの液体担体を含有し得る。種々の他の物質が、被膜として、あるいは固体単位用量の物理的形態を改変するものとして存し得る。例えば、錠剤、丸剤、カプセルは、ゼラチン、ワックス、シェラック、糖などで被膜し得る。錠剤、丸剤、カプセル、顆粒、微粒子などは、腸溶被覆することができる。例えば、Eudragit(商標)ポリマーのひとつでの被覆で、腸で活性化合物を放出するが、胃の酸性状態では放出しない形態にできる。このものは、顕著なCOX阻害活性をもつ化合物で高齢または虚弱体質の癌患者を処置する場合や潰瘍が併存する場合に利点がある。
【0037】
シロップまたはエリキシルは、活性化合物、甘味剤としてスクロースまたはフルクトース、保存剤としてメチルパラベンおよびプロピルパラベン、チェリーやオレンジ風味などの色素および香料を含有し得る。もちろん、単位用量形態の調製に使用される物質は、適用量で、薬学的に許容され、実質的に非毒性でなければならない。さらに、活性化合物を持続放出製剤や装具に組込むこともできる。
【0038】
活性化合物は、注入や注射で静脈内または腹腔内に投与できる。活性化合物またはその塩の溶液を水で、選択的に非毒性の界面活性剤と混合して、調製できる。分散液もグリセロール、液体ポリエチレングリコール、トリアセチンおよびこれらの混合物中で、または油中で調製できる。貯蔵または使用についての通常の状態で、これらの製剤は微生物の発生を防ぐために保存剤を含有する。
【0039】
注射や注入に適する薬学的用量形態には、無菌の注射または注入可能の溶液または分散液の即席調製に適合するようになされた活性成分を、リポソーム中に選択的に封入、含有する無菌の水溶液または分散液または無菌の粉末がある。すべての場合、最終用量形態は、製造および貯蔵の条件で、無菌、流動的、安定でなければならない。液体の担体および運搬体は、例えば、水、エタノール、ポリオール(例えば、グリセロール、プロピレングリコール、液体ポリエチレングリコールなど)、植物油、非毒性グリセリルグリコール、およびこれらの適当な混合物を含む溶媒または液体分散媒体である。適当な流動性は、リポソームの形成、分散液の場合の必要な粒子サイズの維持、または界面活性剤の使用により保持できる。微生物作用の防止は種々の抗菌剤または抗真菌剤により行い得る。例えば、パラベン、クロロブタノール、フェノール、ソルビン酸、チメロサルなどによる。多くの場合、等張剤、例えば、糖、緩衝剤、塩化ナトリウムなどを含むのが好ましい。注射用組成物を長時間で吸収さすには、吸収を遅らす物質、例えば、モノステアリン酸アルミニウムやゼラチンなどの組成物を使用する。
【0040】
無菌注射液は、活性化合物を必要量で適当な溶媒中に上記の種々の成分とともに組込み、必要に応じてろ過滅菌を行って調製できる。無菌注射液を調製するための無菌粉末の場合、好ましい調製法は真空乾燥および凍結乾燥であり、予め滅菌ろ過した溶液中に活性成分および追加の所望成分を得る。
【0041】
式(I)の化合物の有用な用量は、インビトロ活性および動物モデルでのインビボ活性を比較することで決定できる。マウスなどの動物での有効用量をヒトに外挿する方法は当技術分野で既知である。例えば、参照、米国特許4,938,949。
【0042】
PPAR−γレベルを高め、ホルモン無反応性前立腺癌において過剰発現されることが知られているアンドロゲン発現を減少する式(I)の化合物の能力からして、PPAR−γを上方調節する化合物は、前立腺癌の処置において使用されるステロイドまたは非ステロイド性の抗アンドロゲン剤と併用して、好都合に用い得る。抗アンドロゲン剤には、酢酸ロイプロリド、酢酸ゴセレリン、ビカルタミド、フルタミド、ニルタミド、シクロプロテロンなどがある。
【0043】
前立腺癌細胞を感受性とするPPAR−γレベルを通常の化学療法剤の有効レベルまで低下せしめる式(I)の化合物の能力からして、この化合物は、前立腺癌などの癌の処置に用いられる化学療法剤と併用できる。この化学療法剤には、エストラムスチン、ビンブラスチン、ミトキサントロン、プレドニソンなどがあり、またはMMの処置のメルファレンがある。他の化学療法剤、放射線、または抗腫瘍性抗体やサイトカインなどの他の抗癌剤を本発明化合物とともに使用し得る。参照、例えば、Remington’s Pharmaceutical Sciences (18th ed. 1990) 1138−1162 頁。
本発明を下記の詳細な実施例でさらに説明する。
【0044】
実施例1 正常な末梢血リンパ球およびCLL細胞のエトドラクに対する感受性
単核細胞を、B−CLL患者および正常ドナーの末梢血から、密度勾配遠心法(Ficoll−Paque) を用いて単離した。細胞を2X10細胞/mLでRPMI中20%自己血漿とともに96ウエルプレートにおいて、表示のμM濃度のエトドラク(ラセミ、S−エトドラク、R−エトドラク)の存在または不存在で、および2−クロロ−2’−デオキシアデノシン(2CdA)またはフルダラビンと組合せて、培養した。表示の時間(12、24、36、48、60、70時間)で、生存能アッセイを、エリスロシンB排除アッセイ法(D. Carson et al., PNAS USA, 89, 2970 (1992) に記載)を用いて行った。
図1に示すように、正常PBLの有意の死が、インビボで得られない濃度、800μMのラセミ・エトドラクで生じた。
【0045】
正常ドナーからの末梢血リンパ球を1.0mMエトドラクとともに24時間培養した。Bリンパ球を抗CD19抗体での着色で同定し、生存能をDiOC蛍光法で検査した。この条件でエトドラクは正常B細胞の生存能を対照培養物に比して減少せしめなかった。同じ生存能アッセイをCLL患者の末梢血からの精製CLL細胞で行うと、結果が異なった。図2に示すように、50%のCLLが200μMラセミ・エトドラクへの48時間曝露で死滅した。処置された細胞の95%以上が悪性Bリンパ球であった。
【0046】
実施例2 エトドラクと化学療法剤の相乗的併用
フルダラビンはCLLの治療に普通に使用されるヌクレオシド・アナログである。この試験において、CLL細胞のインビトロ生存を表示時間点で、媒体のみ(「Con」、四角)、10nMフルダラビン(菱形)、10μMエトドラク(黒丸)、10nMフルダラビン+10μMエトドラク(白丸)を含有する培地で比較した。2薬剤は一緒になって相乗的な細胞毒性効果を発揮した。図3は、この組合せが48時間の培養において50%のCLL細胞を殺したことを示す。一方、いずれの薬剤も単独では効果がなかった。図4は、同じ試験条件での50μMエトドラクおよび10nMの2−クロロデオキシアデノシンおよびフルダラビンの相乗作用を示す。
【0047】
実施例3 R(−)およびS(+)エトドラクのCLL細胞に対する作用
エトドラク錠を乳鉢で砕き、酢酸エチルで抽出した。得たエナンチオマーのラセミ混合物を、Becker−Scharfenkamp and Blaschke, J. Chromatog., 621, 199 (1993) 法のフラクション結晶化により分取スケールで分離した。すなわち、ラセミ混合物固体を絶対2−プロパノールに溶解し、その溶液にS−1−フェニルエチルアミンを加えた。得た塩溶液を冷蔵庫に4日間貯蔵した。結晶性の白色塩産物をろ過し、冷2−プロパノールで洗い、2−プロパノールから2回以上再結晶した。分割剤としてR−1−フェニルエチルアミンを用いる以外は同じ方法をR異性体に繰り返した。最後にRおよびS塩を10%硫酸(v/v)で分解、酢酸エチルで抽出した。キラル純粋の各異性体を、Chrom Tech の Chiral−AGP カラムを用いるHPLCで確認した。
【0048】
10%自己血漿を有するRPMI−1640培地で培養したCLL細胞に対する2エナンチオマーの毒性を表示の濃度および時間点で比較した。図5に示す。R−およびS−エナンチオマーは等しくCLL細胞に対し細胞毒性である。
【0049】
実施例4 エトドラク処置の前と後のCLL細胞生存能
CLLの2人の患者(JKおよびNA)からの血液を取り、ヘパリン処理した。ついで、各患者はすぐに400mgエトドラク錠を服用し、12時間後に第2錠を服用した。12時間後に、第2血液標本を採取した。CLL細胞を単離し、実施例1のように、そのインビトロでの生存を10%自己血漿含有RPMI−1640培地で比較した。黒丸はエトドラク処置前のCLL細胞を示す。図6および7において、上向き三角はエトドラク処置後のCLL細胞生存能を示す。なお、細胞は前処置血漿を含有する培地に分散されている。下向き三角は処置後血漿の培地に保持されている処置後CLL細胞である。
【0050】
図6は、患者JKからの2細胞集団の生存を示す。処置後の細胞は処置前の細胞よりも生存が短い。図7は、患者NAでの劇的でないが同様の効果を示す。図8は、患者JKのCLL細胞についてエトドラク処置の前および後でのフローサイトメトリー分析を示す。DiOCはミトコンドリアにより捕捉される染料である。細胞がアポトーシスにより死ぬと、染色強度が低下する。図8の4パネルのX軸はDiOC染色を示す。左下ボックス中のドット数の増加がアポトーシスによる死を表す。患者からの細胞をエトドラク処置前と処置後で比較すると、左下ボックス中のドット数が薬剤投与後に非常に高いことがわかる。この効果は12時間で検出でき、24時間後にさらに増加する。
【0051】
フローサイトメトリー分析を行うために、ミトコンドリア膜貫通能を3,3’−ジヘキシルオキサカルボンシアナミドヨウ化物(DiOC)により、細胞膜浸透性をヨウ化プロピジウム(PI)により、ミトコンドリア呼吸をジヒドロローダニン123(DHR)により分析した(参照、J. A. Royall et al al., Arch. Biochem. Biophys., 302, 348 (1993))。CLL細胞を12時間または24時間、表示量のエトドラクとともに培養した後、40nMのDiOCおよび5μg/mlのPIを含有する培地で、細胞を10分間37℃で培養した。細胞をまた、表示量のエトドラクとともに3時間培養し、200xgで10分間回転沈降し、新鮮な呼吸緩衝液(250mMスクロース、1g/Lウシ血清アルブミン、10mMのMgCl、10mMのK/Hepes、5mMのKHPO(pH7.4))に再懸濁し、10分間37℃で0.04%ジギトニンとともに培養した。細胞を5分間0.1μMジヒドロローダニン(DHR)で処理した。細胞を30分間 Becton Dickinson FAC−Scalibur サイトフルオロメーターで解析した。適当な処理の後、蛍光を異なる波長で記録した:DiOCおよびDHRを525nm(FL−1)、PIを600nm(FL)。
【0052】
一般的に、インビトロ培養16時間後で、処置後の悪性細胞の生存に10%の減少が前処置悪性細胞に比してあり、この試験で「陽性」であり、CLLなどの癌治療におけるエトドラク、すなわちR(−)エトドラクの有用性を表す。
【0053】
実施例5 MM細胞を選択的に殺すR(−)エトドラクの能力
骨髄を多発性骨髄腫の2患者から得た。骨髄は、高レベル発現のCD38膜抗原を含む悪性細胞と正常細胞の混合物を含有していた。懸濁した骨髄細胞を、72時間、RPMI−1640培地で10%ウシ胎児血清および種々の濃度の精製エトドラクのR−エナンチオマーとともにインキュベートした。ついで、死細胞をヨウ化プロピジウムで染色し、多発性骨髄腫細胞を蛍光モノクローナル抗CD38抗体で着色した。データを蛍光活性化細胞ソーティングで分析した。図9および10は、両患者に由来する骨髄細胞において、R−エトドラクが正常の骨髄細胞を殺さなかったが、多発性骨髄腫を用量依存的に殺したことを示す。
【0054】
実施例6 エトドラクの癌細胞系に対する細胞毒性
表1に要約するように、R(−)エトドラクの前立腺癌細胞およびひとつの大腸癌細胞に対する細胞毒性効果を、1g用量のR(−)エトドラクがヒトにおいて最大血漿濃度約400μMをもたらすとすると、臨床的に達し得る濃度で発揮する。R(−)およびS(+)エナンチオマーの両者が細胞毒性であることから、抗前立腺癌活性はCOX依存性であるといえる。R(−)エトドラクは、抗炎症活性を欠くにもかかわらず、S(+)エナンチオマーよりも前立腺癌細胞に対し毒性である。
【0055】
【表1】
Figure 2004518615
*エトドラクR/S,RまたはSのIC50(μM)。細胞毒性を、減少さした濃度の薬剤に対する連続的曝露の3日間後にMTTアッセイで検査した。結果はヨウ化プロピジウム摂取を用いるFACSで検定した。
【0056】
平面的疎水性化合物として、エトドラクおよび他のNSAIDは、細胞および器官の膜を容易に通過し、その構造および機能を破壊する(S. B. Abramson et al., Arthritis and Rheumatism, 32, 1 (1989))。タンパク質Mcl−1およびBag−1はミトコンドリアに存するbcl−2ファミリーの抗アポトーシス性メンバーである(X. Wang et al., Exp. Cell Res., 235, 210 (1997))。100μMエトドラクとのインキュベーション後早くも2時間で、Mcl−1およびBag−1がエトドラク感受性前立腺癌細胞系(LNCaP)において低下した。Mcl−1およびBag−1レベルの低下は、5.0μMのMG−132(最近発表されたプロテアソーム阻害剤)との前立腺細胞のインキュベーションで防止できる(夫々、図11のパネルAおよびB)(D. H. Lee et al., Trends Cell Biol., 8, 397 (1998)。洗剤分解物(レーンごと20μg)をSDS−PAGEにかけ、抗Mcl−1および抗Bag−1抗体でイムノブロットした。広スペクトル・カスパーゼ阻害剤であるZ−VADとの前インキュベーションはMcl−1およびBag−1下方調整を防止しなかった。エトドラクのインキュベーションはBcl−2およびBaxレベルを変えなかった(データを表示しない)。すなわち、エトドラクはMcl−1合成を妨害しないが、その取り込みをおそらく加速する。両R−およびS−エトドラクがMcl−1変性を等しい量で誘導した。
【0057】
実施例8 癌細胞系におけるPPAR−γの発現
エトドラクについては前に検討されていないが、高濃度の他のNSAIDが核ホルモン受容体PPAR−γを活性化すると報告されている(J. M. Lehmann et al., J. Biol. Chem., 272, 3406 (1997)。さらに、PPAR−γの最大活性化がヒトのマクロファージでアポトーシスを誘導する(G. Chinetti et al., J. Biol. Chem., 273, 25579 (1998))。前立腺細胞がPPAR−γを発現するかを調べ、他の癌型と発現レベルを比較することは興味深い。サブコンフルエント細胞系から得た洗剤分解物(レーンごと20μg)をSDS−PAGEにかけ、抗PPAR−γ抗体でイムノブロットした。PPAR−γ内容物を正常にするために、膜を抗アクチン・モノクローナル抗体で再ブロットした。レーン1:PC−3、レーン2:SW260、レーン3:A549、レーン4:MDA−MB−231、レーン5:Alva−31、レーン6:LNCaP、レーン7:HCT−116(参照、表1)。いくつかのエトドラク感受性前立腺細胞(特にPC3)が非常に高レベルの免疫反応性PPAR−γを発現したことがわかる(図12)。
【0058】
実施例9 エトドラクによるPPAR−γの活性化
RAW264.7細胞を密度3x10細胞/mlで6ウエルプレートにおいて、リポフェクタミンをPPAR−γ発現ベクターpCMX−PPAR−γ(0.1μg)およびPPAR−γ受容体構築体(AOx)−TK−Luc(1μg)とともに用いて、M. Ricote et al., Nature, 391, 79 (1998) に記載のように、トランスフェクトした。細胞を24時間、図13に表示の化合物で処理し、採取し、ルシフェラーゼ活性についてアッセイした。結果を平均±SDで示す。図13に示すように、エトドラクの両R−およびS−エナンチオマーがPPAR−γレポーター遺伝子構築体を、ヒト血漿で容易に活性化される濃度で、インビボ投与後に活性化した。THP−1ヒト単球細胞(ATCC)をホルボルエステル(40ngTPA)および200μMラセミ・エトドラクまたは20μMトログリタゾンの存在または不存在で、インキュベートした。培養3日後に、スカベンジャー受容体CD36の表面発現をフローサイトメトリーで測定した。図14に示すように、両R−およびS−エトドラクがCD36、PPAR−γ活性化のマーカーの発現を、ヒト細胞系THP−1においてマクロファージ分化の際に起こした。
【0059】
実施例10 前立腺癌組織サンプルのエトドラク処置
新たに得た前立腺切除サンプルを3mm片に切断し、72時間10%FBSおよび抗体を補充したRPMI−1640中で、ラセミ・エトドラクの不存在(A、400x)または存在(B、400x)、または精製Rエナンチオマーの不存在(C、400x)または存在(D、400x)でインキュベートした。組織を4%パラホルムアルデヒドPBSに固定し、パラフィンに埋没し、切片とし、エキサトキシリンおよびエオシンで着色した。図15Aは、浸潤腫瘍細胞(大核)およびいくつかの残留正常上皮を示す。図15Bから15Dは、エトドラクの作用を示す:濃縮アポトーシス性核の豊富な存在(黒矢印、BおよびD)および新生の腺構築の崩壊(B+C)に注意。エトドラクは、腫瘍細胞に選択的に毒性であるが、正常な基細胞に影響を与えなかった。ラセミ混合物(R/S)ならびに精製RおよびSアナログはともに活性であった。
【0060】
実施例11 エトドラク・アナログを同定するスクリーニングのための予期プロトコール
A.放射標識R−エトドラクとの競合によるアナログのスクリーニング
エトドラク感受性の慢性リンパ球白血病(CLL)細胞などの癌細胞を放射受容体結合アッセイにおける薬剤スクリーニングに用いる。簡単にいうと、冷凍CLLを3回ハンクス・バランス塩溶液(HBSS)で洗い、HBSS−HEPESに再懸濁する。約2百万の細胞、[3H]−R−エトドラク(sp.act. 20−25 Ci/mmol、Sibtech 調製)、および可能性ある競合物または緩衝液を含有する全量200μlを、温度(4および37℃)および時間(0−60分)を変えてインキュベートする。各サンプルにつき、3回の50μlアリコットを、300μlの20%スクロースHBSS−HEPES上に1.5mlポリプロピレン・スナップ・トップ・チューブ中で重ね、ベックマン microfuge 中で2.5分間15000rpmでペレット化する。この操作により細胞結合と細胞遊離のエトドラクを迅速に分離する。チューブ・チップを切除し、細胞ペレットを可溶化し、シンチレーション計数器で数える。いくつかのインキュベーション混合物は対照として過剰の非標識エトドラクを含有する。特異的結合は、放射標識エトドラク含有のチューブでの結合cpm引く放射標識エトドラクおよび非標識冷競合エトドラク含有のチューブでのcpmの差である。試験薬剤を非標識冷競合エトドラクと、放射標識エトドラク結合を阻害する能力について比較する。放射標識エトドラクのその受容体との結合を阻害し得る化合物を次ぎのスクリーニングにかける。
【0061】
B.CLLにおける細胞内Ca2+の動員
エトドラク・アナログなどの試験化合物によるCLL細胞中のカルシウムレベルの増加を、フローサイトメトリーアッセイ(FACS)により、およびFluo−4染料(Molecular Probes) を用いる蛍光造影プレートリーダー・システム(FLIPR, Molecular Devices Corp., Sunnyvale, CA)により測定する。簡単にいうと、CLL細胞(5x10/ml)を30分間4μMのFluo−4染料で37℃、血清なしの培地中で処理し、2回洗い、さらに30分間、通常の細胞培養基中に再懸濁する。処理細胞をFACSチューブ中で試験薬剤含有の培地に混合し、直ちに3分間以上FACS分析で蛍光を調べる。高情報量スクリーニング(HTS)アッセイのために、同じ蛍光染料(Fluo−4)を用いて、FLIPRに基づくアッセイにより96ウエル・プレート・ホーマットでスクリーニングを行う。正対照として、カルシウム・イオノフォア・イオノマイシンを50ng/mlの最終濃度で、SDF−1およびIP−10などのケモカインとともに、および抗IgM架橋抗体とともに使用する。CLL細胞によるCa+2摂取を増加する化合物、好ましくはR(−)エトドラクにより誘導されるレベルまで増加する化合物を次ぎのスクリーニングにかける。
【0062】
C.化学走性および化学運動性アッセイ
細胞移動を24ウエル修飾Boydenチェンバー(Transwell, Corning−Costar, NY) で調べる。組換えヒトIP−10ケモカイン(R&D Systems, McKinley Place, NE)をRPMI−1640培地に200ng/mlに稀釈して、B−CLL患者からのリンパ球の化学走性を検査するのに用いる。3mmの孔サイズのポリカルボン酸塩膜を使用する。全600mlのケモカインまた対照培地をウエル底に入れて、RPMI−1640に再懸濁された100mLの2〜5.0x10細胞/ml細胞をウエルの上方に加える。チェンバーを37℃で5%COとともに2時間インキュベートする。ついで膜を除き、底に存在する細胞をフローサイトメトリーで定量する。細胞定量のために、固定された獲得時間30秒をサンプルごとに用い、ビードを各試験中用い、再製可能な獲得を確認する。化学走性応答などのリンパ球中の化学運動性応答を誘導する試験薬剤、少なくともR(−)エトドラクと同等に有効な試験薬剤を次ぎのスクリーニングに進める。
【0063】
D.癌細胞におけるアポトーシスの誘発
試験薬剤、例えば、R−エトドラク・アナログのアポトーシス性活性を、主要なCLL細胞および他の腫瘍細胞において、MTTアッセイを用いることにより、および蛍光アッセイを用いるカスパーゼ−3の触媒性活性化の測定により試験する。簡単にいうと、細胞を3日まで、連続的稀釈の選択された試験薬剤の存在でインキュベートする。細胞生存性を96ウエルプレート中で、MTT試薬(最終1mg/ml)を24時間加え、次いでSDS細胞分解および分光測光分析に570nmでかけて、定量する。カスパーゼ触媒活性を96ウエル・プレート・アッセイで、特異的蛍光測定基質(DEVD−AMC)を用いて、CHAPS/NP−40分解緩衝液で処理細胞を分解し、蛍光測定アッセイにより測定する。アポトーシス性活性を発揮する試験薬剤、例えば、好ましくは少なくともR(−)エトドラクと同様に効果的に増加する試験薬剤を次のスクリーニングにかける。
【0064】
E.マウスにおけるリンパ球除去
選択された試験薬剤を種々の経歴のマウスに単回量25および100mg/kgで与える。白血球細胞の数を、ノイバウエル・チェンバーを用い、処置の4および24時間後、7および14日後に数える。白血球レベルを実質的に減少しない試験薬剤、好ましくはR(−)エトドラクよりも減少しない薬剤を次ぎのスクリーニングに進める。
【0065】
F.腫瘍動物モデル
R−エトドラク・アナログの抗癌および予防的活性をプリスタン誘導マウス骨髄腫モデルおよびトランスジェニック腺癌マウス前立腺(TRAMP)モデルを用いて試験する。マウスに、0.05〜0.5%の選択試験薬剤または対照を補充した食餌を与える。試験の食餌は試験薬剤を含有する無菌のペレットの形態にある。マウス骨髄腫モデルにおける癌予防試験について、最初のプリスタン注射と同じ時に食餌投与を開始する。トランスジェニック前立腺癌モデルについては、食餌投与を出生時に始める。治療試験について、食餌投与をTRAMPマウスで10週で始め、その時に最初の組織学的病理マーカーを常に調べる。これらのスクリーニングの少なくとも1つで癌を阻害する活性に基づき、アナログを臨床試験またはさらなる開発に進める。
【0066】
上記で引用した発表文献および特許文献のすべてを出典明示により本明細書の一部とする。本発明を種々の具体的で好ましい実施態様および技術で説明した。しかし、多くの変更および修飾を本発明の精神および範囲の内でなし得ることを理解すべきである。
【図面の簡単な説明】
【図1】図1は、正常な末梢性血リンパ球(PBL)のラセミ・エトドラクに対する感受性を表示するグラフである。
【図2】図2は、CLLのラセミ・エトドラクに対する感受性を表示するグラフである。
【図3】図3は、ラセミ・エトドラクとフルダラビンの併用のCLL細胞に対する相乗作用を表示するグラフである。
【図4】図4は、50μMのエトドラクと10μMの2CdAまたは10mMのフルダラビンの併用のCLL細胞に対する相乗作用を表示するグラフである。
【図5】図5は、CLL細胞のS−およびR−エトドラクに対する感受性を表示するグラフである。
【図6】図6は、エトドラク投与の前と後での2患者に由来するCLL細胞の生存能を表示する。
【図7】図7は、エトドラク投与の前と後での2患者に由来するCLL細胞の生存能を表示する。
【図8】図8は、エトドラク投与の前と後でのCLL細胞についてのフローサイトメトリー分析を表示する。
【図9】図9は、R(−)エトドラクの2患者由来のMM細胞に対する選択的作用を表示する。
【図10】図10は、R(−)エトドラクの2患者由来のMM細胞に対する選択的作用を表示する。
【図11】図11は、MG−132により遮断されるMcl−1(パネルA)およびBag−1(パネルB)における急速な下方調整をエトドラクが誘導することを示すSDS−PAGEゲルの写真である。
【図12】図12は、7癌細胞系によるPPAR−γ発現を表示するSDS−PAGEゲルの写真である。
【図13】図13は、エトドラクおよびインドメタシンによるPPAR−γ発現の誘導を表示するグラフである。
【図14】図14は、ヒト単球におけるTPAの存在または不存在で、エトドラクおよびTGZにより誘導されるCD36の発現を表示するグラフである。
【図15】図15は、エトドラクで非処置(A)および処置(B、C、D)の前立腺癌組織切片の写真である。

Claims (50)

  1. 下記式(I):
    Figure 2004518615
    {式中、Rは、低級アルキル、低級アルケニル、(ヒドロキシ)低級アルキル、低級アルキニル、フェニル、ベンジルまたは2−チエニルであり、R、R、R、Rは、同一または相違して各々水素または低級アルキルであり、各Rは、独立的に水素、低級アルキル、ヒドロキシ、(ヒドロキシ)低級アルキル、低級アルコキシ、ベンジルオキシ、低級アルカノイルオキシ、ニトロまたはハロであり、nは、1−3であり、Rは、水素、低級アルキルまたは低級アルケニルであり、Xは、オキシまたはチオであり、Yは、カルボニル、(CH1−3 または(CH1−3SOであり、Zは、(ω−(4−ピリジル)(C−Cアルコキシ)、(ω−((R)(R)アミノ)(C−Cアルコキシ)[うち、R および R は、各々H、(C−C)アルキルまたはNと一緒に1−3N(R)、Sもしくは非過酸化物Oを含む5または6員の複素環である];(ω−(OH)(C−C))アルコキシ、N(R)CH(R)COH、1’−D−グルクロニルオキシのアミノ酸エステルであり、X−Zは、(CH)1−3[うち、Rは、OH、(C−C)アシルオキシ、SOH、PO、N(NO)(OH)、SONH、PO(OH)NH またはテトラゾリルである]である}の化合物およびその薬学的に許容される塩。
  2. Zが2−ヒドロキシエトキシのL−バリンまたはLグリシンのエステルである、請求項1の化合物。
  3. ZがN−モルホリノエトキシである、請求項1の化合物。
  4. 各RがH、CHまたはi−Prである、請求項1の化合物。
  5. ZがOCHCHN(CH である、請求項1の化合物。
  6. 請求項1の化合物を薬学的に許容される担体との組合せで含む組成物。
  7. 錠剤、顆粒またはカプセルである、請求項6の組成物。
  8. 担体が水性運搬体である、請求項6の組成物。
  9. 水溶液である、請求項8の組成物。
  10. 有効量の請求項1の化合物を癌に罹っている哺乳動物に投与することを含む、癌を阻害する方法。
  11. 有効量の請求項6の組成物を癌に罹っている哺乳動物に投与することを含む、癌を阻害する方法。
  12. 癌が前立腺癌である、請求項10または11の方法。
  13. 癌が多発性骨髄腫である、請求項10または11の方法。
  14. 癌が慢性リンパ球白血病である、請求項10または11の方法。
  15. 組成物が経口投与される、請求項11の方法。
  16. 腸溶被膜用量形態で投与される、請求項15の方法。
  17. 組成物が非経口投与される、請求項11の方法。
  18. 組成物が化学療法剤との併用で投与される、請求項11の方法。
  19. 組成物が化学療法剤との併用で投与される、請求項12の方法。
  20. 化学療法剤がミトキサントロン、プレドニソン、エストラムスチン、ビンブラスチンまたはこれらの組合せである、請求項18の方法。
  21. 化学療法剤が抗アンドロゲン剤である、請求項12の方法。
  22. 抗アンドロゲン剤がビカルタミド、ニルタミド、フルタミド、酢酸シクロプロテロンまたはこれらの組合せである、請求項21の方法。
  23. 抗アンドロゲン剤が酢酸ロイプロリド、酢酸ゴセレリンまたはこれらの組合せである、請求項21の方法。
  24. (a)前立腺癌に罹っている患者から単離された癌細胞中のPPAR−γ、Mcl−1またはBag−1の少なくともひとつのレベルを検査し、該細胞が下記式(I)の化合物およびその薬学的に許容される塩による阻害に対して感受性を有する程度に十分、該レベルが高いかを測定し:
    Figure 2004518615
    {式中、Rは、低級アルキル、低級アルケニル、(ヒドロキシ)低級アルキル、低級アルキニル、フェニル、ベンジルまたは2−チエニルであり、R、R、R、Rは、同一または相違して各々水素または低級アルキルであり、各Rは、独立的に水素、低級アルキル、ヒドロキシ、(ヒドロキシ)低級アルキル、低級アルコキシ、ベンジルオキシ、低級アルカノイルオキシ、ニトロまたはハロであり、nは、1−3であり、Rは、水素、低級アルキルまたは低級アルケニルであり、Xは、オキシまたはチオであり、Yは、カルボニル、(CH1−3、(CH1−3C(O)または(CH1−3SOであり、Zは、(ω−(4−ピリジル)(C−Cアルコキシ)、(ω−((R)(R)アミノ)(C−Cアルコキシ)[うち、R および R は、各々H、(C−C)アルキルまたはNと一緒に1−3N(R)、Sもしくは非過酸化物Oを含む5または6員の複素環である];(ω−(OH)(C−C))アルコキシ、N(R)CH(R)COH、1’−D−グルクロニルオキシのアミノ酸エステルであり、X−Yは、(CH1−3[うち、R は、OH、(C−C)アシルオキシ、SOH、PO、N(NO)(OH)、SONH、P(O)(OH)(NH) またはテトラゾリル]である}、および
    (b)該患者に式(I)の化合物を、該細胞を阻害するのに有効な量か、または化学療法剤の投与による阻害に該細胞を感受性にするのに有効な量で投与すること、
    を含む治療方法。
  25. Y−Zがピリジルアルキルエステル、モルホリノアルキルエステル、アミノアルキルエステルまたはヒドロキシアルキルエステルである、請求項24の方法。
  26. Y−ZがCHCOHのグルカミンエステルまたはN−(C−C)アルキル−グルカミンエステルである、請求項24の方法。
  27. Y−ZがCHCOHの1’−D−グルクロン酸エステルである、請求項24の方法。
  28. Y−ZがCHCOHの水溶性アミドである、請求項24の方法。
  29. Y−ZがCHCOHのアミノ酸アミドである、請求項28の方法。
  30. PPAR−γレベルを検査する、請求項24の方法。
  31. PPAR−γを発現する前立腺癌細胞系からの細胞集団を試験薬剤に接触せしめ、該薬剤が該細胞中でPPAR−γの発現を増加するかを測定することを含む、前立腺癌細胞を阻害する試験薬剤の能力を調べる方法。
  32. Mcl−1またはBag−1を発現する前立腺癌細胞系からの細胞集団を試験薬剤に接触せしめ、該薬剤が該細胞中でMcl−1の発現を減少するかを測定することを含む、前立腺癌細胞を阻害する試験薬剤の能力を調べる方法。
  33. 試験薬剤が放射標識エトドラクの癌細胞との受容体仲介結合を競合的に阻害するかどうかを測定することを含む、癌を阻害する試験薬剤の能力を調べる方法。
  34. 癌細胞がエトドラク感受性である、請求項33の方法。
  35. エトドラクがR(−)エトドラクである、請求項33の方法。
  36. 薬剤が癌細胞によるカルシウムの取り込みを増加するかどうかを測定することを含む、請求項31−35の方法。
  37. 試験薬剤がリンパ球集団における化学運動性応答を誘導するかどうかを測定することをさらに含む、請求項36の方法。
  38. 応答が化学走化性を発揮するリンパ球の能力を高める、請求項37の方法。
  39. リンパ球がB−CLLリンパ球を含む、請求項38の方法。
  40. 試験薬剤が癌細胞におけるアポトーシスを誘導し得るかどうかを測定することを含む、請求項37の方法。
  41. 癌細胞がCLL細胞である、請求項40の方法。
  42. 試験薬剤がカスパーゼ−3活性を増加し得るかどうかを測定することを含む、請求項40の方法。
  43. 試験薬剤が試験動物の白血球数を低下するかどうかを測定することをさらに含む、請求項40の方法。
  44. 試験動物がマウスである、請求項43の方法。
  45. 試験薬剤がプリスタン誘導ネズミMLLモデルにおいて癌誘発を阻害し得るかを測定することを含む、請求項43の方法。
  46. 試験化合物がトランスジェニック腺癌マウス前立腺癌モデルにおいて癌を阻害し得るかを測定することをさらに含む、請求項43の方法。
  47. (a)ヒト対象から前立腺癌細胞を単離し、
    (b)前立腺癌細胞におけるPPAR−γを活性化する化合物による阻害を該対象に与えるのに十分なレベルで、該細胞がPPAR−γを発現するかどうか検査すること、
    を含む、該化合物による処置に対する前立腺癌の感受性を測定する方法。
  48. (a)ヒト対象から前立腺癌細胞を単離し、
    (b)前立腺癌細胞におけるMcl−1またはBag−1発現を下方調節する化合物による阻害を該対象に与えるのに十分なレベルで、該細胞がMcl−1を発現するかどうか検査すること、
    を含む、該化合物による処置に対する前立腺癌の感受性を測定する方法。
  49. 医学上の治療における使用のための請求項1記載の化合物
  50. ヒトなどの哺乳動物における疾患の処置に有用な医薬の製造のための請求項1記載の化合物の使用。
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