JP2001524315A - サイレント導入遺伝子の活性化のために有用な方法及び組成物 - Google Patents
サイレント導入遺伝子の活性化のために有用な方法及び組成物Info
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Abstract
(57)【要約】
ハイブリド転写因子を発現する安定的に形質転換された植物においての所望のＤＮＡ配列の発現を誘導するための組成物及び方法であって、合成プロモーターによりコントロールされる所望のＤＮＡ配列の発現のエフェクターであるＤＮＡ結合ドメイン及び転写活性化ドメインの融合体を含んで成り、当該合成プロモーターが好適にはプロモーターに融合された前記ハイブリド転写因子のＤＮＡ結合ドメインにより認識されるｃｉｓ作用部位のコンカテマーコピーを含んで成る、組成物及び方法。
Description
【０００１】 本発明は遺伝子配列の発現を制御する組成物、及びその利用方法に関する。よ
り詳しくは、本発明は標的遺伝子の発現を特異的に不活性化するアンチセンス核
酸配列の発現の誘導に関連する。
り詳しくは、本発明は標的遺伝子の発現を特異的に不活性化するアンチセンス核
酸配列の発現の誘導に関連する。
【０００２】 遺伝子の発現を不活性化させるための現況の技術の基本的な問題は、入ってく
る導入遺伝子（又は遺伝子フラグメント）の発現を常に駆動させる構成プロモー
ターの利用を頼りとすることにある。即ち、入ってくる導入遺伝子を受容した形
質転換細胞は直ちにその発現の作用にも委ねられてしまう。入ってくる導入遺伝
子が本質的な内因性遺伝子の発現を阻害しうるような場合、形質転換された細胞
は全て形質転換後に死滅する。従って、導入されたＤＮＡ配列の発現を誘導式に
コントロールすることが所望される。
る導入遺伝子（又は遺伝子フラグメント）の発現を常に駆動させる構成プロモー
ターの利用を頼りとすることにある。即ち、入ってくる導入遺伝子を受容した形
質転換細胞は直ちにその発現の作用にも委ねられてしまう。入ってくる導入遺伝
子が本質的な内因性遺伝子の発現を阻害しうるような場合、形質転換された細胞
は全て形質転換後に死滅する。従って、導入されたＤＮＡ配列の発現を誘導式に
コントロールすることが所望される。
【０００３】 しかしながら、導入遺伝子の発現の厳密な誘導式コントロールは完全植物では
まだ成し遂げられていない。かかるコントロールは、受精の制御のための調節遺
伝子の如き実用的なもの、そして新規遺伝子のノックアウトによるプロービング
機能の如きより基礎的なもの、等のいくつかの用途を有しうる。
まだ成し遂げられていない。かかるコントロールは、受精の制御のための調節遺
伝子の如き実用的なもの、そして新規遺伝子のノックアウトによるプロービング
機能の如きより基礎的なもの、等のいくつかの用途を有しうる。
【０００４】 多くの積極的な転写調節因子はモジュールであり、ＤＮＡ結合ドメインと、プ
ロモーターにおいて組立てられた転写機構の成分と相互作用する活性化ドメイン
とから成る（Ptashne, 1988 ; Swaffield ら、1995) 。様々な界に由来するこの
ような要素の融合組合せは特定のＤＮＡ結合特異性と注目の標的生物のための転
写活性化機能とを有する多様なハイブリド因子の生産をもたらした。例えば、タ
バコプロトプラストにおける過渡的発現実験では、酵母ＧＡＬ４転写アクチベー
ターに由来する転写因子が多重ＧＡＬ４ ＤＮＡ結合部位及び植物細胞により認
識されるプロモーターに由来するＴＡＴＡ要素から成る合成プロモーターにより
制御されるリポーター遺伝子からの転写を活性化することが示されている（Maら
、1988) 。ハイブリド転写アクチベーター及びアクチベーター突然変異体の機能
はトウモロコシ種子の糊粉層への遺伝子の高速マイクロプロジェクチル導入を介
して検討されてもいる。ヘルペス単純ウィルスＶＰ１６タンパク質又は機能的に
近縁したトウモロコシ調節タンパク質Ｃ１の酸性活性化ドメインに融合したＧＡ
Ｌ４ ＤＮＡ結合ドメインは、トランスアクチベーター及びリポーター遺伝子の
双方をマイクロプロジェクチルで導入した場合ＧＡＬ４依存性リポーター遺伝子
の発現を刺激することが示されている（Goffら、1991) 。ＶＰ１６活性化ドメイ
ンに融合したバクテリオファージ４３４のＤＮＡ結合ドメインから成るキメラ転
写アクチベーターは、タバコプロトプラストに過渡的導入されたとき、最小３５
Ｓプロモーターに融合した４３４オペレーターから成る合成プロモーターにより
駆動されるリポーター遺伝子の遺伝子発現を活性化することが示された（Wilde
ら、1994) 。まとめて、これらの研究は異種因子由来のＤＮＡ結合ドメインが植
物細胞の中に導入された裸のＤＮＡ鋳型上の適当な結合部位を含む合成プロモー
ターに結合でき、そして非植物性活性化ドメインがＤＮＡ結合ドメインに共有結
合していれば植物の転写機構と多いに相互作用できることを樹立する。
ロモーターにおいて組立てられた転写機構の成分と相互作用する活性化ドメイン
とから成る（Ptashne, 1988 ; Swaffield ら、1995) 。様々な界に由来するこの
ような要素の融合組合せは特定のＤＮＡ結合特異性と注目の標的生物のための転
写活性化機能とを有する多様なハイブリド因子の生産をもたらした。例えば、タ
バコプロトプラストにおける過渡的発現実験では、酵母ＧＡＬ４転写アクチベー
ターに由来する転写因子が多重ＧＡＬ４ ＤＮＡ結合部位及び植物細胞により認
識されるプロモーターに由来するＴＡＴＡ要素から成る合成プロモーターにより
制御されるリポーター遺伝子からの転写を活性化することが示されている（Maら
、1988) 。ハイブリド転写アクチベーター及びアクチベーター突然変異体の機能
はトウモロコシ種子の糊粉層への遺伝子の高速マイクロプロジェクチル導入を介
して検討されてもいる。ヘルペス単純ウィルスＶＰ１６タンパク質又は機能的に
近縁したトウモロコシ調節タンパク質Ｃ１の酸性活性化ドメインに融合したＧＡ
Ｌ４ ＤＮＡ結合ドメインは、トランスアクチベーター及びリポーター遺伝子の
双方をマイクロプロジェクチルで導入した場合ＧＡＬ４依存性リポーター遺伝子
の発現を刺激することが示されている（Goffら、1991) 。ＶＰ１６活性化ドメイ
ンに融合したバクテリオファージ４３４のＤＮＡ結合ドメインから成るキメラ転
写アクチベーターは、タバコプロトプラストに過渡的導入されたとき、最小３５
Ｓプロモーターに融合した４３４オペレーターから成る合成プロモーターにより
駆動されるリポーター遺伝子の遺伝子発現を活性化することが示された（Wilde
ら、1994) 。まとめて、これらの研究は異種因子由来のＤＮＡ結合ドメインが植
物細胞の中に導入された裸のＤＮＡ鋳型上の適当な結合部位を含む合成プロモー
ターに結合でき、そして非植物性活性化ドメインがＤＮＡ結合ドメインに共有結
合していれば植物の転写機構と多いに相互作用できることを樹立する。
【０００５】 宿主細胞に過渡的に導入された導入遺伝子の分析は遺伝機能の予備的な検討を
行うのに有用でありうるが、安定な形質転換体は植物遺伝子発現を研究するため
のより幅広く適用可能なシステムであろう。しかしながら、ＧＡＬ４ ＤＮＡ結
合ドメインは植物では効率良く発現されないことが報告されている（Reichel, C
. ら (1995) 「Inefficient Expression of the DNA-Binding Domain of GAL4 i
n Transgenic Plants 」Plant Cell Reports 14 (12) : 773-776) 。植物におけ
る導入遺伝子発現の制御のための理想的な調節系は機能性転写因子の非存在下で
バックグランド発現がないもしくはほとんどなく、そして機能性転写因子の存在
下では高発現性であるものである。
行うのに有用でありうるが、安定な形質転換体は植物遺伝子発現を研究するため
のより幅広く適用可能なシステムであろう。しかしながら、ＧＡＬ４ ＤＮＡ結
合ドメインは植物では効率良く発現されないことが報告されている（Reichel, C
. ら (1995) 「Inefficient Expression of the DNA-Binding Domain of GAL4 i
n Transgenic Plants 」Plant Cell Reports 14 (12) : 773-776) 。植物におけ
る導入遺伝子発現の制御のための理想的な調節系は機能性転写因子の非存在下で
バックグランド発現がないもしくはほとんどなく、そして機能性転写因子の存在
下では高発現性であるものである。
【０００６】 従って、何が必要かというと、安定的に形質転換された植物における導入ＤＮ
Ａ配列の誘導式発現の提供に有用な組成物及び方法である。
Ａ配列の誘導式発現の提供に有用な組成物及び方法である。
【０００７】 本発明は、導入遺伝子の如き活性化性ＤＮＡ配列の発現を誘導するために植物
ハイブリド転写因子及び合成プロモーターを安定的に導入するための異種ＤＮＡ
配列を含む方法、組成物及び遺伝子導入植物を提供することにより当業界におい
て長年要望されていたが満足されていなかったニーズに答えるものである。重要
には、ここに記載の本発明は導入遺伝子の挿入をその活性とは効率的に独立させ
、それ故その後の活性化により本来致死的な形質転換体の回収を可能にする。本
発明の有用性は、例えば植物の成長、発育及び生存に重要である遺伝子を同定す
ることによる遺伝子機能の調査にある。本発明の極めて重要な特徴はアンチセン
スＤＮＡ配列又は優性インヒビター、例えば遺伝子機能を中断できる翻訳可能又
は翻訳不能なセンス配列の発現を安定的に形質転換された植物の中で誘導し、植
物の正常な成長及び発育のために必須な１又は複数の遺伝子を積極的に同定する
能力にある。
ハイブリド転写因子及び合成プロモーターを安定的に導入するための異種ＤＮＡ
配列を含む方法、組成物及び遺伝子導入植物を提供することにより当業界におい
て長年要望されていたが満足されていなかったニーズに答えるものである。重要
には、ここに記載の本発明は導入遺伝子の挿入をその活性とは効率的に独立させ
、それ故その後の活性化により本来致死的な形質転換体の回収を可能にする。本
発明の有用性は、例えば植物の成長、発育及び生存に重要である遺伝子を同定す
ることによる遺伝子機能の調査にある。本発明の極めて重要な特徴はアンチセン
スＤＮＡ配列又は優性インヒビター、例えば遺伝子機能を中断できる翻訳可能又
は翻訳不能なセンス配列の発現を安定的に形質転換された植物の中で誘導し、植
物の正常な成長及び発育のために必須な１又は複数の遺伝子を積極的に同定する
能力にある。
【０００８】 本発明はハイブリド転写因子遺伝子、合成プロモーター、活性化性ＤＮＡ配列
、並びにかかる遺伝子を含む細胞、組織及び植物、プロモーター及びＤＮＡ配列
、並びに植物遺伝子機能を決定するためのその利用方法を包含する。ハイブリド
転写因子遺伝子及び合成プロモーターは、このハイブリド転写因子のＤＮＡ結合
ドメインが前記合成プロモーターにより駆動される活性化性ＤＮＡ配列の発現を
活性化するように当該合成プロモーターに特異的に結合できるように選定又はデ
ザインされる。
、並びにかかる遺伝子を含む細胞、組織及び植物、プロモーター及びＤＮＡ配列
、並びに植物遺伝子機能を決定するためのその利用方法を包含する。ハイブリド
転写因子遺伝子及び合成プロモーターは、このハイブリド転写因子のＤＮＡ結合
ドメインが前記合成プロモーターにより駆動される活性化性ＤＮＡ配列の発現を
活性化するように当該合成プロモーターに特異的に結合できるように選定又はデ
ザインされる。
【０００９】 より詳しくは、本発明は合成プロモーターを活性化させるのに必要なハイブリ
ド転写因子をコードする配列を含む第一細胞又は組織、好ましくは植物細胞又は
植物組織、又は植物、及び前記合成プロモーターを含む第二細胞又は組織、好ま
しくは植物細胞又は植物組織、又は植物を包含し、ここで当該第一及び第二細胞
、組織又は植物は当該ハイブリド転写因子及び当該合成プロモーターをコードす
る双方の配列を含む細胞、組織又は植物を構築できるように操作されていてよい
。所望するには、この第二細胞、組織又は植物は活性化性ＤＮＡ配列に作用可能
式に連結された合成プロモーターを含み、ＤＮＡ配列の発現はこのプロモーター
がハイブリド転写因子により活性化されたときにこの合成プロモーターにより駆
動されるものである。別の態様において、このハイブリド転写因子は独立の因子
、例えばエストロゲン等により制御可能となるようにデザイン又は選定される。
ド転写因子をコードする配列を含む第一細胞又は組織、好ましくは植物細胞又は
植物組織、又は植物、及び前記合成プロモーターを含む第二細胞又は組織、好ま
しくは植物細胞又は植物組織、又は植物を包含し、ここで当該第一及び第二細胞
、組織又は植物は当該ハイブリド転写因子及び当該合成プロモーターをコードす
る双方の配列を含む細胞、組織又は植物を構築できるように操作されていてよい
。所望するには、この第二細胞、組織又は植物は活性化性ＤＮＡ配列に作用可能
式に連結された合成プロモーターを含み、ＤＮＡ配列の発現はこのプロモーター
がハイブリド転写因子により活性化されたときにこの合成プロモーターにより駆
動されるものである。別の態様において、このハイブリド転写因子は独立の因子
、例えばエストロゲン等により制御可能となるようにデザイン又は選定される。
【００１０】 本発明の方法は前記第一及び第二細胞を組合せることでハイブリド転写因子遺
伝子及び合成プロモーターの双方を含む安定な遺伝子導入植物を形成し、前記活
性化性ＤＮＡ配列が当該植物内で発現されるようにすることを包含する。一の態
様は当業者が注目の本来はサイレントな遺伝子（又は遺伝子フラグメント）、例
えばアンチセンスの発現を、この注目の遺伝子を制御する合成プロモーターから
の発現を特異的に活性化する転写因子をコードする遺伝子を交配式に導入するこ
とを介し、活性化することを可能にする。この注目の遺伝子が内因性遺伝子の発
現を不活性化できる場合、この注目の遺伝子を含む植物とエフェクター細胞との
交配の子孫はこの内因性遺伝子を正常に発現することはできないであろう。正常
な成長又は発育のために必須の植物遺伝子はこのようにして同定できる。かかる
遺伝子の同定は有効な除草剤についての化合物ライブラリーのスクリーニングの
ための有用な標的を司る。
伝子及び合成プロモーターの双方を含む安定な遺伝子導入植物を形成し、前記活
性化性ＤＮＡ配列が当該植物内で発現されるようにすることを包含する。一の態
様は当業者が注目の本来はサイレントな遺伝子（又は遺伝子フラグメント）、例
えばアンチセンスの発現を、この注目の遺伝子を制御する合成プロモーターから
の発現を特異的に活性化する転写因子をコードする遺伝子を交配式に導入するこ
とを介し、活性化することを可能にする。この注目の遺伝子が内因性遺伝子の発
現を不活性化できる場合、この注目の遺伝子を含む植物とエフェクター細胞との
交配の子孫はこの内因性遺伝子を正常に発現することはできないであろう。正常
な成長又は発育のために必須の植物遺伝子はこのようにして同定できる。かかる
遺伝子の同定は有効な除草剤についての化合物ライブラリーのスクリーニングの
ための有用な標的を司る。
【００１１】 本明細書に記載の発明はハイブリド転写因子が安定的に形質転換された植物の
中で遺伝子発現を効率的に制御するよう機能できることを証明する。以下の詳細
な説明はハイブリド転写因子が完全植物中で効率的に遺伝子機能を活性化でき、
それ故植物の成長のために必須な遺伝子を積極的に同定するための有用なシステ
ムが供されることの第一の証拠である。
中で遺伝子発現を効率的に制御するよう機能できることを証明する。以下の詳細
な説明はハイブリド転写因子が完全植物中で効率的に遺伝子機能を活性化でき、
それ故植物の成長のために必須な遺伝子を積極的に同定するための有用なシステ
ムが供されることの第一の証拠である。
【００１２】 本発明は植物における遺伝子の機能を調べるための重要な新規の方法を提供す
る。本発明は成長、発育又は生存のために必要又は重要である内因性植物ＤＮＡ
配列の同定に極めて有用である。かかるＤＮＡ配列の同定は重要な農業問題を解
決するための安全で、有効で、経済的に発現可能で、且つ環境学的に健全な製品
の合理的且つ効率的な開発に必須な情報を提供する。一の態様において、本発明
は内因遺伝子の機能を、その発現のノックアウトにより試験するために利用でき
る。詳しくは、それは注目の遺伝子が植物の正常な成長及び発育のために必須で
あるかを確認することにより、潜在的な除草標的遺伝子を確認するのに利用でき
うる。これはスクリーニング及び開発の連鎖における早期且つ必須のつなぎを担
い、そして最も有能な化合物を同定及び試験するために財源の順位付けをする動
機付けとなり、その研究に投資するように導き、それ故直ちに公衆の利益となる
であろう。
る。本発明は成長、発育又は生存のために必要又は重要である内因性植物ＤＮＡ
配列の同定に極めて有用である。かかるＤＮＡ配列の同定は重要な農業問題を解
決するための安全で、有効で、経済的に発現可能で、且つ環境学的に健全な製品
の合理的且つ効率的な開発に必須な情報を提供する。一の態様において、本発明
は内因遺伝子の機能を、その発現のノックアウトにより試験するために利用でき
る。詳しくは、それは注目の遺伝子が植物の正常な成長及び発育のために必須で
あるかを確認することにより、潜在的な除草標的遺伝子を確認するのに利用でき
うる。これはスクリーニング及び開発の連鎖における早期且つ必須のつなぎを担
い、そして最も有能な化合物を同定及び試験するために財源の順位付けをする動
機付けとなり、その研究に投資するように導き、それ故直ちに公衆の利益となる
であろう。
【００１３】 本発明の完全、明確、簡潔且つ正確な説明を供するよう、本明細書において用
いる下記の用語の定義を提供する。
いる下記の用語の定義を提供する。
【００１４】 活性化性ＤＮＡ構築体−ＤＮＡ配列、又は当該ＤＮＡ配列を含む組換構築体及
び合成プロモーターを意味し、これは細胞、所望するには植物細胞に導入される
と、この合成プロモーターに結合して活性化できる完全なハイブリド転写因子が
存在しない限り、発現しない、即ち、サイレントである。この活性化性ＤＮＡ構
築体を次いで細胞、組織又は植物に導入して、以下により詳細に説明する通り、
この活性化性ＤＮＡ配列を発現できる安定な遺伝子導入系を形成する。
び合成プロモーターを意味し、これは細胞、所望するには植物細胞に導入される
と、この合成プロモーターに結合して活性化できる完全なハイブリド転写因子が
存在しない限り、発現しない、即ち、サイレントである。この活性化性ＤＮＡ構
築体を次いで細胞、組織又は植物に導入して、以下により詳細に説明する通り、
この活性化性ＤＮＡ配列を発現できる安定な遺伝子導入系を形成する。
【００１５】 活性化性（活性化可能な）ＤＮＡ配列−ゲノム、所望するには植物のゲノム内
の遺伝子の発現を調節するＤＮＡ配列を意味する。この活性化性ＤＮＡ配列はこ
のゲノム内の標的ＤＮＡ配列に対して相補的である。この活性化性ＤＮＡ配列を
細胞の中に導入して発現させると、それは標的ＤＮＡの発現を阻害する。本発明
において有用な活性化性ＤＮＡ配列は優性インヒビターをコードする又はそのよ
うなものとして作用するもの、例えば植物の正常な成長及び発育のために必須の
１又は複数の遺伝子を積極的に同定するように安定的に形質転換された植物内の
遺伝子機能を中断できる翻訳可能又は翻訳不能なセンス配列を含む。好適な活性
化性ＤＮＡ配列はアンチセンスＤＮＡ配列である。アンチセンス配列が働くメカ
ニズムはよくわかっていないが、おそらくはアンチセンスＲＮＡは標的遺伝子Ｒ
ＮＡに結合し、標的ＤＮＡ遺伝子生成物の発現を阻害するのであろう。かかるＲ
ＮＡ：ＲＮＡ複合体は翻訳機構の結合又は機能を阻害することが可能であり、他
方かかるＲＮＡ：ＲＮＡ複合体は急速分解されることが可能である。その他のメ
カニズムが考えられる。所望するには、この標的遺伝子はタンパク質、例えば植
物の成長又は生存に必須な生合成酵素、レセプター、シグナル伝達タンパク質、
構造遺伝子生成物又は輸送タンパク質をコードする。アンチセンスＲＮＡ配列と
標的遺伝子ＲＮＡとの相互作用は標的ＤＮＡ配列の発現の実質的な阻害をもたら
し、かくして植物を殺すか、又は正常な植物成長もしくは発育を阻害する。
の遺伝子の発現を調節するＤＮＡ配列を意味する。この活性化性ＤＮＡ配列はこ
のゲノム内の標的ＤＮＡ配列に対して相補的である。この活性化性ＤＮＡ配列を
細胞の中に導入して発現させると、それは標的ＤＮＡの発現を阻害する。本発明
において有用な活性化性ＤＮＡ配列は優性インヒビターをコードする又はそのよ
うなものとして作用するもの、例えば植物の正常な成長及び発育のために必須の
１又は複数の遺伝子を積極的に同定するように安定的に形質転換された植物内の
遺伝子機能を中断できる翻訳可能又は翻訳不能なセンス配列を含む。好適な活性
化性ＤＮＡ配列はアンチセンスＤＮＡ配列である。アンチセンス配列が働くメカ
ニズムはよくわかっていないが、おそらくはアンチセンスＲＮＡは標的遺伝子Ｒ
ＮＡに結合し、標的ＤＮＡ遺伝子生成物の発現を阻害するのであろう。かかるＲ
ＮＡ：ＲＮＡ複合体は翻訳機構の結合又は機能を阻害することが可能であり、他
方かかるＲＮＡ：ＲＮＡ複合体は急速分解されることが可能である。その他のメ
カニズムが考えられる。所望するには、この標的遺伝子はタンパク質、例えば植
物の成長又は生存に必須な生合成酵素、レセプター、シグナル伝達タンパク質、
構造遺伝子生成物又は輸送タンパク質をコードする。アンチセンスＲＮＡ配列と
標的遺伝子ＲＮＡとの相互作用は標的ＤＮＡ配列の発現の実質的な阻害をもたら
し、かくして植物を殺すか、又は正常な植物成長もしくは発育を阻害する。
【００１６】 「発現」とは、植物内での内因性遺伝子又は導入遺伝子の転写及び／又は翻訳
を意味する。例えばアンチセンス構築体の場合、発現はアンチセンスＤＮＡの転
写のみを意味しうる。
を意味する。例えばアンチセンス構築体の場合、発現はアンチセンスＤＮＡの転
写のみを意味しうる。
【００１７】 「遺伝子」とはコード配列及び結合した調節配列を意味し、ここでこのコード
配列はＲＮＡ、例えばｍＲＮＡ，ｒＲＮＡ，ｔＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ、センスＲＮ
Ａ又はアンチセンスＲＮＡへと転写される。調節配列の例はプロモーター配列、
５′及び３′非翻訳配列、並びに終止配列である。存在しうる更なる要素は例え
ばイントロンである。
配列はＲＮＡ、例えばｍＲＮＡ，ｒＲＮＡ，ｔＲＮＡ，ｓｎＲＮＡ、センスＲＮ
Ａ又はアンチセンスＲＮＡへと転写される。調節配列の例はプロモーター配列、
５′及び３′非翻訳配列、並びに終止配列である。存在しうる更なる要素は例え
ばイントロンである。
【００１８】 「注目の遺伝子」とは、植物に移入されたときにその植物に所望の特徴、例え
ば抗生物質耐性、ウィルス耐性、昆虫耐性、疾患耐性、又はその他の害虫に対す
る耐性、除草剤トレランス、向上した栄養価値、産業プロセスにおける向上した
性能、又は改変された再生能力を授ける任意の遺伝子を意味する。「注目の遺伝
子」は植物における商業的に価値のある酵素又は代謝物の生産のために植物に導
入されるものであってもよい。
ば抗生物質耐性、ウィルス耐性、昆虫耐性、疾患耐性、又はその他の害虫に対す
る耐性、除草剤トレランス、向上した栄養価値、産業プロセスにおける向上した
性能、又は改変された再生能力を授ける任意の遺伝子を意味する。「注目の遺伝
子」は植物における商業的に価値のある酵素又は代謝物の生産のために植物に導
入されるものであってもよい。
【００１９】 異種ＤＮＡ配列−導入すべき宿主細胞に天然では結合していないＤＮＡ配列を
意味し、天然ＤＮＡ配列の非天然多重コピーが含まれる。
意味し、天然ＤＮＡ配列の非天然多重コピーが含まれる。
【００２０】 「マーカー遺伝子」とは、選択可能又はスクリーニング可能な特徴をコードす
る遺伝子を意味する。 「…作用可能式に連結／結合した」とは、調節ＤＮＡ配列がＲＮＡ又はタンパ
ク質をコードするＤＮＡ配列の発現を左右するようにそれら２本の配列が配置さ
れているなら、調節ＤＮＡ配列がそのコードＤＮＡ配列に「作用可能式に連結／
結合」していることを意味する。
る遺伝子を意味する。 「…作用可能式に連結／結合した」とは、調節ＤＮＡ配列がＲＮＡ又はタンパ
ク質をコードするＤＮＡ配列の発現を左右するようにそれら２本の配列が配置さ
れているなら、調節ＤＮＡ配列がそのコードＤＮＡ配列に「作用可能式に連結／
結合」していることを意味する。
【００２１】 「最小プロモーター」とは、上流の活性化なしでは不活性な、又は著しく低ま
ったプロモーター活性を有するプロモーター要素、特にＴＡＴＡ要素を意味する
。適当な転写因子の存在下では、この最小プロモーターは転写を可能にするよう
に機能する。
ったプロモーター活性を有するプロモーター要素、特にＴＡＴＡ要素を意味する
。適当な転写因子の存在下では、この最小プロモーターは転写を可能にするよう
に機能する。
【００２２】 「植物」とは、プロトプラスト及び細胞壁を含む植物の構造学的及び生理学的
な単位を意味する。この植物細胞は単離された単一細胞もしくは培養細胞の形態
、又はより高等なまとまった単位の一部、例えば植物組織、又は植物器官であっ
てよい。 「植物細胞」とは任意の植物、特に種子植物を意味する。
な単位を意味する。この植物細胞は単離された単一細胞もしくは培養細胞の形態
、又はより高等なまとまった単位の一部、例えば植物組織、又は植物器官であっ
てよい。 「植物細胞」とは任意の植物、特に種子植物を意味する。
【００２３】 「植物材料」とは、葉、幹、根、花又は花の器官、果実、花粉、花粉管、胚珠
、胚嚢、卵細胞、接合子、胚、種子、挿木、細胞もしくは組織培養物、又は任意
のその他の植物の器官もしくは産物を意味する。
、胚嚢、卵細胞、接合子、胚、種子、挿木、細胞もしくは組織培養物、又は任意
のその他の植物の器官もしくは産物を意味する。
【００２４】 「プロモーター」とは、結合したＤＮＡ配列の転写を開始するＤＮＡ配列を意
味する。このプロモーター領域には遺伝子発現の調節因子として働く要素、例え
ばアクチベーター、エンハンサー及び／又はリプレッサーも含まれる。
味する。このプロモーター領域には遺伝子発現の調節因子として働く要素、例え
ばアクチベーター、エンハンサー及び／又はリプレッサーも含まれる。
【００２５】 組換ＤＮＡ−組換ＤＮＡ工学を利用して互いに連結し合ったＤＮＡ配列の組合
せである分子を意味する。
せである分子を意味する。
【００２６】 組換ＤＮＡ工学とは、例えばSambrookら、1989, Cold Spring Harbor, NY : C
old Spring Harbor Laboratory Pressに記載の如きＤＮＡ配列を互いに連結させ
合うのに利用する手順を意味する。
old Spring Harbor Laboratory Pressに記載の如きＤＮＡ配列を互いに連結させ
合うのに利用する手順を意味する。
【００２７】 「選択マーカー遺伝子」とは、植物細胞内での発現が選択的利点を供する遺伝
子を意味する。この選択マーカー遺伝子により形質転換された細胞により保有さ
れる選択物利点は負の選択剤、例えば抗生物質又は除草剤の存在下での、非形質
転換細胞の増殖との対比における増殖能力に基づきうる。非形質転換細胞と比較
しての形質転換細胞により保有されるこの選択的利点は、栄養素、成長因子又は
エネルギー源として付加された化合物を利用するその高まった又は新たな能力に
よる場合もある。選択マーカー遺伝子とは、植物細胞内でのその発現が負及び正
の選択的利点の双方を供するような遺伝子又は遺伝子の組合せも意味する。
子を意味する。この選択マーカー遺伝子により形質転換された細胞により保有さ
れる選択物利点は負の選択剤、例えば抗生物質又は除草剤の存在下での、非形質
転換細胞の増殖との対比における増殖能力に基づきうる。非形質転換細胞と比較
しての形質転換細胞により保有されるこの選択的利点は、栄養素、成長因子又は
エネルギー源として付加された化合物を利用するその高まった又は新たな能力に
よる場合もある。選択マーカー遺伝子とは、植物細胞内でのその発現が負及び正
の選択的利点の双方を供するような遺伝子又は遺伝子の組合せも意味する。
【００２８】 「安定的に形質転換された」とは、少なくとも一種の異種ＤＮＡ配列を含む細
胞、所望するには植物細胞を意味し、ここでこの異種ＤＮＡ配列は細胞の中に維
持され、そしてその目的とする用途のために適当な条件下で機能性であり、且つ
その後の世代に遺伝可能なものである。この用語は特にいかなる手段であろうと
、異種ＤＮＡ配列がまず導入された細胞、及びこの異種ＤＮＡ配列を含むその後
に誘導された細胞、組織、植物及び種子を含む。後者は安定トランスジェニック
系と呼ばれることもある。
胞、所望するには植物細胞を意味し、ここでこの異種ＤＮＡ配列は細胞の中に維
持され、そしてその目的とする用途のために適当な条件下で機能性であり、且つ
その後の世代に遺伝可能なものである。この用語は特にいかなる手段であろうと
、異種ＤＮＡ配列がまず導入された細胞、及びこの異種ＤＮＡ配列を含むその後
に誘導された細胞、組織、植物及び種子を含む。後者は安定トランスジェニック
系と呼ばれることもある。
【００２９】 「合成」とは、天然配列にはない構造的特徴を含んで成るヌクレオチド配列を
意味する。例えば、双子葉類及び／又は単子葉類遺伝子のＧ＋Ｃ含有量及び正常
コドン分布により近似した人工配列を「合成」と称する。
意味する。例えば、双子葉類及び／又は単子葉類遺伝子のＧ＋Ｃ含有量及び正常
コドン分布により近似した人工配列を「合成」と称する。
【００３０】 「形質転換」（ｒ）とは、細胞への核酸の導入を意味する。詳しくは、注目の
生物のゲノムへのＤＮＡ分子の安定的な組込みをいう。
生物のゲノムへのＤＮＡ分子の安定的な組込みをいう。
【００３１】 以下により詳しく説明する通り、本発明はハイブリド転写因子遺伝子、合成プ
ロモーター、活性化性ＤＮＡ配列、並びにかかる遺伝子を含む細胞、組織及び植
物、プロモーター及びＤＮＡ配列、並びにその利用方法を包含する。このハイブ
リド転写因子遺伝子及び合成プロモーターは、このハイブリド転写因子のＤＮＡ
結合ドメインが合成プロモーターに特異的に結合でき、この合成プロモーターに
より駆動される活性化性ＤＮＡ配列の発現をオンにできるよう選定又はデザイン
される。
ロモーター、活性化性ＤＮＡ配列、並びにかかる遺伝子を含む細胞、組織及び植
物、プロモーター及びＤＮＡ配列、並びにその利用方法を包含する。このハイブ
リド転写因子遺伝子及び合成プロモーターは、このハイブリド転写因子のＤＮＡ
結合ドメインが合成プロモーターに特異的に結合でき、この合成プロモーターに
より駆動される活性化性ＤＮＡ配列の発現をオンにできるよう選定又はデザイン
される。
【００３２】 一の態様において、本発明は合成活性化性プロモーターのコントロール下でサ
イレント導入遺伝子の発現を活性化するのに転写エフェクター系を頼りとする誘
導式遺伝子活性化を達成する交配を基礎とする。このシステムで発現を制御でき
る形質には、内因性のプロモーターの如き転写コントロール要素のための非植物
性遺伝子、翻訳又は非翻訳センス遺伝子、又は後転写コントロール要素、及び内
因性遺伝子の発現をノックアウトするアンチセンス遺伝子（例えば、以下に説明
するＡｄＳＳ）が挙げられる。一のケースにおいて、この転写エフェクター系は
以下に一層完璧に説明するハイブリド転写因子をコードするＤＮＡ配列を含み、
それを活性化性ＤＮＡ配列に作用可能式に連結された合成プロモーターを含む細
胞、組織又は植物系と交配させる。別のケースでは、この転写エフェクター系は
ハイブリド転写因子の一部をコードするＤＮＡ配列を含み、ここでこれによりコ
ードされるタンパク質はこのハイブリド転写因子の接合部とのペプチド−ペプチ
ド相互作用を介してハイブリド転写因子を形成できる。この合成プロモーター、
活性化ＤＮＡ配列、及びこのハイブリド転写因子の対応の接合部をコードするＤ
ＮＡ配列は独立の系の中に収容されている。更なる別のケースでは、このハイブ
リド転写因子はインヒビターにより可能にされ、それ故例えばハイブリド転写因
子の合成プロモーターに対する機能的な結合により合成プロモーターを活性化さ
せるのが妨げられている。その結果、この活性化性ＤＮＡ配列はハイブリド転写
因子インヒビターが除かれない限り及び除かれるまで、発現しない。
イレント導入遺伝子の発現を活性化するのに転写エフェクター系を頼りとする誘
導式遺伝子活性化を達成する交配を基礎とする。このシステムで発現を制御でき
る形質には、内因性のプロモーターの如き転写コントロール要素のための非植物
性遺伝子、翻訳又は非翻訳センス遺伝子、又は後転写コントロール要素、及び内
因性遺伝子の発現をノックアウトするアンチセンス遺伝子（例えば、以下に説明
するＡｄＳＳ）が挙げられる。一のケースにおいて、この転写エフェクター系は
以下に一層完璧に説明するハイブリド転写因子をコードするＤＮＡ配列を含み、
それを活性化性ＤＮＡ配列に作用可能式に連結された合成プロモーターを含む細
胞、組織又は植物系と交配させる。別のケースでは、この転写エフェクター系は
ハイブリド転写因子の一部をコードするＤＮＡ配列を含み、ここでこれによりコ
ードされるタンパク質はこのハイブリド転写因子の接合部とのペプチド−ペプチ
ド相互作用を介してハイブリド転写因子を形成できる。この合成プロモーター、
活性化ＤＮＡ配列、及びこのハイブリド転写因子の対応の接合部をコードするＤ
ＮＡ配列は独立の系の中に収容されている。更なる別のケースでは、このハイブ
リド転写因子はインヒビターにより可能にされ、それ故例えばハイブリド転写因
子の合成プロモーターに対する機能的な結合により合成プロモーターを活性化さ
せるのが妨げられている。その結果、この活性化性ＤＮＡ配列はハイブリド転写
因子インヒビターが除かれない限り及び除かれるまで、発現しない。
【００３３】 この開示に基づき、当業者は注目の任意のＤＮＡ配列又は遺伝子をこのように
して制御できることを期待するであろう。
して制御できることを期待するであろう。
【００３４】 このシステムは本来構成的駆動導入遺伝子としては回収不能な形質の発現を可
能にするために極めて有用である。例えば、潜在的に致死的な作用を有する外来
遺伝子、又は必須遺伝子の機能を消失させるようにデザインされたアンチセンス
遺伝子もしくは優性陰性突然変異体は、植物生物学の基礎研究において多大に注
目されているが、固有の実験上の問題を有する。低まった形質転換率は往々にし
て特定の構成的駆動導入遺伝子に関わる致死的な証拠として挙げられているが、
このタイプのネガティブな結果には別のつまらない解釈が伴う。ここに記載のタ
イプのシステムは試験導入遺伝子のその発現とは独立した安定性の維持及び繁殖
を可能にする。導入遺伝子の挿入を発現から独立させる能力は遺伝子機能の本質
を引き出すことについてのしっかりとした結論のために重要である。従って、本
発明は当業界にとっての多大な貢献を担う。
能にするために極めて有用である。例えば、潜在的に致死的な作用を有する外来
遺伝子、又は必須遺伝子の機能を消失させるようにデザインされたアンチセンス
遺伝子もしくは優性陰性突然変異体は、植物生物学の基礎研究において多大に注
目されているが、固有の実験上の問題を有する。低まった形質転換率は往々にし
て特定の構成的駆動導入遺伝子に関わる致死的な証拠として挙げられているが、
このタイプのネガティブな結果には別のつまらない解釈が伴う。ここに記載のタ
イプのシステムは試験導入遺伝子のその発現とは独立した安定性の維持及び繁殖
を可能にする。導入遺伝子の挿入を発現から独立させる能力は遺伝子機能の本質
を引き出すことについてのしっかりとした結論のために重要である。従って、本
発明は当業界にとっての多大な貢献を担う。
【００３５】 表現型の程度のバリエーションは単一のアクチベーターに交配させた多重の独
立活性化性系の表現型を調べることにより達成されうる。様々な導入遺伝子座由
来の様々なレベルの発現能力を司る位置効果を頼りとすることにより、特殊な形
質についての対立形質系の表現模写を得ることが可能である。これは以下の実施
例２に説明しているとおり、それは必須の代謝機能をノックアウトするようにデ
ザインされたアンチセンス遺伝子からの発現レベルの多様性が様々な程度の表現
型を有する植物系を供することを示す。同様に、その他の形質も独立の系におけ
る表現型を変えるよう活性化不能であう。
立活性化性系の表現型を調べることにより達成されうる。様々な導入遺伝子座由
来の様々なレベルの発現能力を司る位置効果を頼りとすることにより、特殊な形
質についての対立形質系の表現模写を得ることが可能である。これは以下の実施
例２に説明しているとおり、それは必須の代謝機能をノックアウトするようにデ
ザインされたアンチセンス遺伝子からの発現レベルの多様性が様々な程度の表現
型を有する植物系を供することを示す。同様に、その他の形質も独立の系におけ
る表現型を変えるよう活性化不能であう。
【００３６】 任意的に、特定の表現型の発現はハイブリドアクチベーター遺伝子の適当なプ
ロモーター、例えば発育の期間又は空間において調節される。注目のプロモータ
ーの制御のストリンジェシーに依存して、特定の細胞タイプ、組織又は器官、又
は特定の時期での機能の評価が可能となる。例えば、胚の発育における遺伝子の
機能のための要件は発育中の種子において強力に発現することのわかっているプ
ロモーターにより駆動される因子を有するアンチセンス導入遺伝子を活性化させ
ることにより試験できうる。かかるアプローチはショウジョウバエ（Ｄｒｏｓｏ
ｐｈｉｌａ) において、通常ＧＡＬ４エフェクター構築体をランダムに挿入して
様々な細胞及び組織タイプにおいて発現を指令する様々なゲノムエンハンサーに
対する融合体を得ることにより、幅広く利用されている (Brand and Perrimon,
1993) 。同様に、本発明のＤＮＡ構築体は化学的誘導式プロモーターを介する、
例えばSchenaら (Proc. Natl. Acad. Sci., USA, Vol. 88, pp 10421-10425, 19
91年12月) により例示の通りステロイド誘導式遺伝子発現を利用することによる
遺伝子発現の追加のコントロールを供する。
ロモーター、例えば発育の期間又は空間において調節される。注目のプロモータ
ーの制御のストリンジェシーに依存して、特定の細胞タイプ、組織又は器官、又
は特定の時期での機能の評価が可能となる。例えば、胚の発育における遺伝子の
機能のための要件は発育中の種子において強力に発現することのわかっているプ
ロモーターにより駆動される因子を有するアンチセンス導入遺伝子を活性化させ
ることにより試験できうる。かかるアプローチはショウジョウバエ（Ｄｒｏｓｏ
ｐｈｉｌａ) において、通常ＧＡＬ４エフェクター構築体をランダムに挿入して
様々な細胞及び組織タイプにおいて発現を指令する様々なゲノムエンハンサーに
対する融合体を得ることにより、幅広く利用されている (Brand and Perrimon,
1993) 。同様に、本発明のＤＮＡ構築体は化学的誘導式プロモーターを介する、
例えばSchenaら (Proc. Natl. Acad. Sci., USA, Vol. 88, pp 10421-10425, 19
91年12月) により例示の通りステロイド誘導式遺伝子発現を利用することによる
遺伝子発現の追加のコントロールを供する。
【００３７】 発現の調節の更なる例は特定の用途のための適当な強度の活性化ドメインの選
定により成し遂げられる。最近、正味の正又は負の電荷の植物転写活性化ドメイ
ンが酵母機能性スクリーニングにおいて同定された (Estruch ら、1994) 。ＧＡ
Ｌ４のＤＮＡ結合ドメインに対するこれらのドメインの融合は、双方をマイクロ
プロジェクチルでトウモロコシ又はタバコ細胞の中に導入したときにＧＡＬ４依
存性プロモーター遺伝子を活性化できるタンパク質を生み出す。かくして、多種
多様な活性化ドメインが直接的な機能又は構造スクリーニングにより同定可能で
ある。
定により成し遂げられる。最近、正味の正又は負の電荷の植物転写活性化ドメイ
ンが酵母機能性スクリーニングにおいて同定された (Estruch ら、1994) 。ＧＡ
Ｌ４のＤＮＡ結合ドメインに対するこれらのドメインの融合は、双方をマイクロ
プロジェクチルでトウモロコシ又はタバコ細胞の中に導入したときにＧＡＬ４依
存性プロモーター遺伝子を活性化できるタンパク質を生み出す。かくして、多種
多様な活性化ドメインが直接的な機能又は構造スクリーニングにより同定可能で
ある。
【００３８】 ここに記載の研究はアラビドプシス (Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）で例示してい
るが、本質的なトランス活性化はこの一の種に限定されるわけではない。適当な
プロモーターを利用することで、ここに記載のシステムは任意の種、例えば商業
的に重要な植物、例えば限定することなく、トウモロコシ、稲、小麦、テンサイ
、バーレー麦、ライ麦、綿、ナタネ、カラス麦、モロコシ、キビ、芝ふ、及び観
賞植物が挙げられる。
るが、本質的なトランス活性化はこの一の種に限定されるわけではない。適当な
プロモーターを利用することで、ここに記載のシステムは任意の種、例えば商業
的に重要な植物、例えば限定することなく、トウモロコシ、稲、小麦、テンサイ
、バーレー麦、ライ麦、綿、ナタネ、カラス麦、モロコシ、キビ、芝ふ、及び観
賞植物が挙げられる。
【００３９】 ハイブリド転写因子遺伝子 ハイブリド転写因子遺伝子は１）ＤＮＡ結合ドメイン；及び２）プロモーター
において集成した転写機構の成分と相互作用する活性化ドメイン；をコードする
ＤＮＡ配列を含んで成る。遺伝子フラグメントは、典型的にはＤＮＡ結合ドメイ
ンが５′末端に対向し、そしてアクチベータードメインが３′末端に対向して、
その発現がハイブリド転写因子を生み出すハイブリド遺伝子を形成するように連
結されている。当業者はＤＮＡ結合ドメインをコードする様々なＤＮＡ配列を活
性化ドメインをコードする様々なＤＮＡ配列とルーチン作業式に組合せて、ハイ
ブリド転写因子遺伝子の幅広いアレーを供することができる。
において集成した転写機構の成分と相互作用する活性化ドメイン；をコードする
ＤＮＡ配列を含んで成る。遺伝子フラグメントは、典型的にはＤＮＡ結合ドメイ
ンが５′末端に対向し、そしてアクチベータードメインが３′末端に対向して、
その発現がハイブリド転写因子を生み出すハイブリド遺伝子を形成するように連
結されている。当業者はＤＮＡ結合ドメインをコードする様々なＤＮＡ配列を活
性化ドメインをコードする様々なＤＮＡ配列とルーチン作業式に組合せて、ハイ
ブリド転写因子遺伝子の幅広いアレーを供することができる。
【００４０】 本発明において有用なハイブリド転写因子を作製するのに有用なＤＮＡ配列の
例には、限定することなく、ＧＡＬ４、バクテリオファージ４３４、ｌｅｘＡ，
ｌａｃＩ及びファージラムダリプレッサーのＤＮＡ結合ドメインをコードするも
のが挙げられる。
例には、限定することなく、ＧＡＬ４、バクテリオファージ４３４、ｌｅｘＡ，
ｌａｃＩ及びファージラムダリプレッサーのＤＮＡ結合ドメインをコードするも
のが挙げられる。
【００４１】 本発明において有用なハイブリド転写因子を供給するのに有用なＤＮＡ配列の
例には、限定することなく、ヘルペス単純ＶＰ１６、トウモロコシＣ１及びＰ１
の酸性活性化ドメインをコードするものが挙げられる。更に、適当な活性化ドメ
インは選定の生物に由来するＤＮＡ断片を適当なＤＮＡ結合ドメインに融合し、
そして機能について直接スクリーニングすることにより単離できうる（引用する
ことで本明細書に組入れるEstruch ら、1994) 。転写アクチベータータンパク質
のドメインは様々な起源のタンパク質間で相互に交換できうる (Brent and Ptas
hne (1985) Cell 43 : 729-736) 。
例には、限定することなく、ヘルペス単純ＶＰ１６、トウモロコシＣ１及びＰ１
の酸性活性化ドメインをコードするものが挙げられる。更に、適当な活性化ドメ
インは選定の生物に由来するＤＮＡ断片を適当なＤＮＡ結合ドメインに融合し、
そして機能について直接スクリーニングすることにより単離できうる（引用する
ことで本明細書に組入れるEstruch ら、1994) 。転写アクチベータータンパク質
のドメインは様々な起源のタンパク質間で相互に交換できうる (Brent and Ptas
hne (1985) Cell 43 : 729-736) 。
【００４２】 所望のハイブリド転写遺伝子はトウモロコシＣ１活性化ドメインに融合したＧ
ＡＬ ＤＮＡ結合ドメインをコードするＤＮＡ配列を含んで成る。当業者は所望
のハイブリド転写因子遺伝子を作製するのに慣用の分子生物学及び組換ＤＮＡ工
学を利用できる。
ＡＬ ＤＮＡ結合ドメインをコードするＤＮＡ配列を含んで成る。当業者は所望
のハイブリド転写因子遺伝子を作製するのに慣用の分子生物学及び組換ＤＮＡ工
学を利用できる。
【００４３】 合成プロモーター 合成プロモーターはハイブリド転写因子のＤＮＡ結合ドメインにより認識され
る少なくとも一のＤＮＡ結合部位、及び最小プロモーター、好ましくは植物細胞
により認識されるプロモーターに由来するＴＡＴＡ要素を含んで成る。より詳し
くは、このＴＡＴＡ要素は合成プロモーターの組込まれた植物細胞タイプにより
認識されるプロモーターに由来する。所望するには、このＤＮＡ結合部位は合成
プロモーターの中で何回も反復しており、かくしてこの最小プロモーターは一層
効率的に活性化され、従ってこの合成プロモーターに結合した活性化性ＤＮＡ配
列は一層効率的に発現される。
る少なくとも一のＤＮＡ結合部位、及び最小プロモーター、好ましくは植物細胞
により認識されるプロモーターに由来するＴＡＴＡ要素を含んで成る。より詳し
くは、このＴＡＴＡ要素は合成プロモーターの組込まれた植物細胞タイプにより
認識されるプロモーターに由来する。所望するには、このＤＮＡ結合部位は合成
プロモーターの中で何回も反復しており、かくしてこの最小プロモーターは一層
効率的に活性化され、従ってこの合成プロモーターに結合した活性化性ＤＮＡ配
列は一層効率的に発現される。
【００４４】 本発明において有用な合成プロモーターを作製するのに利用できるＤＮＡ結合
部位の例には、限定することなく、ＧＡＬ４ ＤＮＡ結合タンパク質により認識
される上流作用式配列（ＵＡＳG ）、ｌａｃオペレーター及びｌｅｘＡ結合部位
が挙げられる。植物細胞により認識されるプロモーターＴＡＴＡ要素の例には、
限定することなく、ＣＡＭＶ３５Ｓ、トウモロコシＢｚ１プロモーター、ＵＢＱ
３プロモーター、アグロバクテリウム（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）ノパリン
シンターゼ又はマンノピンシンターゼプロモーター、例えばＳｕｐｅｒ ＭＡＳ
、トウモロコシＢｚ１プロモーター、ＵＢＱ３プロモーター、ブラシカ・オレラ
セア（Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ）由来のｈｓｐ８０、及びアラビド
プシスアクチン−２プロモーターが挙げられる。
部位の例には、限定することなく、ＧＡＬ４ ＤＮＡ結合タンパク質により認識
される上流作用式配列（ＵＡＳG ）、ｌａｃオペレーター及びｌｅｘＡ結合部位
が挙げられる。植物細胞により認識されるプロモーターＴＡＴＡ要素の例には、
限定することなく、ＣＡＭＶ３５Ｓ、トウモロコシＢｚ１プロモーター、ＵＢＱ
３プロモーター、アグロバクテリウム（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）ノパリン
シンターゼ又はマンノピンシンターゼプロモーター、例えばＳｕｐｅｒ ＭＡＳ
、トウモロコシＢｚ１プロモーター、ＵＢＱ３プロモーター、ブラシカ・オレラ
セア（Ｂｒａｓｓｉｃａ ｏｌｅｒａｃｅａ）由来のｈｓｐ８０、及びアラビド
プシスアクチン−２プロモーターが挙げられる。
【００４５】 所望の合成プロモーターはＧＡＬ４ ＤＮＡ結合部位により認識される上流作
用式配列（ＵＡＳG ）の約１０のコンカテマー直接リピートに対してその５′末
端において融合されたＴＡＴＡ要素を含むトランケーションされたＣａＭＶ３５
Ｓ配列（転写の開始点を中心にヌクレオチド−５９〜＋４８）を含んで成る。当
業者は所望の合成プロモーターを作製するのに慣用の分子生物学及び組換ＤＮＡ
工学を利用できる。
用式配列（ＵＡＳG ）の約１０のコンカテマー直接リピートに対してその５′末
端において融合されたＴＡＴＡ要素を含むトランケーションされたＣａＭＶ３５
Ｓ配列（転写の開始点を中心にヌクレオチド−５９〜＋４８）を含んで成る。当
業者は所望の合成プロモーターを作製するのに慣用の分子生物学及び組換ＤＮＡ
工学を利用できる。
【００４６】 活性化性ＤＮＡ配列 活性化性ＤＮＡ配列は、植物細胞における安定な導入及び発現の所望される任
意のＤＮＡ配列を包含する。特に所望される活性化性ＤＮＡ配列はセンス又はア
ンチセンス配列であり、その発現はその内因性対応遺伝子の発現を低め、それ故
正常な植物成長又は発育を阻害する。
意のＤＮＡ配列を包含する。特に所望される活性化性ＤＮＡ配列はセンス又はア
ンチセンス配列であり、その発現はその内因性対応遺伝子の発現を低め、それ故
正常な植物成長又は発育を阻害する。
【００４７】 この活性化性ＤＮＡ配列を合成プロモーターに作用可能式に連結させ、活性化
性ＤＮＡ構築体を形成できる。この活性化性ＤＮＡ構築体内の活性化性ＤＮＡ配
列は、この合成プロモーターに結合してそれを活性化できるハイブリド転写因子
も存在しない限り、トランスジェニック系内でそれは発現しない、即ち、サイレ
ントである。この活性化性ＤＮＡ構築体を次いで、以下に一層詳しく説明する通
りにして、細胞、組織又は植物に導入して活性化性ＤＮＡ配列を発現する安定な
トランスジェニック系を形成する。
性ＤＮＡ構築体を形成できる。この活性化性ＤＮＡ構築体内の活性化性ＤＮＡ配
列は、この合成プロモーターに結合してそれを活性化できるハイブリド転写因子
も存在しない限り、トランスジェニック系内でそれは発現しない、即ち、サイレ
ントである。この活性化性ＤＮＡ構築体を次いで、以下に一層詳しく説明する通
りにして、細胞、組織又は植物に導入して活性化性ＤＮＡ配列を発現する安定な
トランスジェニック系を形成する。
【００４８】 ハイブリド転写因子、又は合成プロモーター及び活性化性ＤＮＡ配列を含む細胞
、組織又は植物 本発明は更に、ハイブリド転写因子遺伝子及び活性化性ＤＮＡ構築体のそれぞ
れを含む、第一及び第二細胞又は組織、好ましくは植物細胞又は植物組織、又は
植物を包含する。この第一細胞、組織又は植物、及び第二細胞、組織又は植物は
、当該ハイブリド転写因子遺伝子を含み、且つこのハイブリド転写因子を発現し
、しかもこの活性化性ＤＮＡ構築体の合成プロモーターを含み、このプロモータ
ーにより駆動される活性化性ＤＮＡ配列を発現させるように活性化させる植物細
胞、植物組織又は植物が構築されるように操作できうるように選定する。
、組織又は植物 本発明は更に、ハイブリド転写因子遺伝子及び活性化性ＤＮＡ構築体のそれぞ
れを含む、第一及び第二細胞又は組織、好ましくは植物細胞又は植物組織、又は
植物を包含する。この第一細胞、組織又は植物、及び第二細胞、組織又は植物は
、当該ハイブリド転写因子遺伝子を含み、且つこのハイブリド転写因子を発現し
、しかもこの活性化性ＤＮＡ構築体の合成プロモーターを含み、このプロモータ
ーにより駆動される活性化性ＤＮＡ配列を発現させるように活性化させる植物細
胞、植物組織又は植物が構築されるように操作できうるように選定する。
【００４９】 上記のハイブリド転写因子遺伝子及び活性化性ＤＮＡ構築体は当業界において
周知であり、且つ慣用の方法、例えば限定することなく交配、アグロバクテリア
媒介形質転換、Ｔｉプラスミドベクター、直接ＤＮＡ取り込み、例えばマイクロ
プロジェクチルボンバードメント、リポソーム媒介取り込み、マイクロインジェ
クション、等により、細胞、組織又は植物の中に導入される。
周知であり、且つ慣用の方法、例えば限定することなく交配、アグロバクテリア
媒介形質転換、Ｔｉプラスミドベクター、直接ＤＮＡ取り込み、例えばマイクロ
プロジェクチルボンバードメント、リポソーム媒介取り込み、マイクロインジェ
クション、等により、細胞、組織又は植物の中に導入される。
【００５０】 当該ハイブリド転写因子遺伝子を含むトランスジェニック植物系は例えばアグ
ロバクテリア媒介形質転換を利用して構築される。一次形質転換体（Ｔ１世代）
は、それらをリポーター構築体により過渡的に形質転換させることにより対応の
合成プロモーター（即ち、ハイブリド転写因子により活性化される合成プロモー
ター）からの発現を活性化する能力についてスクリーニングする。この系のトラ
ンスジェニック性は自殖後の単一座としてのカナマイシン耐性（又は挿入ＤＮＡ
上で担持されたその他の適当な選択マーカー遺伝子）の分離についてＴ２世代で
更に試験する。単一Ｔ−ＤＮＡインサートの存在は３：１の分離を示す系内での
ゲノムＤＮＡゲルブロット分析により確認される。このような系はＲＮＡゲルブ
ロット分析によるハイブリド転写因子遺伝子の発現について更に分析できうる。
いくつかのＴ２植物を自殖させてＴ３子孫を得、それらは挿入ハイブリド転写因
子遺伝子のホモ接合性についてスクリーニングする。
ロバクテリア媒介形質転換を利用して構築される。一次形質転換体（Ｔ１世代）
は、それらをリポーター構築体により過渡的に形質転換させることにより対応の
合成プロモーター（即ち、ハイブリド転写因子により活性化される合成プロモー
ター）からの発現を活性化する能力についてスクリーニングする。この系のトラ
ンスジェニック性は自殖後の単一座としてのカナマイシン耐性（又は挿入ＤＮＡ
上で担持されたその他の適当な選択マーカー遺伝子）の分離についてＴ２世代で
更に試験する。単一Ｔ−ＤＮＡインサートの存在は３：１の分離を示す系内での
ゲノムＤＮＡゲルブロット分析により確認される。このような系はＲＮＡゲルブ
ロット分析によるハイブリド転写因子遺伝子の発現について更に分析できうる。
いくつかのＴ２植物を自殖させてＴ３子孫を得、それらは挿入ハイブリド転写因
子遺伝子のホモ接合性についてスクリーニングする。
【００５１】 所望のハイブリド転写因子により活性化性である合成プロモーターを含むトラ
ンスジェニック系はアグロバクテリア媒介形質転換により似たようにして調製さ
れる。この合成プロモーター及び活性化性ＤＮＡ配列（活性化性ＤＮＡ構築体）
、更には任意的に選択マーカーを含むトランスジェニック系は標準の方法により
調製される。任意的に、このトランスジェニック系を活性化性ＤＮＡ構築体の存
在を確認するためにマーカーについて選定する。
ンスジェニック系はアグロバクテリア媒介形質転換により似たようにして調製さ
れる。この合成プロモーター及び活性化性ＤＮＡ配列（活性化性ＤＮＡ構築体）
、更には任意的に選択マーカーを含むトランスジェニック系は標準の方法により
調製される。任意的に、このトランスジェニック系を活性化性ＤＮＡ構築体の存
在を確認するためにマーカーについて選定する。
【００５２】 ハイブリド転写因子及び活性化性ＤＮＡ構築体を含むＦ１植物 ハイブリドトランスアクチベーター遺伝子及び活性化性ＤＮＡ構築体を含むＦ
１植物を他花受粉により作り、そしてカナマイシンの如き適当なマーカーの存在
について選定する。活性化性ＤＮＡ構築体しか含まない植物とは対照的に、Ｆ１
植物はＣａＭＶ３５Ｓの如き強力な構成プロモーターにより得られるものに匹敵
する高レベルの活性化性ＤＮＡ配列発現生成物を作る。
１植物を他花受粉により作り、そしてカナマイシンの如き適当なマーカーの存在
について選定する。活性化性ＤＮＡ構築体しか含まない植物とは対照的に、Ｆ１
植物はＣａＭＶ３５Ｓの如き強力な構成プロモーターにより得られるものに匹敵
する高レベルの活性化性ＤＮＡ配列発現生成物を作る。
【００５３】 本発明の有用なアッセイ方法は： ａ）合成プロモーターを活性化させることのできるハイブリド転写因子をコー
ドするハイブリド転写因子遺伝子を含んで成る第一の安定的に形質転換された植
物を ｂ）活性化性ＤＮＡ配列及び前記ハイブリド転写因子により活性化可能な合成
プロモーターを含んで成る第二の安定的に形質転換された植物と交配させ、 ここでａ）において、前記合成プロモーターはａ）の植物の中に存在し、そし
てａ）の植物は前記ハイブリド転写因子に対してホモ接合性であり、そしてｂ）
において、前記ＤＮＡ配列は前記ハイブリド転写因子の存在下で発現し、これに
より当該ＤＮＡ配列を発現するＦ１植物を供し；そして ｃ）前記Ｆ１植物に対する前記ＤＮＡ配列の発現の効果を決定する； ことを含んで成る。
ドするハイブリド転写因子遺伝子を含んで成る第一の安定的に形質転換された植
物を ｂ）活性化性ＤＮＡ配列及び前記ハイブリド転写因子により活性化可能な合成
プロモーターを含んで成る第二の安定的に形質転換された植物と交配させ、 ここでａ）において、前記合成プロモーターはａ）の植物の中に存在し、そし
てａ）の植物は前記ハイブリド転写因子に対してホモ接合性であり、そしてｂ）
において、前記ＤＮＡ配列は前記ハイブリド転写因子の存在下で発現し、これに
より当該ＤＮＡ配列を発現するＦ１植物を供し；そして ｃ）前記Ｆ１植物に対する前記ＤＮＡ配列の発現の効果を決定する； ことを含んで成る。
【００５４】 ここで、前記ハイブリド転写因子遺伝子が酵母のＧＡＬ４遺伝子に由来するＤ
ＮＡ結合ドメイン及びトウモロコシのＣ１遺伝子に由来する転写活性化ドメイン
をコードすることが好ましい。
ＮＡ結合ドメイン及びトウモロコシのＣ１遺伝子に由来する転写活性化ドメイン
をコードすることが好ましい。
【００５５】 ここで、最小プロモーターがＣＡＭＶ３５Ｓ最小プロモーター、トウモロコシ
Ｂｚ１プロモーター及びＵＢＱ３プロモーターから成る群から選ばれるのが好ま
しい。
Ｂｚ１プロモーター及びＵＢＱ３プロモーターから成る群から選ばれるのが好ま
しい。
【００５６】 ここで、前記合成プロモーター配列が、ＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメインにより
認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５′末端において
融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを含んで成ること
が好ましい。
認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５′末端において
融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを含んで成ること
が好ましい。
【００５７】 ここで、前記ハイブリド転写因子遺伝子が酵母のＧＡＬ４遺伝子に由来するＤ
ＮＡ結合ドメイン及びトウモロコシのＣ１遺伝子に由来する転写活性化ドメイン
をコードし、そして前記活性化性ＤＮＡ構築体がＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメイン
により認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５′末端に
おいて融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを含んで成
る合成プロモーター配列を含んで成ることが好ましい。
ＮＡ結合ドメイン及びトウモロコシのＣ１遺伝子に由来する転写活性化ドメイン
をコードし、そして前記活性化性ＤＮＡ構築体がＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメイン
により認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５′末端に
おいて融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを含んで成
る合成プロモーター配列を含んで成ることが好ましい。
【００５８】 本発明の他の有用な方法は、必須植物遺伝子インヒビター、例えば植物ＡｄＳ
Ｓ遺伝子を同定する方法であって、 ａ）植物ＡｄＳＳ酵素機能の推定インヒビターの存在下で植物ＡｄＳＳ酵素と
ＡｄＳＳ基質とを反応させ；そして ｂ）前記推定インヒビターの存在下での植物のＡｄＳＳ酵素反応の割合を、前
記推定インヒビターの非存在下での同一の条件下での植物ＡｄＳＳ酵素反応の割
合と対比させ、前記推定インヒビターがＡｄＳＳを阻害するかを決定する； ことを含んで成る。
Ｓ遺伝子を同定する方法であって、 ａ）植物ＡｄＳＳ酵素機能の推定インヒビターの存在下で植物ＡｄＳＳ酵素と
ＡｄＳＳ基質とを反応させ；そして ｂ）前記推定インヒビターの存在下での植物のＡｄＳＳ酵素反応の割合を、前
記推定インヒビターの非存在下での同一の条件下での植物ＡｄＳＳ酵素反応の割
合と対比させ、前記推定インヒビターがＡｄＳＳを阻害するかを決定する； ことを含んで成る。
【００５９】 本発明の好適な態様はハイブリド転写因子及び活性化性ＤＮＡ構築体を含んで
成る植物であって、前記ハイブリド転写因子遺伝子によりコードされるハイブリ
ド転写因子が前記活性化性ＤＮＡ構築体の合成プロモーターを活性化させ、作用
可能式に連結されたアンチセンスＤＮＡ配列の発現を誘導することができ、ここ
で当該植物は前記ハイブリド転写因子及び前記活性化性ＤＮＡ構築体により安定
的に形質転換されたものである、植物を包含する。
成る植物であって、前記ハイブリド転写因子遺伝子によりコードされるハイブリ
ド転写因子が前記活性化性ＤＮＡ構築体の合成プロモーターを活性化させ、作用
可能式に連結されたアンチセンスＤＮＡ配列の発現を誘導することができ、ここ
で当該植物は前記ハイブリド転写因子及び前記活性化性ＤＮＡ構築体により安定
的に形質転換されたものである、植物を包含する。
【００６０】 ここで、前記ハイブリド転写因子遺伝子が 酵母のＧＡＬ４遺伝子、バクテリオファージ４３４、ｌｅｘＡ，ｌａｃＩ及び
ラムダファージレプレッサー、から成る群から選ばれる遺伝子に由来するＤＮＡ
結合ドメイン； ヘルペス単純ＶＰ１６、トウモロコシＣ１及びＰ１から成る群から選ばれる遺
伝子に由来する転写活性化ドメイン； ＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーター、トウモロコシＢｚ１プロモーター及びＵＢ
Ｑ３プロモーターから成る群から選ばれる最小プロモーターを含んで成る活性化
性ＤＮＡ構築体； を含んで成ることが好ましい。
ラムダファージレプレッサー、から成る群から選ばれる遺伝子に由来するＤＮＡ
結合ドメイン； ヘルペス単純ＶＰ１６、トウモロコシＣ１及びＰ１から成る群から選ばれる遺
伝子に由来する転写活性化ドメイン； ＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーター、トウモロコシＢｚ１プロモーター及びＵＢ
Ｑ３プロモーターから成る群から選ばれる最小プロモーターを含んで成る活性化
性ＤＮＡ構築体； を含んで成ることが好ましい。
【００６１】 ここで、前記合成プロモーター配列が、ＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメインにより
認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５′末端において
融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを含んで成ること
が更に好ましい。
認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５′末端において
融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを含んで成ること
が更に好ましい。
【００６２】 ここで、前記ハイブリド転写因子遺伝子が酵母のＧＡＬ４遺伝子に由来するＤ
ＮＡ結合ドメイン及びトウモロコシのＣ１遺伝子に由来する転写活性化ドメイン
をコードし、そして前記活性化性ＤＮＡ構築体がＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメイン
により認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５′末端に
おいて融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを含んで成
る合成プロモーター配列を含んで成ることが更に好ましい。
ＮＡ結合ドメイン及びトウモロコシのＣ１遺伝子に由来する転写活性化ドメイン
をコードし、そして前記活性化性ＤＮＡ構築体がＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメイン
により認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５′末端に
おいて融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを含んで成
る合成プロモーター配列を含んで成ることが更に好ましい。
【００６３】 ここで、前記活性化性ＤＮＡ配列がＡｄＳＳアンチセンス配列であることが更
に好ましい。
に好ましい。
【００６４】 実施例 以下に開示する実施例はハイブリド転写因子が安定的に形質転換された植物の
中で遺伝子の発現を効率的に制御するように機能できることを実証する。本発明
は以下の非限定的な実施例を参照することにより一層理解できるであろう。
中で遺伝子の発現を効率的に制御するように機能できることを実証する。本発明
は以下の非限定的な実施例を参照することにより一層理解できるであろう。
【００６５】 実施例１−安定なトランスジェニック植物におけるサイレントリポーター遺伝子
の発現 本実施例は、適当な合成プロモーターにより制御可能なリポーター導入遺伝子
を含む系に対してＧＡＬ４／Ｃ１ハイブリド因子を発現するトランスジェニック
植物を交配させると、リポーター遺伝子発現の強力な誘導がもたらされることを
示す。アラビドプシス内でこのシステムを試験するための適当な遺伝子を以下に
一層詳しく説明する通りに構築した。
の発現 本実施例は、適当な合成プロモーターにより制御可能なリポーター導入遺伝子
を含む系に対してＧＡＬ４／Ｃ１ハイブリド因子を発現するトランスジェニック
植物を交配させると、リポーター遺伝子発現の強力な誘導がもたらされることを
示す。アラビドプシス内でこのシステムを試験するための適当な遺伝子を以下に
一層詳しく説明する通りに構築した。
【００６６】 ハイブリド転写遺伝子はＤＮＡ結合機能及び転写活性化機能をそれぞれ含むこ
とが従前に示されているＧＡＬ４及びＣ１遺伝子の成分から構築する。（植物形
質転換のために用いた構築体ｐＡＴ５３は、Ｃ１活性化ドメインにカップリング
されたＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメインを含んで成るハイブリド転写因子に作用可
能式に連結された３５Ｓプロモーターにカップリングされた左側境界配列を含み
、３５Ｓ３′ターミネーター配列及びｐＮＯＳ／ＮＰＴ／ｎｏｓ３′選択マーカ
ーカセットが右側境界配列に隣接している）。コードされるタンパク質のＮ−末
端側の１４７個のアミノ酸はＧＡＬ４に由来し、そしてＣ末端側の１０１個のア
ミノ酸はＣ１のカルボキシ末端アミノ酸１７３−２７３に由来する。似たような
組合せは過渡的アッセイにおいて機能することが従前に示されている（Goffら、
1991) 。
とが従前に示されているＧＡＬ４及びＣ１遺伝子の成分から構築する。（植物形
質転換のために用いた構築体ｐＡＴ５３は、Ｃ１活性化ドメインにカップリング
されたＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメインを含んで成るハイブリド転写因子に作用可
能式に連結された３５Ｓプロモーターにカップリングされた左側境界配列を含み
、３５Ｓ３′ターミネーター配列及びｐＮＯＳ／ＮＰＴ／ｎｏｓ３′選択マーカ
ーカセットが右側境界配列に隣接している）。コードされるタンパク質のＮ−末
端側の１４７個のアミノ酸はＧＡＬ４に由来し、そしてＣ末端側の１０１個のア
ミノ酸はＣ１のカルボキシ末端アミノ酸１７３−２７３に由来する。似たような
組合せは過渡的アッセイにおいて機能することが従前に示されている（Goffら、
1991) 。
【００６７】 この因子により活性化可能となるようにデザインされた合成プロモーターはＧ
ＡＬ４タンパク質により認識される上流作用式配列（ＵＡＳG ）の１０のコンカ
テマーコピーに対してその５′末端において融合したＢｚ１ ＴＡＴＡ要素を利
用して（任意的に、ＴＡＴＡ要素（転写開始点を中心にヌクレオチド−５９〜＋
４８）を含むトランケーションされたＣａＭＶ３５Ｓプロモーターを使用）構築
する（構築体ｐＡＴ７３は３５Ｓ３′ターミネーターに連結された３５Ｓプロモ
ーター作用可能式連結化ジヒドロフォレートリダクターゼコード配列にカップリ
ングされた左側境界配列を含み、それは３５Ｓ３′ターミネーターを有するＧＵ
Ｓリポーター要素に作用可能式に連結されたＴＡＴＡ要素を含む１０倍コンカテ
マーＧＡＬ４結合部位構築体にライゲーションされ、その全てに右側境界配列が
隣接する）。安定形質転換体内でのこのシステムの効率を評価するため、活性化
性ＤＮＡ配列として、リポーター遺伝子、例えば合成ＵＡＳG ／ＴＡＴＡプロモ
ーターにより駆動される改良Ｅ．コリｕｉｄＡ（β−グルクロニダーゼ；ＧＵＳ
）コード配列を選定する。このＧＵＳ遺伝子はその生成物が容易に検出、且つ定
量できる点で、発現のためのモデルリポーター遺伝子と考慮される。
ＡＬ４タンパク質により認識される上流作用式配列（ＵＡＳG ）の１０のコンカ
テマーコピーに対してその５′末端において融合したＢｚ１ ＴＡＴＡ要素を利
用して（任意的に、ＴＡＴＡ要素（転写開始点を中心にヌクレオチド−５９〜＋
４８）を含むトランケーションされたＣａＭＶ３５Ｓプロモーターを使用）構築
する（構築体ｐＡＴ７３は３５Ｓ３′ターミネーターに連結された３５Ｓプロモ
ーター作用可能式連結化ジヒドロフォレートリダクターゼコード配列にカップリ
ングされた左側境界配列を含み、それは３５Ｓ３′ターミネーターを有するＧＵ
Ｓリポーター要素に作用可能式に連結されたＴＡＴＡ要素を含む１０倍コンカテ
マーＧＡＬ４結合部位構築体にライゲーションされ、その全てに右側境界配列が
隣接する）。安定形質転換体内でのこのシステムの効率を評価するため、活性化
性ＤＮＡ配列として、リポーター遺伝子、例えば合成ＵＡＳG ／ＴＡＴＡプロモ
ーターにより駆動される改良Ｅ．コリｕｉｄＡ（β−グルクロニダーゼ；ＧＵＳ
）コード配列を選定する。このＧＵＳ遺伝子はその生成物が容易に検出、且つ定
量できる点で、発現のためのモデルリポーター遺伝子と考慮される。
【００６８】 このハイブリド転写因子遺伝子を含むトランスジェニックアラビドプシス植物
系はアグロバクテリア媒介形質転換を利用して構築した。一次形質転換体（Ｔ１
世代）を、それらをルシフェラーゼリポーター構築体で過渡的に形質転換するこ
とにより合成ＵＡＳG ／ＴＡＴＡプロモーターからの発現を活性化するその能力
についてスクリーニングした。Ｔ１形質転換体の約半分がマイクロプロジェクチ
ルボンバードメント後にルシフェラーゼ活性を示した。ＲＮＡゲルブロット分析
はこれらの形質転換体がＧＡＬ４／Ｃ１遺伝子を発現することを確証せしめた。
これらの系をＴ２世代で、自殖後の単一座としてのカナマイシン耐性の分離（Ｔ
−ＤＮＡ上に担持された選択マーカー遺伝子）について更に試験した。単一Ｔ−
ＤＮＡインサートの存在は３：１の分離を示す系内でのゲノムＤＮＡゲルブロッ
ト分析により確認される（データーは示してない）。これらの系をＲＮＡゲルブ
ロット分析によりＧＡＬ４／Ｃ１遺伝子の発現について更に分析する。ＲＮＡブ
ロット分析は双方の系がこの導入遺伝子に由来する安定ＲＮＡを検出可能なレベ
ルで発現することを示した。ｐＡＴ５３−１０３と称する単独のエフェクター系
を更なる実験のために選定し、そしていくつかのＴ２植物を自殖させてＴ３トラ
ンスジェニック子孫を得、それらをＴ−ＤＮＡインサートのホモ接合性について
スクリーニングした。
系はアグロバクテリア媒介形質転換を利用して構築した。一次形質転換体（Ｔ１
世代）を、それらをルシフェラーゼリポーター構築体で過渡的に形質転換するこ
とにより合成ＵＡＳG ／ＴＡＴＡプロモーターからの発現を活性化するその能力
についてスクリーニングした。Ｔ１形質転換体の約半分がマイクロプロジェクチ
ルボンバードメント後にルシフェラーゼ活性を示した。ＲＮＡゲルブロット分析
はこれらの形質転換体がＧＡＬ４／Ｃ１遺伝子を発現することを確証せしめた。
これらの系をＴ２世代で、自殖後の単一座としてのカナマイシン耐性の分離（Ｔ
−ＤＮＡ上に担持された選択マーカー遺伝子）について更に試験した。単一Ｔ−
ＤＮＡインサートの存在は３：１の分離を示す系内でのゲノムＤＮＡゲルブロッ
ト分析により確認される（データーは示してない）。これらの系をＲＮＡゲルブ
ロット分析によりＧＡＬ４／Ｃ１遺伝子の発現について更に分析する。ＲＮＡブ
ロット分析は双方の系がこの導入遺伝子に由来する安定ＲＮＡを検出可能なレベ
ルで発現することを示した。ｐＡＴ５３−１０３と称する単独のエフェクター系
を更なる実験のために選定し、そしていくつかのＴ２植物を自殖させてＴ３トラ
ンスジェニック子孫を得、それらをＴ−ＤＮＡインサートのホモ接合性について
スクリーニングした。
【００６９】 ＵＡＳG ／ＴＡＴＡ／ＧＵＳ遺伝子を含むトランスジェニックアラビドプシス
植物系をアグロバクテリア媒介形質転換を利用して構築し、そしてメトトレキセ
ートで選択し、ホモ接合性についてスクリーニングした。ｐＡＴ７３−３０９及
び−３４６と称する２つの系をＧＵＳ活性について分析し、そして微量で、アッ
セイバックグランドと有意差のない活性しか認められなかった（表１）。ハイブ
リドトランスアクチベーター遺伝子及び活性化性リポーター遺伝子の双方を含む
Ｆ１植物を他花受粉により作り、そしてカナマイシンで選択した。リポーター遺
伝子だけしか含まない植物とは対照的に、Ｆ１植物は、ＣａＭＶ３５Ｓの如き強
力なプロモーターで得られるものに匹敵する極めて高レベルのＧＵＳ活性を供し
た（表１）。 表１．Ｆ１植物のβ−グルクロニダーゼ活性 形質転換体 ＧＵＳ活性* (nmol MU/min/mg タンパク質） ３５Ｓ／ＧＵＳ系７ １７．６±４．３ 系１０５ １９．１±７．２ 系１１５ １２．１±３．７ 非形質転換Ｎｏｓｓｅｎ ０．０３±０．０１ ｐＡＴ５３−１０３ ０．０１±０．０ ｐＡＴ７３−３０９ ０．０１±０．０１ ｐＡＴ７３−３０９×ｐＡＴ５３−１０３Ｆ１ ４．９７±３．４１ ｐＡＴ７３−３４６ ０．０１±０．０ ｐＡＴ７３−３４６×ｐＡＴ５３−１０３Ｆ１ ６．０２±２．３* ＧＵＳ活性を各系又はＦ１交配系につき２０の植物について測定（平均± 標準偏差）。
植物系をアグロバクテリア媒介形質転換を利用して構築し、そしてメトトレキセ
ートで選択し、ホモ接合性についてスクリーニングした。ｐＡＴ７３−３０９及
び−３４６と称する２つの系をＧＵＳ活性について分析し、そして微量で、アッ
セイバックグランドと有意差のない活性しか認められなかった（表１）。ハイブ
リドトランスアクチベーター遺伝子及び活性化性リポーター遺伝子の双方を含む
Ｆ１植物を他花受粉により作り、そしてカナマイシンで選択した。リポーター遺
伝子だけしか含まない植物とは対照的に、Ｆ１植物は、ＣａＭＶ３５Ｓの如き強
力なプロモーターで得られるものに匹敵する極めて高レベルのＧＵＳ活性を供し
た（表１）。 表１．Ｆ１植物のβ−グルクロニダーゼ活性 形質転換体 ＧＵＳ活性* (nmol MU/min/mg タンパク質） ３５Ｓ／ＧＵＳ系７ １７．６±４．３ 系１０５ １９．１±７．２ 系１１５ １２．１±３．７ 非形質転換Ｎｏｓｓｅｎ ０．０３±０．０１ ｐＡＴ５３−１０３ ０．０１±０．０ ｐＡＴ７３−３０９ ０．０１±０．０１ ｐＡＴ７３−３０９×ｐＡＴ５３−１０３Ｆ１ ４．９７±３．４１ ｐＡＴ７３−３４６ ０．０１±０．０ ｐＡＴ７３−３４６×ｐＡＴ５３−１０３Ｆ１ ６．０２±２．３* ＧＵＳ活性を各系又はＦ１交配系につき２０の植物について測定（平均± 標準偏差）。
【００７０】 実施例２−安定なトランスジェニック植物におけるサイレントアンチセンスＤＮ
Ａ配列の発現 更に、本発明は試験遺伝子の発現を特異的に不活性化するアンチセンス遺伝子
の発現を誘導することにより遺伝子機能を調べるのに利用できる。本発明は遺伝
子機能を排除するアンチセンス遺伝子の発現の駆動に利用される。ｄｅ ｎｏｖ
ｏプリン合成の２段階の一方でＩＭＰをＡＭＰに変換するアデニロスクシネート
シンセターゼ（ＡｄＳＳ）をコードする遺伝子を活性化性ＤＮＡ配列として利用
する。ＡｄＳＳは近年潜在的な天然物ヒダントシジンの標的と考えられている（
Cseke ら、1996 ; Fonne'-Pfister ら、1996 ; Siehlら、1996) 。ＡｄＳＳ活性
は当業界において周知の標準酵素アッセイ、例えばＡｄＳＳ酵素をＡｄＳＳ基質
と反応させ、ＡｄＳＳ酵素がその基質とは有意に異なる生成物へと触媒できるよ
うにし、そして基質のこの生成物への触媒的変換速度を測定することにより、測
定する。この変換は様々な時点での反応物中に存在する基質もしくは生成物又は
その両者の量を測定することにより直接的に、又は基質もしくは生成物の一方に
結合したラベル、例えば放射能もしくは色調インジケーターを測定することによ
り間接的に測定できうる。サザンブロット分析はここでのアンチセンス構築のた
めに利用した全長ｃＤＮＡがアラビドプシスゲノム内の単独の遺伝子であること
を示した。
Ａ配列の発現 更に、本発明は試験遺伝子の発現を特異的に不活性化するアンチセンス遺伝子
の発現を誘導することにより遺伝子機能を調べるのに利用できる。本発明は遺伝
子機能を排除するアンチセンス遺伝子の発現の駆動に利用される。ｄｅ ｎｏｖ
ｏプリン合成の２段階の一方でＩＭＰをＡＭＰに変換するアデニロスクシネート
シンセターゼ（ＡｄＳＳ）をコードする遺伝子を活性化性ＤＮＡ配列として利用
する。ＡｄＳＳは近年潜在的な天然物ヒダントシジンの標的と考えられている（
Cseke ら、1996 ; Fonne'-Pfister ら、1996 ; Siehlら、1996) 。ＡｄＳＳ活性
は当業界において周知の標準酵素アッセイ、例えばＡｄＳＳ酵素をＡｄＳＳ基質
と反応させ、ＡｄＳＳ酵素がその基質とは有意に異なる生成物へと触媒できるよ
うにし、そして基質のこの生成物への触媒的変換速度を測定することにより、測
定する。この変換は様々な時点での反応物中に存在する基質もしくは生成物又は
その両者の量を測定することにより直接的に、又は基質もしくは生成物の一方に
結合したラベル、例えば放射能もしくは色調インジケーターを測定することによ
り間接的に測定できうる。サザンブロット分析はここでのアンチセンス構築のた
めに利用した全長ｃＤＮＡがアラビドプシスゲノム内の単独の遺伝子であること
を示した。
【００７１】 実施例１の安定なトランスジェニック植物において達成される有効なアンチセ
ンスＤＮＡ配列の発現に基づき、ハイブリド転写因子遺伝子及びＡｄＳＳアンチ
センス配列の発現を駆動する合成プロモーターの双方を含む安定なトランスジェ
ニック植物における有効な発現は内因性ＡｄＳＳ遺伝子発現の不活性化をもたら
すであろうことが推定された。もしＡｄＳＳアンチセンス配列が有効に発現され
ないと、ヒンダトシジンの除草効果に似た効果に基づき植物は死に至るであろう
。しかしながら、かかる実験を行う前に、安定的に形質転換された植物における
アンチセンスの発現が起こり、そしてＡｄＳＳ遺伝子の不活性をもたらすである
かどうかは当業者にとって明確でない。以下に更に詳しく説明する通り、ＡｄＳ
Ｓアンチセンス配列は安定なトランスジェニック植物において有効に発現され、
そして内因性ＡｄＳＳ酵素の発現は阻害された。
ンスＤＮＡ配列の発現に基づき、ハイブリド転写因子遺伝子及びＡｄＳＳアンチ
センス配列の発現を駆動する合成プロモーターの双方を含む安定なトランスジェ
ニック植物における有効な発現は内因性ＡｄＳＳ遺伝子発現の不活性化をもたら
すであろうことが推定された。もしＡｄＳＳアンチセンス配列が有効に発現され
ないと、ヒンダトシジンの除草効果に似た効果に基づき植物は死に至るであろう
。しかしながら、かかる実験を行う前に、安定的に形質転換された植物における
アンチセンスの発現が起こり、そしてＡｄＳＳ遺伝子の不活性をもたらすである
かどうかは当業者にとって明確でない。以下に更に詳しく説明する通り、ＡｄＳ
Ｓアンチセンス配列は安定なトランスジェニック植物において有効に発現され、
そして内因性ＡｄＳＳ酵素の発現は阻害された。
【００７２】 ＵＡＳG ／ＴＡＴＡ／アンチセンスＡｄＳＳ構築体を含む１５種類のトランス
ジェニック植物をアグロバクテリア形質転換により作製した。（構築体ｐＪＧ２
６１ＡｎｔｉＡｄＳＳは、３５Ｓ３′及び右側境界配列により終結したＡｄＳＳ
アンチセンスコード配列に連結されたＴＡＴＡ要素を含む１０倍コンカテマーＧ
ＡＬ４結合部位構築体に連結されたｐＮｏｓ／ＢＡＲ／遺伝子７ ３′選択マー
カーカセットにカップリングされた右側境界配列を含む）。一次形質転換体上で
咲いた花はホモ接合性トランスアクチベーター系ｐＡＴ５３−１０３由来の花粉
と交配させた。Ｆ１種子をカナマイシン上でプレート培養し、異系交配した子孫
を選択した。これらの一次形質転換体はたいていの場合単一のメンデリアン形質
である導入Ｔ−ＤＮＡ（アンチセンス遺伝子を含む）に対してヘミ接合性である
。かくして、このアンチセンス遺伝子はトランスアクチベーターを常にヘミ接合
状態で含むバックグランド（ただし、自殖による稀な夾雑物は除く；それはカナ
マイシンの如き選択マーカーでの発芽により選択される）に対し１：１で分離す
るであろう。６つの系において、実生の約５０％の成長がひどく遅れ、完璧に発
芽できなかったものもあった。他の５つの系は真葉繁殖期の間生存したが、土壌
に移した後に様々な成長異常を示した。最後の４つの系は異常な表現型をほとん
ど又は全く示さなかった。
ジェニック植物をアグロバクテリア形質転換により作製した。（構築体ｐＪＧ２
６１ＡｎｔｉＡｄＳＳは、３５Ｓ３′及び右側境界配列により終結したＡｄＳＳ
アンチセンスコード配列に連結されたＴＡＴＡ要素を含む１０倍コンカテマーＧ
ＡＬ４結合部位構築体に連結されたｐＮｏｓ／ＢＡＲ／遺伝子７ ３′選択マー
カーカセットにカップリングされた右側境界配列を含む）。一次形質転換体上で
咲いた花はホモ接合性トランスアクチベーター系ｐＡＴ５３−１０３由来の花粉
と交配させた。Ｆ１種子をカナマイシン上でプレート培養し、異系交配した子孫
を選択した。これらの一次形質転換体はたいていの場合単一のメンデリアン形質
である導入Ｔ−ＤＮＡ（アンチセンス遺伝子を含む）に対してヘミ接合性である
。かくして、このアンチセンス遺伝子はトランスアクチベーターを常にヘミ接合
状態で含むバックグランド（ただし、自殖による稀な夾雑物は除く；それはカナ
マイシンの如き選択マーカーでの発芽により選択される）に対し１：１で分離す
るであろう。６つの系において、実生の約５０％の成長がひどく遅れ、完璧に発
芽できなかったものもあった。他の５つの系は真葉繁殖期の間生存したが、土壌
に移した後に様々な成長異常を示した。最後の４つの系は異常な表現型をほとん
ど又は全く示さなかった。
【００７３】 ひどい成長遅退及び死がアンチセンス導入遺伝子の存在によるかを確認するた
め、ポリメラーゼ連鎖反応をＡｄＳＳ ｃＤＮＡの５′末端と最小３５Ｓプロモ
ーターとの間の領域を増幅するようにデザインしたプライマーを利用して実施し
た。ゲル電気泳動は異常な実生とアンチセンス遺伝子との間で１対１の関係が観
察されることを示した。種々のアンチセンス系間での表現型のバリエーションを
調べるため、我々は種々のアンチセンス系に由来するＦ１植物に対してＲＮＡゲ
ルブロットハイブリダイゼーションを実施した。非形質転換Ｃｏｌ−０植物、ｐ
ＡＴ５３−１０３植物、及びｐＡＴ５３−１０３×アンチセンスＡｄＳＳの交配
に由来するＦ１植物由来のＲＮＡを含むＡｄＳＳプローブでプロービングしたゲ
ルブロットは重篤な表現型を有する系ではＡｄＳＳ ＲＮＡがほとんどの検出さ
れないことを示した（最も重篤な実生死系は、ＲＮＡ抽出よりわずかな組織しか
得られなかったため、分析から外した）。
め、ポリメラーゼ連鎖反応をＡｄＳＳ ｃＤＮＡの５′末端と最小３５Ｓプロモ
ーターとの間の領域を増幅するようにデザインしたプライマーを利用して実施し
た。ゲル電気泳動は異常な実生とアンチセンス遺伝子との間で１対１の関係が観
察されることを示した。種々のアンチセンス系間での表現型のバリエーションを
調べるため、我々は種々のアンチセンス系に由来するＦ１植物に対してＲＮＡゲ
ルブロットハイブリダイゼーションを実施した。非形質転換Ｃｏｌ−０植物、ｐ
ＡＴ５３−１０３植物、及びｐＡＴ５３−１０３×アンチセンスＡｄＳＳの交配
に由来するＦ１植物由来のＲＮＡを含むＡｄＳＳプローブでプロービングしたゲ
ルブロットは重篤な表現型を有する系ではＡｄＳＳ ＲＮＡがほとんどの検出さ
れないことを示した（最も重篤な実生死系は、ＲＮＡ抽出よりわずかな組織しか
得られなかったため、分析から外した）。
【００７４】 本実施例は以下の技術的な説明により一層よく理解できる。
【００７５】 組換プラスミド ｐＳＧＺＬ１をｐＧＡＬＣ１由来のＧＡＬ４−Ｃ１ ＥｃｏＲＩフラグメント
（Goffら、1991) をｐＩＣ２０ＨのＥｃｏＲＩ部位の中にライゲーションするこ
とにより構築した。ｐＳＧＺＬ１のＧＡＬ４−Ｃ１フラグメントをＢａｍＨＩ−
ＢｇｌIIで切り取り、そしてｐＣＩＢ７７０（Rothstein ら、1987) のＢａｍＨ
Ｉ部位に挿入してｐＡＴ５３を作った。
（Goffら、1991) をｐＩＣ２０ＨのＥｃｏＲＩ部位の中にライゲーションするこ
とにより構築した。ｐＳＧＺＬ１のＧＡＬ４−Ｃ１フラグメントをＢａｍＨＩ−
ＢｇｌIIで切り取り、そしてｐＣＩＢ７７０（Rothstein ら、1987) のＢａｍＨ
Ｉ部位に挿入してｐＡＴ５３を作った。
【００７６】 １０個のＵＡＳG 部位及び最小３５Ｓプロモーター（−５９〜＋１）をｐＧＡ
ＬＬｕｃ２（Goffら、1991) からＥｃｏＲＩ−ＰｓｔＩフラグメントとして切り
取り、そしてｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔの対応の部位に挿入し、ｐＡＴ５２を得た
。ｐＡＴ６６はｐＡＴ５２のＨｉｎｄIII −ＰｓｔＩフラグメント、ｐＣＩＢ１
７１６のＰｓｔＩ−ＥｃｏＲＩフラグメント（３５Ｓ非翻訳リーダー、ＧＵＳ遺
伝子、３５Ｓターミネーターを含む）及びＨｉｎｄIII −ＥｃｏＲＩ切断ｐＵＣ
１８の三方向ライゲーションにより構築した。ｐＡＴ６６の３５ＳリーダーをＰ
ｓｔＩ−ＮｃｏＩで切り取り、そして＋１〜＋４８までにわたるＰＣＲ構築３５
Ｓリーダーと交換し、ｐＡＴ７１を得た。
ＬＬｕｃ２（Goffら、1991) からＥｃｏＲＩ−ＰｓｔＩフラグメントとして切り
取り、そしてｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔの対応の部位に挿入し、ｐＡＴ５２を得た
。ｐＡＴ６６はｐＡＴ５２のＨｉｎｄIII −ＰｓｔＩフラグメント、ｐＣＩＢ１
７１６のＰｓｔＩ−ＥｃｏＲＩフラグメント（３５Ｓ非翻訳リーダー、ＧＵＳ遺
伝子、３５Ｓターミネーターを含む）及びＨｉｎｄIII −ＥｃｏＲＩ切断ｐＵＣ
１８の三方向ライゲーションにより構築した。ｐＡＴ６６の３５ＳリーダーをＰ
ｓｔＩ−ＮｃｏＩで切り取り、そして＋１〜＋４８までにわたるＰＣＲ構築３５
Ｓリーダーと交換し、ｐＡＴ７１を得た。
【００７７】 ｐＣＩＢ９２１はｐＣＩＢ７１０のＢａｍＨＩ部位（Rothstein ら、1987) の
中に挿入されたジヒドロフォレートリダクターゼ（ｄｈｆｒ）植物選択マーカー
遺伝子を含む。ｐＣＩＢ９２１の３５Ｓプロモーター／ｄｈｆｒ遺伝子カセット
をＸｂａＩ−ＥｃｏＲＩで切り取り、そしてｐＣＩＢ７３０の対応の部位（Roth
stein ら、1987) の中に挿入し、ｐＡＴ５８を作った。ｐＡＴ７３は１０個のＵ
ＡＳG 部位／最小３５Ｓプロモーター／ＧＵＳ／３５Ｓターミネーターを含むｐ
ＡＴ７１由来のＥｃｏＲＩフラグメントをｐＡＴ５８のＥｃｏＲＩ部位の中に挿
入することにより構築した。
中に挿入されたジヒドロフォレートリダクターゼ（ｄｈｆｒ）植物選択マーカー
遺伝子を含む。ｐＣＩＢ９２１の３５Ｓプロモーター／ｄｈｆｒ遺伝子カセット
をＸｂａＩ−ＥｃｏＲＩで切り取り、そしてｐＣＩＢ７３０の対応の部位（Roth
stein ら、1987) の中に挿入し、ｐＡＴ５８を作った。ｐＡＴ７３は１０個のＵ
ＡＳG 部位／最小３５Ｓプロモーター／ＧＵＳ／３５Ｓターミネーターを含むｐ
ＡＴ７１由来のＥｃｏＲＩフラグメントをｐＡＴ５８のＥｃｏＲＩ部位の中に挿
入することにより構築した。
【００７８】 プラスミドｐＢＳ ＳＫｔ（Stratagene, La Jolla, CA) をＳａｃＩで線形に
し、ムング．ビーンヌクレアーゼで処理してＳａｃＩ部位を除き、そしてＴ４リ
ガーゼと再ライゲーションしてｐＪＧ２０１を作った。ＵＡＳG ／ＣＡＭＶ３５
Ｓ最小プロモーター／ＧＵＳ遺伝子／ＣａＭＶターミネーターカセットをｐＡＴ
７１からＫｐｎＩで除去し、そしてｐＪＧ２０１のＫｐｎＩ部位の中にクローニ
ングしてｐＪＧ３０４を作った。ｐＪＧ３０４を制限エンドヌクレアーゼＡｓｐ
７１８で部分消化して全長線形フラグメントを単離した。このフラグメントをモ
ル過剰量のオリゴヌクレオチドＧＴＡＣＣＴＣＧＡＧＴＣＴＡＧＡＣＴＣＧＡＧ
３′とライゲーションした。制限分析をこの部位に対して５′側にこのリンカ
ーの挿入されたクローンを同定するのに用い、そしてこのプラスミドをｐＪＧ３
０４／ＥＸｈｏＩと命名した。
し、ムング．ビーンヌクレアーゼで処理してＳａｃＩ部位を除き、そしてＴ４リ
ガーゼと再ライゲーションしてｐＪＧ２０１を作った。ＵＡＳG ／ＣＡＭＶ３５
Ｓ最小プロモーター／ＧＵＳ遺伝子／ＣａＭＶターミネーターカセットをｐＡＴ
７１からＫｐｎＩで除去し、そしてｐＪＧ２０１のＫｐｎＩ部位の中にクローニ
ングしてｐＪＧ３０４を作った。ｐＪＧ３０４を制限エンドヌクレアーゼＡｓｐ
７１８で部分消化して全長線形フラグメントを単離した。このフラグメントをモ
ル過剰量のオリゴヌクレオチドＧＴＡＣＣＴＣＧＡＧＴＣＴＡＧＡＣＴＣＧＡＧ
３′とライゲーションした。制限分析をこの部位に対して５′側にこのリンカ
ーの挿入されたクローンを同定するのに用い、そしてこのプラスミドをｐＪＧ３
０４／ＥＸｈｏＩと命名した。
【００７９】 従前に発表されたＡｄＳＳシンターゼｃＤＮＡクローンのフラグメント（Fonn
e'-Pfisterら、1996)(ＧｅｎＢａｎｋ受託番号Ｕ４９３８９）を次のオリゴヌク
レオチドプライマーでＰＣＲ増幅させた：５′ＧＡＴＴＣＧＡＧＣＴＣＡＴＧＴ
ＣＴＣＴＣＴＣＴＴＣＣＣＴＣ ３′及び５′ＧＡＴＴＣＣＣＡＴＧＧＴＧＧＡ
ＣＣＴＧＡＡＣＣＡＡＣＴＣ ３′。ベクターｐＪＧ３０４ΔＸｈｏＩをＳａｃ
Ｉ及びＮｃｏＩで消化し、ＧＵＳ遺伝コード配列を切り取った。ＡｄＳＳＰＣＲ
フラグメントをＳａｃＩ及びＮｃｏＩで消化し、そしてｐＪＧ３０４ΔＸｈｏＩ
にライゲーションしてｐＪＧ３０４ ＡｎｔｉＡｄＳＳを作った。
e'-Pfisterら、1996)(ＧｅｎＢａｎｋ受託番号Ｕ４９３８９）を次のオリゴヌク
レオチドプライマーでＰＣＲ増幅させた：５′ＧＡＴＴＣＧＡＧＣＴＣＡＴＧＴ
ＣＴＣＴＣＴＣＴＴＣＣＣＴＣ ３′及び５′ＧＡＴＴＣＣＣＡＴＧＧＴＧＧＡ
ＣＣＴＧＡＡＣＣＡＡＣＴＣ ３′。ベクターｐＪＧ３０４ΔＸｈｏＩをＳａｃ
Ｉ及びＮｃｏＩで消化し、ＧＵＳ遺伝コード配列を切り取った。ＡｄＳＳＰＣＲ
フラグメントをＳａｃＩ及びＮｃｏＩで消化し、そしてｐＪＧ３０４ΔＸｈｏＩ
にライゲーションしてｐＪＧ３０４ ＡｎｔｉＡｄＳＳを作った。
【００８０】 ベクターｐＧＰＴＶ（Beckerら、1992) をＥｃｏＲＩ及びＨｉｎｄIII で消化
してノパリンシンターゼプロモーター／ＧＵＳカセットを除去した。同時に、ス
ーパーリンカーをｐＳＥ３８０（Invitrogen, San Diego, CA ) からＥｃｏＲＩ
及びＨｉｎｄIII により切り取り、そしてＥｃｏＲＩ／ＨｉｎｄIII 線形化ｐＧ
ＰＴＶにクローニングしてｐＪＧ２６１を作った。
してノパリンシンターゼプロモーター／ＧＵＳカセットを除去した。同時に、ス
ーパーリンカーをｐＳＥ３８０（Invitrogen, San Diego, CA ) からＥｃｏＲＩ
及びＨｉｎｄIII により切り取り、そしてＥｃｏＲＩ／ＨｉｎｄIII 線形化ｐＧ
ＰＴＶにクローニングしてｐＪＧ２６１を作った。
【００８１】 ｐＪＧ３０４ ＡｎｔｉＡｄＳＳをＸｈｏＩで切り、ＵＡＳG ／３５Ｓ最小プ
ロモーター／アンチセンスＡｄＳＳ／ＣａＭＶターミネーター融合体を含むカセ
ットを切り取った。このカセットをＸｈｏＩ消化ｐＪＧ２６１の中にその転写が
ｂａｒ選択マーカーのそれとは独立となるようにライゲーションし、ｐＪＧ２６
１ ＡｎｔｉＡｄＳＳを作った。
ロモーター／アンチセンスＡｄＳＳ／ＣａＭＶターミネーター融合体を含むカセ
ットを切り取った。このカセットをＸｈｏＩ消化ｐＪＧ２６１の中にその転写が
ｂａｒ選択マーカーのそれとは独立となるようにライゲーションし、ｐＪＧ２６
１ ＡｎｔｉＡｄＳＳを作った。
【００８２】 トランスジェニック植物 ｐＪＧ２６１ ＡｎｔｉＡｄＳＳをアグロバクテリウム．トウメファシエンス
（Agrobacterium tumefaciens ) 株ＧＶ３１０１（ｐＭＰ９０）（Koncz and Sc
hell, 1986) の中にエレクトロ形質転換し、そして得られる株を利用してアラビ
ドプシス植物（エコタイプＣｏｌｕｍｂｉａ）を浸潤（Bechtoldら、1993) によ
り形質転換した。浸潤した植物由来の実生をグルフォシネート (Basta ; Agr Ev
o)を１５mg／Ｌで含む寒天発芽培地（Murashige-Skoog 塩４．３ｇ／Ｌ、ＭＥＳ
０．５ｇ／Ｌ、スクロース１％、チアミン１０μｇ／Ｌ、ピリドキシ５μｇ／
Ｌ、ニコチン酸５μｇ／Ｌ、ミオーイノシトール１mg／Ｌ、pH５．８）上で選択
した。
（Agrobacterium tumefaciens ) 株ＧＶ３１０１（ｐＭＰ９０）（Koncz and Sc
hell, 1986) の中にエレクトロ形質転換し、そして得られる株を利用してアラビ
ドプシス植物（エコタイプＣｏｌｕｍｂｉａ）を浸潤（Bechtoldら、1993) によ
り形質転換した。浸潤した植物由来の実生をグルフォシネート (Basta ; Agr Ev
o)を１５mg／Ｌで含む寒天発芽培地（Murashige-Skoog 塩４．３ｇ／Ｌ、ＭＥＳ
０．５ｇ／Ｌ、スクロース１％、チアミン１０μｇ／Ｌ、ピリドキシ５μｇ／
Ｌ、ニコチン酸５μｇ／Ｌ、ミオーイノシトール１mg／Ｌ、pH５．８）上で選択
した。
【００８３】 アラビドプシスの根の外植体（エコタイプＮｏｓｓｅｎ）を発表されている通
りにして（Valvekens ら、1988）ｐＡＴ５３で形質転換した。
りにして（Valvekens ら、1988）ｐＡＴ５３で形質転換した。
【００８４】 ＵＡＳG ／最小ＣａＭＶ３５Ｓプロモーター／アンチセンスＡｄＳＳ構築体を
含む１５種のトランスジェニック植物を土壌に植え、そして温室の中で成熟する
まで成長させた。一次形質転換体上で咲いた花をホモ接合性ＧＡＬ４／Ｃ１トラ
ンスアクチベーター系ｐＡＴ５３−１０３由来の花粉と交配させた。同種子を５
０mg／Ｌのカナマイシンを含む発芽培地上でプレート培養した。
含む１５種のトランスジェニック植物を土壌に植え、そして温室の中で成熟する
まで成長させた。一次形質転換体上で咲いた花をホモ接合性ＧＡＬ４／Ｃ１トラ
ンスアクチベーター系ｐＡＴ５３−１０３由来の花粉と交配させた。同種子を５
０mg／Ｌのカナマイシンを含む発芽培地上でプレート培養した。
【００８５】 核酸分析 ＲＮＡをフェノール／クロロホルム抽出、しかる後のＬｉＣｌ沈殿により発表
されている通りにして（Lagrimini ら、1987) 単離した。ＲＮＡゲルブロットを
発表されている通りに実施した（Wardら、1991) 。ハイブリダイゼーションプロ
ーブを32Ｐ−ｄＣＴＰにより、Prime Time Kit (International Biotechnologie
s, Inc., New Haven, CT) を利用するランダムプライミング法によりラベルした
。ハイブリダイゼーション条件は７％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、０
．５ＭのＮａＰＯ4 、pH７．０、１mMのＥＤＴＡ、１％のウシアルブミン６５℃
とした。一夜のハイブリダイゼーション後、フィルターを１％のＳＤＳ、５０mM
のＮａＰＯ4 、１mMのＥＤＴＡで６５℃で洗った（Church and Gilbert, 1984)
。
されている通りにして（Lagrimini ら、1987) 単離した。ＲＮＡゲルブロットを
発表されている通りに実施した（Wardら、1991) 。ハイブリダイゼーションプロ
ーブを32Ｐ−ｄＣＴＰにより、Prime Time Kit (International Biotechnologie
s, Inc., New Haven, CT) を利用するランダムプライミング法によりラベルした
。ハイブリダイゼーション条件は７％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、０
．５ＭのＮａＰＯ4 、pH７．０、１mMのＥＤＴＡ、１％のウシアルブミン６５℃
とした。一夜のハイブリダイゼーション後、フィルターを１％のＳＤＳ、５０mM
のＮａＰＯ4 、１mMのＥＤＴＡで６５℃で洗った（Church and Gilbert, 1984)
。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 ＦＩ テーマコート゛(参考） Ｇ０１Ｎ 33/50 Ｃ１２Ｎ 15/00 Ａ (81)指定国 ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ， ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，Ｉ Ｔ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ， ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，Ｋ Ｅ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ) ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ， ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，Ｄ Ｋ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ， ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，Ｌ Ｕ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ， ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，Ｕ Ｇ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＷ (72)発明者 ボルレイス，サンドラ リン アメリカ合衆国，ノースカロライナ 27707，ダーハム，ピン オーク ドライ ブ 4225 (72)発明者 ゲルラッハ，ヨルン アメリカ合衆国，ノースカロライナ 27707，ダーハム，キング チャールズ ロード 3907
Claims (11)
- 【請求項１】 アッセイ方法であって： ａ）合成プロモーターを活性化させることのできるハイブリド転写因子をコー
ドするハイブリド転写因子遺伝子を含んで成る第一の安定的に形質転換された植
物を ｂ）活性化性ＤＮＡ配列及び前記ハイブリド転写因子により活性化可能な合成
プロモーターを含んで成る第二の安定的に形質転換された植物と交配させ、 ここでａ）において、前記合成プロモーターはａ）の植物の中に存在し、そし
てａ）の植物は前記ハイブリド転写因子に対してホモ接合性であり、そしてｂ）
において、前記活性化性ＤＮＡ配列は前記ハイブリド転写因子の存在下で発現し
、これにより当該活性化性ＤＮＡ配列を発現するＦ１植物を供し；そして ｃ）前記Ｆ１植物に対する前記活性化性ＤＮＡ配列の発現の効果を決定する； ことを含んで成る方法。 - 【請求項２】 前記ハイブリド転写因子遺伝子が酵母のＧＡＬ４遺伝子に由
来するＤＮＡ結合ドメイン及びトウモロコシのＣ１遺伝子に由来する転写活性化
ドメインをコードする、請求項１記載のアッセイ。 - 【請求項３】 最小プロモーターがＣＡＭＶ３５Ｓ最小プロモーター、トウ
モロコシＢｚ１プロモーター及びＵＢＱ３プロモーターから成る群から選ばれる
、請求項１記載のアッセイ。 - 【請求項４】 前記合成プロモーター配列が、ＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメイ
ンにより認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５′末端
において融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを含んで
成る、請求項１記載のアッセイ。 - 【請求項５】 前記ハイブリド転写因子遺伝子が酵母のＧＡＬ４遺伝子に由
来するＤＮＡ結合ドメイン及びトウモロコシのＣ１遺伝子に由来する転写活性化
ドメインをコードし、そして前記活性化性ＤＮＡ構築体がＧＡＬ４ ＤＮＡ結合
ドメインにより認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５
′末端において融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを
含んで成る合成プロモーター配列を含んで成る、請求項１記載のアッセイ。 - 【請求項６】 ＡｄＳＳ除草剤インヒビターを同定するための方法であって
、 ａ）植物ＡｄＳＳ酵素機能の推定の除草剤インヒビターの存在下で植物ＡｄＳ
Ｓ酵素とＡｄＳＳ基質とを反応させ；そして ｂ）前記推定の除草剤インヒビターの存在下での植物のＡｄＳＳ酵素反応の割
合を、前記推定の除草剤インヒビターの非存在下での同一の条件下での植物Ａｄ
ＳＳ酵素反応の割合と対比させ、前記推定の除草剤インヒビターが植物ＡｄＳＳ
を阻害するかを決定する； ことを含んで成る方法。 - 【請求項７】 ハイブリド転写因子及び活性化性ＤＮＡ構築体を含んで成る
植物であって、前記ハイブリド転写因子遺伝子によりコードされるハイブリド転
写因子が前記活性化性ＤＮＡ構築体の合成プロモーターを活性化させ、作用可能
式に連結されたアンチセンスＤＮＡ配列の発現を誘導することができ、ここで当
該植物は前記ハイブリド転写因子及び前記活性化性ＤＮＡ構築体により安定的に
形質転換されたものである、植物。 - 【請求項８】 前記ハイブリド転写因子遺伝子が ａ）酵母のＧＡＬ４遺伝子、バクテリオファージ４３４、ｌｅｘＡ，ｌａｃＩ
及びラムダファージレプレッサー、から成る群から選ばれる遺伝子に由来するＤ
ＮＡ結合ドメイン； ｂ）ヘルペス単純ＶＰ１６、トウモロコシＣ１及びＰ１から成る群から選ばれ
る遺伝子に由来する転写活性化ドメイン； ｃ）ＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーター、トウモロコシＢｚ１プロモーター及び
ＵＢＱ３プロモーターから成る群から選ばれる最小プロモーターを含んで成る活
性化性ＤＮＡ構築体； を含んで成る請求項７記載の植物。 - 【請求項９】 前記合成プロモーター配列が、ＧＡＬ４ ＤＮＡ結合ドメイ
ンにより認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその５′末端
において融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーターを含んで
成る、請求項７記載の植物。 - 【請求項１０】 前記ハイブリド転写因子遺伝子が酵母のＧＡＬ４遺伝子に
由来するＤＮＡ結合ドメイン及びトウモロコシのＣ１遺伝子に由来する転写活性
化ドメインをコードし、そして前記活性化性ＤＮＡ構築体がＧＡＬ４ ＤＮＡ結
合ドメインにより認識される上流作用式配列の１０のコンカテマーコピーとその
５′末端において融合したＴＡＴＡ要素含有のＣａＭＶ３５Ｓ最小プロモーター
を含んで成る合成プロモーター配列を含んで成る、請求項７記載の植物。 - 【請求項１１】 前記活性化性ＤＮＡ配列がＡｄＳＳアンチセンス配列であ
る、請求項７記載の植物。
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| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US97883097A | 1997-11-26 | 1997-11-26 | |
| US08/978,830 | 1997-11-26 | ||
| PCT/EP1998/007577 WO1999027119A1 (en) | 1997-11-26 | 1998-11-24 | Method and compositions useful for the activation of silent transgenes |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2001524315A true JP2001524315A (ja) | 2001-12-04 |
Family
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Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP2000522260A Pending JP2001524315A (ja) | 1997-11-26 | 1998-11-24 | サイレント導入遺伝子の活性化のために有用な方法及び組成物 |
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| Country | Link |
|---|---|
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| JP (1) | JP2001524315A (ja) |
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| AR (1) | AR016696A1 (ja) |
| AU (1) | AU745867B2 (ja) |
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|---|---|---|---|---|
| WO2001021781A2 (en) * | 1999-09-20 | 2001-03-29 | Center For The Application Of Molecular Biology To International Agriculture | Methods for site-associated modification of gene activity and nucleic acid structure |
| AU7658700A (en) * | 1999-10-01 | 2001-05-10 | Basf Aktiengesellschaft | Gmp synthetase derived from plants |
| CA2388851A1 (en) * | 1999-10-25 | 2001-05-03 | Basf Aktiengesellschaft | Formylglycinamidinribotide synthase from plants |
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| GB0017547D0 (en) * | 2000-07-17 | 2000-09-06 | Bp Chem Int Ltd | Supported polymerisation catalysts |
| GB0125784D0 (en) * | 2001-10-26 | 2001-12-19 | Syngenta Ltd | Novel expression system |
| US20060075522A1 (en) | 2004-07-31 | 2006-04-06 | Jaclyn Cleveland | Genes and uses for plant improvement |
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|---|---|---|---|---|
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| CA2047633A1 (en) * | 1990-09-12 | 1992-03-13 | Ben Bowen | Inactivation of gene transcription in plants using altered transcriptional activators |
| US5409823A (en) * | 1992-09-24 | 1995-04-25 | Ciba-Geigy Corporation | Methods for the production of hybrid seed |
| US5688939A (en) * | 1994-12-22 | 1997-11-18 | Novartis Finance Corporation | Plant adenylosuccinate synthetase and DNA coding therefor |
| GB9502456D0 (en) * | 1995-02-08 | 1995-03-29 | Univ Warwick | Control of genes in transgenic plants |
| GB9603069D0 (en) * | 1996-02-14 | 1996-04-10 | Medical Res Council | Improvements in or relating to gene expression |
| EP0823480A1 (en) * | 1996-08-06 | 1998-02-11 | Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V. | Controlled gene expression in plants |
| US5968793A (en) * | 1997-06-24 | 1999-10-19 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Specific gene activation by chimeric Gal4 transcription factors in stable transgenic plants |
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