HU202579B - Process for closing in gel microorganisma or parts of microorganisma utilizable in fermentations - Google Patents
Process for closing in gel microorganisma or parts of microorganisma utilizable in fermentations Download PDFInfo
- Publication number
- HU202579B HU202579B HU883987A HU398788A HU202579B HU 202579 B HU202579 B HU 202579B HU 883987 A HU883987 A HU 883987A HU 398788 A HU398788 A HU 398788A HU 202579 B HU202579 B HU 202579B
- Authority
- HU
- Hungary
- Prior art keywords
- microorganisms
- gel
- organic solvent
- mixture
- agar
- Prior art date
Links
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 title claims abstract description 16
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 title claims abstract description 16
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 15
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims abstract description 29
- 239000000499 gel Substances 0.000 claims abstract description 23
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 claims abstract description 21
- 239000008272 agar Substances 0.000 claims abstract description 15
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 15
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims abstract description 10
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 13
- XEKOWRVHYACXOJ-UHFFFAOYSA-N Ethyl acetate Chemical group CCOC(C)=O XEKOWRVHYACXOJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 9
- 239000003960 organic solvent Substances 0.000 claims description 8
- WVDDGKGOMKODPV-UHFFFAOYSA-N Benzyl alcohol Chemical compound OCC1=CC=CC=C1 WVDDGKGOMKODPV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- AMQJEAYHLZJPGS-UHFFFAOYSA-N N-Pentanol Chemical compound CCCCCO AMQJEAYHLZJPGS-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- DKPFZGUDAPQIHT-UHFFFAOYSA-N butyl acetate Chemical compound CCCCOC(C)=O DKPFZGUDAPQIHT-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 6
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 5
- JHIVVAPYMSGYDF-UHFFFAOYSA-N cyclohexanone Chemical compound O=C1CCCCC1 JHIVVAPYMSGYDF-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 239000003791 organic solvent mixture Substances 0.000 claims description 4
- BWDBEAQIHAEVLV-UHFFFAOYSA-N 6-methylheptan-1-ol Chemical compound CC(C)CCCCCO BWDBEAQIHAEVLV-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 235000019445 benzyl alcohol Nutrition 0.000 claims description 2
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 claims description 2
- YBCVMFKXIKNREZ-UHFFFAOYSA-N acoh acetic acid Chemical compound CC(O)=O.CC(O)=O YBCVMFKXIKNREZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 230000004927 fusion Effects 0.000 claims 1
- 238000007789 sealing Methods 0.000 claims 1
- 239000007863 gel particle Substances 0.000 abstract description 5
- 230000009931 harmful effect Effects 0.000 abstract description 2
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 14
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 11
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 11
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 8
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 4
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 4
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 4
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 4
- 230000001954 sterilising effect Effects 0.000 description 4
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 description 4
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 241000187747 Streptomyces Species 0.000 description 3
- YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N Toluene Chemical compound CC1=CC=CC=C1 YXFVVABEGXRONW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000011942 biocatalyst Substances 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- YIWUKEYIRIRTPP-UHFFFAOYSA-N 2-ethylhexan-1-ol Chemical compound CCCCC(CC)CO YIWUKEYIRIRTPP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- NGHVIOIJCVXTGV-ALEPSDHESA-N 6-aminopenicillanic acid Chemical compound [O-]C(=O)[C@H]1C(C)(C)S[C@@H]2[C@H]([NH3+])C(=O)N21 NGHVIOIJCVXTGV-ALEPSDHESA-N 0.000 description 2
- NGHVIOIJCVXTGV-UHFFFAOYSA-N 6beta-amino-penicillanic acid Natural products OC(=O)C1C(C)(C)SC2C(N)C(=O)N21 NGHVIOIJCVXTGV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L Calcium carbonate Chemical compound [Ca+2].[O-]C([O-])=O VTYYLEPIZMXCLO-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 2
- ZRWPUFFVAOMMNM-UHFFFAOYSA-N Patulin Chemical compound OC1OCC=C2OC(=O)C=C12 ZRWPUFFVAOMMNM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 2
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 2
- 235000010410 calcium alginate Nutrition 0.000 description 2
- 239000000648 calcium alginate Substances 0.000 description 2
- 229960002681 calcium alginate Drugs 0.000 description 2
- OKHHGHGGPDJQHR-YMOPUZKJSA-L calcium;(2s,3s,4s,5s,6r)-6-[(2r,3s,4r,5s,6r)-2-carboxy-6-[(2r,3s,4r,5s,6r)-2-carboxylato-4,5,6-trihydroxyoxan-3-yl]oxy-4,5-dihydroxyoxan-3-yl]oxy-3,4,5-trihydroxyoxane-2-carboxylate Chemical compound [Ca+2].O[C@@H]1[C@H](O)[C@H](O)O[C@@H](C([O-])=O)[C@H]1O[C@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O2)C([O-])=O)O)[C@H](C(O)=O)O1 OKHHGHGGPDJQHR-YMOPUZKJSA-L 0.000 description 2
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 2
- 229920001525 carrageenan Polymers 0.000 description 2
- HOKIDJSKDBPKTQ-GLXFQSAKSA-N cephalosporin C Chemical compound S1CC(COC(=O)C)=C(C(O)=O)N2C(=O)[C@@H](NC(=O)CCC[C@@H](N)C(O)=O)[C@@H]12 HOKIDJSKDBPKTQ-GLXFQSAKSA-N 0.000 description 2
- HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N cholesterol Chemical compound C1C=C2C[C@@H](O)CC[C@]2(C)[C@@H]2[C@@H]1[C@@H]1CC[C@H]([C@H](C)CCCC(C)C)[C@@]1(C)CC2 HVYWMOMLDIMFJA-DPAQBDIFSA-N 0.000 description 2
- 229910001873 dinitrogen Inorganic materials 0.000 description 2
- 229940093499 ethyl acetate Drugs 0.000 description 2
- 235000019439 ethyl acetate Nutrition 0.000 description 2
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 2
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 2
- 239000003349 gelling agent Substances 0.000 description 2
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 2
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 2
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 2
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 2
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 2
- 239000008399 tap water Substances 0.000 description 2
- 235000020679 tap water Nutrition 0.000 description 2
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 2
- 241000194110 Bacillus sp. (in: Bacteria) Species 0.000 description 1
- 244000063299 Bacillus subtilis Species 0.000 description 1
- 235000014469 Bacillus subtilis Nutrition 0.000 description 1
- 108010001478 Bacitracin Proteins 0.000 description 1
- 229920001661 Chitosan Polymers 0.000 description 1
- 108010089254 Cholesterol oxidase Proteins 0.000 description 1
- 240000009226 Corylus americana Species 0.000 description 1
- 235000001543 Corylus americana Nutrition 0.000 description 1
- 235000007466 Corylus avellana Nutrition 0.000 description 1
- NTIZESTWPVYFNL-UHFFFAOYSA-N Methyl isobutyl ketone Chemical compound CC(C)CC(C)=O NTIZESTWPVYFNL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- UIHCLUNTQKBZGK-UHFFFAOYSA-N Methyl isobutyl ketone Natural products CCC(C)C(C)=O UIHCLUNTQKBZGK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000589344 Methylomonas Species 0.000 description 1
- 241000187708 Micromonospora Species 0.000 description 1
- 241000228143 Penicillium Species 0.000 description 1
- 241001149507 Penicillium urticae Species 0.000 description 1
- 235000007685 Pleurotus columbinus Nutrition 0.000 description 1
- 240000001462 Pleurotus ostreatus Species 0.000 description 1
- 235000001603 Pleurotus ostreatus Nutrition 0.000 description 1
- 229920001214 Polysorbate 60 Polymers 0.000 description 1
- 241000187562 Rhodococcus sp. Species 0.000 description 1
- URWAJWIAIPFPJE-UHFFFAOYSA-N Rickamicin Natural products O1CC(O)(C)C(NC)C(O)C1OC1C(O)C(OC2C(CC=C(CN)O2)N)C(N)CC1N URWAJWIAIPFPJE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000019764 Soybean Meal Nutrition 0.000 description 1
- 241000187433 Streptomyces clavuligerus Species 0.000 description 1
- 241000142915 Streptomyces diastatochromogenes Species 0.000 description 1
- 241000187389 Streptomyces lavendulae Species 0.000 description 1
- 229930194936 Tylosin Natural products 0.000 description 1
- 239000004182 Tylosin Substances 0.000 description 1
- 235000010443 alginic acid Nutrition 0.000 description 1
- 229920000615 alginic acid Polymers 0.000 description 1
- 239000002518 antifoaming agent Substances 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 229960003071 bacitracin Drugs 0.000 description 1
- 229930184125 bacitracin Natural products 0.000 description 1
- CLKOFPXJLQSYAH-ABRJDSQDSA-N bacitracin A Chemical compound C1SC([C@@H](N)[C@@H](C)CC)=N[C@@H]1C(=O)N[C@@H](CC(C)C)C(=O)N[C@H](CCC(O)=O)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@@H]1C(=O)N[C@H](CCCN)C(=O)N[C@@H]([C@@H](C)CC)C(=O)N[C@H](CC=2C=CC=CC=2)C(=O)N[C@@H](CC=2N=CNC=2)C(=O)N[C@H](CC(O)=O)C(=O)N[C@@H](CC(N)=O)C(=O)NCCCC1 CLKOFPXJLQSYAH-ABRJDSQDSA-N 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 229960004217 benzyl alcohol Drugs 0.000 description 1
- 238000004166 bioassay Methods 0.000 description 1
- 238000009835 boiling Methods 0.000 description 1
- 230000005587 bubbling Effects 0.000 description 1
- 229910000019 calcium carbonate Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000679 carrageenan Substances 0.000 description 1
- 235000010418 carrageenan Nutrition 0.000 description 1
- 229940113118 carrageenan Drugs 0.000 description 1
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 1
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 1
- 238000006555 catalytic reaction Methods 0.000 description 1
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 1
- 230000005779 cell damage Effects 0.000 description 1
- 208000037887 cell injury Diseases 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 235000012000 cholesterol Nutrition 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 235000021551 crystal sugar Nutrition 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 231100000433 cytotoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000001472 cytotoxic effect Effects 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 230000002289 effect on microbe Effects 0.000 description 1
- 238000001914 filtration Methods 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 238000001879 gelation Methods 0.000 description 1
- 238000011065 in-situ storage Methods 0.000 description 1
- 238000010348 incorporation Methods 0.000 description 1
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 1
- 230000001057 ionotropic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001788 irregular Effects 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 235000012054 meals Nutrition 0.000 description 1
- 229910021645 metal ion Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000693 micelle Substances 0.000 description 1
- 231100000989 no adverse effect Toxicity 0.000 description 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 1
- 229940056360 penicillin g Drugs 0.000 description 1
- 230000002572 peristaltic effect Effects 0.000 description 1
- WVDDGKGOMKODPV-ZQBYOMGUSA-N phenyl(114C)methanol Chemical compound O[14CH2]C1=CC=CC=C1 WVDDGKGOMKODPV-ZQBYOMGUSA-N 0.000 description 1
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 1
- 230000000704 physical effect Effects 0.000 description 1
- 235000010482 polyoxyethylene sorbitan monooleate Nutrition 0.000 description 1
- 229920000053 polysorbate 80 Polymers 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 210000001938 protoplast Anatomy 0.000 description 1
- 150000003254 radicals Chemical class 0.000 description 1
- URWAJWIAIPFPJE-YFMIWBNJSA-N sisomycin Chemical compound O1C[C@@](O)(C)[C@H](NC)[C@@H](O)[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@@H]2[C@@H](CC=C(CN)O2)N)[C@@H](N)C[C@H]1N URWAJWIAIPFPJE-YFMIWBNJSA-N 0.000 description 1
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 1
- 239000004455 soybean meal Substances 0.000 description 1
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 1
- 229940005741 sunflower lecithin Drugs 0.000 description 1
- 238000004809 thin layer chromatography Methods 0.000 description 1
- 239000012137 tryptone Substances 0.000 description 1
- WBPYTXDJUQJLPQ-VMXQISHHSA-N tylosin Chemical compound O([C@@H]1[C@@H](C)O[C@H]([C@@H]([C@H]1N(C)C)O)O[C@@H]1[C@@H](C)[C@H](O)CC(=O)O[C@@H]([C@H](/C=C(\C)/C=C/C(=O)[C@H](C)C[C@@H]1CC=O)CO[C@H]1[C@@H]([C@H](OC)[C@H](O)[C@@H](C)O1)OC)CC)[C@H]1C[C@@](C)(O)[C@@H](O)[C@H](C)O1 WBPYTXDJUQJLPQ-VMXQISHHSA-N 0.000 description 1
- 229960004059 tylosin Drugs 0.000 description 1
- 235000019375 tylosin Nutrition 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N9/00—Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
- C12N9/0004—Oxidoreductases (1.)
- C12N9/0006—Oxidoreductases (1.) acting on CH-OH groups as donors (1.1)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
- C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
- C12N11/04—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier entrapped within the carrier, e.g. gel or hollow fibres
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
A találmány tárgya eljárás fermentációban felhasználható mikroorganizmusok vagy mikroorganizmus-részek gélbe zárására.The present invention relates to a process for encapsulating microorganisms or parts of microorganisms useful in fermentation in a gel.
Ismert, hogy a fermentációs műveletekben igen előnyösen használhatók fel rögzített mikroorganizmusok vagy mikroorganizmus-részek, például fermentációra alkalmas spóraszuszpenziók, sejttörmelékek, légmicéliumok, teljes vegetatív sejttenyészetek vagy növekedésben lévő tenyészetek. A rögzítés célja az, hogy a mikroorganizmusókat vagy mikroorganizmus-részeket (amelyek a fermentációhoz szükséges biokatalizátorokat szolgáltatják) a reaktortérben lokalizálja, és meggátolja, hogy azok az áramló fázisba kerüljenek át. Rögzített mikroorganizmusok, illetve mikroorganizmus-részek alkalmazásával javítható a biokatalizátor stabilitása (élettartama), növelhető a katalizált reakció térfogati termelékenysége, és a fermentáció folyamatos üzemmódban is megvalósíthatóvá válik.It is known that fixed microorganisms or parts of microorganisms, such as spore suspensions for fermentation, cell debris, aerial mycelia, whole vegetative cell cultures or growth cultures, can be used very favorably in fermentation operations. The purpose of the fixation is to localize the microorganisms or parts of the microorganisms (which provide the biocatalysts needed for fermentation) in the reactor space and prevent them from entering the flow phase. The use of fixed microorganisms or parts of microorganisms can improve the stability (lifetime) of the biocatalyst, increase the volumetric productivity of the catalyzed reaction, and make fermentation possible in a continuous mode.
A rögzítés egyik lehetséges módszere a biokatalizátomak szálak vagy gélek üregeibe történő bezárása. Erre a célra szintetikus gélek (például poli-akrilamid) vagy természetes eredetű gélképzők alkalmazhatók. Ismert például, hogy a Penicillium chrysogeneum-konidiumok, -micéliumok és -protoplasztok gélbe zárt állapotban is felhasználhatók penicillin G bioszintéziséhez. A bezáráshoz a Biotechnoi. Bioeng. 26,318 (1984) közlemény szerint K-karragenátot, a Biotechnoi. Bioeng. 27, 261 (1979) közlemény szerint poli-akrilamidot, az Eur. J. Appl. Microbiol. Biotechnoi. 75, 211 (1982) közlemény szerint kalcium-alginát gélt használnak. Az Eur. J. Appl. Microbiol. 2, 153 (1976) közlemény poli-akrilamidba bezárt Escherichia coli sejtek használatát ismerteti 6-amino-penicillánsav előállításában. A Biotechnoi. Lett 4, 293 (1982) közlemény szerint 6-amino-penicillánsav előállításához kitozánba bezárt Pleurotus ostreatus-sejteket használnak. A Biotechnoi. Bioeng. 23, 2747 (1981) közlemény poli-akrilamidba bezárt Streptomyces clavuligerus sejtek felhasználását ismerteti cefalosporin C előállításában. Az Antimicrob. Agents Chemother. 75, 126 (1979) és Biotechnoi. Bioeng. 22, 1015 (1980) közlemények szerint poli-akrilamid gélbe zárt Bacillus sp. baktériumsejtekkel bacitracint lehet termeltetni. Az Eur. J. Appl. Microbiol. Biotechnol. 75, 206 (1982) közlemény kalcium-alginátba rögzített Streptomyces sejtek felhasználását ismerteti tilozin és nikkomicin termelésében. A Biotechnoi. Lett. 5, 125 (1983) és 5, 785 (1983) közlemények szerint K-karragenátba zárt Penicillium urticae konidiumok patulin glükózból történő előállítására alkalmazhatók.One possible method of attachment is to enclose the biocatalysts in the cavities of the fibers or gels. For this purpose, synthetic gels (e.g., polyacrylamide) or natural gelling agents may be used. For example, it is known that penicillium chrysogeneum conidia, mycelia and protoplasts can be used in gel-encapsulated form for penicillin G biosynthesis. To close, Biotechnoi. Bioengineering. 26,318 (1984), K-Carrageenate, Biotechnol. Bioengineering. 27, 261 (1979), Polyacrylamide, Eur. J. Appl. Microbiol. Biotechnol. 75, 211 (1982) use calcium alginate gel. Eur. J. Appl. Microbiol. 2, 153 (1976) describes the use of Escherichia coli cells encapsulated in polyacrylamide in the preparation of 6-aminopenicillanic acid. Biotechnol. Lett 4, 293 (1982), Pleurotus ostreatus cells encapsulated in chitosan are used to produce 6-aminopenicillanic acid. Biotechnol. Bioengineering. 23, 2747 (1981) describes the use of Streptomyces clavuligerus cells encapsulated in polyacrylamide in the preparation of cephalosporin C. The Antimicrob. Agents Chemother. 75, 126 (1979) and Biotechnol. Bioengineering. 22, 1015 (1980), Bacillus sp., Encapsulated in a polyacrylamide gel. bacterial cells can be used to produce bacitracin. Eur. J. Appl. Microbiol. Biotechnol. 75, 206 (1982) discloses the use of Streptomyces cells immobilized in calcium alginate for the production of tylosin and niccomycin. Biotechnol. Became. 5, 125 (1983) and 5, 785 (1983), can be used for the preparation of Penicillium urticae conidia encapsulated in K-carrageenan from patulin glucose.
A fenti ismert eljárások hátrányai a következők:The disadvantages of the above known processes are as follows:
A poli-akrilamid gélbe történő bezárásnál a gélesedés során keletkező szabad gyökök súlyos sejtkárosodást okoznak, illetve egyes enzimekre gátló hatást fejtenek ki. Az ionotróp gélképzők, így például az alginátok és karragenátok esetén a gélesítéshez szükséges fémionok citotoxikusak lehetnek. Ezért ezek az eljárások a fermentációs célokra alkalmas mikroorganizmusok, illetve mikroorganizmus-részek csak egy szűk körénél alkalmazhatók eredményesen.When enclosed in a polyacrylamide gel, free radicals formed during gelation cause severe cell damage and inhibit certain enzymes. In the case of ionotropic gelling agents such as alginates and carrageenans, the metal ions required for gelling may be cytotoxic. Therefore, these methods can be successfully applied to only a limited number of microorganisms or parts of microorganisms suitable for fermentation purposes.
Célszerű megoldás lenne a fermentációra alkalmas mikroorganizmusokat, illetve mikroorganizmus-részeket agar-gélbe zárva rögzíteni. Az agar-gél ugyanis ami a mikroorganizmusok tenyésztésére használt táptalajok leggyakoribb komponense - a mikroorganizmusokra semmiféle káros hatást nem gyakorol, biztosítja az élő sejtek és spórák számára az optimális feltételeket, és a gélhálózat is megfelelő a micélium in situ kifejlődéséhez.It would be convenient to fix the microorganisms or parts of microorganisms suitable for fermentation in an agar gel. The agar gel, which is the most common component of the medium used for the cultivation of microorganisms, has no adverse effect on microorganisms, provides optimal conditions for living cells and spores, and the gel network is also suitable for the in situ development of the mycelium.
Mikroorganizmusok agar-gélbe zárását ismerteti a Biotechnoi. Bioeng. 77, 1729 (1975) és aMicrobiologiya 49,479 (1980) közlemény. Az ott közöltek szerint 2-4%-os vizes agar oldatot a gélesedési hőmérséklethez közel eső hőmérsékletre hűtve Escherichia coli, illetve Methylomonas sejtszuszpenzióval homogenizálnak, és a homogenizátumot hideg desztillált vízbe vagy foszfátpufferbe csepegtetik, vagy tömb fomájában dermedni hagyják és utólag aprítják.Incorporation of microorganisms in agar gel is described in Biotechnol. Bioengineering. 77, 1729 (1975) and Microbiologiya 49,479 (1980). As disclosed therein, a 2-4% aqueous agar solution is homogenized by cooling with a cell suspension of Escherichia coli and Methylomonas at a temperature close to the gelling temperature, and the homogenate is added dropwise to the distilled water or phosphate buffer and left to solidify.
A megoldás hátránya, hogy a vízbe csepegtetett gél változó méretben és alakban dermed meg. Az így képződött, rendkívül heterogén alakú (szál-, félgömb- vagy szabálytalan formájú) és méreteloszlású gélrészecskék felhasználása fermentációs célokra nem előnyös, mert nem teszik lehetővé a közeg egyenletes áramoltatását, a részecskék átsodródhatnak az áramló fázisba, és elkülönítésük nehézkes. A megdermedt agar-géltömbök aprítása időigényes, nehézkes művelet A fermentációs célokra optimálisan felhasználható, szabályos gömb alakú, szűk mérettartományba eső átmérőjű gélrészecskék ezekkel a módszerekkel nem állíthatók elő.The disadvantage of this solution is that the gel dripped into the water will freeze in varying sizes and shapes. The use of the resulting gel particles of extremely heterogeneous shape (fiber, hemispherical or irregular shape) and size distribution for fermentation purposes is not advantageous because they do not allow a smooth flow of the medium, the particles can drift into the flow phase and are difficult to separate. Crushing of frozen agar gel blocks is a time consuming, laborious operation. The use of regular spherical, narrow-diameter gel particles which are optimally usable for fermentation purposes cannot be achieved by these methods.
Vizsgálataink során megállapítottuk, hogy a képződő gélrészecskék alakja és mérete szempontjából döntő szerepe van a gélképzés közegeként felhasznált folyadék fizikai jellemzőinek. Tapasztalataink szerint szabályos gömb alakú, szűk mérettartományba eső (rendszerint 1-5 mm méretű) gélrészecskék akkor állíthatók elő, ha a fermentációs célokra használt mikroorganizmus vagy mikroorganizmus-részek 45-50 ’C hőmérsékletű folyékony agar-oldatlal képezett keverékét olyan, a mikroorganizmust nem károsító szerves oldószerbe vagy oldószer-elegybe csepegtetjük, amelynek vízben való oldhatósága 0,03-10 g/100 g, sűrűsége 0,61,2 g/cm3, 20 ’C-on meghatározott viszkozitása 0,4510 cP, forráspontja 75-250 ’C, és amelyben a cseppek ülepedést sebessége 0,01-10 cm/sec.In our investigations, it was found that the physical properties of the fluid used as the gelling medium play a decisive role in the shape and size of the gel particles formed. In our experience, regular spherical, narrow size (usually 1 to 5 mm) gel particles can be prepared when a mixture of the microorganism or parts of the microorganism used for fermentation in a liquid agar solution at 45-50 ° C is not harmful to the microorganism. is added dropwise to an organic solvent or mixture of solvents having a water solubility of 0.03 to 10 g / 100 g, a density of 0.61.2 g / cm 3 , and a viscosity of 0.4510 cP at boiling point of 75 to 250 '. C, and wherein the droplets settle at a rate of 0.01 to 10 cm / sec.
A leírásban és az igénypontsorozatban a „fermentációra alkalmas mikroorganizmus vagy mikroorganizmusrész” megjelölésen az adott mikroorganizmusnak fermentációs célra felhasználható összes lehetséges formáját, így például a mikroorganizmus vegetatív tenyészetét, spóraszuszpenzióját, izolált sejtjeit, konidiumait, miccliumait, sejttörmelékeit, növekedésben lévő tenyészeteit, sejtkomponenseit stb. értjük.As used herein and in the claims, the term "microorganism or microorganism suitable for fermentation" refers to all possible forms of the microorganism that can be used for fermentation, such as vegetative culture, spore suspension, isolated cells, conidia, micelles, cell debris, growths, etc. We understood.
A gélképzés közegeként felhasznált szerves oldószer vagy oldószer-elegy vízben való oldhatósága célszerűen 0,1-10 g/100 g, sűrűsége pedig célszerűen 0,81,1 g/cm3 lehet További alapvető követelmény, hogy a szerves oldószeibe csepegtetett gélcseppek ne lebegjenek a szerves oldószerben; a cseppek ülepedést sebessége célszerűen 0,05-10 cm/sec.The water solubility of the organic solvent or solvent mixture used as the gelling medium is preferably 0.1 to 10 g / 100 g and the density is preferably 0.81.1 g / cm 3 Another basic requirement is that the gel droplets added to the organic solvents should not float in an organic solvent; the droplet settling rate is preferably 0.05 to 10 cm / sec.
A találmány szerinti eljárásban a gélképzés közegeként például etil-acetátot, izooktanolt, n-butil-acetátot, n-amil-alkoholt, benzil-alkoholt, acetecetésztert, a felsorolt oldószerek keverékeit, vagy 10 térfogat% metil-izobutil-ketont tartalmazó acetecetésztert használhatunk.Gel formation media used in the process of the present invention include, for example, ethyl acetate, isooctanol, n-butyl acetate, n-amyl alcohol, benzyl alcohol, acetacetate, mixtures of the solvents listed, or acetone containing 10% by volume of methyl isobutyl ketone.
A gélgyöngy-képződés gyorsítása céljából a gélképzés közegét célszerűen 0-10 ’C-ra hűtjük. Kívánt esetben a gélképzés közegébe lassú ütemben inért gázt vezethetünk annak érdekében, hogy megakadályozzuk a gélgyöngyök egymáshoz tapadását. A képződött gcl-2HU 202 579 Β gyöngyöket szűréssel különíthetjük el, majd desztillált vízzel oldószermentesre mossuk, és kívánt esetben szárítjuk.In order to accelerate gel bead formation, the gelling medium is preferably cooled to 0-10 ° C. If desired, a slow injection of gas may be introduced into the gel formation medium to prevent the gel beads from adhering to one another. The gcl-2HU 202 579 Β formed beads can be isolated by filtration, washed with distilled water to remove solvent and dried if desired.
A találmány szerinti eljárást az oltalmi kör korlátozása nélkül az alábbi példákban részletesen ismertetjük.The invention is illustrated in detail by the following non-limiting Examples.
1. példaExample 1
Streptomyces lavendulae ATCC 12 950 7-8 napos ferde agar tenyészetéiül steril desztillált vízzel 5x x 107 spóra/cm3 koncentrációjú spóraszuszpenziót készítünk. 10 cm3 így kapott spóraszuszpenziót 90 cm3, előzetesen 121 ’C-on 30 percig sterilizált, majd 50 ’C-ra hűtött 4%-os agar oldathoz adunk. Ezt a keveréket perisztaltikus pumpa segítségével - steril eszközök alkalmazásával - 1000 cm3 5 ’C-ra hűtött izo-oktanolba (2-etil-hexanoIba) csepegtetjük. A keletkező gélgyöngyök egymáshoz tapadását nitrogéngáz lassú átbutorékoltatásával gátoljuk. A csepegtetés befejezése után a nitrogéngáz átáramoltatását még 4-5 percig folytatjuk, majd a gélgyöngyöket kiszűrjük, 0,02 tömeg% Tween 80-at tartalmazó steril desztillált vízzel oldószermentesre mossuk. Szabályos gömb alakú, 1-5 mm átmérőjű gélgyöngyöket kapunk.Streptomyces lavendulae ATCC 12,950 is prepared by culturing a 7-8 day slant agar with sterile distilled water at a concentration of 5 x 10 7 spores / cm 3 . 10 cm 3 of the spore suspension thus obtained was added to 90 cm 3 of a 4% agar solution, previously sterilized at 121 ° C for 30 minutes and then cooled to 50 ° C. This mixture was added dropwise to 1000 cm 3 of isoctanol (2-ethylhexanol) cooled to 5 ° C using a peristaltic pump. The resulting gel beads are prevented from adhering to each other by slowly bubbling nitrogen gas through. After completion of the dropwise addition, the nitrogen gas was bubbled through for 4 to 5 minutes, and the gel beads were filtered and washed with sterile distilled water containing 0.02% Tween 80 to remove solvent. Regular spherical beads of 1-5 mm diameter are obtained.
Megismételjük a fenti sejtrögzítési eljárást azzal a különbséggel, hogy kicsapószerként i-oktanol helyett azThe above cell fixation procedure is repeated, except that instead of i-octanol as a precipitant,
I. táblázatban felsorolt oldószereket használjuk. Az 1. példában megadottakkal azonos eredményeket kapunk.The solvents listed in Table I are used. The same results as in Example 1 were obtained.
/. táblázat/. spreadsheet
tartalmazó ferde agar táptalajon tenyésztett Streptomyces aigillaceum ATCC 12956 spóraszuszpenziójával az alábbi összetételű, 121 ’C-on 20 percig sterilizált, majd szobahőmérsékletre hűtött táptalajt oltjuk be:Inoculate with Streptomyces aigillaceum ATCC 12956 on a slanted agar medium the following composition, sterilized at 121 ° C for 20 minutes and then cooled to room temperature:
mogyoróliszt 2,0% hidrolizált kazein 0,2% glicerin 4,0% nátrium-klorid 0,3% kalcium-karbonát 0,5% (A csapvízzel feltöltött táptalaj pH-ja sterilizálás előtt 7,0).hazelnut meal 2.0% hydrolyzed casein 0.2% glycerol 4.0% sodium chloride 0.3% calcium carbonate 0.5% (pH of the broth filled with tap water before sterilization is 7.0).
A tenyészetet 48 órán át 32 ’C-on 360 fordulat/perc sebességgel rázzuk. Az így kifejlődött vegetatív tenyészetből 10 cm3-t adunk 90 cm3 45 ’C hőmérséklet 0,4%os agar oldathoz, majd a keverékből az 1. példában leírtak szerint gélgyöngyöket készítünk.The culture was shaken for 48 hours at 32 ° C and 360 rpm. 10 cm 3 of the resulting vegetative culture was added to 90 cm 3 of a 0.4% agar solution at 45 ° C and gel beads were prepared from the mixture as described in Example 1.
3. példaExample 3
Streptomyces diastatochromogenes var. RO-31 [NCAIM (Ρ) B 00366] mikroorganizmust az alábbi összetételű ferde agar táptalajon spóráztatunk:Streptomyces diastatochromogenes var. RO-31 [NCAIM (Ρ) B 00366] is sporulated on slanted agar medium with the following composition:
élesztőkivonat 0,1 % húskivonat 0,1 % tripton 0,2 %yeast extract 0.1% meat extract 0.1% tripton 0.2%
FeSO4 3 x 104% glükóz 1,0 %FeSO 4 3 x 10 4 % glucose 1.0%
Na2HPO4 0,713%Na 2 HPO 4 0.713%
KHjPCL 0,363% mosott, szálas agar 2,0 % (A csapvízzel feltöltött táptalaj pH-ja sterilizálás előtt 7,0.)KHjPCL 0.363% Washed Fiber Agar 2.0% (pH of the broth filled with tap water before sterilization is 7.0)
A kb. 7-8 napos spórás tenyészetet steril desztillált vízzel vagy fiziológiás sóoldattal lemossuk, és a spóraszuszpenzió koncentrációját 3 x 10* spóra/cm3-re állítjuk be. Az így kapott spóraszuszpenzióból az 1. példában leírt módon készítünk agar-gélgyöngyöket.The approx. The 7-8 day spore culture was washed with sterile distilled water or physiological saline and the spore suspension concentration was adjusted to 3 x 10 * spores / cm 3 . From the spore suspension thus obtained, agar gel beads were prepared as described in Example 1.
4. példaExample 4
Rhodococcus sp. NCAIM (Ρ) B 001003 kb. 4 napos ferde agar tenyészetéről steril desztillált vízzel 8 x x 10* sejt/cm3 koncentrációjú sejtszuszpenziót készítünk. A szuszpenzió 10 cm3-ét 90 cm3 45 ’C hőmérsékletű steril 4%-os agar oldathoz adjuk, majd a keverékből az 1. példában leírtak szerint gélgyöngyöket képezünk.Rhodococcus sp. NCAIM (Ρ) B 001003 kb. A culture suspension of 8 x 10 x 10 * cells / cm 3 was prepared from a 4-day slant culture with sterile distilled water. 10 cm 3 of the suspension is added to 90 cm 3 of a sterile 4% agar solution at 45 ° C and the mixture is formed into gel beads as described in Example 1.
A gélgyöngyökkel az alábbi összetételű, 121 ’C-on 25 percig sterilizált, majd szobahőmérsékletre hűtött táptalajt oltjuk be:The gel beads are inoculated with the following medium, sterilized at 121 ° C for 25 minutes and then cooled to room temperature:
koleszterin 1,0 % kristálycukor 0,5 % szójaliszt 0,7 % nyers napraforgó lecitin 0,5 %cholesterol 1.0% crystal sugar 0.5% soybean meal 0.7% raw sunflower lecithin 0.5%
Tween 60 0,2 %Tween 60 0.2%
KH2PO4 0,1 %KH 2 PO 4 0.1%
CaCO3 0,1 %CaCO 3 0.1%
NaCl 0,1 %NaCl 0.1%
MgSO4.7H2O 0,05%MgSO 4 .7H 2 O 0.05%
Struktol B-2020 0,1 % (habzásgátló, gyártja: Kőbányai Gyógyszerárugyár) (pH sterilizálás előtt: 6,0)Struktol B-2020 0.1% (antifoam, manufactured by Kőbánya Pharmaceutical Factory) (before sterilization: 6.0)
A beoltott lombikokat 30 ’C-on síkrázógépen 300 fordulat/perc sebességgel rázatjuk 3 napig. A koleszterin-oxidáz szintet Allain és munkatársai eljárása szerint méijük.The inoculated flasks are shaken on a flat shaker at 300 rpm for 3 days. Cholesterol oxidase levels were measured according to the procedure of Allain et al.
5. példaExample 5
A 3. példában leírt összetételű ferde agar táptalajon Streptomyces rubrifaciens törzset spóráztatunk. A kb. 4-5 napos spórás tenyészetet steril desztillált vízzel vagy fiziológiás sóoldáttal lemossuk, és a spóraszuszpenzió koncentrációját 5x10* spóra/cm3-re állítjuk be. Az így kapott spóraszuszpenzióval az 1. példában leírt módon agar gélgyöngyöket képezünk. A gélgyöngyökkel az alábbi összetételű, 121 ’C-on 25 percig sterilizált, majd szobahőmérsékletre hűtött táptalajt oltjuk be: élesztőkivonat 0,1% húskivonat 0,1% tripton 0,2%The strain of Streptomyces rubrifaciens was sporulated on a slant agar medium as described in Example 3. The approx. The spore culture for 4 to 5 days is washed with sterile distilled water or physiological saline and the spore suspension concentration is adjusted to 5 x 10 * spores / cm 3 . The spore suspension thus obtained forms agar gel beads as described in Example 1. The gel beads are inoculated with the following medium, sterilized at 121 ° C for 25 minutes and then cooled to room temperature: yeast extract 0.1% meat extract 0.1% tryptone 0.2%
HU 202 579 ΒHU 202 579 Β
FeSO4 3 x 104% glükóz 1,0% agar 2,0% (pH sterilizálás előtt: 7,2)FeSO 4 3 x 10 4 % glucose 1.0% agar 2.0% (pH before sterilization: 7.2)
A beoltott lombikokat 28 ’C-on 280 fordulat/perc 5 sebességgel 5-6 napig rázatjuk. A termelt sztreptomicin antibiotikum vékonyrétegkromatográfiás módszerrel kimutatható.The inoculated flasks are shaken at 28 ° C and 280 rpm for 5 to 6 days. The streptomycin antibiotic produced can be detected by thin layer chromatography.
6. példaExample 6
A 3. példában leírt összetételű ferde agar táptalajon Micromonospora inoyensis ATCC 27600 törzset spóiáztatunk.Micromonospora inoyensis ATCC 27600 was spooled on a slant agar medium as described in Example 3.
A 7-8 napos tenyészetet steril desztillált vízzel lemossuk, a spóraszuszpenzió koncentrációját 6 x 106 15 spóra/cm3-re állítjuk be, és az így kapott spóraszuszpenzióval az 1. példában leírt módon gélgyöngyöket képezünk.The 7-8 day culture is washed with sterile distilled water, the spore suspension is adjusted to a concentration of 6 x 10 6 spores / cm 3 , and the spore suspension thus obtained forms gel beads as described in Example 1.
A gélgyöngyökkel az 5. példában leírt összetételű steril folyékony táptalajt oltjuk be, és a lombikokat 20 síkrázógépen 28 ‘C-on 280 fordulat/perc sebességgel rázzuk 5-6 napig.The gel beads were inoculated with sterile liquid medium of the composition described in Example 5 and the flasks were shaken on 20 flat shakers at 28 ° C at 280 rpm for 5-6 days.
A keletkező sziszomicin antibiotikum ismert biológiai értékméréssel, Bacillus subtilis mérőorganizmus segítségével kimutatható.The resulting sisomycin antibiotic can be detected by known biological assays using the Bacillus subtilis assay.
Claims (6)
Priority Applications (6)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| HU883987A HU202579B (en) | 1988-07-27 | 1988-07-27 | Process for closing in gel microorganisma or parts of microorganisma utilizable in fermentations |
| JP1175394A JPH0276581A (en) | 1988-07-27 | 1989-07-06 | Method for including microorganism |
| DE3924446A DE3924446A1 (en) | 1988-07-27 | 1989-07-24 | Encasing microorganisms or parts by mixing with liq. agar soln. - and dropwise addn. to organic solvent with specified properties |
| FR8909979A FR2634785A1 (en) | 1988-07-27 | 1989-07-25 | METHOD OF INCLUSION IN A GEL OF MICROORGANISMS OR PARTS THEREOF, USEFUL IN FERMENTATION PROCESSES |
| SU894614585A SU1760985A3 (en) | 1988-07-27 | 1989-07-26 | Method for preparation of microorganism immobilized cells or theirs parts |
| IT8921320A IT1230999B (en) | 1988-07-27 | 1989-07-26 | METHOD FOR TRAPPING MICROORGANISMS OR THEIR PARTS, USEFUL IN FERMENTATION PROCESSES, IN A GEL |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| HU883987A HU202579B (en) | 1988-07-27 | 1988-07-27 | Process for closing in gel microorganisma or parts of microorganisma utilizable in fermentations |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| HUT50866A HUT50866A (en) | 1990-03-28 |
| HU202579B true HU202579B (en) | 1991-03-28 |
Family
ID=10966373
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| HU883987A HU202579B (en) | 1988-07-27 | 1988-07-27 | Process for closing in gel microorganisma or parts of microorganisma utilizable in fermentations |
Country Status (6)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0276581A (en) |
| DE (1) | DE3924446A1 (en) |
| FR (1) | FR2634785A1 (en) |
| HU (1) | HU202579B (en) |
| IT (1) | IT1230999B (en) |
| SU (1) | SU1760985A3 (en) |
Family Cites Families (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4208482A (en) * | 1976-04-23 | 1980-06-17 | Anheuser-Busch, Incorporated | Immobilization of glucose isomerase |
| US4399219A (en) * | 1981-01-29 | 1983-08-16 | Massachusetts Institute Of Technology | Process for isolating microbiologically active material |
| NL8103168A (en) * | 1981-07-01 | 1983-02-01 | Tno | METHOD FOR PERFORMING AN ENZYMATIC REACTION |
| SE441009B (en) * | 1982-03-08 | 1985-09-02 | Kjell Nilsson | WAY TO IMMOBILIZE LIVING BIOMATERIAL IN PEARLY POLYMERS |
| JPS61260883A (en) * | 1985-05-15 | 1986-11-19 | Kikuchi Keiji | Production of agar bead entrapping live yeast fungus and continuous production of alcohol |
| PT83746B (en) * | 1985-11-15 | 1988-08-17 | Gist Brocades Nv | PROCESS FOR THE PREPARATION OF NEW IMMOBILIZED BIOCATALYZERS AND FOR THE PRODUCTION OF ETHANOL BY FERMENTATION |
-
1988
- 1988-07-27 HU HU883987A patent/HU202579B/en not_active IP Right Cessation
-
1989
- 1989-07-06 JP JP1175394A patent/JPH0276581A/en active Pending
- 1989-07-24 DE DE3924446A patent/DE3924446A1/en not_active Withdrawn
- 1989-07-25 FR FR8909979A patent/FR2634785A1/en active Pending
- 1989-07-26 IT IT8921320A patent/IT1230999B/en active
- 1989-07-26 SU SU894614585A patent/SU1760985A3/en active
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| DE3924446A1 (en) | 1990-02-01 |
| FR2634785A1 (en) | 1990-02-02 |
| SU1760985A3 (en) | 1992-09-07 |
| JPH0276581A (en) | 1990-03-15 |
| HUT50866A (en) | 1990-03-28 |
| IT1230999B (en) | 1991-11-08 |
| IT8921320A0 (en) | 1989-07-26 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Veelken et al. | Production of tylosin and nikkomycin by immobilized Streptomyces cells | |
| US3912589A (en) | Preparation of cephalosporin compounds | |
| US4687742A (en) | Xylose isomerase (glucose isomerase) from Streptomyces murinus cluster | |
| SE409469B (en) | PROCEDURE FOR PERFORMING AN ENZYME CATALYZED TRANSFORMATION OF A SUBSTRATE | |
| Ogaki et al. | Continuous production of oxytetracycline by immobilized growing Streptomyces rimosus cells | |
| Bartoshevich et al. | Acremonium chrysogenum differentiation and biosynthesis of cephalosporin | |
| Goyal et al. | Optimal conditions for production of dextransucrase from Leuconostoc mesenteroides NRLL B‐512F and its properties | |
| HU202579B (en) | Process for closing in gel microorganisma or parts of microorganisma utilizable in fermentations | |
| RU2397247C1 (en) | Lipase biosynthesis method | |
| RU2729410C1 (en) | Industrial method for microbiological synthesis of penicillin g acylase escherichia coli enzyme | |
| Manolov | Influence of agitation rate on growth and ribonuclease production by free and immobilized Aspergillus clavatus cells | |
| US3116218A (en) | Process for the production of penicillin-splitting enzyme preparations | |
| Igam et al. | Single-step conversion of cephalosporin-C to 7-aminocephalosporanic acid by free and immobilized cells of Pseudomonas diminuta | |
| HU182255B (en) | Process for producing mycophenolic acid derivatives | |
| CN110819575A (en) | Culture method of bacillus for producing nattokinase | |
| Porter | [1] Cultural conditions for antibiotic-producing microorganisms | |
| FI110518B (en) | Levan sucrose enzyme, process for its preparation, microorganisms producing it and compositions containing it | |
| KR100378362B1 (en) | Method for immobilization of concentrated culture broth including whole microbial cells in capsules and a capsule prepared thereby | |
| EP0371408B1 (en) | Biocatalysts and process for their preparation | |
| CN1644012A (en) | Serration and its use in preparation of chiral precurser for dielzepin | |
| JP2525529B2 (en) | Method for increasing riboflavin content in spray-dried products from riboflavin fermentation | |
| Abu‐Shady et al. | Studies on rifamycin production by Amycolatopsis mediterranei cells immobilized on glass wool | |
| US3798127A (en) | Medium for the culture of the escherichia coli strain | |
| RU2160992C1 (en) | Dry biopreparation and method of its preparing | |
| EP0258038A2 (en) | Use of cellulase preparations in the cultivation and use of cellulose-producing micro-organisms |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| HMM4 | Cancellation of final prot. due to non-payment of fee | ||
| HNF4 | Restoration of lapsed final prot. | ||
| HMM4 | Cancellation of final prot. due to non-payment of fee |