FR2744723A1 - Proteine recombinante contenant un fragment c-terminal d'une proteine msp-1 d'un plasmodium infectieux pour l'homme pour la production de vaccins anti-paludiques - Google Patents

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Charles Roth
Faridabano Nato
John W Barnwell
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Abstract

L'invention concerne une protéine recombinante, fabriquée dans un système à baculovirus, dont la séquence polypeptidique constitutive essentielle est celle d'un fragment C-terminal de 42 kilodaltons (p42) de la protéine 1 de surface (protéine MSP-1) de la forme mérozoïte d'un parasite du type Plasmodium, en particulier Plasmodium falciparum, infectieux pour l'Homme, ce fragment p42 étant particulièrement délété de sa région II et, le cas échéant, aussi de sa région III. Cette protéine recombinante est applicable à la production de vaccins contre la malaria.

Description

PROTEINE RECOMBINANTE CONTENANT UN FRAGMENT
C-TERMINAL DE LA PROTEINE MSP-1 D'UN PLASMODIUM
INFECTIEUX POUR L'HOMME
POUR LA PRODUCTION DE VACCINS ANTI-PALUDIQUES
L'invention concerne de nouveaux principes actifs de vaccins dérivés de la protéine majeure de surface de formes mérozoïtes d'un plasmodium infectieux pour l'homme, plus généralement connue sous la désignation MSP-1.
Cette protéine a déjà fait l'objet d'études nombreuses. Elle est synthétisée dans le stade schizonte des parasites du type Plasmodium, notamment Plasmodium falciparum, et est exprimée sous forme de l'un des constituants majeurs de la surface des mérozoïtes aussi bien pendant le stade hépatique que pendant le stade érythrocytique du paludisme (1, 2, 3, 4). En raison du caractère prédominant et de la conservation dans toutes les espèces de Plasmodium connues de cette protéine, il a été suggéré qu'elle pourrait représenter un candidat pour la constitution de vaccins anti-paludiques (5, 6).
II en a encore été de même pour des fragments de cette protéine, particulièrement des produits naturels de clivage dont l'on observe la formation, par exemple au cours de l'invasion par le parasite des érythrocytes de l'hôte infecté. Parmi, ces produits de clivage, on relèvera le fragment C-terminal ayant un poids moléculaire de 42 kDa (7,8) qui est à son tour clivé une nouvelle fois en un fragment N-terminal ayant un poids moléculaire apparent conventionnel de 33 kDa et en un fragment Cterminal ayant un poids moléculaire apparent conventionnel de 19 kDa (9) qui reste normalement fixé à la membrane du parasite au terme des modifications dont il est lui-même l'objet, par l'intermédiaire de groupes du type glycosylphosphatidylinositol (GPI) (10, 11).
On le retrouve encore au stade anneau précoce du cycle de développement intraérythrocytique (15, 16), d'où les observations qui ont été faites que ce fragment de 19 kDa pourrait jouer un rôle non encore connu, mais sans doute essentiel dans les processus réinvasifs. De là découlent les hypothèses déjà formulées dans le passé que cette protéine pourrait constituer une cible particulièrement efficace pour d'éventuels vaccins.
II sera entendu que les références souvent faites dans ce qui suit à des protéines p42 et p19 issues d'un certain type de Plasmodium s'entendent comme se rapportant aux produits de clivage C-terminaux correspondants de la protéine MSP-1 de ce Plasmodium, ou, par extension, à des produits contenant sensiblement les mêmes séquences en acides aminés, obtenus par recombinaison génétique ou par synthèse chimique selon les techniques classiques, par exemple par synthétiseur de type Applied System ou par synthèse sur phase solide de type Merrifield . Pour la commodité du langage, les références à des p42 recombinantes et des p19 recombinantes se rapportent à des p42 et p19 obtenues par des techniques comportant au moins une étape de génie génétique.
Devant la difficulté d'obtenir des quantités importantes de parasites pour P. falciparum et l'impossibilité de cultiver P. vivax in vitro, il est devenu évident que le seul moyen de produire un vaccin antipaludique nécessite un recours aux techniques permettant l'utilisation des peptides ou protéines recombinantes. Mais, le MSP-1 est très difficile à produire en entier à cause de sa grande taille d'environ 200 kDa, un fait qui a conduit les chercheurs à s'intéresser à la partie C-terminale dont la fonction, encore inconnue est vraisemblablement la plus importante.
Au titre, des protéines recombinantes concernant la partie Cterminale de MSP-1 de P. falciparum, qui ont été produites et testées chez le singe (12), on mentionnera . une p42 fusionnée avec une glutathione-S-transférase produite dans
E. coli; . une p19 fusionnée avec un polypeptide issu d'une anatoxine tétanique
et porteur d'épitopes de cellules T auxiliaires produites dans
S.cerevisiae.
Une composition contenant la protéine dé fusion p42 avec une glutathione-S-transférase produite dans E.coli en association avec un adjuvant complet de Freund n'ont pas exercé d'effet protecteur dans les deux types de singes Aotus (A.nancymai et A.vociferans) auxquels elles avaient été administrées. La protéine p19 produite dans S.cerevisiae a exercé un effet protecteur dans deux singes Aotus de type A.nancymai (12). Par contre elle n'a pas exercé d'effet protecteur dans deux singes
Aotus de type A. vociferans.
Certains chercheurs (Chang et al.) ont également rapporté des essais d'immunisation réalisés chez le lapin avec une protéine recombinante p42 produite dans un système baculovirus et contenant une séquence d'acides aminés en commun avec P. falciparum (18). Ainsi ces derniers auteurs indiquent-ils que cette p42 recombinante se comporte chez le lapin sensiblement de la même façon que la protéine MSP-1 recombinante entière (gp195).Ils suggèrent que la protéine p42 pourrait faire l'objet d'essais de protection dans des primates non-humains susceptibles à l'infection par P.falciparum, en particulier des singes Aotus, au motif que la protéine p42 comporterait des épitopes-cibles pour des anticorps inhibiteurs formés contre la protéine MSP-1 native purifiée gp195. II serait néanmoins hasardeux à supposer même que de tels résultats soient un jour confirmés, de conclure au caractère protecteur chez l'homme des anticorps ainsi Induits à l'encontre des parasites euxmêmes. Rappelons en effet qu'il n'existe pas actuellement de modèles expérimentaux très satisfaisants chez le primate pour P. vivax et
P. falciparum.Le modèle Saimiri, qui a été développé pour P.falciparum et P. vivax, et le modèle Aotus pour P. falciparum, sont des systèmes artificiels, nécessitant l'adaptation de souches de parasite et souvent la splénectomie des animaux pour obtenir des parasitémies significatives. En conséquence, les résultats de vaccination provenant de ces modèles ne peuvent avoir qu'une valeur prédictive limitée pour l'Homme.
Outre que l'on peut donc s'interroger sur ce que serait un taux réel de vaccination susceptible d'être éventuellement obtenu avec de telles protéines recombinantes, la présence dans les p42 issues des
Plasmodiums de la même espèce, et plus particulièrement dans les p33 correspondantes, de régions hypervariables pourraient rendre aléatoires en de nombreux cas l'efficacité immunoprotectrice des anticorps induits chez des personnes vaccinées par une p42 issue d'une souche de
Plasmodium à l'encontre d'une infection par d'autres souches de la même espèce (13).
Le polymorphisme important des régions centrales de la p42 pourrait même jouer un rôle significatif dans l'échappement immunitaire, souvent observé pour ce type de parasites.
Mais il s'avère que les p42 issues de divers Plasmodiums infectieux pour l'homme comportent des régions hypervariables se concentrant principalement dans leurs régions III, et plus encore dans leurs régions Il respectives: voir la publication de Longacre, S. (13) dans laquelle les séquences des p42 de P.cynomolgy, P. vivax (Belem) et P. vivax (Sal-l) ont été mises en alignement. La séquence consensus de la figure 4 jointe ajoutée aux séquences des p42 de ces trois parasites en témoigne.
On se rapportera à l'article de Longacre, S. (13) dans lequel sont exposées les conditions dans lesquelles lesdites régions ont été déterminées. II est remarqué que la figure 4 jointe n'est autre qu'une reproduction de la figure 1 de l'article de Longacre. Le lecteur est donc invité à se reporter à la légende de cette figure. Celle-ci fait également apparaître les tailles relatives des quatre régions de la p42 (la région IV correspondant à la séquence de la p19) exprimées en pourcentages vis-à-vis de la taille de la séquence codante de la p42 en son entier.
Comme cela découle également de la figure 4 de la présente demande, les pourcentages d'homologie sont élevés entre les séquences des régions I des P. cynomolgi et P. vivax: 84% dans la région 1, 86% dans la région IV. En revanche, ce pourcentage d'homologie décroît fortement dans la région 111(69%) et plus encore dans la région 11(47%).
Un premier objectif de l'invention est par conséquent de fournir des principes actifs de vaccins issus de la p42 davantage capables de protéger l'hôte contre l'échappement immunitaire dont il était question ci-dessus.
II va de soi que la fragmentation de la p42 qui vient d'être envisagée peut également être étendue à P. falciparum, le parasite principalement responsable de formes aiguës du paludisme chez l'homme, et cela d'autant plus que les localisations des zones séparant les régions 1,11,111 et
IV des séquences constitutives de P. cynomolgi et des deux variétés de P. vivax ont été déterminées par analogie avec des sites correspondants, identifiés au préalable dans P. falciparum, comme cela a été décrit par (34) (35).
L'invention concerne plus particulièrement des compositions vaccinantes contre un parasite du type Plasmodium infectieux pour i'homme, contenant à titre de principe actif une protéine recombinante glycosylée ou non, dont la séquence polypeptidique constitutive essentielle est celle
soit de la p42 dont ont été délétées la région Il et, le cas échéant, tout
ou partie de la région III,
soit d'une partie de ce fragment dés lors qu'elle est apte aussi à induire
une réponse immune capable d'inhiber une parasitémie in vivo par le
parasite correspondant,
soit d'un peptide immunologiquement équivalent à ce fragment p42 ou à
la susdite partie de ce fragment, et cette protéine recombinante comportant en outre des épitopes conformationnels instables en milieu réducteur et constituant, de préférence, la majorité des épitopes reconnus par des antisérums humains formés contre le Plasmodium correspondant.
L'invention concerne donc plus particulièrement une protéine recombinante, glycosilée ou non issue de la p42 et contenant à la fois les parties essentielles de la région I et la région IV.définie ci-dessus pour la constitution de compositions immunogènes, notamment de vaccins.
Pour la commodité du langage, il sera souvent fait référence dans ce qui suite à une p42 partiellement délétée pour désigner la p42 modifiée, selon ce qui a été défini ci-dessus.
La présence dans ce principe actif des susdits épitopes conformationnels pourrait jouer un rôle important dans l'efficacité protectrice qu'il est susceptible de conférer à l'hôte vacciné. On les retrouve tout particulièrement dans les principes actifs présentant par ailleurs les autres caractéristiques définies ci-dessus, lorsqu'ils ont été produits dans un système vecteur baculovirus. S'il en est besoin, il est mentionné ci-après que par l'expression système de vecteur baculovirus on entend l'ensemble que constitue le vecteur type baculovirus lui-même et les lignées cellulaires, notamment cellules d'insectes transfectables par un baculovirus modifié par une séquence à transférer dans ces lignées cellulaires avec pour résultat l'expression de cette séquence transférée.Des exemples préférés de ces deux partenaires du système baculovirus, ont été décrits dans l'article de Longacre et al.
(19). C'est le même système qui a été utilisé dans les exemples qui suivent. II va naturellement de soi que des variants, tant du baculovirus que des cellules Infectables par ce baculovirus peuvent être utilisés en lieu et place de celui qui a été choisi.
Le caractère instable en milieu réducteur de ces épitopes conformationnels peut être mis en évidence, notamment par le test décrit plus loin dans les exemples, notamment en présence de ss-mercaptoéthanol .
De ce point de vue, des protéines recombinantes dérivées de la p42 recombinante produite par S. Longacre et al. (14) peuvent être mises en oeuvre dans de tels compositions. Il est rappelé que S. Longacre et al.
réussirent à produire une p19 recombinante issue de la MSP-1 de P. vivax dans un système vecteur à baculovirus contenant une séquence nucléotidique codant pour la p19 de Plasmodium vivax, en particulier par transfection de cultures de cellules d'insectes [lignée de Spodoptera frugiperda (Sf9)] avec des baculovirus vecteurs contenant, sous le contrôle du promoteur de la polyhédrine, une séquence codant pour les fragments peptidiques définis ci-dessous, dont les séquences étaient placées dans l'ordre suivant dans le vecteur baculovirus utilisé
fragment 5'-terminal de 35 paires de bases de la séquence signal de la
polyhédrine, dont avait été muté (en ATT) le codon méthionine
d'initiation de l'expression de cette protéine;;
un fragment 5'-terminal nucléotidique codant pour un peptide de 32
acides aminés correspondant à la partie N-terminale de MSP-1, y
compris le peptide signal de MSP-1,
soit une séquence nucléotidique codant pour la p19, soit une
séquence codant pour la p42 de la protéine MSP-1 de Plasmodium
vivax, ces séquences étant aussi, selon le cas, soit pourvues (formes
ancrées ), soit dépourvues (formes solubles) des régions
d'extrémité 3' de ces séquences de nucléotides dont les produits
d'expression C-terminaux extrêmes sont réputés jouer un rôle essentiel
dans l'ancrage de la protéine finale p19 sur la membrane du parasite;
2 codons stop TAA.
Pour la p42, les séquences dérivées de la région C-terminale de
MSP-1 s'étendaient par conséquent de l'acide aminé Asp 1325 à l'acide aminé Leu 1726 (forme ancrée) ou à l'acide aminé Ser 1705 (forme soluble) et pour la p19, les séquences s'étendaient de l'acide aminé île 1602 à l'acide aminé Leu 1726 (forme ancrée) ou à l'acide aminé Ser 1705 (forme soluble), étant entendu que les séquences en acides aminés complètes de p42 et p19 dont les acides aminés initiaux et terminaux ont été indiqués dans ce qui précède découlent du gène de l'isolat Belem de
P. vivax qui a été séquencé (20).
Des résultats semblables ont été obtenus en mettant en oeuvre dans les mêmes systèmes de vecteurs des séquences nucléotidiques codant pour la p19 et la p42 de Plasmodium cynomolgi. P. cynomolgi présente un double intérêt: c'est une espèce parasitaire très proche de P. vivax, qui est très infectieuse pour le macaque très proche de P. vivax. II peut aussi infecter l'Homme. On a également accès à des hôtes naturels de P. cynomolgi, les singes rhésus et les singes toques, pour tester l'efficacité de protection du MSP-1 de P. cynomolgi dans des systèmes naturels. Le singe rhésus est considéré comme une des espèces les plus représentatives des réactions immunitaires chez l'Homme.
En particulier, on a obtenu d'excellents résultats dans des essais de vaccination réalisés chez le singe toque avec deux polypeptides recombinants: la p42 et la p19 solubles, dérivées de P. cynomolgi, respectivement produites dans un système baculovirus et purifiées sur colonne d'affinité avec des anticorps monoclonaux reconnaissant les régions correspondantes de la protéine MSP-1 native. Les observations suivantes ont été faites : les six singes immunisés avec le seul p19 (trois singes) et le 19 et p42 ensemble (3 singes) ont tous témoigné d'une immunité presque stérile après infection d'épreuve. Les résultats obtenus chez les trois singes immunisés avec le p42 ont été moins significatifs.
Deux d'entre eux se sont comportés comme les précédents, mais si le troisième a manifesté une parasitémie moins importante que des témoins immunisés avec un tampon PBS en présence de l'adjuvant de Freund (3 singes) ou non Immunisés (3 singes), elle n'en n'était pas moins patente.
Les résultats des essais particulièrement efficaces réalisés chez le macaque avec des polypeptides recombinants produits dans un système baculovirus mettant en oeuvre une p42, en association avec une p19 recombinante de P. cynomolgi, établissent que des polypeptides recombinants contenant respectivement des p42 recombinantes issus d'autres Plasmodiums doivent se comporter de la même manière. Ces essais sont plus parlants pour le paludisme chez l'Homme que les résultats d'essais réalisés avec P. vivax ou P. falciparum dans leurs hôtes artificiels .
Les protéines recombinantes de baculovirus, dérivées d'une partie
C-terminale de MSP-1 (p42), et plus particulièrement les p42 partiellement délétées, ont un effet protecteur antipaludique très significatif dans un système naturel, qui constitue le modèle d'évaluation de l'effet protecteur de MSP-1 le plus représentatif pour l'homme.
L'effet protecteur obtenu pourrait être d'autant meilleur que la p42 partiellement délétée est dépourvue de la région hypervariable de la partie
N-terminale du p42, dont l'effet peut être délétère dans des situations naturelles dans lesquelles le sujet vacciné est confronté à un polymorphisme important.
Mais la délétion de la région Il et de tout ou partie de la région III conduit normalement à des résultats meilleurs. II est clair que l'homme du métier n'éprouverait aucune difficulté à réaliser des protéines de fusion entre des régions I et IV des p42 correspondantes, voire même entre une région I et une région IV provenant respectivement de deux p42 issues de deux variétés différentes de Plasmodium. II va naturellement de soi que ces protéines de fusion peuvent aussi contenir des éléments de liaison correspondant encore à des parties de la région Il, de préférence de la région III, choisies de préférence parmi les mieux conservées.A titre d'exemple, on mentionnera la séquence polypeptidique C-terminale de la p33, lorsqu'elle est présente, comprend moins de 50 résidus d'acides aminés, voire même moins de 35, ou même moins de 10 résidus d'acides aminés.
Cela étant, la séquence polypeptidique de la protéine p42 partiellement délétée peut ne pas comporter la totalité de la séquence codant pour la p19 (ou de la région IV), naturellement sous réserve que cette dernière conserve la capacité d'induire des anticorps protecteurs contre le parasite. En particulier la susdite partie de fragment a un poids moléculaire de 10 à 25 kDa, notamment de 10 à 15 kDa. De préférence, cette partie de fragment polypeptidique contient au moins l'une des deux régions EGF (abréviation de l'expression anglaise Epidermal Growth
Factor ).
Naturellement les mêmes observations valent pour la région I de la protéine recombinante selon l'invention.
II est clair que l'homme du métier est à même de faire la différence entre les fragments actifs et ceux qui cesseraient de l'être, notamment de façon expérimentale en produisant des vecteurs modifiés contenant, par exemple, des insérats comportant des parties de la p42 et notamment de la p42 délétée, de longueurs différentes, respectivement produits à partir de la séquence codante pour la p42, le cas échéant, partiellement délétée, par réaction avec des enzymes de restriction appropriés, ou encore des enzymes exonucléolytiques qui auraient été maintenus au contact du fragment codant pour la p42 initiale, le cas échéant, partiellement délétée pendant des temps variables, la capacité des produits d'expression de ces insérats dans des cellules eucaryotes correspondantes, notamment des cellules d'insectes, transformées par les vecteurs modifiés correspondants, à exercer un effet protecteur, pouvant alors être testée, notamment dans les conditions expérimentales qui seront décrites plus loin, à propos des exemples. En particulier, les produits d'expression de ces insérats doivent être aptes à inhiber une parasitémie induite In vivo par le parasite correspondant entier.
De même, I'invention inclut toutes compositions immunogènes, voire vaccinantes dans lesquelles la séquence polypeptidique constitutive essentielle du principe actif serait constitué d'un peptide capable d'induire une réponse immunologique de type cellulaire et/ou humorale équivalente à celle produite par la protéine partiellement délétée telle que définie cidessus, dés lors que l'addition, la délétion ou la substitution dans sa séquence de certains acides aminés par d'autres.n'entraîneraient pas une modification importante de la capacité du peptide ainsi modifié -ci-après appelé peptide immunologiquement équivalent - à aussi inhiber la susdite parasitémie.
La p42 partiellement délétée peut naturellement aussi être associée que ce soit du côté N-terminal ou du côté C-Terminal ou par l'intermédiaire d'une liaison peptidique, à un autre fragment de protéine plasmodiale ayant un potentiel vaccinant comme par exemple une protéine ( Duffy
Binding Protein de P. vivax (29) ou EBA-175 de P. falciparum (30) et (31) dont une région est spécifiquement riche en cystéine), sous réserve que ne soit pas altérée, au contraire amplifiée, sa capacité d'inhiber une parasitémie normalement introduite in vivo par le parasite correspondant.
Le fragment codant pour la p42 partiellement délétée ou une partie de celle-ci, peut contenir également, en amont de son extrémité Nterminale, une séquence peptidique encore différente, par exemple un fragment C-terminal du peptide signal de la protéine MSP-1. Cette séquence comprend de préférence moins de 50 acides aminés, par exemple de 10 à 35 acides aminés.
Ces observations s'étendent de la même façon à des p42 partiellement délétées issues d'autres Plasmodium, en particulier
P. falciparum, I'espèce dominante des parasites, responsable d'une des formes les plus graves de paludisme.
Mais les techniques rappelées ci-dessus pour la production dans un système de baculovirus d'une p42 recombinante issue de P vivax ou
P. cynomolgi sont difficilement transposables telles quelles à la production d'une p42 recombinante de P.falciparum avec un rendement satisfaisant, ne fût-ce que pour obtenir des quantités appréciables autorisant la réalisation d'essais d'immunoprotection.
L'invention fournit également un procédé remédiant en grande partie à cette difficulté. II devient aussi possible d'obtenir des rendements beaucoup plus importants en p42 de P. falciparum -et d'autres plasmodiums lorsque l'on rencontre des difficultés semblables- en mettant en oeuvre une séquence nucléotidique synthétique de substitution à la séquence nucléotidique naturelle codant pour la p42 de Plasmodium falciparum dans un vecteur d'expression d'un système baculovirus, cette séquence nucléotidique synthétique codant pour la même p42, mais étant caractérisée par une proportion de nucléotides G et C plus élevée que dans la séquence nucléotidique naturelle
II et clair pour l'homme du métier que ce résultat peut être obtenu en tirant profit à la fois de sa capacité de synthétiser des ADNs par synthèse nucléotidique et de choisir parmi les possibilités que lui offre le code génétique, de substituer, chaque fois que le code génétique l'autorise, des codons synthétiques ayant des teneurs en C et/ou en G plus élevées que les codons naturels qui, au sein des séquences natives codant pour les p42 natives correspondantes, codent pour le même acide aminé.
II va de soi que les mêmes observations étendent leurs effets à des p42 dont des séquences ont été partiellement délétées comme défini plus haut.
En d'autres termes, I'invention découle de la découverte que l'expression dans un système baculovirus d'une séquence nucléotidique codant pour une p42, partiellement délétée ou non, était apparemment liée à une compatibilité améliorée des codons successifs de la séquence nucléotidique à exprimer avec la machinerie cellulaire des cellules hôtes transformables par des baculovirus, à l'instar de ce qui est observé pour les séquences nucléotidiques naturelles normalement contenues dans ces baculovirus et exprimées dans les cellules hotes infectées , d'où la mauvaise expression, sinon parfois l'absence totale d'expression d'une séquence nucléotidique native de P. falciparum, d'où également une explication possible à l'expression plus efficace observée de la p42 de P. vivax dans un système baculovirus par Longacre et al. (19) et, comme les inventeurs l'ont aussi constaté, de la séquence de P. cynomolgi à partir des séquences nucléotidiques p42 natives correspondantes, en raison de leurs teneurs relatives en nucléotides G et C beaucoup plus élevées que celles des séquences nucléotidiques natives codant pour les p42 de
P. falciparum.
L'invention concerne donc aussi, plus généralement, un vecteur modifié du type baculovirus recombinant contenant sous le contrôle d'un promoteur contenu dans ce vecteur et susceptible d'être reconnu par des cellules transfectables par ce vecteur, une première séquence nucléotidique codant pour un peptide signal exploitable par un système baculovirus, caractérisé par une deuxième séquence nucléotidique en aval de la première, également sous le contrôle de ce promoteur et codant pour une séquence peptidique comportant néanmoins dans sa propre séquence constitutive, celle
soit d'un fragment peptidique codant de la p42 ou une p42 dont ont été
délétées la région Il et, le cas échéant, tout ou partie de la région III,
soit d'une partie de ce fragment peptidique dès lors que le produit
d'expression de la deuxième séquence dans un système baculovirus est
apte aussi à inhiber une parasitémie normalement induite in vivo par le
parasite correspondant,
soit d'un peptide immunologiquement équivalent dérivé du susdit
fragment peptidique C-terminal (p19) ou de la susdite partie de fragment
peptidique par addition, délétion ou substitution d'acides aminés
n'entraînant pas une modification importante de la capacité de ce
peptide immunologiquement équivalent à Induire une réponse
Immunologique de type cellulaire et/ou humorale semblable à celle
produite par ce fragment peptidique p19 ou à la susdite partie de ce
fragment, et ladite séquence nucléotidique ayant le cas échéant une teneur en nucléotides G et C comprise entre 40 et 60%, de préférence d'au moins 50% de la totalité des nucléotides dont elle est constituée. Cette séquence peut être obtenue par construction d'un gène synthétique dans lequel les codons naturels ont été changés par des codons. riches en G/C sans que leur traduction soit modifiée (maintien de la séquence peptidique).
En l'occurrence ladite séquence nucléotidique, fournie par un ADN synthétique, peut présenter au moins 10% de codons modifiés par rapport à la séquence du gène ou du cDNA naturel tout en conservant les caractéristiques de la séquence naturelle traduite, c'est-à-dire le maintien de la séquence en amino-acides.
Cela étant, on n'exclut pas que cette teneur en nucléotides G et C pourrait être davantage accrue, dès lors que les modifications qui en résulteraient quant à la séquence en acides aminés du peptide recombinant -ou peptide immunologiquement équivalent-produit n'entraineraient pas une perte des propriétés immunologiques, voire protectrices, des protéines recombinantes formées, notamment dans les essais qui seront illustrés plus loin.
Ces observations s'appliquent naturellement à d'autres Plasmodium infectieux pour l'homme, en particulier dès lors que des séquences nucléotidiques natives codant pour les p42 correspondantes, le cas échéant partiellement délétées, auraient des teneurs en nucléotides T et A difficilement compatibles avec une expression efficace dans un système baculovirus.
La séquence codant pour le signal utilisé peut être celle normalement associée à la séquence native du Plasmodium concerné.
Mais elle peut également être issue d'un autre Plasmodium, par exemple P. vivax ou P. cynomolgi ou d'un autre organisme s'il est susceptible d'être reconnu en tant que signal dans un système baculovirus.
La séquence codant pour la p42 ou une partie de celle-ci au sein du vecteur considéré est, le cas échéant, dépourvue de la séquence d'ancrage de la protéine native au parasite dont elle est issue, cas dans lequel la protéine exprimée est en général excrétée dans le milieu de culture (forme soluble).
L'invention concerne tout autant les vecteurs dans lesquels la séquence codante contient la séquence d'extrémité 3' terminale codant pour la séquence d'extrémité C'-terminale hydrophobe de la p19 et qui est normalement impliquée dans l'induction de l'ancrage de la protéine native à la membrane cellulaire de l'hôte dans lequel elle est exprimée. Cette région d'extrémité 3'-terminale peut d'ailleurs être hétérologue vis-à-vis de la séquence codant pour le reste de la p42 correspondante, par exemple correspondre à la séquence 3'-terminale issue de P.vivax ou d'un autre organisme dès lors qu'elle code pour une séquence d'ancrage de l'ensemble de la protéine recombinante produite à la membrane de l'hôte cellulaire du système baculovirus mis en oeuvre.A titre d'exemple de telles séquences d'ancrage on cite la GPI de l'antigène CD59 exprimable dans des cellules d'insectes du type spodoptera frugiperda (32) ou la GPI d'une protéine humaine CD14 (33).
L'invention concerne naturellement aussi les protéines recombinantes, ces protéines comportant des épitopes conformationnels reconnus par des sérums humains formés contre le Plasmodium correspondant.
D'une façon générale, I'invention concerne également toute protéine recombinante du type indiqué ci-dessus, dès lors qu'elle comporte des épitopes conformationnels tels que produits dans le système baculovirus, notamment ceux qui se trouvent être instables en milieu réducteur.
L'invention concerne naturellement lesdites protéines recombinantes, qu'elles soient sous la forme dite soluble ou sous la forme pourvue d'une région d'ancrage, en particulier aux hôtes cellulaires mis en oeuvre dans le système baculovirus.
L'invention porte également sur tout produit de conjugaison entre une p42 ou une p42 partiellement délétée telle que définie ci-dessus, d'une part, et une molécule porteuse -par exemple une polylysinealanine- utilisable pour la production des vaccins, d'autre part, par l'intermédiaire de liaisons covalentes ou non. Les compositions vaccinantes les mettant en oeuvre font également partie de l'invention.
L'invention concerne également les compositions de vaccins mettant en oeuvre ces protéines recombinantes ou conjuguées, y inclus d'ailleurs les protéines issues de Plasmodium vivax.
Font également partie de l'invention les compositions dans lesquelles les protéines recombinantes susmentionnées sont associées à un adjuvant, par exemple un alun. Les protéines recombinantes comportant l'extrême région C-terminale permettant leur ancrage à la membrane des cellules dans lesquelles elles sont produites sont avantageusement utilisées en combinaison avec des lipides aptes à former des liposomes et appropriés à la production de vaccins. Sans qu'il y ait eu lieu de s'y limiter, on peut avoir recours aux lipides décrits à cet effet par exemple dans l'ouvrage intitulé Les liposomes aspects technologique, biologique et pharmacologique de J. Delattre et al., édition INSERM, 1993.
La présence de la région d'ancrage dans la protéine recombinante qu'il s'agisse d'une région d'ancrage homologue ou hétérologue vis-à-vis de la partie vaccinante proprement dite, est de nature à favoriser la production d'anticorps cytophiles, notamment du type lgG2, et IgG2b chez la souris qui pourraient avoir une activité protectrice particulièrement élevée, au point que l'on pourrait se dispenser d'associer les principes actifs de vaccins ainsi constitués avec des adjuvants autres que les lipides utilisés pour la constitution des formes liposomiques. II s'agirait là d'un avantage important, puisque les liposomes peuvent etre lyophilisés dans des conditions permettant leur stockage et leur transport. sans que des chaines de froid ne soient alors Indispensables.
D'autres caractéristiques de l'invention apparaîtront encore au cours de la description qui suit d'exemples, de protéines recombinantes mettant en ieu des protéines recombinantes dont les séquences actives, soit contiennent celles de la p42, soit sont limitées à celle des protéines p19 correspondantes. Sans que ces exemples soient à proprement parler toujours directement couverts par les revendications qui suivent, ils n'en contribuent pas moins à l'établissement du caractère opérationnel de l'invention qui fait l'objet de la présente'demande.
Description de la construction PfMSPIp1ss (soluble) (p19 soluble issue de P.falciparum)
La construction recombinante PfMSPipigS contient de 'ADN correspondant aux 8 paires de base de la séquence leader et les 32 premiers acides aminés de MSP1 de Plasmodium vivax de Met, à Asp32 (isolat lBelem ; Del Portillo et al. 1991. P.N.A.S. 88, 4030.) suivis par un
GluPhe, dû au site EcoR1 faisant la liaison des deux fragments. Le tout est suivi par le gène synthétique, décrit dans Figure 1, codant le Plasmodium falciparum MSPîpi9 de Asn1613 à Ser1705 (isolat Uganda-Palo Alto, Chang et al. 1988. Exp. Parasitol. 67,1). La construction est terminée par deux codons stop de TAA.Cette construction donne lieu à une protéine recombinante qui est sécrétée dans le surnageant de culture des cellules infectées.
De la même façon et à des fins de comparaisons, on a produit une construction recombinante dans des conditions semblables à celles utilisées pour la production de la p19 ci-dessus, mais en travaillant avec une séquence codante consistant en une copie directe de l'ADN correspondant de la souche P.faíciparum (FUP) décrite par Chang et al.,
Exp. Parasit. 67,1; 1989. La copie de ce gène naturel (s'étendant de l'asparagine 1613 à la sérine 1705) a été formée par PCR à partir du gène natif.
On a représenté dans la Figure 1A les séquences à la fois du gène synthétique (Bac19) et du gène natif (PF19).
On remarque que 57 codons sur les 93 codons de la séquence codante native pour la p19 issue de P.falciparum ont été modifiés (pour ce qui est du troisième nucléotide dans 55 d'entre eux et du premier et troisième nucléotides dans les deux codons restant). Des codons nouveaux ont été ajoutés à l'extrémité 5' pour introduire le peptide signal dans les conditions qui ont été indiquées ci-dessus et pour introduire un site EcoRI pour le clonage, d'une part, et de même ont été ajoutés deux codons stop non présents dans la p19 de P. falciparum aux fins d'obtenir des signaux de terminaison de l'expression. Les lettres individualisées placées respectivement au dessus des codons successifs correspondent aux acides aminés respectifs successifs. Les astérisques (*) se rapportent aux codons stop. Les lignes verticales soulignent les nucléotides qui sont les mêmes dans les deux séquences.
Description de la construction PfMSP1p,9A (ancré GPI) (p19 ancrée de P.falciparum)
La construction PfMSPlp1gA a des caractéristiques de la précédente sauf que la séquence synthétique (Figure 1B) code pour le MSPIpi9 de
Plasmodium falciparum (isolat Uganda-Palo alto) de As1613 à lle1726 suivie par deux codons stop de TAA. Cette construction donne lieu à une protéine recombinante qui est ancrée dans la membrane plasmique des cellules infectées par une structure du type glycosyl phosphatidyl inositol (GPI).
La figure 1C est représentative de la séquence de la protéine recombinante PfMSPlp1gS avant coupure de la séquence signal.
La figure 1D est représentative de la séquence de la protéine recombinante PfMSPl,,sS après coupure de la séquence signal.
Les acides aminés soulignés dans les figures 1 C et 1D proviennent du site EcoR1 utilisé pour joindre les séquences nucléotidiques dérivées de la partie N-terminale de MSP1 de P. vivax (avec séquence signal) et de MSPîpi9 de P. falciparum.
Figure 2 - L'antigène recombinant PfMSPîpi9 soluble purifié par immunoaffinité a été analysé par immunoblot après SDS-PAGE en présence (réduit) ou absence (non réduit) de B-mercaptoéthanol. Les échantillons sont chargées sur gel après chauffage à 95"C en présence de 2% SDS. Dans ces conditions seulement des liaisons du type covalent (ponts disulfure) peuvent résister à la désagrégation. Le blot de gauche a été révélé avec un anticorps monoclonal qui réagit avec un épitope linéaire de la p19 naturelle. Le blot de droite a été révélé avec un mélange de 13 antisera humains provenant des sujets avec une immunité acquise au paludisme dû à Plasmodium falciparum.Ces résultats montrent que la molécule recombinante de baculovirus reproduit bien les épitopes conformationnels en forme de polymère qui sont reconnus en majorité par l'antiserum humain.
Figure 3 - L'antigène recombinant PvMSP1p42 soluble (Longacre et al. 1994, op.cit.) a été incubé pendant 5 heures à 37 en présence des fractions de protéines dérivées des mèrozoites de P. falciparum et séparées par isoélectrofocalisation. Par la suite les échantillons ont été analysés par immunoblot en présence (réduit) ou absence (non réduit) de
B-mercaptoéthanol. Les fractions 5 à 12 d'isoélectrofocalisation, ainsi que deux extraits totaux de mérozoites faits en présence (Tex) ou absence (T) de détergent ont été analysés.L'immunoblot a été révélé avec des anticorps monoclonaux spécifiques pour le MSP1p2 et p,g de P. vivax. Les résultats suggèrent qu'il y a une activité protéolytique dans les mérozoïtes de P. falciparum qui peut être extraite en détergent. La digestion du p42 dans certaines fractions semble provoquer une polymérisation des produits de digestion (p19), cette polymérisation est probablement liée à la formation de ponts disulfure puisqu'en présence de B-mercaptoéthanol, les formes de haut poids moléculaire disparaissent en faveur d'une molécule d'environ 19 kDa (Tex-R). La polymérisation du p19 observée dans ces expériences pourrait donc être une propriété intrinsèque de cette molécule in vivo.
Description de la construction PcMSP1p,9S (soluble) (p19 soluble de P. cynomolgi)
L'ADN utilisé pour la construction susdite a été obtenu à partir d'un clone de la souche de Plasmodium cynomolgi ceylonesis (22-23). Cette souche a été maintenue par des passages successifs dans son hôte naturel (Macaca sinica) et des transmissions cycliques par l'intermédiaire de moustiques (27).
Des parasites sanguins ont été obtenus à partir des singes infectés au stade schizonte mature quand les parasitémies ont atteint un niveau de 5%. Ils ont alors été purifiés selon la méthodes décrites dans (25). L'ADN a ensuite été extrait comme décrit dans (26).
Un fragment de 1200 paires de base a ensuite été produit en ayant recours à la réaction PCR mettant en oeuvre les oligonucléotides soulignés dans la Figure 4 et issus de P. vivax. L'oligonucléotide 5' comprenait un site de restriction EcoRI et l'oligonucléotide 3' deux codons synthétiques stop TAA suivis d'un site de restriction Bglll. Ce fragment a été introduit par ligation et par l'intermédiaire de ces sites EcoRI et Bglll dans le plasmide pVLSV2oe.contenant déjà la séquence signal de la protéine MSP-1 de P.vivax (19). Le nouveau plasmide (pVLSV200C42) a été utilisé pour l'analyse de séquences d'ADN
Les séquences de P cynomolgi et des séquences correspondantes de P. vi vax ont été mises en alignement. Les flèches noires désignent les sites de clivage primaire et secondaire présumés. Ils ont été déterminés par analogie avec les sites connus dans P.falciparum (27, 28). Des lignes verticales et des flèches horizontales localisent les limites des quatre régions qui ont été étudiées. La région 4 correspond à la séquence codant pour la p19 de P. cynomolgi. Des sites de glycosylation sont encadrés et les cystéines conservées sont soulignées. Dans la partie inférieure de la
Figure 4 sont indiqués les pourcentages identité entre les deux isolats de P. vi vax et P. cynomolgi.
La construction recombinante POMSPIpisS contient de l'ADN correspondant aux 8 paires de bases de la séquence leader et les 32 premiers acides aminés de MSP1 de Plasmodium vivax de Met, à Asp32 (isolat Belem, Del Portillo et al. 1991. P.N.A.S. 88, 4030.) suivis par un
GluPhe, dû au site EcoR1 faisant la liaison des deux fragments. Le tout est suivi par la séquence codant pour le MSPîp19 de Plasmodium cynomolgi (souche Ceylon) de Lys276 à Ser380. La construction est terminée par deux codons stop de TAA. Cette construction donne lieu à une protéine recombinante qui est sécrétée dans le surnageant de culture des cellules infectées.
Purification de la protéine recombinante PfMSP1p19 par chromatographie d'immunoaffinité avec un anticorps monoclonal reconnaissant spécifiquement la p19 de Plasmodium falciparum.
La résine de chromatographie a été préparée en liant 70 mg d'un anticorps monoclonal à 39 de CNBr-Sepharose 4B activé (Pharmacia) par des méthodes standards détaillées dans le mode d'emploi fourni par
Pharmacia. Les surnageants de culture contenant le PfMSP1p19 soluble ont été incubés en batch avec la résine de chromatographie pendant 16 heures à 4 C. La colonne a été lavée une fois avec 20 volumes de 0.05%
NP40, 0.5M NaCI, PBS 1 une fois avec 5 volumes de PBS et une fois avec 2 volumes de 10 mM phosphate de sodium, pH 6.8.L'élution a été effectuée avec 30 ml de 0.2 M glycine, pH 2 2 L'éluat a été neutralisé avec 1 M phosphate de sodium, pH 7 7 puis concentré par ultrafiltration et dialysé contre du PBS Pour la purification du PfMSPlpl9 ancré, toutes les solutions de lavage et élution contenaient en supplément 0.1% 3 (Dimethyl-dodecylammonio)-propane sulfonate (Fluka).
Essai de vaccination de MSP1 recombinant de Plasmodium vivax (p42 et p19) chez le singe écureuil Saimirisciureus.
Cet essai de vaccination a été fait chez des Saimiri sciure us boliviensis mâles de 2 à 3 ans, non splénectomisés. Trois singes ont été injectés 3 fois par voie intramusculaire à 3 semaines d'intervalle avec un mélange d'environ 50 à 100 pu chacun, de PvMSP1p42 et p19 soluble recombinant (19), purifié par immunoaffinité. L'adjuvant de Freund complet et incomplet était utilisé comme suit 1é" injection . 1:1 FCA/FIA; 2ème injection 1:4 FCA/FIA; 3éme injection FIA. Ces compositions d'adjuvant étaient mélangées par la suite 1:1 avec l'antigène en PBS. Les cinq singes contrôles recevaient l'antigène glutathione-S-transferase (GST) produit dans E.coli selon le même protocole.L'infection d'épreuve était effectuée en injectant 2.106 hématies infectées avec une souche adaptée de
Plasmodium vivax (Belem) 2.5 semaines après la dernière injection. La protection a été évaluée en déterminant les parasitémies journalières chez tous les animaux par examen des frottis colorés avec giemsa.
Les courbes de la Figure 5 sont représentatives de la variation de la parasitémie mesurée en nombre d'hématies parasitées par microlitre de sang (sur l'axe des ordonnées à l'échelle logarithmique) en fonction du temps écoulé après l'infection (en jours). La courbe A correspond aux valeurs moyennes observées chez les trois singes vaccinés, la courbe B; les valeurs moyennes chez cinq singes témoins.
De l'examen de la figure découle une très forte réduction de la parasitémie sous l'effet de la vaccination.
Essai de vaccination de MSP1 recombinant de Plasmodium cynomolgi(p42 et p19) chez le singe toque, Macaca sinica.
Quinze singes capturés ont été utilisés comme suit. (1) 3 animaux injectés avec 100 pg PcMSP1p42 soluble; 3 animaux injectés avec 35 u9 (1ère injection) ou 50 ug (2émue et 3ème injections) PcMSP1 soluble,(3) 3 animaux injectés avec un mélange de PcMSP1p42 et p19, (4) 3 animaux injectés avec l'adjuvant plus PBS, (5) 3 animaux non injectés. L'adjuvant de Freund complet et incomplet a été utilisé selon le protocole décrit cidessus. Les injections on été faites par voie intramusculaire à 4 semaines d'intervalle. L'infection d'épreuve était faite en injectant 2.105 hématies infectées avec Plasmodium cynomolgi 4 semaines après la dernière injection.La protection a été évaluée en déterminant les parasitémies journalières chez tous les animaux en examinant les parasitémies avec giemsa. Les parasitémies ont été classées comme négatives uniquement après comptage de 400 champs de frottis. Les parasitémies sont exprimées en pourcentage d'hématies parasitées.
Les Figures 6A-6F sont illustratives des résultats obtenus. Dans chacune d'elles apparaissent les parasitémies (exprimées en pourcentages d'hématies parasitées sur l'axe des ordonnées à l'échelle logarithmique) observées chez les animaux d'épreuve en fonction des temps après l'infection (en jours sur les axes des abscisses).
Les résultats concernent:
dans la figure 6A; des animaux contrôles non vaccinés
la figure 6B concerne des animaux qui avaient reçu une solution
saline contenant en outre l'adjuvant de Freund
la figure 6C est une superposition des figures 6A et 6B, dans le but de
faire apparaître les résultats relatifs résultant de l'administration de
l'adjuvant de Freund aux animaux (les variations ne sont évidemment
pas significatives),
la figure 6D fournit les résultats obtenus à l'issue d'une vaccination
avec la p42,
la figure 6E concerne des animaux vaccinés avec la seule p19
enfin, la figure 6F concerne les animaux vaccinés avec un mélange de
p19 et p42.
La p42 induit certes un certain niveau de protection. Mais comme en témoignent les figures 6E et 6F la protection conférée par la p19 recombinante selon l'invention est considérablement améliorée.
On peut formuler l'hypothèse que l'amélioration de la protection résulte d'un clivage secondaire de la p42 qui s'accompagne du dévoilement de cystéine libre qui forme, par la suite, des ponts disulfure intermoléculaires donnant lieu à des multimères du p19 très caractéristiques de cette forme dans les protéines recombinantes des trois espèces testées.
Essai de vaccination avec une p19 recombinante de Plasmodium falciparum chez le singe écureuil.
Des singes élevés en captivité ont été injectés avec 1 ml d'inoculum par voie intramusculaire 2 fois à 4 semaines d'intervalle comme suit : (1)4 animaux injectés avec 50 pg de PfMSPîpî9 soluble en présence d'adjuvant de Freund comme suit: lère injection 1:1 FCA/FIA; 2ème injection 1:4 FCA/FIA; et mélangés par la suite 1:1 avec l'antigène en
PBS; (2) 4 animaux injectés avec 50 pg de PfMSPipî9 soluble en présence de 10 mg d'alun; (3) 4 animaux injectés avec environ 50 pg de PfMSP1p19 ancré GPl reconstitués en liposomes composés 1:1 en molarité de cholestérol et phosphatidyl choline. Les animaux ont été saignés 17 jours après la deuxième injection.
Les globules rouges provenants d'un singe écureuil avec 30% de parasitémie due à P. falciparum (avec des formes mûres en majorité) ont été lavés en PBS et le culot était dilué 8 fois en présence de 2% SDS et 2% dithiothreitol et chauffé à 95" avant d'être chargé sur un gel de polyacryiamide de 7.5% (gel de séparation) et 4% (gel de stacking) (haut du gel). Après transfère en nitrocellulose l'analyse par immunoblot (immunoempreinte) a été fait avec des antisera comme suit: (1) pool d'antisera des 4 singes vaccinés avec PfMSP1p19 soluble en adjuvant de
Freund dilué au vingtième; (2) pool d'antisera des 4 singes vaccinés avec PfMSPlplS soluble en adjuvant alun dilué au vingtième; (3) pool d'antisera des 4 singes vaccinés avec PfMSP1p19 ancré en liposomes dilué au vingtième; (4) I'anticorps monoclonal, qui réagit avec un épitope linéaire de PfMSP1p19, à 50 Cig/ml ; (5) pool d'antisera Si190 provenant d'un vingtaine de singes infectés à répétition par P. falciparum et devenus réfractaires à toute infection ultérieure de P. falciparum, dilué au cinq centième; (6) pool d'antisera des singes naïfs (n'ayant jamais été exposés à P. falciparum) dilué au vingtième.
Les résultats montrent que les 3 pools d'antisera des singes vaccinés avec le PfMSP1p19 réagissent de façon importante et spécifique avec des complexes de très haut poids moléculaire (se trouvant de façon diffuse dans le gel de stacking) et présents dans des extraits de parasite contenant davantage de formes mûres. Ces résultats confortent l'hypothèse de la présence d'une agrégation spécifique du MSP1p19 in vivo comportant des épitopes qui sont reproduits dans les molécules recombinantes PfMSP1p19 synthétisées dans le système baculovirus, en particulier celles en forme d'oligomère.
L'invention concerne naturellement d'autres applications, par exemple celles exposées ci-après en rapport avec certains des exemples, lesquels ne présentent aucun caractère limitatif.
ThéraPeutique
Les molécules recombinantes selon l'invention peuvent être utilisées pour produire des anticorps spécifiques éventuellement utiiisables par transfert passif dans un but de thérapeutique adaptée au paludisme sévère dû à P. falciparum avec risque de mortalité.
Diagnostic
Les molécules recombinantes selon l'invention, dérivées de baculovirus peuvent et ont été utilisées pour produire des anticoprs monoclonaux spécifiques murins. Ces anticorps, en combinaison avec des antisera polyclonaux anti p42 provenant d'une autre espèce telle que le lapin ou la chèvre, peuvent être à la base d'un test de diagnostic semiquantitatif pour le paludisme et capable de distinguer entre un paludisme dû à P. falciparum, qui peut être mortel, et un paludisme dû à P. vivax, qui n'est généralement pas mortel. Le principe de ce test serait de piéger et quantifier toute molécule de MSP1 contenant la partie p42 dans le sang.
Dans ce cadre, les avantages des p42 recombinantes, et en particulier des p42 recombinantes partiellement délétées, sont les suivants:
(i) elles sont à la fois bien conservées au sein d'une même espèce et suffisamment divergente entre des espèces différentes pour permettre de produire facilement des réactifs spécifiques d'espèce, dans des conditions faisant en sorte que peuvent être produits des anticorps dérivés de Plasmodiums différents, notamment contre P.falciparum et P. vivax qui ne donnent pas lieu à des réactions croisées;
(ii) puisque les molécules recombinantes p42 dérivées de baculovirus semblent reproduire davantage la structure native des protéines natives correspondantes, les anticorps produits contre ces protéines seraient bien adaptés à un usage diagnostique.
Les microorganismes identifiés ci-dessous ont été déposés suivant la règle 6.1. du Traité de Budapest à la date du 01 février 1996, sous les numéros suivants:
Références d'identification Numéros d'enregistrement
PvMSP1 p1 9A I - 1659
PvMSP1 p1 9S I - 1660
PfMSPI pI 9A I - 1661
PfMSPlplSS I - 1662
PcMSP1p19S 1-1663
L'invention concerne également l'utilisation de ces anticorps, alors de préférence préalablement fixés sur un support solide (par exemple pour chromatographie d'affinité), pour la purification de peptides du type p19 initialement contenus dans un mélange.
La purification fait alors intervenir une mise en contact de ce mélange avec l'anticorps, la dissociation du complexe antigène-anticorps et la récupération du peptide de type p19 purifié.
Lorsqu'il est dit dans les revendications qui suivent que la p42 est délétée d'une partie ou de parties les moins bien conservées de la région III, il s'agit de préférence de régions ayant au moins 10 acides aminés et dont le degré de conservation dans P. vivax, P. cynomolgi et P. falciparum est inférieur à 70% (moins de sept acides aminés identiques sur 10, lorsqu'ils sont mis en alignement.
Les anticorps polyclonaux et monoclonaux de la présente invention présentés comme reconnaissant les p42, sont de préférence ceux qui reconnaissent plus spécifiquement des régions autres que la région IV, à l'exclusion de la région IV elle-même. De préférence ils reconnaissent la région I de la p42.
L'invention concerne également les hybridomes sécréteurs d'anticorps spécifiques reconnaissant sélectivement la p42 d'une protéine
MSP-1 de la forme mérozoïte d'un parasite du type Plasmodium infectieux pour l'homme autre que Plasmodium vivax et ne reconnaît pas
Plasmodium vivax.
En particulier, ces hybridomes sécrètent des anticorps qui ne reconnaissent pas la p42 de Plasmodium vivax ou qui reconnaissent spécifiquement la p42 de Plasmodium falciparum.
L'invention concerne également un hybridome caractérisé en ce qu'il produit un anticorps monoclonal qui reconnaît spécifiquement la p42 de P. vivax.
REFERENCES (1) Holder, J.A. et al. (1982) Biosynthesis and processing of a
Plasmodium falciparum schizont antigen recognized by immune serum
and a monoclonal antibody . J. Exp. Med. 156 :1528-1538.
(2) Howard, R. et al. (1984) Localization of the major Plasmodium
falciparum glycoprotein on the surface of mature intracellular
trophozoïtes and schizonts . Mol. Biochem. Parasitol. 11 349-362.
(3) Pirson, P. et al. (1985) Characterization with monoclonal antibodies
of a surface antigen of Plasmodium falciparum merozoïtes . J.
Immunol. 134 1946-1951.
(4) Aley, S.B. et al. (1987) Plasmodium vivax: Exoerythrocytic schizonts
recognized by monoclonal antibodies against blood-stage schizonts .
Exp. Parasitol. 64. 188-194.
(5) Holder, A.A. (1988) The precursor to major merozoïte surface
antigen: structure and role in immunity . Prog. Allergy 41: 72-97.
(6) Cooper, J.A. (1993) Merozoite surface antigen-1 of Plasmodium .
Parasitol. Today 9 50-54.
(7) Holder, A.A., et al. (1987) Processing of the precursor to the major
merozoïte antigens of Plasmodium falciparum Parasitology 94: 199
208.
(8) Lyon, J.A. et al. (1986) Epitope map and processing scheme for the
195 000-dalton surface glycoprotein of Plasmodium falciparum
merozoïtes deduced from cloned overlapping segments of the gene .
Proc. Natal Acad. Sci. USA 83. 2989-2993.
(9) Biackman M.J. et al. (1992) Secondary processing of the
Plasmodium falciparum merozoite surface protein-1 (MSP1) by
calcium-dependent membrane-bound serine protease: shedding of
MSP133 as a noncovalently associated complex with other fragments of
the MSOP1 . Mol. Biochem. Parasite(. 50 307-316.
(10) Haldar, K., et al. (1985) Acylation of a Plasmodium falciparum
merozoite surface antigen via sn-1,2-diacyl glycerol. . J. Biol. Chem.
260 : 49694974.
(11) Braun Breton, C. et al. (1990) Glycolipid anchorage of Plasmodium
falciparum surface antigens . Res. Immunol. 141 743-755.
(12) Kumar, S. et al. (1995) Immunogenicity and in vivo Efficacy of
Recombinant Plasmodium falciparum Merozoïte surface protein-l in
Aotus Monkeys . Molecular Medicine, Vol. 1, 3 325-332.
(14) Longacre, S. et al. (1994) Plasmodium vivax merozoite surface
protein 1 C-terminal recombinant proteins in baculovirus . Mol.
Biochem. Parasitol. 64 191-205.
(15) McBride, J.S. et al. (1987) Fragments of the polymorphic Mr 185
000 glycoprotein from the surface of isolated Plasmodium falciparum
merozoïtes form an antigenic complex . Mol. Biochem. Parasitol. 23:
71-84.
(16) Blackman, M.J. et al. (1990) A single fragment of a malaria
merozoïte surface protein remains on the parasite during red cell
invasion and is the target of invasion-inhibiting antibodies . J. Exp.
Med. 172: 379-382.
(17) Kaslow, D.C. et al. (1994) Expression and antigenicity of
plasmodium falciparum major merozoïte surface protein (MSP1,9)
variants secreted from Saccharomyces cerevisiae . Mol. biochem.
Parasitol. 63 ; 283-289.
(18) Chang, S.P., et al. (1992) A carboxyl-terminal fragment of
Plasmodium falciparum gp195 expressed by a recombinant
baculovirus induces antibodies that completely inhibit parasite
growth . J. Immunol. 149 548-555.
(19) Longacre, S. (1995) The Plasmodium cynomolgi merozoïte surface
protein 1 C-terminal sequence and its homologies with other
Plasmodium species . Moi. Biochem. Parasitol. 74 .105-111.
(20) Del Portillo H.A., et al. (1990) Primary structure of the merozcïte
surface antigen 1 of Plasmodium vu vaux reveals sequences conserved
between different Plasmodium species . Proc. Natl. Acad. Sci. USA
88: 40304034.
(21) Gibson, H.L., et al. (1992) Structure and expression of the gene for
Pv200, a major blood-stage surface antigen of Plasmodium vivax .
Mol. biochem. Parasitol. 50 : 325-334.
(22) Dissanaike, A.S., et al. (1965) Two new malaria parasites,
Plasmodium cynomolgi ceylonensis sub sp. nov. and Plasmodium
fragile sp. nov. from monkeys in Ceylon . Ceylon Journal of Medical
Science 14:1-9.
(23) Cochrane, A.H., et al. (1986) Further studies on the antigenic
diversity of the circumsporozolte proteins of the Plasmodium
cynomolgi complex. . Am. J. Trop. Med. Hyg. 35 479-487.
(24) Naotunne, T. de S., et al. (1990) Plasmodium cynomolgi: serum
mediated blocking and enhancement of infectivity to mosquitos during
infections in the natural host, Macaca sinica . Exp. Parasitol. 71,
305-313.
(25) Ihalamulla, R.L. et al. (1987) Plasmodium vivax: isolation of mature
asexual stages and gametocytes from infected human blood by
colloidal silica (Percoll) gradient centrifugation . Trans. R. Soc. Trop.
Med. Hyg. 81: 25-28.
(26) Kimura, E., et al. (1990) Genetic diversity in the major merozoite
surface antigen of Plasmodium falciparum: high prevalence of a third
polymorphic form detected in strains derived in strains derived from
malaria patients . Gene 91 57-62.
(27) Heidrich, H.-G., et al. (1989) The N-terminal amino acid sequences
of the Plasmodium falciparum (FCBI) merozoïte surface antigen of 42
and 36 kilodalton, both derived from the 185-195 kilodalton
precursor . Mol. Biochem. Parasitol. 34. 147-154.
(28) Blackman, M.J., et al. (1991) Proteolytic processing of the
Plasmodium falciparum merozoïte surface protein-l produces a
membrane-bound fragment containing two epidermal growth factor
like domains . Mol. Biochem. Parasitol. 49 : 29-34.
(29) Adams, J.M. et al. (1992) A family of erythrocyte binding proteins of
malaria parasites . Proc. Natl. Acad. Sci, 89:7085-7089.
(30) Sim B.K.L. (1995) EBA-175: An erythfocyte-binding ligand of
Plasmodium falciparum . Parasitology Today, vol.ll, n 6:213-217.
(31) Sim B.K.L. (1994) Receptor and ligand domains for invasion of
erythrocytes by Plasmodium falciparum . Science, 264:1941-1944.
(32) Davies, A. et al. (1993), Biochem J. 295 (Pt3) 889-896. Expression
of the glycosylphosphatidylinositol-linked complement-inhibiting
protein CD59 antigen in insect ceils using a baculovirus vector .
(33) Haziot A. et al. (1994) J. Immunol. 152 5868. Recombinant soluble
CD14 Inhibits LPS-lnduced Tumor Necrosis Factor & Production by
Cells in Whole Blood .
(34) Chang, S.P. et al., (1988) Plasmodium falciparum: gene structure
and hydropathy profile of the major merozoite surface antigen (gp195)
of the Uganda-Palo Alto isolate. Exp. Parasitol. 67:1-il.
(35) Holder, A.S. et al. (1985) Primary structure of the precursor to the
three major surface antigens of Plasmodium falciparum merozoites,
Nature 317: 270-273.

Claims (33)

REVENDICATIONS
1. Protéine recombinante
Figure img00330001
dont la séquence polypeptidique constitutive essentielle est celle
soit d'un fragment C-terminal de 42 kilodaltons (p42 > de la protéine 1 de
surface (protéine MSP-I) de la forme mérozoïte d'un parasite du type
Plasmodium et infectieux pour l'Homme, et dont ont été délétées la
région Il et, le cas échéant, une ou des parties de la région III, en
particulier les parties les moins bien conservées
soit d'une partie de ce fragment dès lors qu'elle est apte aussi à inhiber
une parasitémie normalement induite in vivo par le parasite
correspondant;;
soit d'un peptide capable d'induire une réponse immunologique de type
cellulaire et/ou humorale équivalente à celle produite par ce fragment
p42 ou à la susdite partie de ce fragment, et cette protéine recombinante comportant le cas échéant des épitopes conformationnels instables en milieu réducteur et constituant la majorité des épitopes reconnus par des antisérums humains formés contre le
Plasmodium correspondant.
2. Protéine recombinante selon la revendication 1, caractérisée en ce que sa région qui correspond à celle du fragment p19 normalement inclus dans la p42, est elle-même partiellement délétée, cette région comprenant au moins l'une des deux régions EGF normalement contenues dans cette p19.
3. Protéine recombinante selon la revendication 2, caractérisée en ce que le poids moléculaire de cette partie de fragment p19 est comprise entre 10 et 25 kDa notamment entre 10 et 15 kDa.
4. Protéine recombinante selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce qu'elle comporte également un groupe glycosylphosphatidylinositol (GPI) du type de ceux qui permettent un ancrage du fragment p19 dont la séquence est normalement comprise dans celle de la p42 à l'hôte cellulaire, notamment une cellule eucaryote, préférentiellement une cellule d'insecte infectable par un baculovirus, dans lequel ladite protéine recombinante est exprimée.
5. Protéine recombinante selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce qu'elle est dépourvue de la partie
C-terminale extrême hydrophobe qui intervient dans l'induction de l'ancrage de cette protéine recombinante à la membrane cellulaire de l'hôte dans lequel elle est exprimée, notamment dans une cellule eucaryote, préférentiellement une cellule d'insecte infectable par un baculovirus.
6. Protéine recombinante selon la revendication 5, caractérisée en ce qu'elle est hydrosoluble.
7. Protéine recombinante selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisée en ce qu'elle contient la séquence partiellement délétée susdite de la p42 de la protéine MSP-1 de
Plasmodium falciparum ou ladite partie du fragment correspondant.
8. Protéine recombinante selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée en ce qu'elle contient la séquence partiellement délétée susdite de la p42 de la protéine MSP-1 de
Plasmodium cynomolgi ou ladite partie du fragment correspondant.
9. Protéine recombinante selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée en ce qu'elle contient la séquence partiellement délétée susdite de la p42 de la protéine MSP-1 de
Plasmodium vivax ou ladite partie du fragment correspondant.
10. Protéine recombinante selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisée en ce qu'elle est conjuguée à une molécule porteuse utilisable pour la production de vaccins.
11. Composition vaccinante contre un parasite du type
Plasmodium infectieux pour l'homme, contenant à titre de principe actif la protéine recombinante selon l'une quelconque des revendications 1 à 10.
12. Anticorps spécifique reconnaissant sélectivement la p42 d'une protéine MSP-1 de la forme mérozoïte d'un parasite du type
Plasmodium infectieux pour l'homme autre que Plasmodium vivax et ne reconnait pas Plasmodium vivax.
13. Anticorps spécifique selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'il ne reconnaît pas Plasmodium vivax.
14. Anticorps spécifique selon la revendication 12, caractérisé en que qu'il reconnait spécifiquement la p42 de P.falciparum.
15. Anticorps spécifique selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'il reconnaît spécifiquement la p42 de P.vivax.
16. Procédé de diagnostic différentiel permettant de distinguer entre une infection parasitaire due à P. v/vax, d'une part, et une infection parasitaire due à un autre plasmodium, d'autre part, caractérisé par les mises en contact d'un prélèvement biologique infecté par un plasmodium avec un anticorps selon la revendication 15, d'une part, et avec un anticorps selon la revendication 13 ou 14, d'autre part, et la détection selon le cas, de la production ou non d'une réaction immunologique.
17. Vecteur modifié du type baculovirus recombinant contenant sous le contrôle d'un promoteur contenu dans ce vecteur et susceptible d'être reconnu par des cellules transfectables par ce vecteur, une première séquence nucléotidique codant pour un peptide signal exploitable par un système baculovirus, caractérisé par une deuxième séquence en aval de la première, également sous le contrôle de ce promoteur et dont au moins une partie code pour la séquence peptidique
soit d'un fragment peptidique C-terminal de 42 kilodaltons (p42) de la
protéine 1 de surface (protéine MSP-1) de la forme mérozoïte d'un
parasite du type Plasmodium, infectieux pour l'homme, et dont, le cas
échéant, ont été délétées la région Il et, le cas échéant aussi, une ou
des parties de la région III, en particulier les parties les moins bien
conservées de celles-ci
soit d'une partie de ce fragment peptidique dès lors que le produit
d'expression de la deuxième séquence dans un système baculovirus est
apte aussi à inhiber une parasitémie normalement induite in vivo par le
parasite correspondant
soit d'un peptide capable d'induire une réponse immunologique de type
cellulaire et/ou humorale équivalente à celle produite par ce fragment
peptidique p42 ou à la susdite partie de ce fragment, et ladite séquence nucléotidique ayant en outre une teneur en G et C comprise entre 40 et 60%, de préférence d'au moins 50% de la totalité des nucléotides dont elle est constituée.
18. Vecteur modifié selon la revendication 17, caractérisé en ce que la susdite deuxième séquence polypeptidique est conforme à celle définie dans l'une quelconque des revendications 2 à 9.
19. Vecteur modifié selon la revendication 17, caractérisé en ce que la deuxième séquence nucléotidique est une séquence synthétique.
20. Vecteur modifié selon l'une quelconque des revendications 17 à 19, caractérisé en ce que la première séquence nucléotidique code pour un peptide signal issu de Plasmodium vivax et normalement associé à la protéine MSP-1 de ce Plasmodium.
21. Vecteur modifié selon l'une quelconque des revendications 17 à 20, caractérisé en ce que la deuxième séquence nucléotidique est dépourvue à son extrémité 3' terminale de la séquence d'extrémité Cterminale hydrophobe qui est Impliquée dans l'induction de l'ancrage de cette protéine recombinante à la membrane cellulaire de l'hôte dans lequel elle est exprimée, notamment dans une cellule d'insecte infectable par un baculovirus.
22. Vecteur modifié selon l'une quelconque des revendications 17 à 21, caractérisé en ce qu'il consiste en un baculovirus modifié.
23. Organisme, notamment cellule d'insecte du type Sf9, transfectable et transfecté par le vecteur modifié selon l'une quelconque des revendications 17 à 21.
24. ADN synthétique contenant une première séquence nucléotidique dont au moins une partie code pour la séquence peptidique:
soit d'un fragment peptidique C-terminal de 42 kilodaltons (p42) de la
protéine 1 de surface (protéine MSP-1) de la forme mérozoïte
Plasmodium falciparum, infectieux pour l'homme et dont, le cas échéant,
ont été délétées la région Il et, le cas échéant aussi, une ou des parties
de la région III, en particulier les parties les moins bien conservées de celles-ci
soit d'une partie de ce fragment peptidique dès lors que le produit
d'expression de cet ADN dans un système baculovirus est apte à inhiber
une parasitémie normalement induite in vivo par le parasite
correspondant;;
soit d'un peptide capable d'induire une réponse immunologique de type
cellulaire et/ou humorale équivalente à celle produite par ce fragment
peptidique p42 ou à la susdite partie de ce fragment, et ladite séquence nucléotidique ayant en outre une teneur en nucléotides G et C comprise entre 40 et 60%, de préférence d'au moins 50% du total des nucléotides dont est constitué le susdit ADN synthétique.
25. ADN synthétique selon la revendication 24, caractérisé en ce que sa première séquence nucléotidique est dépourvue à son extrémité 3' terminale de la séquence codant pour la région d'extrémité C-terminale hydrophobe normalement Impliquée dans l'induction de l'ancrage de la protéine p19 dont la séquence est incluse dans celle de la p42, à la membrane cellulaire de l'hôte dans lequel elle est exprimée, notamment dans une cellule d'insecte infectable par un baculovirus.
26. ADN synthétique selon la revendication 240u la revendication 25, caractérisé en ce que la première séquence nucléotidique est précédée d'une séquence nucléotidique signal codant pour un peptide signal normalement associé à une protéine MSP-1 de Plasmodium, homologue ou hétérologue vis-à-vis de la séquence principale.
27. ADN synthétique selon la revendication 26, caractérisé en ce que la séquence signal est issue de P. vivax.
28. ADN synthétique selon l'une quelconque des revendications 24 à 27, caractérisé en ce que la susdite première séquence nucléotidique inclut une séquence 3'-terminale codant pour une région polypeptidique d'ancrage à la membrane cellulaire, ladite région d'ancrage se fixant sur la protéine recombinante exprimée à la surface de la membrane de l'hôte cellulaire transformé avec un vecteur contenant ledit ADN synthétique, ladite séquence 3' étant homologue à celle de la séquence nucléotidique principale, ou hétérologue, notamment celle issue de P.vivax.
29. ADN synthétique selon la revendication 28, caractérisé en ce que la séquence 3'-terminale est issue de P. vivax.
30. ADN synthétique selon l'une quelconque des revendications 24 à 28, caractérisé en qu'il est dépourvu de ladite séquence 3'-terminale.
31. Hybridome sécréteur d'anticorps monoclonaux ayant les spécificités des anticorps selon l'une quelconque des revendications 12 à 15.
32. Procédé de séparation d'un peptide p42 de spécificité donnée à partir d'un mélange de peptides, caractérisé par la mise en contact de ce mélange de peptides avec un anticorps correspondant, conforme à l'une quelconque des revendications 12 à 15, de préférence préalablement fixé sur un support insoluble, par la dissociation ultérieure du composé antigène-anticorps formé et par la récupération du peptide p42 purifié.
33. Utilisation de la protéine selon l'une quelconque des revendications 1 à 9 pour la préparation d'une composition immunogène susceptible d'induire une réponse immune contre une infection à
Plasmodium.
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Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0885012A4 (fr) * 1996-01-29 2001-09-05 Univ Georgetown Vaccins contre la malaria faisant appel a un peptide de msa1
GB9616351D0 (en) * 1996-08-02 1996-09-11 Smithkline Beecham Biolog Vaccine composition
BR9812945A (pt) 1997-10-20 2000-08-08 Genzyme Transgenics Corp Sequências de ácido nucléico modificadas e processos para aumentar os nìveis de mrna e expressão de sistemas celulares
US20030100106A1 (en) * 2000-02-08 2003-05-29 Chang Sandra P. Baculovirus produced Plasmodium falciparum vaccine
KR100373918B1 (ko) * 2000-02-17 2003-02-26 주식회사 엘지생명과학 말라리아의 효소 면역학적 측정방법 및 이에 사용되는진단시약
US7306806B2 (en) 2001-01-26 2007-12-11 United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Recombinant P. falciparum merozoite protein-142 vaccine
CA2462946C (fr) 2001-01-26 2014-04-29 Jeffrey A. Lyon Vaccin a base de proteine 142 de merozoite p.falciparum de recom binaison
US7595191B2 (en) 2001-01-26 2009-09-29 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Isolation and purification of P. falciparum merozoite protein-142 vaccine
WO2002074802A2 (fr) * 2001-03-19 2002-09-26 Walter Reed Army Institute Of Research Vaccin recombinant p. vivax a base de proteine-1 p42 de merozoite
AU2003228441A1 (en) 2002-04-01 2003-10-20 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army, Walter Reed Army Institute Of Research (Wrair) Recombinant p. falciparum merozoite protein-142 vaccine
WO2015055772A1 (fr) 2013-10-16 2015-04-23 Shirley Longacre Combinaison de protéines de surface de mérozoïte de plasmodium msp4 et 1 et utilisations correspondantes

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DK79985A (da) * 1984-02-22 1985-08-23 Wellcome Found Kloning af dna for protozoelle antigener og dets anvendelse

Also Published As

Publication number Publication date
AU1884297A (en) 1997-09-02
CA2245727A1 (fr) 1997-08-21
KR20000065265A (ko) 2000-11-06
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WO1997030159A2 (fr) 1997-08-21
EP0880589A2 (fr) 1998-12-02
JP2000506381A (ja) 2000-05-30

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