ES2552371T3

ES2552371T3 - Biomarcadores sensibles, eficaces e inocuos, para la inhibición de la Proproteína Convertasa Subtilisina/Kexina de tipo 9 (PCSK9)

Info

Publication number: ES2552371T3
Application number: ES12169517.5T
Authority: ES
Inventors: Laaksonen Reijo
Original assignee: Zora Biosciences Oy
Current assignee: Zora Biosciences Oy
Priority date: 2012-05-25
Filing date: 2012-05-25
Publication date: 2015-11-27
Anticipated expiration: 2032-05-25
Also published as: CA2875419A1; EP2667197A1; EP2667197B1; JP2015526696A; US20160146842A2; CN104508488A; US20150160247A1; WO2013175016A1

Abstract

Un método para determinar en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9, que comprende determinar, en una muestra de dicho sujeto, la concentración de Cer(d18:1/16:0), en el que una concentración disminuida en dicha muestra, cuando se compara con un control, indica alta eficacia de dicho tratamiento.

Description

DESCRIPCIÓN

Biomarcadores sensibles, eficaces e inocuos, para la inhibición de la Proproteína Convertasa Subtilisina/Kexina de tipo 9 (PCSK9)

Campo técnico

La presente invención se refiere a métodos que implican la medición de los niveles de Cer(d18:1/16:01 para medir la eficacia de fármacos y la especificidad de tratamientos que se dirigen a la Proproteína Convertasa Subtilisina/Kexina 10 de tipo 9 (PCSK9). La invención es aplicable, entre otras cosas, para determinar si un tratamiento que se dirige a PCSK9 está funcionando eficazmente y si un compuesto que se dirige a PCSK9 presenta efectos distintos a los esperados. La invención también es útil para evaluar el cumplimiento, por parte de los pacientes, a tratamientos que se dirigen a PCSK9. Los métodos incluyen analizar niveles biomarcadores de Cerfd18:1/16:01 de una muestra biológica y compararlos con los de una muestra de control.

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Antecedentes de la invención

El colesterol de lipoprotefna de baja densidad (LDL) en plasma es un factor de riesgo establecido para enfermedades vasculares coronarias. Generalmente, los niveles altos de colesterol en sangre se tratan con 20 estatlnas. Sin embargo, Incluso dosis altas de estatlnas podrían no ser suficientemente eficaces como para disminuir satisfactoriamente los niveles de colesterol si los pacientes tienen valores Iniciales altos de colesterol en plasma o presentan resistencia al tratamiento con estatlnas. Además, dosis altas de estatlnas podrían aumentar el riesgo de producir efectos secundarlos. Por consiguiente, se requieren nuevas Intervenciones que reduzcan el colesterol para prevenir y tratar la enfermedad coronaria vascular (ECV).

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En Kaddurah-Daouk T. et.al., 2010 (Metabolomics. 6: 191-201) y en el documento WO 2007/127192 A2 se identifican firmas de lípidos en sujetos que respondieron o que no respondieron significativamente al tratamiento con estatinas.

30 Los documentos EP 2 385 374 A1 y WO 2011/161062 A2 desvelan marcadores lipidíeos, marcadores de proporción lípido:lípido y marcadores de proporción de concentración lípido:clínlco con la finalidad de identificara un sujeto que está en riesgo de desarrollar, o que padece, ateroesclerosis o enfermedad cardiovascular (ECV), de evaluar la eficacia de un tratamiento para la aterosclerosis o la ECV, y de seleccionar un tratamiento apropiado para la aterosclerosis o la ECV.

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El documento WO 2011/0627243 A1 desvela biomarcadores para el diagnóstico de esclerosis múltiple en un sujeto.

Estudios genéticos realizados en seres humanos indican que la PCSK9 desempeña una función principal en la regulación de los niveles plasmáticos de LDL (Abifadel, M. et al. 2003. Mutations in PCSK9 cause autosomal 40 dominant hipercolesterolemia. Nat Genet 34: 154-156). La PCSK9 pertenece a una familia de serlna proteasas, la proproteína convertasa (Seidah, N.G. et al. 2003. The secretory proprotein convertase neural apoptosis-regulated conversate I (NARC-1): liver regeneraron and neuronal differentiation. Proc Nati Acad Sci USA 100: 928-933). Sin embargo, con independencia de su actividad enzimática, ésta disminuye el número de receptores de LDL (LDL-R) expresados en la superficie del hepatocito uniéndose al LDL-R extracelular y facilitando su degradación lisosomal, 45 inhibiendo de este modo el reciclado de LDL-R de nuevo en la superficie celular (Horton, J. D. ef al. 2009. PCSK9: a convertase that coordinates LDL catabolism. J. Lipid Res 50 Suppl: S172-177). Los individuos con mutaciones de pérdida de función en el gen de PCSK9 tienen niveles de colesterol LDL en plasma reducidos y están protegidos de ECV (Cohén, J. et al 2005. Low LDL cholesterol in individuáis of African descent resulting from frequent nonsense mutations in PCSK9. Nat Genet 37: 161-165; Abifadel, M. et al 2003. Mutations in PCSK9 cause autosomal dominant 50 hypercholesterolemia. Nat Genet 34: 154-156). Por otro lado, se ha demostrado que las mutaciones de ganancia de función en el gen de PCSK9 están asociadas con niveles de LDL en plasma y ECV prematura (Abifadel, M. et al. 2003). Además, expresando en ratones la mutación D374Y de ganancia de función de PCSK9 de ser humano, se ha descubierto que la actividad reducida del LDL-R podría no ser la única causa de hipercolesterolemia ya que se ha demostrado que los ratones con la mutación D374Y secretan más lipoproteínas ricas en triacilglicerol en la 55 circulación, al compararlo con los ratones de tipo de silvestre (no mutados) ((Herbert, B. ef al 2010. Increased secretion of lipoproteins in transgenic mice expressing human D374Y PCSK9 under physiological Genetic controL Arterioscler Thromb Vasc Biol30: 1333-1339). Estas observaciones posicionan a la PCSK9 como una posible diana en el tratamiento de hipercolesterolemia.

60 En el ratón, la PCSK9 se expresa predominantemente en el hígado, en el intestino delgado y en el riñón (Zaid, A. et al 2008. Proprotein convertase subtilisin/kexin type 9 (PCSK9): hepatocyte-specific low-density lipoprotein receptor degradation and critical role in mouse liver regeneraron. Hepatology 48: 646-654). Se ha demostrado que la genosupresión completa de PCSK9 en ratón produce una reducción de aproximadamente un 40 % en los niveles de colesterol de LDL en la circulación (Rashid, S. et aL 2005. Decreased plasma cholesterol and hypersensitivity to 65 statins in mice lacking Pcsk9. Proc Nati Acad Sci USA 102: 5374-5379). Se demostró que la administración de

estatinas, inhibidores de la HMG-coenzima A reductasa, disminuye los niveles de LDL incluso más, indicando el potencial del uso simultáneo de las estatinas y de la inhibición de la PCSK9 en el tratamiento de ECV. Además, se ha demostrado que la PCSK9 desempeña una función en la regeneración hepática de ratón (Zaid, A. et al. 2008. Proprotein convertase subtilisin/kexin type 9 (PCSK9): hepatocyte-specific low-density lipoprotein receptor 5 degradaron and critical role in mouse liver regeneration. Hepatology 48: 646-654). Por lo tanto, la inhibición completa de la función de PCSK9 podría aumentar el riesgo de complicaciones e incluso muerte después producirse una lesión hepática. Por otro lado, en el mismo estudio, en ratones genosuprimidos heterocigotos PCSK9, se demostró que una disminución del 50% en la actividad de PCSK9 no es perjudicial y no produce alteración en la regeneración hepática.

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Recientemente, en seres humanos, se ha demostrado que las estatinas y otros fármacos hipolipemiantes elevan los niveles de la proteína PCSK9 en suero a través de la activación de la protefna-2 de unión al elemento regulador de esteróles (SREBP-2) (Careskey, H. E. et al. 2008. Atorvastatin increases human serum levels of proprotein convertase subtilisin/kexin type 9. J Lipid Res 49: 394-398 y Konrad, R. J. et al. 2011. Effects of currently prescribed 15 LDL-C-lowering drugs on PCSK9 and implications for the next generation of LDL-C- lowering agents. Lipids Health Dis 10: 38). Estas observaciones indican que para obtener el resultado del tratamiento más eficaz se necesitaría la inhibición de PCSK9 en combinación con estatinas u otras medicaciones reductoras de LDL

Dado que la PCSK9 es una posible diana para el tratamiento de la dislipidemia, el inventor investigó el efecto del 20 déficit de PCSK9 en lipidomas plasmáticos en ratones genosuprimidos heterocigotos y homocigotos PCSK9 usando aplicaciones de espectrometría de masas cuyo objetivo es identificar cambios en la homeostasis de los lipidos a nivel de lipidos moleculares. Dichos cambios se investigaron también en seres humanos aprovechando el conocimiento existente acerca de la funcionalidad de variantes genéticas conocidas en el gen de PCSK9. Brevemente, el perfil lipidómico de sujetos portadores de una mutación de pérdida de función conocida se compara 25 con el perfil de sujetos portadores del alelo principal. Dicha lectura de eficacia especifica será de utilidad al mismo tiempo que se desarrollan y se seleccionan nuevos compuestos que actúan sobre PCSK9 y se controla la eficacia clínica de los inhibidores de PCSK9. Una lectura de eficacia exacta y típica también puede usarse para controlar efectos ¡nespecíficos no deseados distintos a los esperados, ya que las desviaciones del perfil de eficacia predeterminado pueden ser indicativas de dichos efectos farmacológicos potencialmente dañinos inespecíficos.

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Steinberg D, et al., 2009 (PNAS. 106(24): 9546-9547) desvelan que un bloqueo de la unión de PCSK9 con el receptor de LDL puede disminuir los niveles de LDL en plasma.

De acuerdo con la presente invención, el lípido Ceríd18:1/16:01 puede analizarse mediante diversas técnicas. En el 35 contexto de la presente invención, la lipidómica basada en espectrometría de masas de ionización por electropulverización es la tecnología preferida. La calidad y especificidad superiores de los métodos de análisis globales (en inglés ““shotgun”) y dirigidos cumplirán con los patrones reguladores estrictos, tales como los principios de las buenas prácticas de laboratorio (GLP, Good Laboratory Practice), cuando se constituyen en el entorno adecuado.

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En comparación con la técnica anterior, los biomarcadores identificados en el presente documento pueden analizarse a partir de cantidades de muestras incluso más pequeñas, debido tanto a la alta sensibilidad como especificidad de la tecnología.

45 La presente invención identifica a Cer(d18:1/16:0) como un biomarcador indicativo de la eficacia y especificidad de fármacos inhibidores de PCSK9. El biomarcador Cer(d 18:1/16:0) facilitará la misión de garantizar que el individuo recibe el fármaco inhibidor de PCSK9 correcto al momento y a la dosis correctos, abriendo de este modo este campo terapéutico hacia otra manera de personalizar medicamentos y/o regímenes de tratamiento más generalmente aplicados. El biomarcador Cer(d18:1/16:0) también puede usarse por creadores de nuevos agentes 50 farmacológicos contra PCSK9 para seleccionar compuestos principales específicos entre agentes candidatos.

Sumario de la invención

La presente invención proporciona, entre otras cosas, Cer(d 18:1/16:0) como un biomarcador indicativo de inhibición 55 de PCSK9. Esto se basa en datos de animales genosuprimidos (knock-out) y en datos de traducción de seres humanos de mutaciones de pérdida de función que muestran una composición de lipidos equivalente analizada con plataformas lipidómicas. Los lipidos identificados pueden usarse para controlar el grado de inhibición de PCSK9 y su especificidad. Esto ofrece una nueva y mejorada forma de estudiar la inhibición de PCSK9, que normalmente se basa en las lecturas de colesterol LDL. Sin embargo, la medición del colesterol LDL no proporciona ninguna 60 información acerca de si la inhibición de PCSK9 también reduce los lipidos que son beneficiosos y esenciales, lo que pueden ocasionar que se produzcan efectos secundarios no deseados. La cuestión es también saber si se puedan producir efectos perjudiciales en el paciente si el nivel de colesterol LDL se reduce demasiado. El biomarcador Cer(d18:1/16:0) proporciona un mayor comprensión acerca de la eficacia de la inhibición de PCSK9 y su especificidad.

Al ser la PCSK9 una posible diana para el tratamiento de la dislipidemia, el inventor investigó el efecto del déficit de PCSK9 en lipidomas plasmáticos en ratones genosuprimidos heterocigotos y homocigotos PCSK9, usando aplicaciones de espectrometría de masas, con el objetivo de identificar cambios en la homeostasis de los lípidos a nivel de lípidos moleculares. Se generaron perfiles lipidíeos de ratones de tipo silvestre, genosuprimidos 5 heterocigotos y homocigotos PCSK9, a los que se proporcionó pienso regular o pienso Western, para investigar el efecto del déficit de PCSK9 y la diferencia en los biomarcadores lipidíeos causada por una dieta rica en grasas en ratones que carecían de un alelo de PCSK9 o de los dos. Dichos cambios se identificaron también en seres humanos aprovechando el conocimiento existente acerca de la funcionalidad de las variantes genéticas conocidas del gen de PCSK9. Brevemente, los perfiles lipidómicos de muestras de sujetos portadores de una mutación de 10 pérdida de función conocida se compararon con los perfiles lipidómicos de muestras de sujetos portadores del alelo principal. Dicha lectura de eficacia específica será de utilidad al mismo tiempo que se desarrollan y seleccionan nuevos compuestos que actúan sobre PCSK9 y se controle la eficacia clínica de los inhibidores de PCSK9. Una lectura de eficacia exacta y típica también puede usarse para controlar efectos distintos no deseados, ya que las desviaciones del perfil de eficacia predeterminado pueden ser indicativas de dichos efectos farmacológicos 15 potencialmente dañinos inespecíficos.

La inhibición natural de PCSK9 por la mutación genética de pérdida de función produce un cambio lipídico molecular favorable en el plasma que puede explicar, al menos en parte, qué portadores de esta mutación tienen menor riesgo de enfermedad arterial coronaria (EAC). Por tanto, el biomarcador Cer(d18:1/16:0), puede usarse como un indicador 20 específico para cualquier terapia que se dirija a PCSK9 ya que las desviaciones de los cambios que se producen por la pérdida de función de PCSK9 podrían deberse a efectos inespecíficos no deseados distintos a los esperados. La Figura 1 muestra que la inhibición de PCSK9 disminuye los lípidos que aumentan el riesgo de EAC. Adicionalmente, la inhibición de PCSK9 se comparó con los efectos hipolipemiantes del tratamiento con estatinas. Los fármacos de la clase de las estatinas reducen los lípidos en plasma mediante la regulación positiva del receptor de LDL hepático y 25 por tanto aumentan la eliminación de lípidos, mediada por el receptor de LDL, de la circulación. La inhibición de PCSK9 también aumenta la expresión de los receptores de LDL hepáticos y produce hipolipidemia debido a un aumento de la eliminación de lípidos, mediada por el receptor de LDL, de la circulación. Por lo tanto, en teoría, estas dos modalidades de tratamiento deberían producir cambios de lípidos en plasma similares. La Figura 1 muestra que los cambios de lípidos específicos producidos por la pérdida de función de PCSK9 pueden usarse como lecturas de 30 eficacia y especificidad para terapias que se dirigen a PCSK9. En este sentido, la Figura 2 muestra que las estatinas afectan al nivel de muchos biomarcadores lipidíeos de un modo distinto que la pérdida de función de PCSK9, lo que indica que tienen un efecto más amplio, menos específico, sobre la reducción de los lípidos plasmáticos que un inhibidor/silenciador de PCSK9 específico.

35 La invención se refiere a métodos que implican niveles para medir la eficacia y especificidad del fármaco de tratamientos que se dirigen a PCSK9. La invención es aplicable entre otras cosas para determinar si un tratamiento que se dirige a PCSK9 está funcionando eficazmente y para determinar si un compuesto que se dirige a PSCK9 tiene efectos distintos a los deseados. Además, puede usarse para evaluar el cumplimiento por parte de los pacientes sobre los tratamientos que se dirigen a PSCK9. Los métodos incluyen analizar niveles de una muestra 40 biológica y compararlos con los de un control.

En un aspecto de la presente invención, se proporciona un método para determinar en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9, que comprende determinar en una muestra de dicho sujeto la concentración de Cer(d18:1/16:0), en el que, cuando se compara con una muestra de control, una concentración 45 disminuida en dicha muestra indica una alta eficacia de dicho tratamiento.

En otro aspecto de la presente invención, se proporciona un método para predecir en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un inhibidor/silenciador PCSK9 que comprende determinar en una muestra de dicho sujeto la concentración de Cer(d18:1/16:0), en el que, cuando se compara con una muestra de control, una concentración 50 aumentada en dicha muestra indica que dicho tratamiento será eficaz.

En un aspecto adicional de la presente invención, se proporciona un método para determinar el cumplimiento del sujeto del tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9, que comprende determinar en una muestra de dicho sujeto la concentración de Cer(d18:11/16:0), en el que, cuando se compara con una muestra de control, una 55 concentración disminuida en dicha muestra indica un buen cumplimiento del tratamiento.

En otro aspecto adicional de la presente invención, se proporciona un método para identificar compuestos que son útiles como inhibidores/silenciadores de PCSK9, que comprende determinar la concentración de Cer(d18:1/16:0) en una muestra de dicho sujeto que se somete a tratamiento con dicho compuesto, en el que, cuando se compara con 60 una muestra de control, una concentración disminuida en dicha muestra, es indicativa de utilidad como un fármaco hipolipemiante.

En el presente documento también se describen marcadores lipidómicos, agentes, tales como anticuerpos y kits para analizar funciones de nuevos compuestos farmacológicos, así como para detectar la eficacia y especificidad de 65 los fármacos en pacientes con tratamientos que se dirigen a PCSK9.

Los métodos de acuerdo con la invención pueden comprender, por ejemplo, las etapas de: a) proporcionar una muestra biológica de un sujeto o de un animal de ensayo que se esté tratando, que vaya a tratarse, o que se haya tratado, con un fármaco inhibidor de PCSK9; b) determinar la concentración de Cer(d18:1/16:0) de acuerdo con la 5 invención en dicha muestra y c) comparar dicha concentración de lípidos determinada con la concentración de lípidos correspondiente en una muestra de control.

El marcador Cer(d18:1/16:0) de la presente invención permite efectuar una detección sensible y específica de la eficacia y especificidad de los fármacos inhibidores de PCSK9. Esto facilitará la mejora en cuanto al cuidado del 10 paciente y el éxito en cuanto al resultado del tratamiento, la reducción de desarrollo y padecimiento de síntomas de toxicidad y la obtención de una reducción de morbilidad/mortalidad asociada con efectos distintos a los esperados inducidos por los fármacos. Por tanto, el marcador Cer(d18:1/16:0) reivindicado en el presente documento permite ajustar individualmente la intervención farmacológica con respecto a los pacientes tratados, o a tratar con fármacos inhibidores de PCSK9. Además, la invención es aplicable a experimentos en animales en los que también se 15 ensayan los compuestos inhibidores de PCSK9. La invención permitirá hacer una valoración con mejor especificidad de nuevos medicamentos hipolipemiantes.

En el presente documento se describe un método para determinar en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un fármaco hipolipemiante, comprendiendo dicho método determinar, en una muestra de dicho sujeto una o más 20 concentraciones de uno o más lípidos, en el que (a) una o más concentraciones disminuidas o aumentadas en dicha muestra, cuando se comparan con una muestra de control, indican alta eficacia de dicho tratamiento, en el que uno o más lípidos cuya concentración disminuye cuando se compara con la muestra de control, se seleccionan entre los lípidos con concentración disminuida indicados en las Tablas 2 a 5, y en el que uno o más lípidos, cuya concentración aumenta cuando se compara con la muestra de control, se seleccionan entre los lípidos con 25 concentración aumentada indicados en las Tablas 2 a 5.

En el presente documento también se describe un método para determinar en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un fármaco hipolipemiante, comprendiendo dicho método determinaren una muestra de dicho sujeto una o más proporciones de concentración lípido-lípido, en el que (a) una o más proporciones de concentración Ifpido-lfpido 30 disminuidas o aumentadas en dicha muestra, cuando se comparan con una muestra de control, indican alta eficacia de dicho tratamiento, en el que una o más proporciones de concentración lípido-lípido cuya concentración disminuye cuando se comparan con la muestra de control, se seleccionan entre las proporciones de concentración lípido-lípido con concentración disminuida indicadas en las Tablas 2 a 5, y en el que una o más proporciones de concentración lípido-lípido cuya concentración aumenta cuando se compara con la muestra de control, se seleccionan entre las 35 proporciones de concentración lípido-lípido aumentada indicadas en las Tablas 2 a 5.

En el presente documento también se describe un método para predecir en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un fármaco hipolipemiante (es decir, en un sujeto que ya ha recibido un tratamiento hipolipemiante), comprendiendo dicho método determinar en una muestra de dicho sujeto una o más concentraciones de uno o más 40 lípidos, en el que (a) una o más concentraciones aumentadas o disminuidas en dicha muestra, cuando se comparan con una muestra de control, indican que dicho tratamiento será eficaz, en el que uno o más lípidos, cuya concentración aumenta cuando se compara con la muestra de control, se seleccionan entre los lípidos con concentración disminuida indicados en las Tablas 2 a 5; y en el que uno o más lípidos, cuya concentración disminuye cuando se compara con la muestra de control, se seleccionan entre los lípidos con concentración 45 aumentada indicados en las Tablas 2 a 5.

En el presente documento también se describe un método para predecir en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un fármaco hipolipemiante (es decir, en un sujeto que ya ha recibido un tratamiento hipolipemiante), comprendiendo dicho método determinar en una muestra de dicho sujeto una o más proporciones de concentración 50 lípido-lípido, en el que (a) la proporción de concentración lípido-lípido aumentada o disminuida en dicha muestra, cuando se compara con una muestra de control, indica que dicho tratamiento será eficaz, en el que una o más proporciones de concentración lípido-lípido cuya concentración aumenta cuando se compara con la muestra de control se seleccionan entre las proporciones de concentración lípido-lípido disminuidas indicadas en las Tablas 2 a 5; y en el que una o más proporciones de concentración lípido-lípido cuya concentración disminuye cuando se 55 compara con la muestra de control, se seleccionan entre las proporciones de concentración lípido-lípido aumentadas indicadas en las Tablas 2 a 5.

El método anterior es útil para sujetos que aún no han recibido dicho tratamiento con un fármaco hipolipemiante.

60 En el presente documento también se describe un método para determinar el cumplimiento de un sujeto con un tratamiento farmacológico hipolipemiante, comprendiendo dicho método determinar en una muestra de dicho sujeto una o más concentraciones de uno o más lípidos, en el que (a) una o más concentraciones aumentadas o disminuidas en dicha muestra, cuando se comparan con una muestra de control, indican buen cumplimiento del tratamiento, en el que uno o más lípidos, cuya concentración disminuye cuando se compara con una muestra de 65 control, se seleccionan entre los lípidos cuya concentración disminuye indicados en las Tablas 2 a 5; y en el que uno

o más lípidos cuya concentración aumenta cuando se compara con una muestra de control se seleccionan entre los llpldos cuya concentración aumenta indicados en las Tablas 2 a 5.

En el presente documento también se describe un método para determinar el cumplimiento de un sujeto con un 5 tratamiento farmacológico hipolipemiante, comprendiendo dicho método determinar en una muestra de dicho sujeto una o más proporciones de concentración lípido-lípido, en el que (a) una o más proporciones de concentración Ifpido-lfpido disminuida o aumentada en dicha muestra, cuando se comparan con una muestra de control, indican buen cumplimiento de tratamiento, en el que una o más proporciones de concentración lípido-lípido, cuya concentración disminuye cuando se comparan con una muestra de control, se seleccionan entre las proporciones de 10 concentración lípido-lípido disminuidas indicadas en las Tablas 2 a 5; y en el que una o más proporciones de concentración lípido-lípido, cuya concentración aumenta se compara con una muestra de control, se seleccionan de las proporciones de concentración lípido-lípido aumentadas indicadas en las Tablas 2 a 5.

En el presente documento también se describe un método para identificar compuestos que son útiles como 15 fármacos hipolipemiantes o para el tratamiento de enfermedad cardiovascular y sus complicaciones, comprendiendo dicho método determinar en una muestra de dicho sujeto que se somete a tratamiento con dicho compuesto, una o más concentraciones de uno o más lípidos, en el que (a) una o más concentraciones disminuidas o aumentadas en dicha muestra, cuando se compara con una muestra de control, indica la utilidad como fármaco hipolipemiante, en el que uno o más lípidos, cuya concentración disminuye cuando se compara con la muestra de control, se seleccionan 20 entre los lípidos cuya concentración disminuye indicados en las Tablas 2 a 5, y en el que uno o más lípidos, cuya concentración aumenta cuando compara con la muestra de control, se seleccionan entre los lípidos cuya concentración aumenta indicados en las Tablas 2 a 5.

En el presente documento también se describe un método para identificar compuestos que son útiles como 25 fármacos hipolipemiantes o para el tratamiento de enfermedad cardiovascular y sus complicaciones, comprendiendo dicho método determinar en una muestra de dicho sujeto una o más proporciones de concentración lípido-lípido, en el que (a) una o más concentraciones disminuidas o aumentadas en dicha muestra, cuando se comparan con una muestra de control, indican la utilidad como fármaco hipolipemiante, en el que una o más proporciones de concentración lípido-lípido, cuya concentración disminuye cuando se comparan con una muestra de control, se 30 seleccionan entre las proporciones de concentración lípido-lípido cuya concentración disminuye indicadas en las Tablas 2 a 5; y en el que una o más proporciones de concentración lípido-lípido, cuya concentración aumenta cuando se compara con una muestra de control, se seleccionan entre las proporciones de concentración lípido-lípido aumentadas indicadas en las Tablas 2 a 5.

35 De acuerdo con la presente invención, el fármaco hipolipemiante es un inhibidor/silenciador de PCSK9.

Los métodos de la invención pueden comprender adicionalmente medir el nivel de LDL en la circulación. Si el nivel de LDL aumenta después de la administración, esto indica que el compuesto no es útil como inhibidor/silenciador de PCSK9. A la inversa, si el nivel de LDL disminuye después de la administración, esto indica que el compuesto es útil 40 como inhibidor/silenciador de PCSK9.

Como alternativa, los métodos de la invención también pueden comprender medir la capacidad del compuesto para impedir que PCSK9 se una a receptores de LDL. Si el compuesto no impide la unión de PCSK9 a receptores de LDL después de la administración, esto indica que el compuesto no es útil como inhibidor/silenciador de PCSK9. Si el 45 compuesto impide la unión de PCSK9 a receptores de LDL después de la administración, esto indica que el compuesto es útil como inhibidor/silenciador de PCSK9.

En el presente documento también se describe un método para determinar la especificidad de un inhibidor/silenciador de PCSK9, comprendiendo dicho método comparar la concentración o concentraciones de uno 50 o más lípidos o una o más proporciones de concentración lípido-lípido, en una muestra de un sujeto, con una muestra de control, en el que dicho uno o más lípidos o una o más proporciones de concentración lípido-lípido se seleccionan entre los lípidos y proporciones de concentración lípido-lípido indicados las Tablas 2 a 5; y en el que la muestra de control es una muestra o un valor, obtenido de uno o más sujetos que tienen una mutación de pérdida de función en PCSK9.

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En una alternativa de este método, la muestra de control es una muestra o un valor obtenido de uno o más sujetos que tienen un perfil lipídico del tipo pérdida de función de PCSK9. Un perfil lipídico de tipo pérdida de función de PCSK9 puede generarse determinando la concentración o concentraciones de uno o más lípidos o proporciones de concentraciones lípido-lípido procedente de una muestra de control.

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En otra alternativa adicional de este método, la muestra de control es una muestra o un valor, obtenido de uno o más sujetos tratados con un inhibidor/silenciador de PCSK9 específico conocido.

La ausencia de una diferencia entre dicho uno o más lípidos o proporciones de concentración lípido-lípido en la 65 muestra y en la muestra de control de acuerdo con este método, indica la especificidad del tratamiento con dicho

inhibidor/silenciador de PCSK9. A la inversa, la presencia de una diferencia entre dicho uno o más lípidos o una o más proporciones de concentración lípido-lípido en la muestra y en la muestra de control, indica efectos no específicos, tal como uno o más efectos secundarios adversos, causados por dicho inhibidor/silenciador de PCSK9 o compuesto.

5

En relación con todos los aspectos y realizaciones de la invención y con lo que se describe en el presente documento, dicho sujeto, con respecto al cual se realiza la comparación, puede ser (a) un paciente que se somete a un tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9 u otro compuesto que se dirige a PCSK9; (b) un animal de ensayo que se somete a tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9 u otro compuesto que se dirige a 10 PCSK9; o (c) un paciente o un animal de ensayo que no se ha sometido y que no se está sometiendo a tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9, con otro compuesto que se dirige a PCSK9 o con un fármaco hipolipemiante que no sea un inhibidor/silenciador de PCSK9.

Para los métodos desvelados en el presente documento, para determinar la eficacia o predecir la eficacia de un 15 tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9, para determinar el cumplimiento de un sujeto con un inhibidor/silenciador de PCSK9 o para identificar compuestos que son útiles como inhibidores/silenciadores de PCSK9, el control con el cual se realiza la comparación, puede ser una muestra de control obtenida del mismo sujeto antes del tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9 o durante la interrupción de dicho tratamiento.

20 Para los fines de la presente invención, una muestra de control también puede obtenerse de un grupo de pacientes, por ejemplo, mezclando varias muestras de una población. Si se usa un grupo de pacientes, entonces se combinan diversos perfiles lipidíeos de una población y el marcador lipidómico se crea a partir de esta combinación. Para los fines de los métodos reivindicados, el nivel o la cantidad del lípido Cer(d18:1/16:0) en la muestra de un sujeto, se comparan con el nivel o con la cantidad presente en la muestra de control.

25

En una realización, el control con el que se realiza la comparación, puede ser un valor de control establecido de uno o más sujetos sanos, no previamente tratados con un inhibidor/silenciador de PCSK9. También puede ser una muestra que represente una combinación de muestras de una población de pacientes. Como alternativa, el control puede ser un valor de control establecido de uno o más sujetos sanos no sometidos a tratamiento con un 30 inhibidor/silenciador de PCSK9. Como una alternativa adicional, el control puede ser un conjunto de datos concernientes a la concentración del marcador Cer(d 18:1 /16:0), en una muestra cuando se toma de una muestra de control de uno o más sujetos que son portadores de alguna mutación de pérdida de función en el gen de PCSK9, tal como R46L (rs 11591147). Como otra alternativa, el control puede ser un valor de control establecido de uno o más sujetos en tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9 y sin síntomas o antecedentes de efectos distintos a 35 los deseados inducidos por el fármaco.

Dicha información, y por tanto el conjunto de datos correspondiente, puede haberse determinado, calculado o extrapolado previamente, o incluso puede haberse determinado, calculado o extrapolado, o también puede extraerse de la bibliografía.

40

Preferentemente, la muestra de control es sangre, plasma, suero, orina o tejido, o una fracción de lipoproteína de los mismos.

En relación con todos los aspectos y realizaciones de la invención, cualquiera de métodos comprende 45 adicionalmente determinar o evaluar el nivel de colesterol LDL en dicho sujeto o en una muestra de dicho sujeto. En una realización, el sujeto tiene niveles de colesterol LDL reducidos.

De acuerdo con los métodos de la invención, la muestra puede ser sangre, plasma sanguíneo, suero sanguíneo u orina. La muestra también puede ser una fracción de sangre, plasma sanguíneo, suero sanguíneo u orina, por 50 ejemplo, una fracción de lipoproteína. Se puede preparar una muestra de sangre, y el plasma o suero, o las fracciones de las mismas, se pueden separar de ahí usando técnicas bien conocidas para el experto en la materia. Como alternativa, tanto la muestra del sujeto como la muestra de control pueden ser también de una muestra de tejido, (por ejemplo, una biopsia de tejido) o una fracción de lipoproteína del mismo. En una alternativa adicional, la muestra puede ser cualquier célula de mamífero (por ejemplo, eritrocitos).

55

La recogida de información del marcador Cer(d18:1/16:0) de la invención y de los marcadores lipidómicos descritos en el presente documento, de la muestra del sujeto, y también de la muestra de control, puede realizarse mediante diversas técnicas analíticas y químicas de alta resolución. Particularmente, las técnicas analíticas adecuadas incluyen, pero sin limitación, espectrometría de masas y espectroscopia de resonancia magnética nuclear. De 60 hecho, cualquier técnica de alta resolución que pueda resolver lípidos individuales o clases de lípidos y proporcionar información estructural de los mismos, puede usarse para determinar el marcador lipidómicos de la muestra del sujeto y también de la muestra de control. Para los fines de los métodos de la presente invención la concentración lipídica de Cer(d18:1/16:0) se determina preferentemente usando espectrometría de masas. Sin embargo, en este sentido, son también útiles la espectroscopia de resonancia magnética nuclear, la espectroscopia de fluorescencia o 65 la ¡nterferometría de polarización dual, los métodos de separación de alto rendimiento, tales como HPLC o UPLC, un

inmunoensayo, tal como ELISA y/o el uso de una fracción de unión que pueda unirse específicamente al anallto lipídico.

Como se ha indicado anteriormente, de acuerdo con una realización alternativa o adicional de los métodos de la 5 invención, un analito lipídico en una muestra puede detectarse y/o cuantificarse combinando el analito con una fracción de unión que pueda unirse específicamente al analito. La fracción de unión puede incluir, por ejemplo, un miembro de un par ligando-receptor, es decir, un par de moléculas que pueden tener una interacción de unión específica. La fracción de unión también puede incluir, por ejemplo, un miembro de un par de unión específico, tal como el par anticuerpo-antígeno, enzima-sustrato, ligandos basados en ácidos nucleicos, otros ligandos proteicos u 10 otros pares de unión específicos conocidos en la materia.

En una realización particularmente preferida, el marcador Cer(d18:1/16:0) de la presente invención se determina con espectrometría de masas (MS, mass spectrometry), donde el instrumento MS se acopla opcionalmente a métodos de infusión directa y a métodos de separación de alto rendimiento, tales como HPLC o UPLC. Cuando el perfil 15 lipídico recogido se compara con un control, en los marcadores lipidómicos recogidos se usa la cantidad de lípidos individuales o de clases de lípidos.

En el presente documento también se describe un inhibidor/silenciador PCSK9 para su uso en terapia, como tratamiento de hipercolesterolemia o para reducir el riesgo de, o tratar, una enfermedad cardiovascular, tal como 20 ateroesclerosis, enfermedad arterial coronaria, infarto de miocardio agudo y/o ictus. Como se describe en el presente documento, dicho inhibidor/silenciador de PCSK9 puede disminuir en un sujeto la concentración de uno o más lípidos seleccionados entre los lípidos con concentración disminuida indicados en las Tablas 2 a 5. Del mismo modo se describe un método de tratamiento correspondiente.

25 En el presente documento también se describe que dicho inhibidor/silenciador de PCSK9 puede aumentar en un sujeto uno o más lípidos seleccionados entre los lípidos con concentración aumentada indicados en las Tablas 2 a

5.

En el presente documento también se describe que dicho inhibidor/silenciador de PCSK9 puede disminuir una o más 30 proporciones de concentración lípido-lípido seleccionadas de las proporciones de concentración lípido-lípido con concentración disminuida indicada en las Tablas 2 a 5.

En el presente documento también se describe que dicho inhibidor/silenciador de PCSK9 puede aumentar una o más proporciones de concentración lípido-lípido seleccionadas de las proporciones de concentración lípido-lípido 35 con concentración aumentada indicada en las Tablas 2 a 5.

Para los fines de la presente invención, un inhibidor/silenciador de PCSK9 puede seleccionarse de (a) un anticuerpo contra PCSK9, (b) un inhibidor farmacológico de PCSK9, (c) una molécula pequeña que inhibe la interacción del receptor de LDL con PCSK9; (d) un péptido que imita el dominio de interacción del receptor de LDL con PCSK9, (e) 40 un ARNip específico para PCSK9 y/o (f) un oligonucleótido antisentido específico para PCSK9. Particularmente, para los fines de la presente invención, como fármaco hipolipemiante se prefiere un anticuerpo contra PCSK9, o un inhibidor/silenciador de PCSK9.

En el presente documento también se describe el uso de un anticuerpo contra uno cualquiera de los lípidos o contra 45 uno cualquiera de los lípidos en las proporciones de concentración lípido-lípido que se definen en las Tablas 2 a 5 para predecir o determinar la eficacia de un tratamiento con un fármaco hipolipemiante. Del mismo modo se describe un método de tratamiento correspondiente.

En el presente documento también se describe el uso de un anticuerpo contra uno cualquiera de los lípidos o contra 50 uno cualquiera de los lípidos en las proporciones de concentración lípido-lípido que se definen en las Tablas 2 a 5 para prevenir o tratar uno o más efectos secundarios adversos debidos al tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9 en un sujeto. Del mismo modo también se describe un método de tratamiento correspondiente.

Para los fines de la presente invención, un efecto secundario adverso debido a, u ocasionado por, un tratamiento 55 con un inhibidor/silenciador de PCSK9 puede ser toxicidad hepática.

En el presente documento también se describe un kit para realizar los métodos descritos y/o reivindicados en el mismo, comprendiendo el kit reactivos y compuestos de referencia. Los compuestos de referencia pueden ser, pero sin limitación, uno o más de los siguientes compuestos: (a) uno o más patrones lipidíeos seleccionados de los lípidos 60 en las tablas 2 a 5, (b) uno o más marcadores de control (por ejemplo, un lípido o lípidos, preferentemente un lípido correspondiente a cualquiera de los marcadores lipidómicos descritos y/o reivindicados en el presente documento, o uno o más lípidos distintos, por ejemplo, PC total, u otra molécula, por ejemplo, una proteína); (c) controles positivos y/o negativos; (d) patrones internos y/o externos; (e) controles de línea de calibración; (f) un anticuerpo u otra fracción de unión que pueda unirse a uno cualquiera de los lípidos que se definen en las Tablas 2 a 5. Los reactivos son una o más soluciones, disolventes y/o tampones, útiles para realizar dichos métodos o usos.

En el presente documento también se describe un kit para realizar los métodos descritos y/o reivindicados en el mismo, comprendiendo el kit reactivos y compuestos de referencia. Los compuestos de referencia pueden ser, pero sin limitación, uno o más de los siguientes compuestos: (a) uno o más patrones lipidíeos seleccionados de los lipidos definidos en las Tablas 2 a 5; y opcionalmente uno o más compuestos de referencia adicionales seleccionados de: 5 (b) uno o más marcadores de control (por ejemplo, uno o más lipidos, preferentemente un lipido correspondiente a cualquiera de los marcadores lipidómicos descritos y/o reivindicados en el presente documento, u uno o más lipidos distintos (por ejemplo, PC total, u otra molécula, por ejemplo, una proteína); (c) controles positivos y/o negativos; (d) patrones internos y/o externos, que pueden o no modificarse, marcarse químicamente o moléculas que se producen endógenamente en seres humanos; (e) controles de linea de calibración; (f) un agente, opcionalmente un 10 anticuerpo, que pueda unirse a uno cualquiera de los lipidos indicados en las Tablas 2 a 5 y (g) uno o más reactivos para realizar dichos métodos o usos.

Los kits pueden comprender, por ejemplo, las siguientes combinaciones de los constituyentes indicados anteriormente: (a) y (b), y opcionalmente (g); (a) y (c), y opcionalmente (g); (a) y (d), y opcionalmente (g); (a) y (e), y 15 opcionalmente (g); (a) y (f), y opcionalmente (g); (a), (b) y (c), y opcionalmente (g); (a), (b) y (d), y opcionalmente (g);

(a), (b) y (e), y opcionalmente (g); (a), (b) y (f), y opcionalmente (g); (a), (c) y (d), y opcionalmente (g); (a), (c) y (e), y opcionalmente (g); (a), (c) y (f), y opcionalmente (g); (a), (d) y (e), y opcionalmente (g); (a), (d) y (f), y opcionalmente (g); o (a), (e) y (f), y opcionalmente (g);

20 Uno o más marcadores de control del kit reivindicado pueden ser una o más moléculas que se miden regularmente en un entorno clínico. Por ejemplo, uno o más marcadores de control pueden ser apoA, apoB, albúmina o PC total, o una combinación de los mismos.

El kit puede usarse para cualquiera de los fines descritos y/o reivindicados en el presente documento, en el que una 25 o más concentraciones de lipidos, una o más proporciones de lipidos o una o más combinaciones de lipidos de las mismas en una muestra de un sujeto se determinan usando espectrometría de masas. La muestra puede someterse a purificación y/o a una o más etapas de preparación previa de muestras antes del análisis de espectrometría de masas. La etapa de purificación puede ser, pero sin limitación, cromatografía, por ejemplo, cromatografía liquida de alto rendimiento (HPLC, high performance liquiq chromatography), cromatografía líquida de ultra resolución (UPLC, 30 ultra performance liquiq chromatography) y/o cromatografía liquida de ultra alta resolución (UHPLC, ultra high performance liquiq chromatography). La etapa de preparación previa de muestras puede ser, pero sin limitación, extracción en fase sólida (SPE, solid-phase extraction), derivatización, extracción liquido-liquido y/o fraccionamiento de lipoproteínas. Dicha determinación por espectrometría de masas puede realizarse por espectrometría de masas en tándem.

35

También puede usarse el kit, en el que una o más concentraciones de lipidos, una o más proporciones de lipidos o una o más combinaciones de lipidos de las mismas, en una muestra de un sujeto, se determinan usando un ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA).

40 En el presente documento también se describe un kit que puede usarse en un inmunoensayo para realizar los métodos de la invención. Un kit ejemplar comprende, pero sin limitación: (a) uno o más anticuerpos que puedan unirse a uno cualquiera de los lipidos indicados en las Tablas 2 a 5; y opcionalmente uno o más de los siguientes constituyentes:

45 (b) un sustrato específico para dicha enzima;

(c) una solución de terminación;

(d) una placa de ensayo cubierta con uno o más anticuerpos que puedan unirse a cualquiera de los lipidos que se indican en las Tablas 2 a 5;

(e) uno o más patrones y/o uno o más patrones de línea de calibración; y 50 (f) tampones y/o reactivos necesarios para realizar el ensayo.

Otro kit descrito en el presente documento comprende, pero sin limitación:

(a) uno o más anticuerpos que puedan unirse a uno cualquiera de los lipidos que se indican en las Tablas 2 a 5, 55 conjugado o conjugados con una enzima; y opcionalmente uno o más de los siguientes constituyentes:

(b) un sustrato específico para dicha enzima;

(c) una solución de terminación;

60 (e) uno o más patrones y/o uno o más patrones de linea de calibración; y

(f) tampones y/o reactivos necesarios para realizar el ensayo.

Un kit adicional descrito en el presente documento comprende, pero sin limitación:

65 (a) uno cualquiera de uno o más de los lipidos indicados en las Tablas 2 a 5, conjugado, o conjugados, con una

enzima; y opcionalmente uno o más de los siguientes constituyentes:

(b) un sustrato específico para dicha enzima;

(c) una solución de terminación;

5 (d) una placa de ensayo cubierta con uno o más anticuerpos que puedan unirse a cualquiera de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5;

(e) uno o más patrones y/o uno o más patrones de línea de calibración; y

(f) tampones y/o reactivos necesarios para realizar el ensayo.

10 Un kit adicional descrito en el presente documento comprende, pero sin limitación:

(a) uno o más anticuerpos que puedan unirse a uno cualquiera de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5, conjugado, o conjugados, con un marcador detectable, por ejemplo, biotina; y opcionalmente uno o más de los siguientes constituyentes:

15

(b) un sustrato específico para dicha enzima;

(c) una solución de terminación;

(d) una placa de ensayo cubierta con uno o más anticuerpos que puedan unirse a cualquiera de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5;

20 (e) uno o más patrones y/o uno o más patrones de línea de calibración; y (f) tampones y/o reactivos necesarios para realizar el ensayo.

Otro kit adicional descrito en el presente documento comprende, sin limitación:

25 (a) uno cualquiera de uno o más de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5, conjugado, o conjugados, con un marcador detectable; y opcionalmente uno o más de los siguientes constituyentes:

(b) un sustrato específico para dicha enzima;

(c) una solución de terminación;

30 (d) una placa de ensayo cubierta con uno o más anticuerpos que puedan unirse a cualquiera de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5;

(e) uno o más patrones y/o uno o más patrones de línea de calibración; y

(f) tampones y/o reactivos necesarios para realizar el ensayo.

35 Los kits descritos anteriormente pueden comprender, por ejemplo, las siguientes combinaciones de los constituyentes indicados anteriormente: (a) y (b); (a) y (c); (a) y (d); (a) y (e); (a) y (f); (a), (b) y (c); (a), (b) y (d); (a), (b) y (e); (a), (b) y (f); (a), (c) y (d); (a), (c) y (e); (a), (c) y (f); (a), (d) y (e); (a), (d) y (f); (a), (e) y (f); (a), (b), (c) y (d);

(a) , (c), (d) y (e); (a), (d), (e) y (f); (a), (b), (c), (d) y (e); o (a), (c), (d), (e) y (f).

40 El kit descrito puede comprender adicionalmente un anticuerpo que se conjuga con una enzima y que puede unirse al anticuerpo del punto (a) de las realizaciones anteriores.

El kit descrito puede comprender adicionalmente un anticuerpo que se conjuga con un marcador detectable; por ejemplo, biotina o un marcador fluorescente y que puede unirse al anticuerpo del punto (a) de las realizaciones 45 anteriores.

El kit descrito puede comprender adicionalmente una enzima conjugada con una proteína, que es específica para el marcador detectable en el anticuerpo del punto (a) de las realizaciones anteriores, por ejemplo, fosfatasa alcalina conjugada con estreptavidina.

50

En el presente documento también se describe el uso de los kits descritos para realizar los métodos descritos y reivindicados en el presente documento. El kit que se usa en este sentido puede ser un kit para un ensayo ELISA competitivo, y puede comprender

55 (a) uno o más anticuerpos o antisuero contra uno cualquiera de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5;

(b) uno cualquiera de uno o más de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5, conjugado, o conjugados, con una enzima;

(c) uno o más patrones y/o uno o más patrones de línea de calibración;

(d) una placa de ensayo cubierta con un anticuerpo que pueda unirse con un anticuerpo, por ejemplo, un anticuerpo 60 que pueda unirse a una Ig de conejo, una Ig de cabra, una Ig de ratón, una Ig de cobaya, una Ig de rata o a una Ig

de oveja;

(e) un sustrato específico para dicha enzima;

(f) una solución de terminación; y

(g) uno o más reactivos para realizar dichos métodos o usos.

En un ejemplo, uno o más patrones y/o uno o más patrones de línea de calibración son patrones lipidióos seleccionados de los lípidos definidos en uno cualquiera de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5.

Un uso descrito de este kit para un ensayo ELISA competitivo es el siguiente:

5

1. Cubrir los pocilios de una placa de ensayo con un anticuerpo que pueda unirse a un anticuerpo de conejo.

2. Añadir las muestras a los pocilios, y opcionalmente (a) añadir uno o más patrones de línea de calibración a los pocilios restantes.

10 3. Añadir una solución de uno cualquiera de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5, conjugados con fosfatasa alcalina, seguido de un anticuerpo policlonal de conejo que pueda unirse a uno cualquiera de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5.

4. Durante la incubación de la muestra el anticuerpo policlonal de conejo se une de una manera competitiva a uno 15 cualquiera de los lípidos que se indican en las Tablas 2 a 5, en las muestras o conjugados.

5. Lavar la placa dejando tan solo en las muestras o en el conjugado el lípido unido.

6. Añadir una solución de sustrato específica, que produzca una reacción de color cuando se cataliza a través de la 20 fosfatasa alcalina en el conjugado lipídico.

7. Detener la reacción mediante una solución de detención específica y leer el revelado del color en cada pocilio a una longitud de luz apropiada, por ejemplo, a 450 nm.

25 8. En un ensayo ELISA competitivo, la Intensidad de color es Indirectamente proporcional a la cantidad de lípido existente en la muestra.

Todos los kits descritos en el presente documento pueden Ir acompañados de instrucciones para el uso de los mismos (i) para determinar en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un fármaco hipolipemiante; (ii) para 30 predecir en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un fármaco hipolipemiante; (iii) para determinar el cumplimiento del tratamiento, por parte del sujeto, con un fármaco hipolipemiante, (iv) para identificar compuestos que son útiles como fármacos hipolipemiantes o para el tratamiento de enfermedad cardiovascular y sus complicaciones, o (v) para determinar la especificidad de un inhibidor/silenciador de PCSK9, todo ello como se define en el presente documento.

35

La determinación de la concentración de Cer(d18:1/16:0) de acuerdo con la invención o de una o más concentraciones lipídicas o de una o más proporciones lipídicas descritas en el presente documento se realiza típicamente usando un ensayo. La tecnología y la manera en que fue aplicada en el contexto de la enseñanza inventiva presentada en el presente documento se distancian de los esfuerzos similares en el sector, entre otras 40 cosas, debido a los siguientes criterios. En la preparación de la muestra, las muestras se controlan estrictamente y se tratan de manera idéntica para evitar artefactos potenciales que pudieran aparecer por una incorrecta manipulación. En relación con la presente invención, las muestras se descongelaron cuidadosamente en hielo y después se sometieron directamente a una extracción de lípidos automatizada hecha a medida que actualmente posee una precisión muy alta en la manipulación de líquidos, minimizando de esta manera posibles errores. 45 Además, los ciclos de congelación y descongelación de la muestra se controlaron estrictamente ya que esto puede afectar considerablemente a la estabilidad de los lípidos. La extracción de lípidos automatizada se basa en el método de Folch y colaboradores (Folch J, et al: A simple method forthe isolation and purificaron of total lipids from animal tissues. J Biol Chem 1957, 226 (1):497-509) que utiliza cloroformo y metanol. Este método es preferido cuando se va a extraer una amplia serie de clases de lípidos, desde polares a no polares, con recuperaciones 50 óptimas, previniendo de esta manera la pérdida de especies de lípidos. Los lípidos no endógenos específicos de la clase de lípidos se usaron, cuando fue posible, como patrón interno para conseguir una mayor precisión en la identificación (minimizando los positivos falsos) y la cuantificación de especies lipídicas moleculares controladas. De esta manera, se determinaron cantidades absolutas o semiabsolutas de lípidos moleculares endógenos con la mayor precisión que se puede conseguir con las tecnologías de hoy en día. Los lípidos endógenos y sus respectivos 55 patrones se controlaron a nivel de lípido molecular. De esta manera, no solo se minimizaron identificaciones de positivos falsos, sino que los lípidos moleculares se pudieron determinar y cuantificar de manera precisa. La calidad del análisis se controló estrictamente usando un nuevo sistema de control de calidad. Esto se controló principalmente mediante patrones internos (Pl), patrones externos (PE), relaciones PI/PE múltiples, y muestras de control instrumental. Controlando de manera estricta estos componentes, los valores atípicos técnicos y biológicos 60 se identificaron fácilmente y se rechazaron del análisis adicional. Para obtener una mayor precisión en sensibilidad, selectividad y cuantificación, se usaron, para cada lípido molecular diferente, plataformas dirigidas. Algunos lípidos se analizaron mejor usando cromatografía líquida de alta resolución (HPLC), cromatografía líquida de ultra resolución (FIPLC) o cromatografía líquida de ultra alta resolución (UFIPLC) combinada con espectrometría de masas basada en la monitorización de reacción múltiple (MRM) mientras que otros se analizan mejor mediante 65 infusión directa en combinación con la espectrometría de masas basada en técnicas de escaneo del ion precursor y

pérdida neutral.

Breve descripción de las Figuras 5 Figura 1.

Porcentaje promedio de cambios en las concentraciones de lípidos entre pacientes que murieron debido a complicaciones por ECV (enfermedad cardiovascular) frente a pacientes con EAC (enfermedad de las arterias coronarias) estable (A), transportadores de la mutación de pérdida de función R46L frente a control (B), pacientes 10 después del tratamiento con atorvastatina frente a los mismos pacientes antes del tratamiento (C), y pacientes después del tratamiento con simvastatina frente a los mismos pacientes antes del tratamiento (D). Cer, ceramida; LacCer, lactosilceramida.

Figura 2.

15

Cambios de lípidos causados por inhibición específica de PCSK9 (los pacientes tienen un gen de pérdida de función PCSK9). También se muestran los cambios de lípidos causados por los fármacos hipolipemiantes, atorvastatina y simvastatina).

20 Figura 3.

Diferencias de porcentaje en las concentraciones promedio de lípidos moleculares en plasma de ratones PCSK9'/_ (A) y PCSK9+/' (B) con dieta de pienso regular o con dieta Western (C y D, respectivamente) en comparación con el tipo silvestre (TS). La significación es conforme a la prueba de la t de Student. Cada símbolo corresponde a una 25 molécula de lípido de una determinada categoría medida por aplicación MS.

Figura 4.

Diferencias de porcentaje en las concentraciones promedio de lípidos moleculares en plasma de pacientes varones 30 con EAC que llevan la variante R46L en el gen de PCSK9 en comparación con pacientes con EAC sin la mutación R46L. La significación es conforme a la prueba de la t de Student. Cada punto corresponde a una molécula de lípido medida por aplicación MS o mediante un kit clínico.

Descripción detallada de la invención 35

Definiciones:

Algunas abreviaturas usadas en el presente documento tienen el siguiente significado: ADR (Adverse Drug Reaction) es reacción adversa a un medicamento, MS (Mass Spectrometry) es espectrometría de masas, HPLC 40 (High Performance Liquiq Chromatography) es cromatografía líquida de alta resolución y UPLC (Ultra Performance Liquiq Chromatography) es cromatografía líquida de ultra alta resolución.

La enfermedad coronaria vascular / enfermedad cardiovascular (ECV) tiene su significado general en la técnica y se usa para clasificar numerosas afecciones que afectan al corazón, a las válvulas cardiacas, a la sangre y a la 45 vasculatura del organismo. Las enfermedades cardiovasculares incluyen disfunción endotelial, enfermedad de las arterias coronarias, angina de pecho, infarto de miocardio, aterosclerosis, insuficiente cardiaca congestiva, hipertensión, enfermedad cerebrovascular, ictus, ataques isquémicos transitorios, trombosis de vena profunda, enfermedad arterial periférica, cardiomiopatía, arritmia, estenosis aórtica y aneurisma. Dichas enfermedades frecuentemente implican aterosclerosis. En una realización preferida de la invención, la enfermedad cardiovascular 50 es una enfermedad cardiovascular asociada con aterosclerosis.

EAC es enfermedad de las arterias coronarias, IMA es infarto de miocardio agudo, SCS es síndrome coronario agudo, CAC es calcificación de las arterias coronarias, TCI es transporte de colesterol inverso, LDL es lipoproteína de baja densidad, HDL es lipoproteína de alta densidad, LDL-C es colesterol de lipoproteína de baja densidad, HDL- 55 C es colesterol de lipoproteína de alta densidad, ApoA es Apolipoproteína A, ApoB es Apolipoproteína B, ApoC es apollpoproteína C, MS es espectrometría de masas, HPLC es cromatografía líquida de alta resolución y UPLC es cromatografía líquida de ultra alta resolución.

Para los fines de la presente Invención, un fármaco o una medicación hipolipemiante es un inhibidor o un silenciador 60 de PCSK9.

De la manera en la que se usa en el presente documento, un sujeto incluye todos los mamíferos, Incluyendo sin limitación, seres humanos, pero también primates no humanos, perros, gatos, caballos, ovejas, cabras, vacas, conejos, y roedores (por ejemplo, ratones y ratas). Un sujeto particularmente preferido de acuerdo con la presente 65 invención es un ser humano.

De la manera en la que usa en el presente documento un sujeto con alto riesgo es típicamente un sujeto, particularmente un ser humano, con una dosis de fármaco alta y/o con múltiples medicaciones (que causan el riesgo de que se produzcan interacciones farmacológicas), que tiene una enfermedad que puede afectar a la eficacia del fármaco o aumentar el riesgo de producirse acontecimientos adversos (por ejemplo, hipotiroidismo, insuficiencia 5 renal o enfermedad hepática).

De la manera en la que usa en el presente documento, una muestra es cualquier muestra biológica obtenida de un sujeto o de un grupo o de una población de sujetos. Para los fines de la presente invención, la muestra biológica puede ser sangre entera, suero sanguíneo o plasma sanguíneo, prefiriéndose el suero sanguíneo y el plasma 10 sanguíneo. Tomar una muestra de sangre de un paciente es parte de la práctica clínica normal. La muestra de sangre se puede tomar con respecto a, por ejemplo, medición de niveles de colesterol en los pacientes. Se puede preparar la muestra de sangre recogida y se puede separar el suero o plasma mediante técnicas bien conocidas por el experto en la materia. Las muestras de sangre venosa se pueden recoger de los pacientes usando una aguja y tubos de plástico BD Vacutainer® o tubos de plástico Vacutainer® Plus (los tubos de plástico BD Vacutainer® SST™ 15 contienen sílice por recubrimiento con pulverización y un gel polímero para la separación del suero). El suero se puede separar por centrifugación a 1300 RCF durante 10 min a temperatura ambiente y conservar en tubos pequeños de plástico a -80°C. La muestra también puede ser una fracción de sangre entera, plasma sanguíneo o suero sanguíneo, por ejemplo, una fracción de llpoproteína. En otra realización preferida, la muestra también puede ser una muestra de tejido, por ejemplo, tejido de blopsla de músculo, u orina, o una fracción de los mismos (por 20 ejemplo, una fracción de lipoproteína).

En el presente documento, los lípldos u otras moléculas en el control con el que se realiza la comparación de acuerdo con la presente invención también reciben el nombre de marcadores de control.

25 De la manera en la que usa en el presente documento, un control puede ser una muestra de control o simplemente un valor de control. En el caso de que sea un valor de control, se apreciará que ya puede haberse determinado, calculado o extrapolado antes de iniciar los métodos de la Invención. Como alternativa, el valor de control puede determinarse, calcularse o extrapolarse después de realizar la determinación de la concentración de Cer(d18:1/16:0) de acuerdo con los métodos de la presente Invención. Por tanto, se apreciará que un valor de control adecuado de 30 acuerdo con la presente Invención bien puede ser uno que se extraiga de la bibliografía.

De la manera en la que usa en el presente documento, la referencia a una muestra de control del mismo sujeto o de un sujeto (o de otro sujeto) puede significar que la muestra de control se ha obtenido directamente de dicho sujeto. Sin embargo, como alternativa, también puede significar que se ha obtenido como resultado de un tratamiento físico 35 o químico de una muestra directamente obtenida o extraída de dicho sujeto, tal como centrifugación, fraccionamiento, digestión enzimática, precipitación y similar. Esto mismo se aplica a cualquier referencia en el presente documento con respecto a una muestra de control de uno o más sujetos, de un grupo de sujetos o de una población de sujetos.

40 Las expresiones, muestra de control de uno o más sujetos, o muestra de control de un grupo de sujetos o muestra de control de una población de sujetos, de la manera en la que se usan en el presente documento, adicionalmente implica preferentemente que la muestra de control sea representativa de dicho más de un sujeto, grupo de sujetos o población de sujetos. En este contexto, representativa significará que la concentración del lípido Cer(d18:1/16:0) en dicha muestra de control con la cual se hace la comparación en el contexto de la presente invención corresponde a 45 la concentración promedio de dicho lípido en muestras individuales correspondientes de los sujetos de dicha población o grupo. Preferentemente, la concentración del lípido en dicha muestra de control corresponde a la concentración promedio de dicho lípido en muestras individuales correspondientes de los sujetos de dicha población o grupo. Del mismo modo, cuando se hace una comparación como se describe en el presente documento, con una o más moléculas distintas, por ejemplo, con otros lípidos o proteínas, tales como PC total, o apoA, apoB o albúmina, 50 respectivamente, una muestra de control representativa es una en la que la concentración(es) de dicha molécula(s) se corresponde con la concentración(es) promedio de dicha molécula(s) en muestras individuales correspondientes de los sujetos de dicho grupo o población. En una realización preferida, una muestra de control de uno o más sujetos, una muestra de control de un grupo de sujetos o una muestra de control de una población de sujetos en el sentido de la presente invención se obtiene mezclando las mismas cantidades de muestras directamente obtenidas 55 o extraídas de los sujetos de dichos más de un sujeto, un grupo o una población, o mezclando las mismas cantidades de fracciones, constituyentes o productos de reacción (por ejemplo, productos de reacción enzimática o precipitados) de los mismos.

De la manera en la que se usa en el presente documento, una muestra de control corresponde a la muestra del 60 sujeto si esta se ha obtenido del mismo tipo de tejido biológico o fuente de la misma manera, o esencialmente de la misma manera. Por ejemplo, si la muestra del sujeto es una muestra de sangre entera, de plasma sanguíneo o de suero sanguíneo, o de una fracción de los mismos, una muestra de control correspondiente será igualmente una muestra de sangre entera, de plasma sanguíneo o de suero sanguíneo, o de una fracción de los mismos, respectivamente. Se apreciará que dicha muestra de control correspondiente incluiría muestras de sangre entera, de 65 plasma sanguíneo o de suero sanguíneo, o de fracciones de los mismos, obtenidas mezclando las muestras de

sangre entera, de plasma sanguíneo o de suero sanguíneo, o de determinadas fracciones de los mismos, de un grupo o de una población de sujetos (véanse también las explicaciones adicionales del presente documento y las reivindicaciones en lo que respecta a las muestras de control adecuadas de acuerdo con la Invención). Esto mismo se aplica, con los cambios debidos, por ejemplo, a muestras de tejido y de orina.

5

Se entenderá que la expresión “comparado con una muestra de control", del modo en que usa en el presente documento, incluye realizaciones en las que las muestras de control se analizan realmente con respecto al marcador lipidómico de interés, es decir, Cer(d18:1/16:0). Sin embargo, se apreciará, que la expresión anterior también incluye realizaciones en las que la Información correspondiente sobre dicho marcador lipidómico en dicha muestra de 10 control se extrae simplemente de la bibliografía, o se ha determinado, calculado o extrapolado previamente, o que aún debe determinarse, calcularse o extrapolarse.

Un llpido, de la manera en la que se usa en el presente documento, se define como una molécula pequeña hidrófoba o anfífila.

15

De la manera que se usa en el presente documento, los lípldos se denominan de acuerdo con la siguiente nomenclatura: CE es éster de colesterol, DAG es dlacilglicerol, TAG es trlacllglicerol, PC es fosfatidilcolina, PC O es PC ligada a alquilo, PC P es PC ligada a alquenllo, LPC es llsofosfatldllcollna, PE es fosfatidiletanolamina, PE O es PE ligada a alquilo, PE P es PE ligada a alquenllo, Pl es fosfatidilinositol, Cer es ceramida, Glc/GalCer es galactosil- 20 o glucosllceramida, LacCer es lactosilceramlda, Gb3 es Globotrlaosllceramida, SM es esfingomielina, S1P es esflngoslna-1-fosfato, SPH es esfingosina, SA1P es esfinganlna-1 -fosfato, SPA es esfinganina.

La nomenclatura X:Y indica, X el número total de átomos de carbono en las partes de ácido(s) graso(s) de la molécula, e Y es el número total de enlaces dobles en la parte(s) de ácido graso de la molécula.

25

La nomenclatura A/B indica, para una molécula de DAG y PC, los tipos A y B de fracciones de ácido graso unidas a la estructura glicerol de la molécula.

La nomenclatura (dC/A) indica, para una molécula de Cer, Gb, GlcCer, LacCer y SM, C el tipo de base de cadena 30 larga con una amida unida, A, una fracción de ácido graso.

Un “aumento”, una “disminución”, o una “diferencia” en comparación con un control, de la manera en la que usa en la realizaciones reivindicadas y/o descritas en el presente documento, es uno(a) que (I) Indica la eficacia del tratamiento con un fármaco hipolipemiante en un sujeto, (ii) predice la eficacia de un tratamiento con un fármaco 35 hipolipemiante en un sujeto, (i¡¡) indica el cumplimiento de un sujeto que está en tratamiento con un fármaco hipolipemiante, (iv) indica compuestos que son útiles como fármacos hipolipemiantes o para el tratamiento de enfermedad cardiovascular y sus complicaciones, o (v) indica especificidad de un inhibidor/silenciador de PCSK9, respectivamente. Preferentemente, se trata de un aumento, una disminución o una diferencia de al menos 5%. Más preferentemente, se trata de un aumento, una disminución o una diferencia de al menos 10%. Otros aumentos, 40 disminuciones o diferencias, preferidos en comparación con el control, de acuerdo con la invención, son aumentos, disminuciones o diferencias de al menos 15%, más preferentemente de al menos 20%, e incluso más preferentemente de al menos 25%, 50%, 75% o 100%. Asimismo los aumentos, las disminuciones o diferencias de más del 100% se prefieren de una manera particularmente preferida.

45 Para los fines de la presente invención, un inhibidor/silenciador de PCSK9 es una molécula que impide la unión de PCSK9 con el receptor de LDL, particularmente con los receptores de LDL presentes en el hígado. Como se observa al inicio del presente documento, el inhibidor/silenciador de PCSK9 es preferentemente (a) un anticuerpo contra PCSK9; (b) un inhibidor farmacológico de PCSK9; (c) una molécula pequeña que inhibe la interacción del receptor de LDL con PCSK9; (d) un péptido que ¡mita el dominio de interacción del receptor de LDL con PCSK9, (e) un ARNip 50 específico de PCSK9, particularmente un ARNm de PCSK9; o (f) un oligonucleótido antisentido específico de PCSK9, particularmente ARNm de PCSK9.

En una realización preferida, el inhibidor/silenciador de PCSK9 es un anticuerpo que impide que PCSK9 se una al receptor de LDL. Dichos anticuerpos son muy conocidos en la técnica (véanse, por ejemplo, los documentos 55 W02009/055783, W02008/063382, W02009/100297, W02008/125623 o W02009/026558) o pueden usarse adecuadamente en el contexto de la presente invención.

Del modo en que se usa en el presente documento, el término anticuerpo incluye anticuerpos monoclonales y policlonales, anticuerpos enteros, fragmentos de anticuerpo y subfragmentos de anticuerpo, que presentan unión 60 específica con dicho lípido. Por tanto, dichos anticuerpos adecuados pueden ser inmunoglobulinas enteras de cualquier clase, por ejemplo, IgG, IgM, IgA, IgD, IgE, anticuerpos quiméricos o anticuerpos híbridos con especificidades antigénicas o epitópicas duales o múltiples, o fragmentos, por ejemplo, F(ab’)2, Fab’, Fab y similares, incluyendo fragmentos híbridos y adicionalmente incluye una ¡nmunoglobulina o cualquier proteína natural, sintética o modificada por ingeniería genética, que actúe como un anticuerpo uniéndose a un antígeno específico para formar 65 un complejo. El término anticuerpo incluye fragmentos de unión a antígeno de anticuerpos (por ejemplo, anticuerpos

monocatenarios, anticuerpos de dominio variable monocatenarios, fragmentos Fab, F(ab’)2, un fragmento Fd, un fragmento Fv y fragmentos dAb) así como anticuerpos completos. Por ejemplo, pueden expresarse moléculas Fab y ensamblarse en un hospedador genéticamente transformado como E. coli. Un sistema de vector lambda está disponible por tanto, para expresar una población de fragmentos Fab con un potencial de diversidad Igual o 5 superando al del sujeto que genera el anticuerpo predecesor. Véase Huse WD, et al., Science 1989, 246: 1275-81. Dichos Fab’ se incluyen en la definición de anticuerpo. La capacidad de una molécula determinada, Incluyendo un fragmento o subfragmento de anticuerpo, para actuar como un anticuerpo y unirse específicamente a un antígeno específico puede determinarse mediante ensayos de unión conocidos en la técnica, por ejemplo, usando el antígeno de Interés como el compañero de unión.

10

Pueden prepararse anticuerpos contra lípidos de acuerdo con la presente invención por métodos muy conocidos por los expertos en la técnica. Por ejemplo, pueden Inmunizarse ratones con un lípido con adyuvante. Los esplenocltos se recogen, como un conjunto, de los ratones que recibieron una administración de 3 inmunizaciones a Intervalos de 2 semanas, realizando las extracciones de sangre del ensayo durante semanas alternativas para las titulaciones de 15 los anticuerpos en suero. Los esplenocltos se preparan como 3 alícuotas que bien se usan Inmediatamente en experimentos de fusión o se conservan en nitrógeno líquido para su uso en futuras fusiones.

Después, los experimentos de fusión que se realizan de acuerdo con el procedimiento de Stewart & Fuller, J. Immunol. Methods 1989,123: 45-53. Los sobrenadantes de los pocilios con híbridos en crecimiento se exploran 20 mediante ensayo ¡nmunoabsorbente ligado a enzimas (ELISA) para secretores de anticuerpos monoclonales (MAb) en placas de 96 pocilios ELISA recubiertas con dicho lípido. Los cultivos ELISA positivos se clonan mediante diluciones limitantes, típicamente obteniendo hlbrldomas establecidos de colonias sencillas después de experimentos de clonación de 2 series.

25 De la manera en la que se usa en el presente documento la expresión molécula pequeña se refiere a un compuesto orgánico de bajo peso molecular. Preferentemente, el límite superior de peso molecular para una molécula pequeña de acuerdo con la presente invención es de 2.500 Dalton, más preferentemente de 1.500 Dalton y prefiriéndose particularmente 800 Dalton. El tamaño y la carga de las moléculas pequeñas de la presente Invención serán preferentemente tales que se permita la posibilidad de difundirse rápidamente a través de las membranas de la 30 célula, de tal manera que las moléculas pequeñas puedan alcanzar sitios de acción intracelular.

Un inhibidor farmacológico de PCSK9, del modo en que se usa en el presente documento, puede ser una molécula pequeña. Sin embargo, también puede ser un polímero, por ejemplo, un pollpéptldo distinto de un anticuerpo, una glucoproteína, un proteoglucano, un ácido nucleico, por ejemplo, un aptámero, un carbohidrato o un lípido.

35

Ejemplos Ejemplo 1

40 Materiales y métodos

Para realizar los análisis lipidómicos se usaron muestras de plasma de animales de tipo silvestre (Ts), genosuprimidos homocigotos (Pcsk9-/-) y genosuprimidos heterocigotos (Pcsk9+/-) para el gen de PCSK9. Cada grupo tenía 18 ratones macho de 3 meses de vida. Hasta los 3 meses de vida los ratones se alimentaron con una 45 dieta de pienso regular (día 0). Después de esto, los ratones se alimentaron primero con una dieta de pienso regular (2018 Teklad Global, Harían Laboratories) durante dos semanas, después de las cuales 3 ratones de cada grupo se sacrificaron para realizar el muestreo de tejidos (día 15). La dieta del resto de los ratones se cambió a una dieta Western convencional (TD.88137 Harían Teklad) durante un periodo de dos semanas, después del cual todos los ratones restantes se sacrificaron (día 30). La dieta Western contenía 34%, 21% y 0,2% de azúcar, grasa y colesterol, 50 respectivamente, mientras que la dieta de pienso regular contenía 5%, 6% y 10% de estos Ingredientes, respectivamente.

Antes de realizar la extracción sanguínea, los ratones se mantuvieron en ayunas durante 4 h. Se extrajeron 250 pl de sangre de las mejillas, usando micro recipientes (BD) de 500 pl que contenían EDTA. Las muestras de sangre se 55 centrifugaron a 3000 rpm durante 15 mln a 4 °C. Los sobrenadantes (50 a 100 pl) se transfirieron a tubos Eppendorf transparentes. Las muestras se congelaron Inmediatamente después del muestreo y se conservaron a -80 °C antes de realizar el análisis lipidómico.

Para los análisis lipidómicos globales (en Inglés ““shotgun"), se usaron 10 pl de plasma de ratón para la extracción 60 de lípidos. Para la cuantlflcación de ceramldas y cerebrósidos, se usaron 50 pl de plasma de ratón para la extracción de lípidos. Este diseño del estudio permitió a los Inventores determinar un perfil lipidómico típico Inducido por la inhibición de PCSK9 total (-/-) o parcial (+/-), con una dieta de pienso tanto regular como de tipo Western.

Ejemplo 2

Materiales y métodos

5 Este estudio es una sub-cohorte del estudio de LURIC que es un estudio prospectivo a gran escala sobre epidemiología cardiovascular. La base de datos LURIC contiene información clínica de más de 3.000 pacientes, que incluye datos iniciales de angiografía coronaria y datos clínicos habituales de laboratorio. En este estudio, los inventores compararon el perfil lipidómico de sujetos portadores de una mutación conocida de pérdida de función (R46L, rs11591147, Abifadel, M. et al. 2003. Mutations in PCSK9 cause autosomal dominant hipercolesterolemia. 10 Nat. Genet 34: 154-156) con el perfil lipidómico de sujetos portadores del alelo principal con la función normal de PCSK9. Esta comparación permitió a los inventores determinar un perfil lipidómico típico inducido por déficit parcial de PCSK9. En la Tabla 1 se describen las características clínicas.

Tabla 1. Características de fondo de pacientes LURIC analizados con lipidómica

Variable: Controles (n=541) Casos (n=12)

Edad (promedio): 65,1 66,3

LDL-C (mg/dl): 116,8 108,3

HDL-C (mg/dl): 36,8 38,2

Usuarios de hipolipemiantes: 248 2

Métodos analíticos

Espectrometría de masas dirigida a Lipidómica

20

Se utilizó infusión directa acoplada a espectrometría de masas en tándem, es decir, lipidómica global, lipidómica de triacilglicerol y una estrategia de espectrometría de masas en tándem con cromatografía líquida (LC-MS/MS), es decir, lipidómica de ceramidas y cerebrósidos y lipidómica de esfingosinas para identificar el efecto de la concentración de PCSK9 disminuida analizando las especies lipídicas moleculares en suero humano y de ratón. Los 25 métodos aplicados se optimizaron especialmente para la cuantificación de ásteres de colesterol (CE), colesterol libre (FC), fosfatidilcolinas (PC), lisofosfatidilcolinas (LPC) y otros lisofosfolípidos (LPL), fosfatidilcolinas ligadas a alquilo y a alquenilo (PC O y PC P, respectivamente) y otros fosfolípidos ligados a alquilo o alquenilo (PL O y PL P, respectivamente), fosfatildilserinas (PS), fosfatidiletanolaminas (PE), fosfatidilgliceroles (PG), fosfatidilinositoles (Pl), ácidos fosfatídicos (PA), diacilgliceroles (DAG), triacilgliceroles (TAG), ceramidas (Cer), glucosil/galactosilceramidas 30 (Glc/GalCer), latosilceramidas (LacCer) globotriaosilceramidas (Gb3), esfingosinas (SPH), esfingosina-1-fosfatos (S1P), esfinganinas (SPA) y espinganina-1-fosfatos (SA1P).

Se usaron los siguientes materiales de acuerdo con los métodos. El cloroformo, el metanol, el agua, el acetonitrilo, el ácido fórmico, el isopropanol, el acetato de amonio, el ácido acético, el cloruro de potasio y el hidroxitolueno 35 butilado (BHT) de calidad para cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) o LS-MS se adquirieron en Sigma- Aldrich (St. Louis, MO, USA).

En la lipidómica de ceramidas y cerebrósidos, la columna (Acquity BEH C18, 2,1 x 50 mm id. 1,7 pm) de cromatografía líquida de ultra alta resolución (UHPLC) se adquirió en Waters (Milford, MA, USA). La pre-columna 40 HPLC (Widepore C18 a x 2,0 mm) se adquirió en Phenomenex (Torrance, CA, USA). En la lipidómica de esfingosina y esfingosina-1-fosfato, la columna de cromatografía líquida de interacción hidrófila (HILIC) (Atlantis HILIC 3 mm 2,1 x 50 mm) y la columna protectora de HPLC (Atlantis HILIC 3 mm 2,1 x 10 mm) se adquirieron en Waters (Milford, MA, USA). Todo el material de laboratorio usado para la extracción era resistente a cloroformo. Las puntas con filtro, resistentes a pulverización (Molecular BioProducts) y los tubos Eppendorf de 2 mi con cierre de seguridad, las 45 placas de PCR twin-tec de 96 pocilios y las láminas de termosellado Pierce-it-lite se adquirieron en VWR International (West Chester, PA, USA). Las puntas con filtro CO-RE y las Uniplacas Whatman de 2 mi de 96 pocilios se adquirieron en Hamilton Robotics (Bonaduz, Suiza). Los patrones lípidos sintéticos se adquirieron en Avanti Polar Lipids (Alabaster, AL, USA), Matreya (Pleasant Gap, PA, USA) y Cayman Chemical (Ann Arbor, MI, USA).

50 Los lípidos se extrajeron en cloroformo:metanol de acuerdo con los siguientes protocolos. Las muestras se adicionaron con cantidades conocidas de patrones internos sintéticos no endógenos para la normalización de los datos y para la cuantificación de lípidos endógenos. Los patrones externos sintéticos no endógenos adicionados después de la extracción se usaron para el control de calidad. Se prepararon soluciones madre de patrones disolviendo apropiadamente en clorofomo:metanol (2:1, v/v) cantidades ponderadas de cada patrón, para obtener 55 una concentración final de 500 o 1000 pM. Se creó una mezcla de patrón interno que contenía cada una de las reservas patrón y se usó en la extracción lipídica.

Se usaron 10 pl de plasma humano y de ratón para la lipidómica global y/o de triacilglicerol y/o cuantificación de colesterol libre y 10 pl y 50 pl de plasma humano y de ratón, respectivamente, para la lipidómica de ceramidas y

cerebrósidos y/o de esfingosinas y de esfingosina-1-fosfato. No se analizaron muestras humanas para triacilgliceroles, colesterol libre y bases esfingoldes. Se realizaron extracciones lipídicas de una manera automática usando un sistema Hamilton MICROLAB STAR (Hamilton Robotics, Suiza). Las muestras bien mezcladas se dividieron en alícuotas en una Uniplaca Whatman de 2 mi de 96 pocilios que contenía metanol enfriado con hielo y 5 BHT al 0,1%. Las muestras se mezclaron cuidadosamente después de cada etapa en el protocolo de extracción. La extracción se realizó a temperatura ambiente añadiendo un volumen apropiado de mezcla de patrón interno y cloroformo y metanol. En lipidómica global (“shotgun"), el triacilglicerol, la ceramida, el cerebrósido, la esfingosina y la esfingosina-1-fosfato, la separación de fase orgánica se facilitó añadiendo ácido acético 20 mM y centrifugando la placa durante 5 min a 500 x g. La fase orgánica se transfirió a una nueva Uniplaca Whatman de 2 mi de 96 pocilios. 10 La fase restante que contenía agua se lavó añadiendo un volumen apropiado de cloroformo seguido de centrifugación. Las dos fases orgánicas se agruparon y se evaporaron con Ñ2 hasta secarse completamente. Después, los extractos lipidíeos volvieron a disolverse en cloroformo:metanol (1:2, v/v) incluyendo la adición del patrón externo sintético. Los extractos se conservaron en tubos Eppendorf de 2 mi con cierre de seguridad a una temperatura de -20 °C antes del análisis MS. Los volúmenes requeridos de los extractos de lípidos se dividieron en 15 alícuotas en una placa PCR twin-tec de 96 pocilios Eppendorf y la placa se termoselló con un papel de aluminio para impedir la evaporación.

En la lipidómica global y en la de triacilglicerol, así como cuando se cuantifica el colesterol libre, los extractos lipidíeos se analizaron en un espectrómetro de masas con trampa de iones híbrido triple cuadrupolo/lineal (QTRAP 20 5509, AB Sciex) equipado con una fuente iónica de nanoflujo robótica (NanoMate HD, Advion Biosciences). Los instrumentos funcionaron en modos de ion positivo y negativo. En modo ion positivo se estableció un voltaje de pulverización de 1,0 a 1,4 kV y en modo ion negativo fue de -1,0 a -1,4 kV. Se usó una presión de gas de 0,3-0,8 psi y el calentador de interfaz se estableció a 60 °C. La energía de colisión (EC) y el potencial de desagrupación (PD) se optimizaron para cada clase de lípido usando patrones sintéticos. El espectrómetro de masas funcionó en modo de 25 resolución de unidad usando una velocidad de escaneo de 200 Da/s. Los lípidos moleculares se analizaron en modo ion, tanto positivo como negativo, usando escaneo de ion precursor múltiple (MPIS) y escaneo de pérdida neutral (NLS) como describen Stahlman y colaboradores (Stahlman M, et al: High-throughput shotgun lipidomics by quadrupole time-of-flight mass spectrometry. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci 2009). Los triacilgliceroles se analizaron en modo ion positivo usando escaneo de pérdida neutral. El colesterol libre se 30 derivatizó en CE 2:0 mediante cloruro de acetilo antes del análisis (Liebisch, G., et al, High throughput quantification of colesterol and cholesteryl ester by electrospray ionization tándem mass spectrometry (ESI-MS/MS). Biochim BiphysActa, 2006, 1761(1): p. 121-8).

En la lipidómica de ceramidas y cerebrósidos, se realizaron análisis LC-EM/EM de la siguiente manera. El aparato 35 cromatográfico consistió en un automuestrador CTC HTC PAL (CTC Analytics AG, Suiza), una bomba UHPLC Rheos Allegro (Flux Instruments AG, Suiza), un calentador de columna externo ajustado a 60 °C para la lipidómica de ceramidas y cerebrósidos y la columna C18 Acquity BEH con una pre-columna en línea. Las muestras extraídas, de 10 pl cada una, se inyectaron en la pre-columna seguido por la columna analítica y se suministraron al espectrómetro de masas a un caudal de 500 pl/min. En la lipidómica de ceramidas y cerebrósidos, se usó un 40 gradiente para la separación de analitos lipidíeos con disolvente A que comprendía acetato de amonio 10 mM en

agua de calidad HPLC que contenía ácido fórmico al 0,1% y disolvente B de acetato de amonio 10 mM en

acetonitrilo:isopropanol (4:3, v/v) que contenía ácido fórmico al 0,1%. El gradiente se construyó de la siguiente manera: 0 min - 65% B; 2 min - 65% B; 2,5 min - 75% B; 17,5 min - 100% B; 22,5 min - 100% B; 22,6 min -65% B; 25 min - 65% B.

45

En la lipidómica de esfingosinas y esfingosina-1-fosfatos, se realizaron análisis LC-EM/EM se realizaron de la siguiente manera. El aparato cromatográfico consistió en un automuestreador CTC HTC PAL (CTC Analytics AG, Suiza), una bomba UHPLC de Rheos Allegro (Flux Instruments AG, Suiza), un calentador de columna externo ajustado a 50 °C y la columna HILIC de Atlantis con una columna protectora en línea. Las muestras extraídas, de 10

50 pl cada una, se inyectaron en la columna protectora seguido por la columna analítica y se suministraron al

espectrómetro de masas a un caudal de 500 pl/min. En la lipidómica de esfingosinas y esfingosina-1-fosfatos, se usó un gradiente para la separación del analitos lipidíeos con el disolvente A que comprendía formato de amonio 50 mmol/l en agua ultrapura con ácido fórmico al 0,2% y disolvente B de acetonitrilo con ácido fórmico al 0,2%. El gradiente se construyó de la siguiente manera: 0 min - 95% B; 0,70 min - 95% B; 1,50 min - 75% B; 1,51 min - 55 50% B; 1,70 min - 50% B; 1,71 min - 85% B; 3,00 min - 95% B; 4,00 min - 95% B.

En la lipidómica tanto de ceramidas y cerebrósidos como de esfingosinas y esfingosina-1-fosfatos, los extractos lipidíeos se analizaron por LC-MS/MS. El análisis MS se realizó en un espectrómetro de masas con trampa de iones híbrido triple cuadrupolo/lineal equipado con la Fuente de iones Turbo V™ (4000 QTRAP, AB Sciex). El instrumento 60 funcionó en modo ion positivo. El voltaje de la fuente de iones se estableció 5500 V y la fuente de temperatura a 400 °C. La energía de colisión (EC) y el potencial de desagrupación (PD) se optimizaron para cada clase de lípido usando patrones sintéticos. Para cada escaneo se aplicó un tiempo de permanencia de 20/25 s. Se aplicó el modo de escaneo de monitorización de reacción múltiple (MRM) y se basó en la descripción de Sullards y colaboradores (Sullards MC, et al: Structure-specific, quantitative methods for análisis of sphingolipids by liquid chromatography- 65 tándem mass spectrometry: “inside-out” sphingolipidomics. Methos Enzymol 2007).

17

El procesamiento de los datos se realizó de la siguiente manera: Inicialmente el tiempo de retención (en modo LC) y la identificación de cada pico se realizaron usando patrones endógenos y mediante experimentos de Adquisición Dependiente de Información (IDA) cuando fuera aplicable. Los datos originales se procesaron según el pico detectado y el tiempo de retención (en modo LC) de manera automática. Se aplicó un límite riguroso para la 5 separación del ruido de fondo de los picos reales de lípidos. Cada muestra se controló y solamente se aceptó cuando se cumplían los criterios de aceptación rigurosos. Los recuentos del área pico (cps) de los picos detectados se convirtieron en un listado de nombres de lípidos correspondientes. Los lípidos se normalizaron a su patrón interno y volumen de muestra correspondientes para recuperar sus concentraciones.

10 La proporción de Estándares Internos (El) sintéticos respecto a Estándares Externos (EE) adicionados post-extracto correspondientes, y los análisis MS de la matriz extraída y de disolventes sirvieron como controles de calidad (CC) del análisis. Además, las muestras plasmáticas de referencia extraídas se analizaron para monitorizar el rendimiento del instrumento, es decir, la variación intra e inter-ensayo.

15 Usando patrones sintéticos o aislados, antes del análisis de las muestras, se obtuvo una línea de calibración. Los patrones sintéticos se seleccionaron tomando como base su aplicación y tuvieron propiedades similares a las de los lípidos endógenos o analito(s) de interés. La línea de calibración consistía en un mínimo de cinco puntos de referencia que cubría el intervalo de cuantificación esperado. La línea de calibración se usó para determinar el intervalo dinámico de cuantificación para cada clase de lípido monitorizada, por ejemplo, los límites de cuantificación 20 lineal. Dado que los patrones internos utilizados se comportaron de la misma manera que los lípidos endógenos, éstos se usaron para cuantificar las especies de lípidos endógenos. Las líneas de calibración se basaron en los mismos patrones internos que los que se usaron para la cuantificación de los lípidos endógenos.

Para cada plataforma, se aplicó un límite riguroso para separar el ruido de fondo de los picos de lípidos reales. Cada 25 muestra se controló y solo se aceptó cuando se cumplían los criterios de aceptación. Las masas y los recuentos de los picos detectados se convirtieron en un listado de nombres de lípidos correspondientes. Los lípidos se normalizaron a su patrón interno y volumen de muestra correspondientes para recuperar sus concentraciones.

Análisis estadísticos

30

Los cambios de porcentaje en las concentraciones de los lípidos entre los grupos de control y de casos se calcularon de la siguiente manera:

100 * (PRM[C] en el grupo de casos - PRM[C] en grupo de control)/PRM[C] en grupo de control.

35

El significado estadístico se asignó tomando como base la prueba de la t.

Ética

40 El estudio de LURIC fue aprobado por el comité de revisión de ética del “Landesárztekammer Rheinland-Pfalz” (Mainz, Alemania). Se obtuvo el consentimiento informado por escrito de cada uno de los participantes. El comité de bioética de la IRCM para el cuidado de los animales dio su aprobación para realizar el estudio con ratones.

Resultados

45

Los biomarcadores lipidómicos aparecieron como biomarcadores significativos de la actividad de PCSK9 disminuida. Una pérdida de un alelo de Pcsk9 fue suficiente para inducir cambios significativos en las concentraciones de esfingolípidos, comparables a los cambios observados en ratones Pcsk9V'. Los ácidos grasos 16:0 que contenían especies de esfingomielina [SM(d 18:1/16:0)], ceramida [Cer(d18:1/16:0)], glucosil/galactosilceramida

50 [Glc/GalCer(d18:1/16:0)], y lactosilceramida [LacCer(d18:1/16:0)j aparecían como las especies de lípidos más afectadas en ratones tanto Pcsk9'A como Pcsk9+/~ cuando los animales estaban con la dieta de pienso (Fig. 1A y 1B, y Tabla 2a y 2b, respectivamente). Por el contrario, se demostró que los triacilgliceroles (TAG) estaban significativamente más concentrados en el plasma de ratones Pcsk9'A y Pcsk9+/'en comparación con los ratones de tipo silvestre (Ts).

55

En comparación con el estado de alimentación con la dieta de pienso regular, se registraron cambios claramente menos significativos en ratones Pcsk9'A con una dieta Western (Fig. 1C, Tabla 2c). Cabe destacar que, los ratones Pcsk9+/' con dieta Western demostraron cambios más significativos en las concentraciones de lípidos que los ratones Pcsk9~/~ (Fig. 1D, Tabla 2d). Apareció un cambio típico en el plasma de ratones deficientes en PCSK9 con dieta 60 Western, que disminuía las especies de Cer, Glc/GalCer y LacCer con cadenas grasas de acilo largas, tales como Glc/GalCer(d 18:1/24:0), Cer(d18:1/24:0) y LacCer(d18:1/24:0).

Se observó un cambio lipidómico similar en seres humanos portadores de una mutación de pérdida de función de PCSK9. Las especies de lípidos más significativamente reducidas en seres humanos, portadores de la variante de 65 pérdida de función conocida en el gen de PCSK9 (R46L), incluyeron las mismas especies de Glc/GalCer, LacCer y

SM, como ya se observó en los modelos de ratón Pcsk9'A y Pcsk9+/' (Flg. 2, Tabla 3). Sin embargo, debido al número limitado de muestras humanas, la mayoría de los cambios observados no alcanzaron el nivel de significación estadística. Además, en muestras de plasma de seres humanos en ayunas, no pudo observarse separación de especies de lípidos tomando como base la longitud de la cadena grasa de acilo. A diferencia del 5 plasma de ratón, las concentraciones de dos especies de colesterll áster, la CE 20:3 y la CE 20:4 se redujeron significativamente en plasma humano debido al déficit de PCSK9.

Como se ha descrito anteriormente, en este estudio se cuantificó un total de 190 lípidos moleculares y 257 ácidos grasos TAG. De estos, 63 lípidos moleculares y 105 ácidos grasos TAG eran biomarcadores significativos tomando 10 como base los criterios establecidos. En las Tablas 2 y 3 se presentan los candidatos biomarcadores significativos, tomando como base las concentraciones de lípidos moleculares. En seres humanos, los biomarcadores seleccionados tenían un rendimiento mejorado sobre los biomarcadores tradicionalmente usados, tales como colesterol LDL. Los lípidos individuales que tienen un rendimiento mejorado sobre los marcadores tradicionales se indican en la Tabla 3a. La Tabla 3b muestra una lista de proporciones de concentración lípido-lípido que tienen 15 rendimiento mejorado sobre los lípidos individuales.

En las Tablas 4 y 5 también se indica una lista de biomarcadores.

La Tabla 6 representa especies de TAG en bruto y las posibles combinaciones de ácidos grasos que contribuyen a 20 cada especie en bruto. El TAG en bruto presenta la suma de los tres ácidos grasos y el número de enlaces dobles de una molécula TAG. La Tabla 6 representa algunos ejemplos de cada especie de TAG en bruto pero también puede haber otras combinaciones.

Tabla 2a. Biomarcadores significativos tomando como base la medición individual de lípidos y la proporción de 25 concentración lípido-lípido detectada en ratones PCSK9y" con una dieta de pienso regular en comparación con ratones de tipo silvestre. Se muestran los nombres de las especies, los valores p y la variación porcentual. En la Tabla 6 se describen las diferentes composiciones de ácidos grasos.

Ratones PCSK9en comparación con el tipo silvestre con una dieta de pienso regular

Lípido: Variación porcentual valor p Lípido Variación porcentual valor p

Disminución: Aumento

TAG 60:12 FA 20:4: -64,990 2.508E-04 TAG 50:5 156,815 1.316E-02

TAG 60:12: -64,990 2.508E-04 TAG 55:3 152,265 2.968E-02

TAG 58:10 FA 20:4: -64,073 1.341E-03 TAG 51:4 FA 15:0 86,98016 1.780E-02

TAG 58:10: -22,734 1.905E-01 TAG 51:4 145,866 9.870E-03

LacCer(d18:1/24:0): -61,734 1.802E-06 TAG 50:2 FA 18:2 76,248 7.679E-02

Glc/GalCer(d 18:1/20:0): -61,304 5,021 E-07 TAG 50:2 123,880 1.296E-01

Glc/GalCer(d 18:1/18:0): -60,966 7.032E-14 TAG 50:4 FA 14:0 77,875 2.216E-02

Glc/GalCer(d 18:1/22:0): -58,750 2.897E-06 TAG 50:4 128,492 7.890E-02

TAG 56:9 FA 20:4: -57,499 4.513E-04 TAG 54:3 FA 16:0 62,577 3.325E-02

TAG 56:9 FA 18:3: -37,299 1.072E-02 TAG 54:3 FA 18:2 99,394 1.796E-02

TAG 56:9: -28,883 1.264E-01 TAG 54:3 106,898 3.787E-02

Glc/GalCer(d 18:1/16:0): -56,593 4.968E-12 TAG 53:4 FA 18:2 88,635 8.278E-03

Glc/GalCer total: -55,866 6,261 E-07 TAG 53:4 106,150 6.500E-03

SM fd 18:1/16:0) fd 18:1/15:1-OH): -54,947 2.058E-16 TAG 52:6 101,188 2,561 E-02

LacCer(d18:1/16:0): -54,523 8.517E-10 TAG 54:4 FA 18:2 84,418 2.500E-02

TAG 58:9 FA 20:4: -53,838 6.457E-04 TAG 54:4 FA 18:1 78,619 4.889E-02

TAG 58:9: -1,979 8.979E-01 TAG 54:4 FA 18:0 77,628 9.456E-03

Glc/GalCer(d 18:1 /24:1): -53,028 6.967E-05 TAG 54:4 83,059 3,721 E-02

LacCer total: -51,984 4.137E-08 TAG 52:4 FA 18:2 70,069 2.305E-02

CE 16:1: -51,509 3,221 E-05 TAG 52:4 FA 16:0 64,013 2.820E-02

Glc/GalCer(d 18:1/24:0): -51,294 5.712E-05 TAG 52:4 73,643 2.485E-02

Glc/GalCer(d 18:1/26:0): -50,524 2.374E-04 TAG 56:4 FA 18:1 91,940 4.847E-02

Cer(d18:1/22:0): -49,683 9.847E-08 TAG 56:4 89,544 5.546E-02

Cer(d18:1/20:0): -48,392 2.989E-09 TAG 54:5 FA 18:1 75,955 1.000E-02

SM (d18:1/16:1) (d18:1/15:2-OH): -47,581 6.693E-07 TAG 54:5 FA 18:2 74,494 4.962E-03

Cer(d18:1/18:0): -46,286 3.817E-06 TAG 54:5 70,166 1.239E-02

CE 14:0: -45,541 3.299E-05 TAG 52:5 FA 18:2 71,092 4.892E-02

CE 16:0: -45,218 1,010E-12 TAG 52:5 FA 18:3 61,858 3.526E-02

LacCer(d18:1/24:1): -44,119 1.054E-05 TAG 52:5 69,317 4.417E-02

CE 18:1: -42,857 1.547E-10 TAG 54:6 FA 18:2 78,005 2.522E-03

CE 18:2: -41,802 6.076E-11 TAG 54:6 FA 18:1 65,617 1.854E-02

FC: -41,774 1.139E-10 TAG 54:6 FA 18:3 57,726 3.365E-02

CE 18:3: -41,356 2.182E-10 TAG 54:6 52,606 1.530E-02

LacCer(d18:1/22:0): -41,134 1.239E-03 TAG 56:5 FA 18:2 71,286 2.510E-02

TAG 56:8 FA 20:4: -40,099 9.167E-03 TAG 56:5 FA 20:1 68,247 2.564E-02

TAG 56:8: 8,278 6.507E-01 TAG 56:5 71,820 4.739E-02

CE 22:5: -39,993 1.070E-02 TAG 56:6 FA 18:2 58,754 3.922E-02

CE total: -39,638 1.073E-09 TAG 56:6 30,327 2.893E-01

PC 16:0/16:0: -39,452 4.758E-06 TAG 54:7 FA 18:2 52,396 2.256E-02

CE 22:6: -39,271 2.050E-08 TAG 54:7 FA 18:3 50,258 4.750E-02

PC 16:0/18:1: -39,038 8.272E-06 TAG 54:7 40,748 4.048E-02

Cer total: -38,285 5.399E-06 TAG total 47,255 4.230E-02

LPE total: -38,219 3.272E-02

Glc/GalCer(d 18:1 /26:1): -37,439 1.426E-02

TAG 56:7 FA 20:4: -36,094 2.192E-03

TAG 56:7: 4,516 8,23 IE-01

PC 18:0/18:1: -35,534 2.324E-05

CE 20:4: -34,208 1.783E-05

CE 20:3: -33,966 3,821 E-02

SM (d18:1/24:1) (d18:1/23:2-OH): -33,856 7.152E-04

Cer(d18:1/24:1): -33,646 9.245E-05

CE 17:1: -33,524 4.173E-03

PC 18:1/18:1: -33,350 1.936E-02

Cer(d18:1/24:0): -33,095 1.606E-03

CE 20:5: -32,845 8.999E-03

PC total: -32,432 1.481E-07

PC 16:0/20:3: -32,324 1.542E-02

PC 16:0/18:2: -32,309 2.042E-07

PC 18:0/18:2: -32,095 1,116E-05

PC 18:0/22:6: -30,973 2.463E-04

PC 18:1/20:4: -30,513 1.352E-02

PC 16:0/22:6: -30,321 1.159E-05

Pl 18:0/20:4: -29,759 3.149E-06

CE 15:0: -27,608 1.578E-02

Cer(d18:1/16:0): -26,897 1.773E-03

Cer(d18:1/26:1): -30,721 7.786E-03

LPC 16:0: -20,017 4.196E-04

LPC total: -17,349 9.137E-04

Proporción de concentración lípido-lípido: Variación porcentual valor p Proporción de concentración lípido-lípido Variación porcentual valor p

Disminución: Aumento

G lc/GalCer(d18:1/16:0)/LPC 18:2: -50,893 9.485E-10 Cer(d18:0/24:0)/Glc/GalCer(d18:1/18:0) 185,871 3.695E-06

Cer(d18:1/18:0)/Esfingosina d16:1: -51,057 1.878E-06 Cer(d18:0/24:0)/LacCer(d18:1/16:0) 141,343 2.425E-05

Glc/GalCer(d18:1/18:0)/PC 18:2/18:2: -51,694 1.060E-06 TAG 58:10/TAG 60:12 139,279 6,521 E-07

CE 16:1/LPC 20:4: -52,821 7.039E-06 Cer(d18:0/24:0)/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH) 138,225 1,317E-06

Glc/GalCer(d18:1/16:0)/Esfinganina- 1 - fosfato d18:0: -55,633 1.568E-07 Cer(d18:0/22:0)/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH) 119,864 1.274E-07

G lc/GalCer(d18:1/18:0)/LPC 18:2: -55,805 2.189E-09 LPC 18:2/SM (d18:1/16:0) 98,384 7.626E-12

(di 8:1/15:1-OH)

LacCer(d18:1 /16:0)/Esfingosina d16:1: -57,265 5.627E-06 LPC 18:2/LacCer(d18:1/16:0) 94,112 3.915E-10

SM (d 18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH)/Esfinqosina d16:1: -58,151 3.565E-08 Cer(d18:0/24:0)/FC 89,233 0.000E+00

Glc/GalCer(d18:1 /16:0)/Esfingosina d16:1: -61,257 1.345E-07 Cer(d18:1/26:1)/ Glc/GalCer(d18:1/18:0) 89,153 3.214E-05

CE 18:1/TAG 54:7: -62,395 8.602E-05 Cer(d18:0/22:0)/ Cer(d18:1/22:0) 82,249 1.926E-07

Glc/GalCer(d18:1 /16:0)/Esfingosina d18:1: -66,767 4.53 8E-06 Cer(d18:1/26:1)/Glc/GalCer(d18:1/16:0) 81,958 5,201 E-05

Cer(d18:1/18:0)/TAG 52:5: -68,662 9.244E-05 LPC 16:0/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1-OH) 79,420 2.663E-10

SM (d 18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH)/TAG 54:6: -72,138 7.999E-05 PC 18:0/20:4/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1-OH) 70,011 5.229E-08

Glc/GalCer(d18:1 /20:0)/TAG 52:5: -79,327 9.153E-05 TAG 52:5/TAG 56:7 66,808 4.896E-07

Glc/GalCer(d18:1/18:0)/TAG 54:6: -79,363 3.995E-05 Cer(d18:1/16:0)/Glc/GalCer(d18:1/16:0) 63,539 2.374E-09

Glc/GalCer(d18:1/16:0)/TAG 52:3: -79,470 6.181E-05 CE 20:4/Glc/GalCer(d18:1/18:0) 62,767 2.045E-08

G lc/GalCer(d18:1/16:0)/TAG 54:3: -79,758 5.002E-05 Cer(d18:0/24:0)/PC 16:0/18:2 59,693 0.000E+00

Glc/GalCer(d18:1/16:0)/TAG 52:4: -79,855 3.166E-05 CE 22:6/Glc/GalCer(d18:1/18:0) 50,609 1.465E-07

Glc/GalCer(d18:1/18:0)/TAG 52:4: -82,312 4.937E-05

Tabla 2b. Biomarcadores significativos tomando como base la medición individual de lípidos y la proporción de la concentración lípido-lípido detectada en ratones PCSK9+/' con una dieta de pienso regular en comparación con los ratones de tipo silvestre. Se presentan los nombres de las especies, los valores p y los cambios de porcentaje.

5 ______

Ratones PCSK9+/' en comparación con el tipo silvestre con una dieta de pienso regular

Lípido: Variación porcentual valor p Lípido Variación porcentual

Disminución: Aumento

TAG 60:12 FA20:4: -44,777 TAG 53:3 FA 17:0 135,356

TAG 60:12: -44,777 TAG 53:3 FA 18:2 110,794

Glc/GalCer(d 18:1/22:0): -38,116 1.072E-03 TAG 53:3 FA 18:1 63,497

TAG 58:7 FA 22:5: -36,296 TAG 53:3 98,444

TAG 58:7: -16,719 TAG 49:2 FA 18:2 128,655

Glc/GalCer(d 18:1/20:0): -36,166 1.126E-03 TAG 49:2 FA 15:0 81,288

TAG 58:9 FA 20:4: -35,280 TAG 49:2 FA 16:0 46,357

TAG 58:9: -12,061 TAG 49:2 81,946

Glc/GalCer total: -34,200 8.552E-04 TAG 54:8 FA 18:3 72,857

Glc/GalCer(d 18:1/24:0): -34,067 4.625E-03 TAG 54:8 45,668

TAG 54:7 FA 16:1: -31,485 TAG 50:4 FA 16:2 71,219

TAG 54:7 FA 20:4: -19,366 TAG 50:4 FA 14:0 65,347

TAG 54:7: 25,776 TAG 50:4 FA 18:2 52,949

Glc/GalCer(d 18:1/24:1): -30,734 1.378E-02 TAG 50:4 FA 16:0 31,487

SM fd18:1/16:0) fd18:1/15:1-OH): -30,205 1.297E-08 TAG 50:4 46,374

TAG 58:10 FA 20:4: -29,587 TAG 56:3 FA 20:1 69,839

TAG 58:10: -6,838 TAG 56:3 FA 18:1 23,266

Glc/GalCerfd 18:1/18:0): -29,219 7.332E-06 TAG 56:3 41,617

TAG 56:9 FA 20:4: -28,188 TAG 54:3 FA 18:2 67,212

TAG 56:9: -25,833 TAG 54:3 FA 20:1 59,887

TAG 56:5 FA 20:3: -27,595 TAG 54:3 FA 16:0 40,549

TAG 56:5: 9,946 TAG 54:3 57,889

Glc/GalCerfd 18:1/16:0): -27,063 6.051 E-05 TAG 54:4 FA 18:0 63,987

LacCer(d18:1/24:0): -35,343 2.402E-03 TAG 54:4 FA 18:2 45,810

TAG 54:4 FA 20:3: -25,768 TAG 54:4 FA 20:2 43,761

TAG 54:4: 35,266 TAG 54:4 FA 18:1 28,831

TAG 58:8 FA 18:2: -24,677 TAG 54:4 FA 16:0 16,648

TAG 58:8: -3,510 TAG 54:4 35,266

Total LacCer: -24,058 3.203E-03 TAG 50:2 FA 18:2 62,114

LacCer(d18:1/22:Q): -23,147 4,961 E-02 TAG 50:2 FA 16:0 27,001

TAG 56:7 FA 20:4: -22,839 TAG 50:2 FA 14:0 25,767

TAG 56:: -10,897 TAG 50:2 35,859

Glc/GalCerfd 18:1/26:0): -22,797 6.959E-02 TAG 53:4 FA 18:2 61,260

Cer(d18:1/22:0): -22,584 5.909E-03 TAG 53:4 43,469

TAG 56:8 FA 20:4: -21,569 TAG 54:6 FA 18:2 61,238

TAG 56:8: -6,916 TAG 54:6 FA 18:1 32,069

LacCer(d18:1/16:0): -20,192 4.711E-03 TAG 54:6 FA 18:3 16,262

LacCerf d18:1/24:1): -19,792 2.750E-02 TAG 54:6 32,549

CE 18:3: -19,265 4,349E-04 TAG 54:5 FA 18:2 61,074

Cer(d18:1/18:0): -18,329 4,180E-02 TAG 54:5 FA 18:1 56,979

Cerfd 18:0/22:0): -17,737 1.486E-01 TAG 54:5 48,831

PC 18:0/22:6: -17,696 2.093E-02 TAG 50:3 FA 18:3 56,000

FC: -16,776 1.655E-03 TAG 50:3 FA 18:2 32,037

Glc/GalCer(d 18:1/26:1): -16,753 1.901E-01 TAG 50:3 14,123

Cerfd 18:0/24:1): -16,574 1.908E-01 TAG 56:5 FA 18:2 52,163

PC 16:0/16:0: -16,026 3.590E-02 TAG 56:5 FA 20:1 44,606

TAG 56:6 FA 20:4: -16,001 TAG 56:5 FA 20:2 28,250

TAG 56:6: -5,937 TAG 56:5 9,946

Cer total: -15,497 4,131 E-02

Ratones PCSK9’" en comparación con el tipo silvestre con una dieta de pienso regular

Proporción de concentración lipido- Ifpido: Variación porcentual valor p Proporción de concentración lípido- lípido Variación porcentual valor p

Disminución: Aumento

Cer(d18:0/22:0)/PC 16:0/18:2: -12,964 0,000E+00 CE 20:5/Glc/GalCer(d18:1/24:0) 82,189 7.377E-03

FC/PC 18:0/20:3: -25,581 3.816E-03 CE 20:5/Glc/GalCer(d18:1/22:0) 82,061 2.129E-03

CE 18:3/CE 20:5: -26,155 3,455E-03 PC 18:2/18:2/SM (d18:1/160) (dl8:l/15:l-OH) 63,587 9.679E-06

FC/LPC 16:1: -30,754 5.212E-03 CE 20:5/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH) 62,662 2.087E-04

Glc/GalCerfd18:1/18:0)/PC 18:0/20:4: -31,147 2.324E-05 Cer(d18:0/24:0)/LacCer(d18:1/24: 0) 61,005 1.146E-02

Glc/GalCer(d18:1/16:0)/LPC 18:2: -31,822 1.556E-05 LPC 16:1/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH) 57,606 2.495E-03

Glc/GalCer(d 18:1/18:0)/PC 16:0/20:4: -33,636 1.669E-05 PC 18:l/20:4/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1-OH) 55,007 3.384E-04

CE 18:3/LPC 16:1: -34,274 5.376E-03 LPC 20:4/SM (d18:1/16:0) (dl8:l/15:l- OH) 53,454 5.406E-04

SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH)/Espingosina d16:1: -35,255 1.603E-04 PC 18:1/18:2/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1-OH) 52,347 6.620E-05

Cer(d 18:1/22:0)/LPC 20:4: -35,825 3.493E-03 CE 20:5/LacCer(d18:1/16:0) 51,636 9,063E-03

Glc/GalCer(d18:1/22:0)/Esfingosina d16:l: -43,303 1.522E-02 CE 20:4/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH) 42,452 1.598E-05

Glc/GalCer(d18:1/22:0)/PC 18:1/18:2: -44,396 9.622E-04 CE 20:5/FC 41,327 2,339E-03

Glc/GalCer(d18:1/20:0)/LPC 16:1: -49,264 1.000E-02 LPC 16:0/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH) 40,008 1.817E-04

Glc/GalCer(d18:1/20:0)/LPC 20:4: -49,948 6.554E-04 Pl 18:0/20:4/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1-OH) 33,148 7.497E-04

Glc/GalCer(d 18:1 /22:0)/LPC 16:1: -50,721 8.458E-03 CE 20:5/PC 16:0/16:0 31,095 2.629E-02

Glc/GalCer(d18:1/22:0)/LPC 20:4: -51,506 8.433E-04 LPC 18:2/LacCer(d18:1/16:0) 30,712 9.605E-03

Tabla 2c. Biomarcadores significativos tomando como base la medición individual de lípidos y la proporción de la concentración lípido-lípido detectada en ratones PCSIO'7' con una dieta Western en comparación con los ratones de tipo silvestre. Se presentan los nombres de las especies, los valores p y los cambios de porcentaje.

Ratones PCSK9~'~ en comparación con el tipo silvestre con una dieta Western

Disminución: Aumento

CE 18:0: -53,952 3.305E-03 Esfingosina (SPH) d16:1 64,323 1.533E-03

TAG 56:5 FA 18:2: -69,447 TAG 50:2 FA 18:1 55,940 4.029E-02

TAG 56:5 FA 18:1: -40,184 3.929E-01 TAG 50:2 FA 16:0 47,004 4.740E-02

TAG 56:5 FA 20:2: -64,835 TAG 50:2 FA 14:0 21,986 3.838E-01

Ratones PCSK9'' en comparación con el tipo silvestre con una dieta Western

Disminución: Aumento

TAG 56:5 FA 20:3: -36,442 4.788E-01 TAG 50:2 FA 18:2 17,037 4.435E-01

TAG 56:5: -49,388 3.306E-01 TAG 50:2 47,040 5.626E-02

TAG 58:8 FA 18:1: -65,029

TAG 58:8 FA 22:6: -56,332 SPH Total 50,856 5.789E-03

TAG 58:8: -60,483 TAG 50:3 FA 16:1 50,410 2.678E-02

TAG 58:7 FA 18:1: -63,977 TAG 50:3 FA 18:3 37,040

TAG 58:7 FA 22:5: -48,248 TAG 50:3 FA 18:2 33,534 1.033E-01

TAG 58:7: -55,754 TAG 50:3 FA 16:0 19,397 3.852E-01

TAG 56:8 FA 22:6: -48,846 TAG 50:3 39,099 5.636E-02

TAG 56:8 FA 16:0: -35,490 Esfinqosina d18:1 49,840 7.175E-03

TAG 56:8 FA 18:2: -33,612 TAG 50:4 FA 16:1 47,909

TAG 56:8: -46,650 TAG 50:4 16,664

TAG 56:6 FA 18:1: -47,995 TAG 52:3 FA 16:1 43,537 6,661 E-02

TAG 56:6 FA 20:4: -43,581 TAG 52:3 FA 18:0 35,461

TAG 56:6 FA 20:3: -35,657 TAG 52:3 FA 18:1 26,714 2.263E-01

TAG 56:6 FA 18:2: -24,983 TAG 52:3 18,534 3.544E-01

TAG 56:6 total: -29,092 TAG 49:2 FA 16:0 42,140

Cer(d18:0/24:0): -36,791 2.958E-02 TAG 49:2 FA 15:0 15,169

Cer(d18:l/26:1): -32,004 2.558E-04 TAG 49:2 total 22,766

Cer(d18:0/22:0): -28,800 3.316E-02 Esfinqanina d18:0 41,602 8.815E-03

G lc/GalCer(d 18:1/26:1): -27,701 4,231 E-03 TAG 53:3 FA 18:1 36,680

Glc/GalCer(d 18:1/16:0): -26,867 2.746E-02 TAG 53:3 23,391

Cer(d18:1/26:0): -26,304 7.863E-03 TAG 52:2 FA 16:0 31,623 1.379E-01

Cerfdl 8:1/24:0): -25,281 1,231 E-03 TAG 52:2 FA 18:1 30,549 2.502E-01

Glc/GalCer(d 18:1/24:0): -25,124 1.452E-02 TAG 52:2 30,933 1.966E-01

CE 16:0: -22,506 1.299E-04 TAG 54:7 FA 18:2 29,707

Total Glc/GalCer: -22,165 1.058E-01 TAG 54:7 FA 18:3 16,926

Cer(d18:1/22:0): -22,045 1.310E-01 TAG 54:7 2,091

Glc/GalCer(d 18:1/20:0): -20,419 2.949E-01 LPC 16:1 27,750 1.120E-01

LacCer(d18:1/24:0): -20,357 1.060E-01 Esfinqosina-1-fosfato (SIP) d18: 21,375 5.453E-02

CE 18:1: -19,571 3.429E-02 Total SIP 21,375 5.453E-02

Cer(d18:1/20:0): -19,501 3,481 E-01 Total TAG 20,052 3,701 E-01

LacCer(d18:1/22:0): -19,021 7.362E-02 TAG 56:6 FA 22:4 17,596

Total Cer: -18,476 5.787E-02 TAG 56:6 -29,092

PC 16:0/16:0: -18,244 1.262E-01 Esfinganina-1 -fosfato d18:0 16,834 2.617E-01

Glc/GalCer(d 18:1 /24:1): -16,527 2.436E-01

SM (d 18:1/16:0) id 18:1/15:1-OH): -15,898 1.986E-01

Ratones PCSK9'f' en comparación con el tipo silvestre con una dieta Western

Proporción de concentración lípido- lípido: Variación porcentual valor p Proporción de concentración lipido-lipido Variación porcentual valor p

Disminución: Aumento

CE 16:0/CE 20:3: -48,833 1.67E-04 LPC 16:1/TAG 56:5 117,120 4.74E-03

Cer(d18:0/24:0)/Cer(d18:1/18: 0): -49,008 8.69E-04 Cer(d18:1/18:0)/Cer(d18:1/26:1) 88,778 1.09E-02

Cer(d18:1/24:0)/LPC 16:1: -49,150 3.63E-04 TAG 50:2/TAG 54:5 86,223 3.35E-02

CE 18:1/Esfinqosina d16:1: -49,803 1.16E-05 CE 20:3/Glc/GalCer(d18:1/16:0) 84,705 1,31 E-02

PC 16:0/16:0/Esfinqosina d16:1: -50,221 9.85E-06 CE 20:3/TAG 54:4 82,091 2.72E-02

Cer(d18:0/22:0)/Esfinqosina d16:1: -51,551 3.75E-05 PC 18:2/18:2/TAG 56:5 76,494 4.27E-02

Cer(d18:1/24:0)/Esfinqosina d16:1: -51,685 4.14E-06 CE 20:3/PC 16:0/16:0 70,816 7.47E-03

Cer(d 18:0/24:0)/PC 18:2/18:2: -52,891 8.28E-03 Cer(d18:l/18:0)/Glc/GalCer(d18:1 124:0) 64,951 7.32E-03

Cer(d18:0/24:0)/PC 16:0/20:4: -53,440 1.63E-02 CE 20:3/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1-OH) 58,191 1.14E-02

Cer(d18:0/24:0)/Esfinganina d18:0: -54,294 9,41 E-03 Cer(d18:1/18:0)/Cer(d18:1/22:0) 54,941 1.35E-02

Cer(d18:1/26:1)/LPC 16:1: -54,395 1.43E-03 LPC 16:1/PC 16:0/16:0 53,424 3.69E-03

Cer(d18:0/24:0)/PC 16:0/20:3: -54,574 2.28E-02 CE 20:3/FC 52,675 2.54E-02

Glc/GalCer(d18:1 /16:0)/Esfingosina d16:1: -54,630 1.22E-04 LPC 16:1/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1-OH) 47,406 6.67E-03

Cer(d18:0/24:0)/Esfinqosina d16:1: -58,674 4.36E-04 Cer(d 18:1 /24:1 )/Cer(d 18:1 /26:1) 46,396 2.48E-03

Cer(d18:0/24:0)/LPC 16:1: -61,145 1.34E-03 Esfingosina d16:1/Esfingosina-1- fosfato d18:1 37,012 2,81 E-03



: Pl 18:0/20:4/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1-OH) 36,227 9.39E-03

Tabla 2d. Biomarcadores significativos tomando como base la medición individual de lípidos o la proporción de concentración lípido-lípido detectada en ratones PCSK9+/' con una dieta Western en comparación con los ratones de tipo silvestre. Se presentan los nombres de las especies, los valores p y los cambios de porcentaje.

Ratones PCSK9en comparación con el tipo silvestre con una dieta Western

Nombre de la medición: Variación porcentual valor p Nombre de la medición Variación porcentual valor p

Disminución: Aumento

Cer(d18:0/22:0): -58,820 3.240E-05 Esfingosina (SPH) d 16:1 107,934 4.509E-07

Cer(d18:0/24:0): -57,003 5.688E-04 SPH Total 75,244 4.162E-05

Glc/GalCer(d 18:1/24:0): -54,076 9.882E-07 Esfingosina d18:1 72,779 7.344E-05

Glc/GalCer(d 18:1 /26:1): -51,762 5.315E-07 Esfinganina-1-fosfato d18:0 70,319 1.192E-05

Cer(d18:0/24:1): -51,729 4.012E-03 Esfinganina d18:0 62,423 7.539E-05

Glc/GalCer(d 18:1 /24:1): -48,741 6.131E-04 Esfingosina-1-fosfato d18:1 53,308 6.250E-06

Cer(d18:1/24:0): -47,795 2.927E-08 CE 20:4 50,933 1.436E-02

Cer(d18:1/26:1): -47,142 2.122E-07 SM (d18:1/24:0) (d18:1/23:1-OH) 49,321 4,971 E-02

LacCerfd 18:1/24:0): -45,674 2.048E-04 PC 18:1/22:6 41,215 4.282E-02

Glc/GalCer(d 18:1/26:0): -43,777 3.426E-04 PC 18:1/20:4 39,998 4.105E-02

Total Glc/GalCer: -43,704 1.188E-03 LPC 16:1 30,783 5.904E-02

Glc/GalCer(d 18:1/22:0): -43,038 9.953E-03 PC 16:0/20:3 30,331 1.023E-01

CE 18:0: -38,988 3.123E-02 PC 16:0/22:6 26,848 7.083E-02

LacCer(d18:1/22:0): -38,829 2.682E-04 CE 22:6 26,051 1,43 IE-01

Total Cer: -36,509 1.904E-04 CE 18:2 25,895 5.265E-02

Cer(d18:1/26:0): -35,073 2.640E-04 CE Total 25,389 4.560E-02

LacCer(d18:1/24:1): -33,935 2.435E-04 PC 16:0/20:4 22,578 9.245E-02

Cer(d18:1/22:0): -32,533 1.857E-02 CE 16:1 21,981 1.514E-01

Cer(d18:1/24:1): -29,447 1.722E-02 CE 18:3 21,230 8.476E-02

LacCer Total: -29,179 2.627E-04 Cer(d18:1/18:0) 20,846 2.314E-01

Glc/GalCer(d 18:1/20:0): -28,509 1.167E-01 Pl 18:0/20:4 19,870 1.635E-01

Glc/GalCer(d 18:1/16:0): -24,831 2.714E-02 PC 18:2/18:2 19,299 1,19 IE-01

CE 16:0: -19,411 3.007E-04 LPC 20:4 16,370 2.785E-01



: PC 18:1/18:2 15,307 1.773E-01

Ratones PCSKS"' en comparación con el tipo silvestre con una dieta Western

Disminución: Aumento

Cer(d18:0/24:1)/FC: -56,408 0.000E+00 CE 20:3/Glc/GalCer(d18:1/26:1) 360,547 1.498E-03

LacCer(d18:1/16:0)/Esfingosina d16:a: -56,691 9.21 IE-10 CE 20:3/Cer(d18:0/24:0) 305,964 1.938E-04

Glc/GalCer(d 18:1/24:0)/PC 16:0/20:4: -61,038 2.913E-10 CE 20:3/Cer(d18:1/24:0) 300,319 4.185E-04

CE 16:0/Esfingosina d 16:1: -64,159 1.949E-08 CE 20:3/Cer(d18:0/22:0) 299,250 1.003E-04

Glc/GalCer(dl 8:1/24:1)/Esfinqosina d18:1: -68,880 7.661 E-06 CE 20:3/Cer(d18:1/26:1) 282,779 9,631 E-05

Cer(d18:l/24:0)/Esfinqosina d18:1: -69,354 7.730E-09 CE 20:4/Cer(d18:0/22:0) 268,566 1.737E-06

Glc/GalCer(d18:1/24:0)/ Esfinqosina-1-fosfato d18:1: -69,806 1.083E-08 CE 20:5/Cer(d18:0/22:0) 255,932 6,261 E-06

Glc/GalCer(d18:1/24:0)/ Esfinqosina d18:1: -72,584 4.488E-08 CE 20:4/Cer(d18:0/24:0) 241,592 2.033E-05

Glc/GalCer(d18:1/24:0)/ Esfinqosina -1-fosfato d18:0: -72,647 3.066E-08 CE 20:4/Glc/GalCer(d18:1/24:0) 219,850 4.296E-08

Cer(d18:0/24:0)/PC 18:1/20:4: -73,450 7.227E-04 CE 20:5/Cer(d18:0/24:1) 210,249 2.136E-05

Cer(d18:1/24:0)/Esfingosina d16:1: -75,303 5.327E-10 CE 22:6/Cer(d18:0/22:0) 210,101 7.122E-06

Glc/GalCer(d18:1/24:0)/ Esfinqosina d16:1: -78,076 1.085E-10 CE 16:1/Cer(d18:0/22:0) 197,486 8.513E-06

Cer(d18:0/24:0)/ Esfingosina d16:1: -79,943 1.970E-06 Cer(d 18:1 /18:0)/Glc/Ga ICer(d 18:1 /2 6:1) 176,575 6.844E-04



: CE 18:2/Glc/GalCer(d18:1/24:0) 171,724 5.882E-09



: CE 18:3/Glc/GalCer(d18:1/24:0) 157,031 4.734E-09



: Cer(d18:1/18:0)/Glc/GalCer(d18:1/2 4:0) 155,600 1,81 IE-08



: LPC 16:1 /LacCer(d18:1 /24:0) 129,430 4.599E-03

Tabla 3a. Biomarcadores significativos tomando como base la medición individual de lípidos en muestras de ser humano. Se presentan los nombres de las especies, los valores p y las variaciones porcentuales. También se 5 indican los biomarcadores tradicionalmente usados, su variación porcentual y el valor p. Los biomarcadores lipfdicos individuales indicados en la lista tienen separación de inhibición de PCSK9 mejorada en comparación con los marcadores tradicionalmente usados, por ejemplo colesterol-LDL.

R46L humano en comparación con control

Nombre de la medición: Variación porcentual valor p

Disminución

CE 20:3: -29,391 1.547E-02

CE 20:5: -27,746 1.640E-01

CE 17:1: -27,380 1.629E-02

SM (d18:1/17:0) (d18:1/16:1-OH): -25,747 1.721E-01

R46L humano en comparación con control

Nombre de la medición: Variación porcentual valor p

Disminución

CE 20:4: -25,511 3,724E-02

CE 16:1: -25,210 1,962E-01

LPC 16:0: -22,167 3,356E-02

LacCer(d18:1/18:0): -21,812 3,98E-04

CE 18:1: -21,788 4,631E-02

SM (d18:1/23:0) (d18:1/22:1-OH): -19,747 1,492E-01

SM (d18:1/24:1) (d18:1/23:2-OH): -19,672 1,301E-01

GlcCer(d18:1/18:0): -19,105 2,016E-01

Cer(d18:1/18:0): -19,012 1,895E-01

SM (d18:1/16:1) (d18:1/15:2-OH): -18,823 4,836E-02

CE 14:0: -18,283 1,695E-01

Cer(d18:1/16:0): -17,722 1,212E-01

Cer(d18:0/22:0): -17,713 6,35E-02

CE 18:3: -17,559 2,100E-01

LacCer(d18:1/16:0): -16,866 6,083E-02

SM (d18:1/18:0): -16,804 1,568E-01

SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1-OH): -16,758 8,385E-02

CE 16:0: -15,966 5,712E-02

CE 15:0: -15,068 2,266E-01

GlcCer(d18:1/16:0): -14,968 1,989E-01

CE 18:0: -14,770 2,346E-01

Cer(d18:1/20:0): -14,495 5,55E-03

GlcCer(d18:1 /24:0): -13,668 7,13E-02

PC 18:0/20:3: -11,595 6,83E-02

PC 16:0/16:0: -11403 5,19E-02

Marcadores tradicionales

colesterol- LDL (clínico): -10,105 9,77E-02

Colesterol Total (clínico): -8,417 4,94E-02

Triglicéridos (clínico): -4,372 5,98E-01

colesterol-HDL (clínico): -0,330 9,55E-01

Tabla 3b. Biomarcadores significativos tomando como base la medición individual de lípidos o las proporciones de concentración lípido-lípido en muestras de ser humano. Se presentan los nombres de las especies, los valores p y las variaciones porcentuales.

5

Proporción lípido-lípido: Variación porcentual valor p

Disminución

CE 22:2/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -50,105 5,44E-04

LacCer(d18:1/18:0)/proteína C reactiva supersensible (mg/l): -49,645 3,60E-04

CE 20:0/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -47,596 5,03E-03

CE 19:1/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -41,469 8,90E-04

LacCer(d18:1/24:1)/proteína C reactiva supersensible (mg/l): -41,057 1,50E-02

Cer(d18:1/16:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -39,696 1,28E-04

DAG 16:0/18:1/lipoproteína(a) (EDTA) (mg/dl): -38,988 1,78E-02

CE 15:0/ proteína C reactiva supersensible (mg/l): -38,142 4,22E-02

CE 20:0/PC 0-18:0/20:4-alquenilo (PC 0-18:1/20:4-alquilo): -37,546 2,35E-02

CE 19:2/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -36,841 1,40E-02

LacCer(d18:1/18:0)/SM (d18:1/23:l) (d18:1/22:2-OH): -36,267 1,27E-06

GlcCer(d18:1/18:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:l/22:2-OH): -36,247 4,76E-06

CE 20:3/ proteína C reactiva supersensible (mg/l): -35,784 3,48E-02

CE 18:0/ proteína C reactiva supersensible (mg/l): -35,292 3,46E-02

GlcCer(d18:1/16:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -35,278 1,97E-05

Cer(d18:1/18:0)/PC 18:0/22:6: -34,301 3,77E-05

Cer(d18:1/18:0)/SM (d18:1/23:l) (d18:1/22:2-OH): -34,006 2,53E-04

LacCer(d18:1/24:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -33,961 1,38E-05

CE 22:2/PC 0-18:0/20:4-alquenilo (PC 0-18:1/20:4-alquilo): -33,340 2,11 E-02

CE 16:1/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -32,963 4,56E-04

LacCer(d18:1/16:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -31,627 1,65E-05

CE 22:2/DAG 16:0/18:1: -31,231 1.31E-02

GlcCer(d18:1/24:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -31,159 7.13E-05

Cer(d18:1/18:0)/PC 0-18:0/20:4-alquenilo (PC 0-18:1/20:4- alquilo): -30,696 8.50E-05

LacCer(d18:1/22:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -30,368 6.54E-04

CE 14:0/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -30,267 I.74E-03

CE 18:3/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -30,194 7,31 E-05

Cer(d18:1/16:0)/ triqlicéridos (EDTA) (mq/dl): -30,006 9.36E-07

Cer(d18:1/16:0)/triqlicéridos (EDTA) (mq/dl): -30,006 9.36E-07

Cer(d18:1/18:0)/triglicéridos (EDTA) (mg/dl): -27,662 1.79E-07

Cer(d18:1/18:0)/D AG 16:0/18:1: -26,271 2E-05

Cer(d18:1/18:0)/apolipoproteína C-lll (mq/dl): -24,685 2.36E-05

CE 20:3/HDL colesterol (EDTA) (mq/dl): -24,559 3.19E-05

CE 20:3/apol¡poproteína A-l (mq/dl): -24,189 3.2E-05

Aumento

PC 18:0/22:6/SM (d18:1/24:0) (d18:1/23:1-OH): 33,954 4.87E-02

Tabla 4a. Biomarcadores de ratones PCSK9'A con pienso regular.

Ratones PCSK9■' en comparación con el tipo silvestre con una dieta de pienso regular

Disminución: Aumento

TAG 60:12: -64,990 2.508E-04 TAG 54:3 106,898 3.787E-02

Glc/GalCer(d 18:1/20:0): -61,304 5,021 E-07 TAG 54:4 83,059 3,721 E-02

Glc/GalCer(d 18:1/18:0): -60,966 7.032E-14 TAG 52:4 73,643 2.485E-02

Glc/GalCer(d 18:1/22:0): -58,750 2.897E-06 TAG 56:5 71,820 4.739E-02

Glc/GalCer(d 18:1/16:0): -56,593 4.968E-12 TAG 54:5 70,166 1.239E-02

Total Glc/GalCer: -55,866 6,261 E-07 TAG 52:5 69,317 4.417E-02

SM fd 18:1/16:0) (d18:1/15:1-OH): -54,947 2.058E-16 TAG 54:6 52,606 1.530E-02

LacCer(d18:1/16:0): -54,523 8.517E-10 TAG 54:7 40,748 4.048E-02

Glc/GalCer(d 18:1 /24:1): -53,028 6.967E-05

Total LacCer: -51,984 4.137E-08

CE 16:1: -51,509 3,221 E-05

Proporción de concentración lipido-lípido: Variación porcentual valor p Proporción de concentración lipido- lípido Variación porcentual valor p

Disminución: Aumento

Glc/GalCer(d18:1/18:0)/TAG 52:4: -82,312 4.937E-05 TAG 58:10/TAG 60:12 139,279 6,521 E-07



: LPC 18:2/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH) 98,384 7.626E-12



: LPC 18:2/LacCer(d18:1/16:0) 94,112 3.915E-10



: Cer(d18:0/24:0)/FC 89,233 0.000E+00



: Cer(d 18:0/22:0)/Cer(d 18:1/22:0) 82,249 1.926E-07



: Cerfd 18:1 /16:0)/Glc/GalCer(d 18:1/16:0) 63,539 2.374E-09



: Cer(d18:0/24:0)/PC 16:0/18:2 59,693 0.000E+00

Tabla 4b. Biomarcadores de ratones PCSK9+/~ con pienso regular.

or‘Ci/n+/* »» ... .i ____.:i_____I... ..

Ratones PCSK9*' en comparación con el tipo silvestre con una dieta de pienso regular

Disminución: Aumento

Glc/GalCer(d18:1/22:0): -38,116 1.072E-03 TAG 53:3 98,444

Glc/GalCer(d18:1/20:0): -36,166 1.126E-03 TAG 49:2 81,946

Glc/GalCer Total: -34,200 8.552E-04 TAG 54:3 57,889

Glc/GalCer(d18:1/24:0): -34,067 4.625E-03 TAG 54:5 48,831

Glc/GalCer(d 18:1/24:1): -30,734 1.378E-02 TAG 50:4 46,374

SM (di 8:1 /16:0) (d18:1/15:1-OH): -30,205 1.297E-08 TAG 54:8 45,668

Glc/GalCer(d 18:1/18:0): -29,219 7.332E-06

Glc/GalCer(d18:1/16:0): -27,063 6,051 E-05

LacCer(d18:1/24:0): -26,786 5.566E-02

LacCer Total: -24,058 3.203E-03

Proporción de concentración lipido- lípido: Variación porcentual valor p Proporción de concentración lipido- lípido Variación porcentual valor p

Disminución: Aumento

Cer(d18:0/22:0)/PC 16:0/18:2: -12,964 0.000E+00 CE 20:5/Glc/GalCer(dl 8:1/24:0) 82,189 7.377E-03

Glc/GalCer(d18:1/18:0)/PC 16:0/20:4: -33,636 1.669E-05 PC 18:2/18:2/SM (d18:1/16:0) (d18:1/15:1- OH) 63,587 9.679E-06

Glc/GalCer(d18: l/22:0)/LPC 20:4: -51,506 8.433E-04 CE 2 0: 4/S M (d18 : 1/16:0) (d18:1/15:1-OH) 42,452 1.598E-05

Tabla 4c. Biomarcadores de ratones PCSK9V~ con dieta Western

Ratones PC$K9'/' en comparación con el tipo silvestre con una dieta Western

Disminución: Aumento

Cer(d18:0/24:0): -36,791 2.958E-02 Esfinqosina d 16:1 64,323 1.533E-03

Cer(d18:1/26:1): -32,004 2.558E-04 Total SPH 50,856 5.789E-03

Cer(d18:0/22:0): -28,800 3.316E-02 Esfinaosina d18:1 49,840 7.175E-03

Glc/GalCerfd 18:1 /26:1): -27,701 4,23 IE-03 Esfinqanina d18:0 41,602 8.815E-03

Glc/GalCerfd 18:1/16:0): -26,867 2.746E-02 SPA Total 41,602 8.815E-03

Cer(d18:1/26:0): -26,304 7.863E-03 LPC 16:1 27,750 1.120E-01

Cer(d18:1/24:0): -25,281 1,231E-03 Esfingosina-1 -fosfato d18:1 21,375 5.453E-02

Glc/GalCerfd 18:1/24:0): -25,124 1.452E-02 Total SIP 21,375 5.453E-02

CE 16:0: -22,506 1.299E-04 Esfinganina-1 -fosfato d18:0 16,834 2.617E-01

Total Glc/GalCer: -22,165 1.058E-01

CE 18:1: -19,571 3.429E-02

LacCer(d18:1/22:0): -19,021 7.362E-02

Total Cer: -18,476 5.787E-02

Proporción de concentración lipido- lípido: Variación porcentual valor p Proporción de concentración lipido- lipido Variación porcentual valor p

Disminución: Aumento

Cer(d18:0/24:0)/Cer(d 18:1/18:0): -49,008 8.69E-04 LPC 16:1/TAG 56:5 117,120 4.74E-03

CE 18:1/Esfingosina d16:1: -49,803 1.16E-05 CE 20:3/PC 16:0/16:0 70,816 7.47E-03

PC 16:0/16:0/Esfingosina d16:1: -50,221 9.85E-06 Cer(d 18:1/18:0)/Glc/GalCer(d 18:1/24:0) 64,951 7.32E-03

Cer(d18:1/24:0)/ Esfinaosina d16:1: -51,685 4.14E-06

Cerfd 18:0/24:0)/ Esfinaosina d16:1: -58,674 4.36E-04

5 Tabla 4d. Biomarcadores de ratones PCSK9+/' con dieta Western

^ r*¡ IWSNri i ^4-^ rtArn

Ratones PCSK9T,m en comparación con el tipo silvestre con dieta Western

Disminución: Aumento

Cer(d18:0/22:0): -58,820 3.240E-05 Esfinqosina d 16:1 107,934 4.509E-07

Cer(d18:0/24:0): -57,003 5.688E-04 Total SPH 75,244 4.162E-05

Glc/GalCerfd 18:1/24:0): -54,076 9.882E-07 Esfinqosina d18:1 72,779 7.344E-05

Glc/GalCer(d 18:1 /26:1): -51,762 5.315E-07 Esfinqanina-1-fosfato d18:0 70,319 1.192E-05

Cer(d18:0/24:1): -51,729 4.012E-03 Total SA1P 70,319 1.192E-05

Glc/GalCerfd 18:1 /24:1): -48,741 6.131E-04 Esfinqanina d18:0 62,423 7.539E-05

Cer(d18:1/24:0): -47,795 2.927E-08 Total SPA 62,423 7.539E-05

Cer(d18:1/26:1): -47,142 2.122E-07 Esfinqosina-1 -fosfato d18:1 53,308 6.250E-06

LacCerfd 18:1/24:0): -45,674 2.048E-04 Total SIP 53,308 6.250E-06

Glc/GalCerfd 18:1/26:0): -43,777 3.426E-04

Proporción de concentración lipido-lípido: Variación porcentual valor p Proporción concentración lipido-lípido Variación porcentual valor p

Disminución: Aumento

Cer(d18:0/24:1)/FC: -56,408 0.000E+00 CE 18:3/Glc/GalCer(d18:1/24:0) 157,031 4.734E-09

Glc/GalCer(d18: 1/24:0)/ Esfinqosina d16:1: -78,076 1.085E-10 CE 18:2/Glc/GalCer(d18:1/24:0) 171,724 5.882E-09

Glc/GalCer(d18: 1/24:0)/PC 16:0/20:4: -61,038 2.913E-10 Cer(d18:1/18:0)/Glc/GalCer(d18:1/24:0) 155,600 1,811 E-08



: CE 20:4/Glc/GalCer(d18:1/24:0) 219,850 4.296E-08

Tabla 5. Biomarcadores humanos.

R46L humano en comparación con control

Lípido: Variación porcentual valor p

Disminución

CE 16:1: -23,1181918 1,91 E-04

CE 20:3: -22,8724155 3.59E-05

Cer(d18:1/16:0): -22,1234175 5.98E-04

Cer(d18:1/18:0): -21,9814365 5.13E-04

LacCer(d18:1/18:0): -21,8121857 3.98E-04

GlcCer(d18:1/18:0): -18,6701034 2.55E-03

LacCer(d18:1/16:0): -17,8457737 1.20E-04

GlcCer(d18:1/16:0): -17,6341642 2.83E-03

CE 18:1: -17,5455244 2.72E-04

CE 16:0: -14,8193897 5.06E-04

Proporción de concentración lípido-lípido: Variación porcentual valor p

Disminución

CE 22:2/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -50,105 5.44E-04

Cer(d18:1/16:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -39,696 1.28E-04

LacCer(d18:1/18:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -36,267 1.27E-06

GlcCer(d18:1/18:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -36,247 4.76E-06

GlcCer(d18:1/16:0)/SM (d18:1/23:1) (d18:1/22:2-OH): -35,278 1.97E-05

Cer(d18:1/18:0)/PC 18:0/22:6: -34,301 3.77E-05

Cer(d18:1/16:0)/ triqlicéridos (EDTA) (mg/dl): -30,006 9.36E-07

Cer(d18:1/18:0)/triqlicéridos (EDTA) (mg/dl): -27,662 1.79E-07

Cer(d18:1/18:0)/D AG 16:0/18:1: -26,271 2.00E-05

Cer(d18:1/18:0)/apolipoproteína C-lll (mg/dl): -24,685 2.36E-05

CE 20:3/colesterol HDL (EDTA) (mg/dl): -24,559 3.19E-05

CE 20:3/apolipoproteína A-l (mg/dl): -24,189 3.20E-05

Tabla 6. Ejemplos de posibles combinaciones de ácidos grasos por especie de TAG en bruto.

Especies de TAG en bruto: Posibles combinaciones de ácidos grasos (FA)

TAG 49:2 total: TAG 49:2 total (12:0/18:2/19:0)( 15:0/16:0/18:2)(15:0/16:1/18:1)

TAG 50:2 total: TAG 50:2 total (12:0/18:0/20:2)(12:0/18:1/20:1)(12:0/18:2/20:0)(14:0/16:0/20:2)(14:0/16:1/20:1)(14:0/18:0/18:2) (14:0/18:1/18:1 )(15:0/15:0/20:2)( 15:0/17:0/18:2)( 16:0/16:0/18:2)(16:0/16:1/18:1)(16:1/16:1/18:0)

TAG 50:3 total: TAG50:3 total (12:0/18:0/20:3)(12:0/18:1/20:2)(12:0/18:2/20:1)(12:0/18:3/20:0)(14:0/16:0/20:3)(14:0/ 6:1/20:2) (14:0/18:0/18:3)(14:0/18:1/18:2)( 16:0/16:0/18:3)(16:0/16:1/18:2)(16:1/16:1/18:1)

TAG 50:4 total: TAG 50:4 total (12:0/18:0/20:4)(12:0/18:1/20:3)(12:0/18:2/20:2)( 12:0/18:3/20:1)(14:0/16:0/20:4)(14:0/16:1/20:3) (14:0/16:2/20:2)(14:0/18:1/18:3)(14:0/18:2/18:2)( 16:0/16:1/18:3)(16:0/16:2/18:2)(16:1/16:1/18:2) (16:1/16:2/18:1)(16:2/16:2/18:0)

TAG 50:5 total: TAG 50:5 total (14:0/16:1/20:4)(14:0/18:2/18:3)(16:0/16:2/18:3)(16:1/16:1/18:3)(16:1/16:2/18:2) (16:2/16:2/18:1

TAG 51:4 total: TAG 51:4 total (15:0/18:1/18:3)( 15:0/18:2/18:2)(16:1/17:0/18:3)

TAG 52:2 total: TAG 52:2 total (14:0/18:0/20:2)(14:0/18:1/20:1)(15:0/17:0/20:2)(16:0/16:0/20:2)(16:0/16:1/20:1) (16:0/18:0/18:2)(16:0/18:1/18:1 )(16:1/18:0/18:1 )(17:0/17:0/18:2)

TAG 52:3 total: TAG 52:3 total (14:0/16:1/22:2)(14:0/16:2/22:1)(14:0/18:1/20:2)( 14:0/18:2/20:1)(14:0/18:3/20:0)(16:0/ 16:1/20:2)(16:0/16:2/20:1 )(16:0/18:0/18:3)(16:0/18:1/18:2)(16:1/16:1/20:1)(16:1/16:2/2 0:0)(16:1/18:0/18:2)(16:1/18:1/18:1)(16:2/18:0/18:1)(17:0/17:0/18:3)

TAG 52:4 total: TAG 52:4 total (14:0/16:0/22:4)(14:0/16:1/22:3)(14:0/16:2/22:2)(14:0/18:0/20:4)(14:0/18:1/20:3)(14:0/ 18:3/20:1 )(16:0/16:0/20:4)(16:0/16:1/20:3)(16:0/16:2/20:2)(16:0/18:1/18:3)(16:0/18:2/18:2) (16:1/16:1/20:2)(16:1/16:2/20:1 )(16:1/18:0/18:3)(16:1/18:1/18:2)(16:2/16:2/20:0)(16:2/18:0/18:2)

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Especies de TAG en bruto: Posibles combinaciones de ácidos grasos (FA)_____________________________________

: (16:1/18:1/18:3)(16:1/18:2/18:2)(16:2/16:2/20:1 )(16:2/18:1/18:2)

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En resumen, este estudio proporciona nuevos marcadores lipidíeos para determinar la eficacia y la especificidad de inhibidores y silenciadores de PCKS9. Dado que solo la medición del colesterol LDL no es suficiente para proporcionar información sobre posibles reacciones adversas a fármacos, los biomarcadores lipidómicos son marcadores más específicos y sensibles para determinar la eficacia de inhibidores y silenciadores de PCSK9.

5

Los expertos en la técnica reconocerán, o podrán determinar, usando tan solo experimentación habitual, numerosos equivalentes a los elementos y realizaciones que se describen en el presente documento, tanto en los ejemplos como en el desarrollo de la descripción de toda la patente. Dichos equivalentes se consideran dentro del ámbito de la presente invención y quedan incluidos en las siguientes reivindicaciones.

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Claims

REIVINDICACIONES

1. Un método para determinar en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un ¡nhibidor/silenciador de PCSK9, que comprende determinar, en una muestra de dicho sujeto, la concentración de Cer(d18:1/16:0), en el que una

5 concentración disminuida en dicha muestra, cuando se compara con un control, indica alta eficacia de dicho tratamiento.
2. Un método para predecir en un sujeto la eficacia de un tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9, que comprende determinar, en una muestra de dicho sujeto, la concentración de Cer(d18:1/16:0), en el que una

10 concentración aumentada en dicha muestra, cuando se compara con un control, indica que dicho tratamiento será eficaz.
3. Un método para determinar el cumplimiento, por parte de un sujeto, de un tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9, que comprende determinar, en una muestra de dicho sujeto, la concentración de Cer(d18:1/16:0), en el

15 que una concentración disminuida en dicha muestra, cuando se compara con un control, indica buen cumplimiento del tratamiento.
4. Un método para identificar compuestos que son útiles como inhibidores/silenciadores de PCSK9, que comprende determinar en una muestra de un sujeto no humano que se somete a tratamiento con dicho compuesto, la

20 concentración de Cer(d18:1/16:0), en el que una concentración disminuida en dicha muestra, cuando se compara con un control, indica su utilidad como fármaco hipolipemiante.
5. El método de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 4, en el que dicho sujeto con respecto al cual se realiza una comparación es:

25

(a) un paciente que se somete a tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9 u otro compuesto que se dirige a PCSK9;

(b) un animal de ensayo que se somete a tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9 u otro compuesto que 30 se dirige a PCSK9; o

(c) un paciente o un animal de ensayo que no se ha sometido y que no se está sometiendo a tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9, con otro compuesto que se dirige a PCSK9 o con un fármaco hipolipemiante distinto de inhibidor/silenciador de PCSK9.

35
6. El método de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, en el que dicho control con el que se realiza una comparación, es una muestra de control del mismo sujeto antes del tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9, respectivamente, o durante la interrupción de dicho tratamiento.

40 7. El método de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, en el que dicho control con el que se realiza la comparación es:

(a) un valor de control establecido de uno o más sujetos sanos, no previamente tratados con un inhibidor/silenciador de PCSK9;

45

(b) un valor de control establecido de uno o más sujetos sanos que no están siendo sometidos a tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9;

(c) una muestra de control de uno o más sujetos portadores de cualquier mutación de pérdida de función en el gen 50 de PCSK9, tal como R46L (rs11591147); o

(d) un valor de control establecido de uno o más sujetos con tratamiento con un inhibidor/silenciador de PCSK9 y sin síntomas o antecedentes de efectos distintos a los deseados inducidos por el fármaco.

55 8. El método de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, que adicionalmente comprende determinar o evaluar el nivel de colesterol LDL en dicho sujeto o en una muestra de dicho sujeto, opcionalmente en el que el sujeto tiene niveles de colesterol LDL reducidos.
9. El método de una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 8, en el que:

60

(a) la muestra es sangre, plasma sanguíneo, suero sanguíneo, o una fracción de los mismos, tal como una fracción de lipoproteína, o una biopsia de tejido; y/o

(b) la concentración de lípidos se determina usando espectrometría de masas, espectroscopia de resonancia 65 magnética nuclear, espectroscopia de fluorescencia o interferometría de polarización dual, un método de

30

separación de alta resolución, tal como HPLC o UPLC, un inmunoensayo tal como un ELISA y/o con una porción de unión capaz de unirse específicamente al analito.
10. El método de cualquiera de las reivindicaciones 1 a 9, en el que el inhibidor/silenciador de PCSK9 se selecciona 5 de:

(a) uno o más anticuerpos contra PCSK9;

(b) un inhibidor farmacológico de PCSK9;

10

(c) una molécula pequeña que inhibe la interacción del receptor de LDL con PCSK9,

(d) un péptido que imita el dominio de interacción del receptor de LDL con PCSK9;

15 (e) uno o más ARNip específicos para el ARNm de PCSK9; y/o

(f) uno o más oligonucleótidos antisentido específicos para el ARNm de PCSK9.