ES2355788A1 - Metodo para la obtencion de oligosacaridos vegetales. - Google Patents
Metodo para la obtencion de oligosacaridos vegetales. Download PDFInfo
- Publication number
- ES2355788A1 ES2355788A1 ES200930375A ES200930375A ES2355788A1 ES 2355788 A1 ES2355788 A1 ES 2355788A1 ES 200930375 A ES200930375 A ES 200930375A ES 200930375 A ES200930375 A ES 200930375A ES 2355788 A1 ES2355788 A1 ES 2355788A1
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- fiber
- oligosaccharides
- section
- insoluble
- obtaining
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 71
- 235000013311 vegetables Nutrition 0.000 title claims abstract description 20
- 239000000835 fiber Substances 0.000 claims abstract description 90
- 229920001542 oligosaccharide Polymers 0.000 claims abstract description 58
- 150000002482 oligosaccharides Chemical class 0.000 claims abstract description 56
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 22
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 claims abstract description 18
- 108010031186 Glycoside Hydrolases Proteins 0.000 claims abstract description 17
- 102000005744 Glycoside Hydrolases Human genes 0.000 claims abstract description 17
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 31
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 claims description 26
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 claims description 26
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 claims description 26
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical group O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 26
- 235000010469 Glycine max Nutrition 0.000 claims description 15
- 101710121765 Endo-1,4-beta-xylanase Proteins 0.000 claims description 12
- 239000008351 acetate buffer Substances 0.000 claims description 11
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 claims description 11
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 claims description 11
- YERABYSOHUZTPQ-UHFFFAOYSA-P endo-1,4-beta-Xylanase Chemical compound C=1C=CC=CC=1C[N+](CC)(CC)CCCNC(C(C=1)=O)=CC(=O)C=1NCCC[N+](CC)(CC)CC1=CC=CC=C1 YERABYSOHUZTPQ-UHFFFAOYSA-P 0.000 claims description 11
- 101710130006 Beta-glucanase Proteins 0.000 claims description 9
- 244000068988 Glycine max Species 0.000 claims description 9
- 238000011534 incubation Methods 0.000 claims description 9
- 230000002779 inactivation Effects 0.000 claims description 8
- 108010059892 Cellulase Proteins 0.000 claims description 6
- 229940106157 cellulase Drugs 0.000 claims description 5
- 241000220485 Fabaceae Species 0.000 claims description 4
- 235000021374 legumes Nutrition 0.000 claims description 4
- 239000012429 reaction media Substances 0.000 claims 2
- 239000000047 product Substances 0.000 abstract description 11
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 abstract description 8
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 abstract description 4
- 235000013527 bean curd Nutrition 0.000 abstract description 3
- 238000012545 processing Methods 0.000 abstract description 3
- 235000013322 soy milk Nutrition 0.000 abstract description 3
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 26
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 23
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 19
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 13
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 13
- 150000004804 polysaccharides Chemical class 0.000 description 13
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 11
- 230000007071 enzymatic hydrolysis Effects 0.000 description 8
- 238000006047 enzymatic hydrolysis reaction Methods 0.000 description 8
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 7
- 235000013406 prebiotics Nutrition 0.000 description 7
- 229920002488 Hemicellulose Polymers 0.000 description 6
- 229920001221 xylan Polymers 0.000 description 6
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 5
- 230000008569 process Effects 0.000 description 5
- SRBFZHDQGSBBOR-IOVATXLUSA-N D-xylopyranose Chemical compound O[C@@H]1COC(O)[C@H](O)[C@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-IOVATXLUSA-N 0.000 description 4
- 230000029087 digestion Effects 0.000 description 4
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 4
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 3
- 108010001817 Endo-1,4-beta Xylanases Proteins 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N arabinose Natural products OCC(O)C(O)C(O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 3
- SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N beta-D-Pyranose-Lyxose Natural products OC1COC(O)C(O)C1O SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000009835 boiling Methods 0.000 description 3
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 3
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 3
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 3
- 239000002612 dispersion medium Substances 0.000 description 3
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 3
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 3
- 230000036541 health Effects 0.000 description 3
- 238000005457 optimization Methods 0.000 description 3
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 3
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 3
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 3
- 150000004823 xylans Chemical class 0.000 description 3
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M Acetate Chemical compound CC([O-])=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 101710104295 Beta-1,4-xylanase Proteins 0.000 description 2
- 108010084185 Cellulases Proteins 0.000 description 2
- 102000005575 Cellulases Human genes 0.000 description 2
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 108700034637 EC 3.2.-.- Proteins 0.000 description 2
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 2
- 229920001503 Glucan Polymers 0.000 description 2
- 241000222057 Xanthophyllomyces dendrorhous Species 0.000 description 2
- 230000009471 action Effects 0.000 description 2
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 2
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 2
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 2
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 description 2
- 235000014633 carbohydrates Nutrition 0.000 description 2
- 210000001072 colon Anatomy 0.000 description 2
- 238000005238 degreasing Methods 0.000 description 2
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 2
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 2
- 108010091371 endoglucanase 1 Proteins 0.000 description 2
- 108010091384 endoglucanase 2 Proteins 0.000 description 2
- 108010092450 endoglucanase Z Proteins 0.000 description 2
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 2
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 2
- 235000013376 functional food Nutrition 0.000 description 2
- 229940059442 hemicellulase Drugs 0.000 description 2
- 108010002430 hemicellulase Proteins 0.000 description 2
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 2
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 2
- 150000002772 monosaccharides Chemical class 0.000 description 2
- 150000002972 pentoses Chemical class 0.000 description 2
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 description 2
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 2
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 2
- FYGDTMLNYKFZSV-WFYNLLPOSA-N (2s,3r,4s,5s,6r)-2-[(2r,4r,5r,6s)-4,5-dihydroxy-2-(hydroxymethyl)-6-[(2r,3s,4r,5r,6s)-4,5,6-trihydroxy-2-(hydroxymethyl)oxan-3-yl]oxyoxan-3-yl]oxy-6-(hydroxymethyl)oxane-3,4,5-triol Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1OC1[C@@H](CO)O[C@@H](O[C@@H]2[C@H](O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]2O)CO)[C@H](O)[C@H]1O FYGDTMLNYKFZSV-WFYNLLPOSA-N 0.000 description 1
- OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 100676-05-9 Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OCC1C(O)C(O)C(O)C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)O1 OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920002498 Beta-glucan Polymers 0.000 description 1
- 108700038091 Beta-glucanases Proteins 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N D-mannopyranose Chemical compound OC[C@H]1OC(O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N 0.000 description 1
- RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N Fructose Chemical class OC[C@H]1O[C@](O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N 0.000 description 1
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 1
- 108010073178 Glucan 1,4-alpha-Glucosidase Proteins 0.000 description 1
- 241001480714 Humicola insolens Species 0.000 description 1
- 102000004157 Hydrolases Human genes 0.000 description 1
- 108090000604 Hydrolases Proteins 0.000 description 1
- 102100024295 Maltase-glucoamylase Human genes 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N Maltose Natural products O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)OC(O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-PICCSMPSSA-N 0.000 description 1
- 101000763602 Manilkara zapota Thaumatin-like protein 1 Proteins 0.000 description 1
- 101000763586 Manilkara zapota Thaumatin-like protein 1a Proteins 0.000 description 1
- 101000966653 Musa acuminata Glucan endo-1,3-beta-glucosidase Proteins 0.000 description 1
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 1
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 1
- 102100037486 Reverse transcriptase/ribonuclease H Human genes 0.000 description 1
- 229920002472 Starch Polymers 0.000 description 1
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 1
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 1
- 229920002000 Xyloglucan Polymers 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- 102000004139 alpha-Amylases Human genes 0.000 description 1
- 108090000637 alpha-Amylases Proteins 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N alpha-D-galactose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N 0.000 description 1
- 108010028144 alpha-Glucosidases Proteins 0.000 description 1
- 229940024171 alpha-amylase Drugs 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N arabinose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N 0.000 description 1
- 150000001480 arabinoses Chemical class 0.000 description 1
- 230000009704 beneficial physiological effect Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 125000004432 carbon atom Chemical group C* 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 235000005911 diet Nutrition 0.000 description 1
- 230000037213 diet Effects 0.000 description 1
- 235000013325 dietary fiber Nutrition 0.000 description 1
- 102000038379 digestive enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108091007734 digestive enzymes Proteins 0.000 description 1
- 238000007598 dipping method Methods 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 108010038658 exo-1,4-beta-D-xylosidase Proteins 0.000 description 1
- 235000019197 fats Nutrition 0.000 description 1
- 235000012041 food component Nutrition 0.000 description 1
- 239000005417 food ingredient Substances 0.000 description 1
- 229930182830 galactose Natural products 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 235000001727 glucose Nutrition 0.000 description 1
- 150000002304 glucoses Chemical class 0.000 description 1
- 229930182470 glycoside Natural products 0.000 description 1
- 150000002338 glycosides Chemical class 0.000 description 1
- 230000003862 health status Effects 0.000 description 1
- 150000002402 hexoses Chemical class 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 230000002706 hydrostatic effect Effects 0.000 description 1
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 description 1
- 238000004811 liquid chromatography Methods 0.000 description 1
- 239000000178 monomer Substances 0.000 description 1
- 231100000252 nontoxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000003000 nontoxic effect Effects 0.000 description 1
- 235000008935 nutritious Nutrition 0.000 description 1
- -1 oligosaccharides Oligosaccharides Chemical class 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 230000003449 preventive effect Effects 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 1
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 1
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 235000019698 starch Nutrition 0.000 description 1
- 239000008107 starch Substances 0.000 description 1
- 238000000859 sublimation Methods 0.000 description 1
- 230000008022 sublimation Effects 0.000 description 1
- 238000006467 substitution reaction Methods 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 235000019871 vegetable fat Nutrition 0.000 description 1
- 239000002699 waste material Substances 0.000 description 1
- 150000003742 xyloses Chemical class 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
- C12P19/00—Preparation of compounds containing saccharide radicals
Landscapes
- Organic Chemistry (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Zoology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
Abstract
Método para la obtención de oligosacáridos vegetales.La presente invención se refiere a un método para la obtención de oligosacáridos a partir de cualquier parte de un vegetal, preferiblemente del okara, subproducto que queda tras la elaboración de la leche de soja o de la elaboración del tofu, que comprende las etapas de obtener la fibra soluble y/o insoluble de un vegetal, hidrolizar la fibra del apartado (a) mediante la adición de una mezcla enzimática que comprende al menos una glicosidasa, incubar la mezcla obtenida en el apartado (b) a una temperatura de entre 20 y 50ºC, y aislar los oligosacáridos del producto obtenido en el apartado (c).
Description
Método para la obtención de oligosacáridos
vegetales.
La presente invención se refiere a un método de
obtención de oligosacáridos a partir de cualquier parte de un
vegetal. Preferiblemente los oligosacáridos se obtienen del okara,
subproducto que queda tras la elaboración de la leche de soja o de
la elaboración del tofu. Dicho método comprende la hidrólisis de la
fibra soluble y/o insoluble, o de la fibra insoluble dispersada en
un medio líquido, mediante la adición de una mezcla enzimática que
comprende al menos una glicosidasa. Dicha glicosidasa puede ser al
menos una beta-glucanasa, al menos una xilanasa, al
menos una celulasa, al menos una pentosanasa, al menos una
arabinasa, o cualquiera de sus combinaciones. El método de la
presente invención se ha optimizado para obtener mayores
rendimientos y por ello además puede comprender una etapa de
tratamiento en autoclave previa a la hidrólisis enzimática. Con la
optimización de las condiciones del método de la presente invención
se consigue reducir el tiempo de incubación para llevar a cabo la
hidrólisis, obteniendo además mayores rendimientos. Los
oligosacáridos obtenidos se pueden utilizar para la elaboración de
un alimento funcional.
Algunos de los polisacáridos que constituyen la
fibra alimentaria, así como los oligosacáridos, se consideran
ingredientes prebióticos, ya que son capaces de estimular el
crecimiento selectivo de bacterias del colon beneficiosas para la
salud (Gibson y Roberfroid, 1995, J. Nutr., 125:
1401-1412).
Actualmente los oligosacáridos funcionales se
consideran ingredientes importantes de los alimentos para mantener y
mejorar el estado de salud. Muchos consumidores basan su
alimentación en productos procesados, el aumento del contenido en
oligosacáridos funcionales en alimentos de gran consumo pueden
contribuir a alcanzar los niveles recomendados de carbohidratos no
disponibles (Qiang et al, 2009. Carbohydr Pol, 77:
435-441).
Un alimento puede considerarse funcional si se
demuestra que ejerce un efecto beneficioso sobre una o más funciones
selectivas del organismo, independientemente de sus propiedades
nutritivas, de modo tal que resulte apropiado para mejorar el estado
de salud y bienestar, reducir el riesgo de enfermedad, o ambas
cosas.
Numerosos estudios experimentales y
epidemiológicos atribuyen a la fibra un papel preventivo de diversas
enfermedades especialmente frecuentes en países desarrollados,
debido a la gran variedad de efectos fisiológicos beneficiosos que
presenta en el organismo humano (Cummings et al, 1997. Eur
J Clin Nutr, 51: 417-423; Chandalia et
al, 2000. The New England J Med, 342:
1392-1398; Jenkins et al, 2003. Am J Clin
Nutr, 76: 266-273). Los oligosacáridos presentan
unos efectos cercanos a los de la fibra soluble, ya que debido a su
estructura química no pueden ser hidrolizados por los enzimas
digestivos humanos y muestran algunos de los efectos propios de la
fibra soluble.
Son conocidos procedimientos de obtención de
oligosacáridos prebióticos mediante un proceso enzimático a partir
de maltosa catalizada por la \alpha-glucosidasa de
Xanthophyllomyces dendrorhous (nº de publicación ES 2255847
A1) y la formación de fructooligosacáridos a 45ºC a partir de
sacarosa catalizada por la fructofuranosidasa de
Xanthophyllomyces dendrorhous (Nº de publicación ES 2265297
A1).
Debido a la gran importancia industrial de los
oligosacáridos y su función prebiótica, es deseable proporcionar
nuevos métodos para su obtención a partir de nuevas materias primas,
especialmente si éstas son subproductos que se producen en grandes
cantidades. Asimismo, es igualmente deseable optimizar los métodos
de obtención de oligosacáridos con el objeto de aumentar el
rendimiento obtenido, pudiendo de esta manera rentabilizar de forma
clara dicho proceso.
La presente invención se refiere a un método de
obtención de oligosacáridos a partir de cualquier parte de un
vegetal. Preferiblemente los oligosacáridos se obtienen del okara,
subproducto que queda tras la elaboración de la leche de soja o de
la elaboración del tofu. Dicho método comprende la hidrólisis de la
fibra soluble y/o insoluble, o de la fibra insoluble dispersada en
un medio líquido mediante la adición de una mezcla enzimática que
comprende al menos una glicosidasa. Dicha glicosidasa puede ser al
menos una beta-glucanasa, al menos una xilanasa, al
menos una celulasa, al menos una pentosanasa o al menos una
arabinasa, o cualquiera de sus combinaciones. El método de la
presente invención se ha optimizado para obtener mayores
rendimientos y por ello además puede comprender una etapa de
tratamiento en autoclave previa a la hidrólisis enzimática. Con la
optimización de las condiciones del método se consigue reducir el
tiempo de incubación para llevar a cabo la hidrólisis y obtener
mayores rendimientos a esos tiempos más bajos.
En el caso de que se utilice una parte del
vegetal que contenga más de un 5% de su peso seco de grasa, se
desengrasará dicha muestra para evitar interferencias en las etapas
posteriores de obtención de la fibra soluble y/o insoluble.
El okara de soja es muy rico en fibra
alimentaria, especialmente en polisacáridos insolubles en agua,
tanto celulosa como hemicelulosas, particularmente del tipo xilano y
xiloglucano. La hidrólisis de estos polisacáridos del okara con el
objetivo de obtener oligosacáridos se puede llevar a cabo por
métodos enzimáticos o por métodos químicos. El tratamiento
enzimático empleado en la presente invención presenta ventajas
frente al método químico, como por ejemplo:
- -
- permite una hidrólisis específica y controlada, evitando así la generación de compuestos indeseables.
- -
- las condiciones en las que se desarrolla la reacción enzimática son menos agresivas que las utilizadas en el tratamiento químico (ataque por ácidos).
- -
- la hidrólisis enzimática de los polisacáridos del okara con glicosidasas produce oligosacáridos potencialmente prebióticos que pueden formar parte de un alimento como ingredientes funcionales.
La obtención de polisacáridos del okara de soja
revaloriza dicho subproducto y ayuda a eliminar un problema
ambiental ya que este subproducto es altamente susceptible a la
putrefacción.
Tal como se ha comentado en un párrafo anterior,
en la presente invención se optimiza el método de obtención de
oligosacáridos por medio de la adición de etapas como por ejemplo el
tratamiento en autoclave de la fibra soluble y/o insoluble o de la
fibra insoluble dispersada o de cualquiera de los tipos anteriores
de fibra, desengrasada, o por medio del empleo de diferentes medios
líquidos de dispersión de fibra insoluble. El resultado de dicha
optimización es la reducción del tiempo empleado en la incubación
necesaria para la hidrólisis enzimática de dicha fibra y además, la
obtención de mayores rendimientos a dichos tiempos. Tal como puede
observarse en la tabla 1 de los ejemplos de la presente invención,
cuando se emplea agua destilada en lugar de tampón acetato pH 6 como
medio líquido para la dispersión de 60 mg de fibra insoluble
desengrasada por mL de medio líquido, se obtienen 11,51 g de
oligosacáridos por 100 g de fibra insoluble desengrasada frente a
los 8,2 g de oligosacáridos por 100 g de fibra insoluble
desengrasada cuando se emplea tampón acetato pH 6, a pesar de
mantener una incubación de 180 minutos frente a los 90 minutos
cuando se emplea agua destilada. El rendimiento obtenido cuando se
introduce una etapa de tratamiento en autoclave de la fibra
insoluble desengrasada dispersada en agua destilada, con 10 minutos
de incubación para llevar a cabo la hidrólisis, es de 25,3 g de
oligosacáridos por 100 g de fibra insoluble desengrasada.
Así pues, un aspecto de la presente invención se
refiere a un método para la obtención de oligosacáridos que
comprende:
- a.
- Obtener la fibra soluble y/o insoluble de un vegetal,
- b.
- hidrolizar la fibra del apartado (a) mediante la adición de una mezcla enzimática que comprende al menos una glicosidasa,
- c.
- incubar la mezcla obtenida en el apartado (b) a una temperatura de entre 20 y 50ºC, y
- d.
- aislar los oligosacáridos del producto obtenido en el apartado (c)
En el apartado (a) del método se puede obtener
la fibra soluble, la fibra insoluble o, la fibra soluble e insoluble
(conjunta) de un vegetal. La obtención de la fibra soluble y/o
insoluble de un vegetal se lleva a cabo por medio de cualquier
técnica conocida en el estado de la técnica (ver el apartado de
ejemplos para la obtención de la fibra insoluble). La fibra soluble
y/o insoluble se obtiene de cualquier parte de un vegetal como por
ejemplo, pero sin limitarse, de la parte aérea, de la parte
radicular, de las semillas, o de cualquier subproducto de las
mismas.
La fibra soluble y/o insoluble obtenida del
vegetal puede someterse a un proceso de concentración mediante
cualquier técnica conocida en el estado de la técnica como por
ejemplo, pero sin limitarse, la liofilización. El producto de dicha
concentración puede disolverse en el caso de la fibra soluble o
dispersarse en el caso de la fibra insoluble, en un medio
líquido
Una realización preferida de la presente
invención se refiere al método para la obtención de oligosacáridos
que además comprende obtener la fibra insoluble del vegetal según el
apartado (a) y dispersar dicha fibra en un medio líquido, y en el
apartado (b) hidrolizar el producto de la dispersión obtenido.
Posteriormente, se prosigue con el resto de apartados (c) y (d) del
método para obtener dichos oligosacáridos.
El término "dispersar" tal como se entiende
en la presente invención, se refiere a la acción de mezclar la fibra
insoluble de dicho vegetal con un medio líquido para que se
distribuya de forma sustancialmente homogénea en el mismo. Al
contrario que en una disolución, en la dispersión, las partículas
que forman parte de la fibra insoluble, no se disuelven en el medio
líquido sino que permanecen incorporadas a dicho líquido en el mismo
estado original. La dispersión de la fibra insoluble en el medio
líquido permite la actividad de la mezcla enzimática del paso
posterior.
Los oligosacáridos son constituyentes de los
polisacáridos. Los polisacáridos están formados por monosacáridos
unidos entre sí por medio de enlaces glicosídicos. En la presente
invención, se obtienen carbohidratos más pequeños debido a la
hidrólisis de los enlaces glicosídicos entre residuos, es decir
oligosacáridos. Los oligosacáridos son polímeros también formados
por monosacáridos unidos por enlaces glicosídicos, con un número de
unidades monoméricas, por ejemplo, pero sin limitarse de entre 2 y
10 residuos de azúcar. La hidrólisis de los polisacáridos produce su
digestión. En la digestión o ruptura por hidrólisis del enlace
glicosídico se consume una molécula de agua. Así pues, a modo de
ejemplo, la molécula de agua reacciona con un polisacárido AB, en el
que A y B representan fragmentos del mismo. En la reacción, la
molécula de agua se descompone en los fragmentos H+ y OH-, y el
polisacárido AB se descompone en los oligosacáridos A+ y B-. A
continuación, estos fragmentos se unen proporcionando los productos
finales AOH y BH. La reacción es catalizada por al menos una enzima,
produciendo la ruptura de dichos enlaces. Dicha digestión o
hidrólisis está catalizada por enzimas hidrolasas, preferiblemente
glicosilasas y más preferiblemente glicosidasas, que pueden ser
específicas para determinados polisacáridos y, sobre todo, para
determinados tipos de enlace glicosídico.
Las enzimas que catalizan la hidrólisis de los
polisacáridos se adicionan a la fibra dispersada del apartado (paso)
(a) en forma de una mezcla enzimática que comprende al menos una
glicosidasa.
Otra realización preferida de la presente
invención se refiere a un método, donde la glicosidasa es al menos
una beta-glucanasa y/o al menos una xilanasa. Según
una realización más preferida, la glicosidasa es, además de una
beta-glucanasa y/o una xilanasa, al menos una
celulasa, al menos una pentosanasa, al menos una arabinasa o
cualquiera de las combinaciones de la/s celulasa/s, la/s
pentosanasa/s y la/s arabinasa/s con la/s
beta-glucanasa/s y/o la/s xilanasa/s.
Según el comité de nomenclatura de la Unión
Internacional de Bioquímica y Biología Molecular
(NC-IUBMB), las enzimas usadas en el método de la
presente invención son clasificadas con la siguiente
nomenclatura:
EC 3 Hidrosilasas; EC 3.2 Glicosilasas; EC 3.2.1
Glicosidasas; EC 3.2.1.4 celulasa; EC 3.2.1.6
\beta-1,3-1,4-glucanasa;
EC 3.2.1.8 \beta-1,4-xilanasa; EC.
3.2.1.72 pentosanasa; EC 3.2.1.99 arabinanasa.
La enzima celulasa (EC 3.2.1.4) también es
conocida con la denominación
4-(1,3;1,4)-\beta-D-glucan
4-glucanohidrolasa. Esta enzima cataliza la
hidrólisis de la celulosa.
La enzima beta-glucanasa (EC
3.2.1.6) cuya denominación aceptada por la NC-IUBMB
es
endo-1,3(4)-\beta-glucanasa,
es también conocida por otras denominaciones como por ejemplo
endo-1,3-\beta-D-glucanasa;
laminarinasa; laminaranasa;
\beta-1,3-glucanasa;
\beta-1,3-1,4-glucanasa;
endo-1,3-\beta-glucanasa;
endo-\beta-1,3(4)-glucanasa;
endo-\beta-1,3-1,4-glucanasa;
endo-\beta-(1,3)-D-glucanasa;
endo-1,3-1,4-\beta-D-glucanasa;
endo-\beta-(1-3)-D-glucanasa;
endo-\beta-1,3-glucanasa
IV;
endo-1,3-\beta-D-glucanasa;
1,3-(1,3;1,4)-\beta-D-glucan
3(4)-glucanohidrolasa.
La beta-glucanasa cataliza la
reacción de hidrólisis de enlaces (1,3) ó (1-4) en
\beta-D-glucanos.
La enzima xilanasa (EC 3.2.1.8) cuya
denominación aceptada por la NC-IUBMB es
endo-1,4-\beta-xilanasa,
es también conocida por otras denominaciones como por ejemplo
endo-(1,4)-\beta-xilan
4-xilanohidrolasa;
endo-1,4-xilanasa; xilanasa;
\beta-1,4-xilanasa;
endo-1,4-xilanasa;
endo-\beta-1,4-xilanasa;
endo-1,4-\beta-D-xilanasa;
1,4-\beta-xilan xilanohidrolasa;
\beta-xilanasa;
\beta-1,4-xilan xilanohidrolasa;
endo-1,4-\beta-xilanasa;
\beta-D-xilanasa. La enzima
xilanasa cataliza la reacción de hidrólisis de enlaces
(1,4)-\beta-D-xilosídico
en xilanos. El xilano es un polisacárido constituido por una cadena
lineal de residuos de xilosa y diversas ramificaciones y
sustituciones. El xilano es el componente mayoritario de la
hemicelulosa. Esta enzima es una hemicelulasa. Las hemicelulosas
comprenden polímeros de pentosas, xilosas, arabinosas, hexosas,
glucosas, mañosas, galactosas o ácidos urónico, glucurónico o
galacturónico.
La enzima arabinasa (EC 3.2.1.99) cuya
denominación aceptada por la NC-IUBMB es arabinan
endo-1,5-\alpha-L-arabinosidasa,
es también conocida por otras denominaciones como por ejemplo
endo-1,5-\alpha-L-arabinanasa;
endo-\alpha-1,5-arabanasa;
endo-arabanasa;
1,5-\alpha-L-arabinan
1,5-\alpha-L-arabinanohidrolasa.
La enzima arabinasa cataliza la reacción de hidrólisis de enlaces
(1,5)-\alpha-arabinofuranosídicos.
La enzima pentosanasa (EC. 3.2.1.72) cuya
denominación aceptada por la NC-IUBMB es xilan
1,3-\beta-xilosidasa, es también
conocida por otras denominaciones como por ejemplo
1,3-\beta-D-xilosidasa,
exo-1,3-\beta-xilosidasa;
\beta-1,3'-xilanasa;
exo-\beta-1,3'-xilanasa;
1,3-\beta-D-xilan
xilohidrolasa. La pentosanasa de la presente invención es una
hemicelulasa, que cataliza la hidrólisis del pentosano. El pentosano
es un polímero de pentosas (azúcares con 5 átomos de carbono, como
por ejemplo, pero sin limitarse xilosa o arabinosa). El pentosano es
una hemicelulosa.
Así pues, la adición de una mezcla enzimática
que comprende al menos una beta-glucanasa y al menos
una xilanasa, a la fibra soluble y/o insoluble o a la fibra
insoluble dispersada, supone la hidrólisis de celulosa y
hemicelulosa.
Además, la adición de al menos una pentosanasa
y/o al menos una arabinasa supone la hidrólisis de oligosacáridos
más específicos de hemicelulosa hidrolizados por las xilanasas.
La hidrólisis del método de la presente
invención se puede llevar a cabo por medio de mezclas enzimáticas
comerciales procedentes de bacterias, hongos o de cualquier otra
procedencia. La mezcla enzimática comercial puede ser, pero sin
limitarse, Ultraflo L de Novozymes, una mezcla de
\beta-glucanasas, xilanasas, celulasas,
pentosanasas y arabinasas. El Ultraflo L es una preparación
enzimática multiactiva producida por el hongo no patógeno y no
tóxico Humicola insolens.
En el apartado (c) del método, se incuba la
mezcla obtenida en el apartado (b) a una temperatura de entre 20 y
50ºC. Dicha temperatura comprende las temperaturas óptimas de las
enzimas glicosidasas. Una realización preferida de la presente
invención se refiere a un método donde la incubación del apartado
(c) se lleva a cabo a una temperatura de entre 35 y 45ºC. No
obstante, en cualquiera de los métodos de la presente invención
puede emplearse al menos una enzima glicosidasa termófila cuya
temperatura óptima para catalizar la hidrólisis de los enlaces
glicosídicos supera los 60ºC.
Según el apartado (d) del método, se aíslan los
oligosacáridos del producto obtenido en el apartado (c) mediante
cualquier técnica conocida en el estado de la técnica. Los
oligosacáridos de la presente invención son prebióticos. Así pues,
los oligosacáridos obtenidos con el método de la presente invención
se pueden usar para la elaboración de un alimento prebiótico. Los
alimentos prebióticos son alimentos funcionales que afectan
beneficiosamente al organismo mediante la estimulación del
crecimiento y/o actividad de una o varias cepas de bacterias en el
colon, mejorando la salud del individuo que los ingiere.
Otra realización preferida de la presente
invención se refiere al método, donde la fibra soluble y/o insoluble
o a la fibra insoluble dispersada, procede de un vegetal de la
familia Fabaceae. Según una realización más preferida el
vegetal de la familia Fabaceae es Glycine max L
(soja). Según otra realización aún más preferida, los oligosacáridos
se obtienen del okara de Glycine max L.
Otra realización preferida se refiere al método
donde la fibra soluble y/o insoluble o a la fibra insoluble
dispersada, está desengrasada. En los casos en los que el porcentaje
de grasa del vegetal supera el 5% de su peso seco, se hace necesario
desengrasar previamente la muestra para obtener su fibra soluble y/o
insoluble, permitiendo así una hidrólisis eficaz mediante la mezcla
de enzimas utilizadas.
Según otra realización preferida, el medio
líquido en el que se dispersa la fibra insoluble es tampón acetato a
un pH de entre 3,5 y 6,5. En una realización más preferida, el
tampón acetato tiene un pH de entre 5,5 y 6,5. El tampón acetato
también puede tener un pH de entre 4,5 y 6,5.
Otra realización preferida de la presente
invención se refiere al método donde el medio líquido en el que se
dispersa la fibra insoluble es agua destilada.
Según otra realización preferida de la presente
invención, el método además comprende el tratamiento en autoclave de
la fibra soluble y/o insoluble o, de la fibra insoluble dispersada
en el medio líquido y, en el apartado (b), hidrolizar el producto
obtenido de dicho tratamiento en autoclave y seguir con los
apartados (c) y (d) del método.
El término "tratamiento en autoclave" tal
como se entiende en la presente invención se refiere a someter a la
fibra dispersada en el medio líquido a vapor de agua a una
temperatura y presión altas para de esta forma facilitar la
hidrólisis que será llevada a cabo por medio de la adición de la
mezcla enzimática. La presión alta evita que el agua llegue a
ebullición. El tratamiento se lleva a cabo en un autoclave, en una
olla a presión o en cualquier recipiente capaz de soportar las
presiones y temperaturas alcanzadas. En el proceso citado se permite
la entrada o generación de vapor de agua pero se limita su salida,
hasta obtener una presión interna, por ejemplo, pero sin limitarse,
de 90 a 200 kPa, lo cual provoca que el vapor alcance una
temperatura aproximada de 120 a 135ºC. En condiciones de alta
presión hidrostática se pueden alcanzar hasta 900 MPa.
Según una realización más preferida del método,
el tratamiento en autoclave se lleva a cabo a una temperatura de
entre 115 y 125ºC, una presión de entre 90 y 110 Kpa, y un tiempo de
entre 5 y 30 minutos.
Otra realización preferida de la presente
invención se refiere al método, donde además comprende la
inactivación de las enzimas de la mezcla incubada según el apartado
(c) y, en el apartado (d), aislar los oligosacáridos del producto
obtenido de dicha inactivación. Es decir, en esta realización
preferida se incluye un apartado adicional entre los apartados (c) y
(d) del método que comprende dicha inactivación enzimática. La
inactivación enzimática se puede llevar a cabo por medio de
cualquiera de las técnicas conocidas en el estado de la técnica como
por ejemplo, pero sin limitarse, sumergiendo un recipiente que
contenga el producto obtenido en el apartado (c) en agua a una
temperatura mayor de 95ºC o exponiéndolo a vapor de agua, durante un
tiempo en el que se asegure dicha inactivación como por ejemplo,
pero sin limitarse, durante un tiempo mínimo de 5 minutos, durante
un tiempo mínimo de 10 minutos ó durante un tiempo mínimo de 15
minutos.
Según otra realización preferida de la presente
invención, la fibra insoluble o la fibra insoluble desengrasada se
dispersa hasta 100 mg de dicha fibra por cada mL de medio líquido.
Preferiblemente la fibra insoluble o la fibra insoluble desengrasada
se dispersa hasta 90, 70 ó 60 mg de dicha fibra por cada mL de medio
líquido. Una realización más preferida se refiere al método, donde
se dispersa hasta 50 mg de fibra insoluble por cada mL de medio
líquido.
Preferiblemente se dispersa hasta 40, 30, 20 ó
10 mg de fibra insoluble por cada mL de medio líquido.
A lo largo de la descripción y las
reivindicaciones la palabra "comprende" y sus variantes no
pretenden excluir otras características técnicas, aditivos,
componentes o pasos. Para el experto en la materia, otros objetos,
ventajas y características de la invención se desprenderán en parte
de la descripción y en parte de la práctica de la invención. Las
siguientes figuras y ejemplos se proporcionan a modo de ilustración,
y no se pretende que sean limitativos de la presente invención.
Los siguientes ejemplos ilustran la invención
mediante unos ensayos realizados por los inventores que describen la
obtención de oligosacáridos proocedentes del okara de soja. Los
ejemplos tienen carácter ilustrativo y no limitativo de un método de
obtención de oligosacáridos de origen vegetal.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
1
Se seleccionaron muestras de okara, subproducto
industrial de la soja (Glycine max L). El okara en fresco se
sometió a liofilización, es decir, se eliminó el agua mediante
desecación al vacío y a muy bajas temperaturas. De esta manera el
agua se extrae por sublimación.
La muestra liofilizada supone un método de
conservación, pero además facilita el manejo a la hora de realizar
los distintos análisis. Posteriormente, se pulverizó la muestra para
obtener un polvo fino y homogéneo (tamaño de partícula < 1 mm),
que se guardó en frascos de vidrio debidamente etiquetados y
cerrados herméticamente. Estos frascos se almacenaron a temperatura
ambiente y en ausencia de luz.
Posteriormente la muestra de okara liofilizada
se sometió a un proceso de desengrasado con éter etílico en un
extractor Soxhlet.
Una vez desengrasada la muestra, se procedió a
obtener la fibra insoluble del okara de soja. Se llevó a cabo según
el método de Prosky (Prosky et al. 1988. J. Assoc. Off.
Anal. Chem., 71: 1017-1023): Se trata de un
método enzimático- gravimétrico para la determinación de fibra
alimentaria que se basa principalmente en la digestión de la muestra
con \alpha-amilasa termoestable, proteasa y
amiloglucosidasa para eliminar la proteína y el almidón de la
muestra. Este método ha sido adoptado oficialmente por la AOAC
(Association of Official Analytical Chemists) (AOAC, 1995a;
AOAC, 1995b).
Una vez fue obtenida la fibra insoluble, se
pulverizó y se homogenizó (tamaño de partícula < 1 mm).
\vskip1.000000\baselineskip
La fibra insoluble de la muestra de okara
desengrasada se expuso a la acción de las enzimas hidrolíticas.
Se añadió un volumen determinado de un medio
líquido a una cantidad determinada de fibra insoluble desengrasada
(ver más adelante), para conseguir dispersar dicha fibra insoluble.
Los medios líquidos utilizados para la dispersión fueron tampón
acetato a pH 6 ó agua destilada. Para favorecer el ataque enzimático
se trató la muestra térmicamente en autoclave a 121ºC y 1 atmósfera
(100 Kpa) de presión. Posteriormente se añadió un volumen
determinado de Ultraflo L y se mantuvo en agitación constante a
40ºC. Transcurrida la hidrólisis enzimática, las enzimas se
inactivaron llevando la muestra a ebullición durante 10 minutos.
A continuación, el extracto soluble se separó
del residuo insoluble por centrifugación (8000 rpm durante 10
minutos). El residuo fue sometido a varios lavados con etanol del
85% (v/v) y el líquido resultante de estos lavados se unió al
extracto soluble y se evaporó a sequedad en rotavapor a 50ºC.
Para que la muestra pudiera ser analizada por
cromatografía líquida de alta eficacia (HPLC), el extracto obtenido
se redisolvió en agua destilada y se pasó por un filtro de 0.45
\mum para soluciones acuosas. El volumen utilizado en la
redisolución con agua destilada depende de la cantidad de muestra de
partida y de la concentración en oligosacáridos que se obtenga.
Las condiciones cromatográficas utilizadas
fueron las siguientes:
- -
- Fase móvil: agua milliQ
- -
- Flujo: 0,5 mL/min
- -
- Temperatura de la columna: 85ºC
- -
- Columna: HPX87P BioRad
- -
- Detector: Índice de Refracción.
\newpage
A continuación se muestra un esquema que resume
el método mediante el cual se obtienen los oligosacáridos de la
fibra insoluble del okara de soja.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
2
Se partió de 0,6 g de fibra insoluble (FI) de
okara desengrasado y se añadieron 10 mL de tampón acetato a pH 6. La
reacción enzimática se llevó a cabo con 1 mL de Ultraflo L durante
180 minutos a una temperatura de 40ºC y en agitación constante.
Transcurrido este tiempo, se inactivo el enzima llevando la muestra
a ebullición durante 10 minutos. Tras la extracción de los
oligosacáridos, se analizó el sobrenadante por HPLC. En estas
condiciones, por cada 100 g de FI de okara desengrasado se obtienen
8,2 g de oligosacáridos.
\vskip1.000000\baselineskip
Se realizó un experimento enzimático para
estudiar la concentración de oligosacáridos liberados en las mismas
condiciones que en el experimento 1, pero durante un menor tiempo de
actuación del enzima.
Para ello, se utilizaron 0,6 g de FI de okara
desengrasado, 1 mL de Ultraflo L/10 mL de tampón acetato pH6. La
temperatura incubación fue de 40ºC y el tiempo de hidrólisis
enzimática 60 minutos. El sobrenadante se analizó por HPLC y se
observó una liberación de oligosacáridos de 4,46 g/100 g de FI de
okara desengrasado. Por tanto, se produjo una liberación del 54,4%
en un tiempo tres veces inferior de hidrólisis enzimática.
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo
3
Se añadieron 10 mL de agua destilada, en lugar
del tampón acetato, a 0,6 g de FI de okara desengrasado.
Posteriormente se adicionó 1 mL de Ultraflo L y se llevó a cabo la
reacción durante 90 minutos a una temperatura de 40ºC y en agitación
constante. Tras la inactivación del enzima, se analizó el
sobrenadante por HPLC y se observó una liberación de oligosacáridos
de 11,51 g/100 g de FI de okara desengrasado.
\vskip1.000000\baselineskip
Se adicionaron 10 mL de agua destilada a 0,1 g
de FI de okara desengrasado. A continuación, la dispersión de FI en
agua destilada se trató en el autoclave a 121ºC durante un tiempo de
10 minutos. Después del enfriamiento del sustrato, se añadió 1 mL de
Ultraflo L y se llevó a un baño de 40ºC en agitación continua.
Transcurridos 10 minutos, se inactivo el enzima (10 minutos en
ebullición). Tras la extracción, se procedió a la cuantificación de
los oligosacáridos por HPLC, obteniendo 25,3 g/100 g FI de okara
desengrasado.
En la siguiente tabla se presentan los
resultados obtenidos en cada uno de los experimentos descritos en
párrafos anteriores.
\vskip1.000000\baselineskip
\begin{minipage}[t]{150mm} Nota: En todos los casos, se usa 1 mL de la mezcla enzimática Ultraflo L, se lleva a cabo la incubación a 40ºC y se inactivan las enzimas añadidas llevando dicha mezcla de reacción a ebullición durante 10 minutos. \end{minipage}
\newpage
Como puede observarse, la utilización de agua
destilada como medio líquido de dispersión en el cual se va a llevar
a cabo la hidrólisis tras la adición de la mezcla enzimática, mejora
los rendimientos en la obtención de oligosacáridos respecto del
medio líquido tampón acetato.
En vista de estos resultados, los inventores
llevaron a cabo un experimento con agua como medio líquido de
dispersión y trataron en autoclave el producto de dicha dispersión,
obteniendo de esta manera el mejor rendimiento en la obtención de
oligosacáridos de okara de soja. El tratamiento en autoclave permite
mejorar el rendimiento de forma sorprendente ya que hay que tener en
cuenta que se parte de una dispersión con una concentración de fibra
de 10 mg/mL frente a los 60 mg/mL en el resto de experimentos y,
además, la hidrólisis se lleva a cabo durante un periodo de 10
minutos frente a tiempos de entre 6 y 18 veces superiores en el
resto de experimentos. En definitiva, se obtiene mayor cantidad de
oligosacáridos y se reduce el tiempo empleado. Este hecho puede
constituir una ventaja importante en lo que se refiere a la
producción industrial de oligosacáridos de muestras vegetales.
Claims (17)
1. Método para la obtención de oligosacáridos
que comprende:
- a.
- obtener la fibra soluble y/o insoluble de un vegetal,
- b.
- hidrolizar la fibra del apartado (a) mediante la adición de una mezcla enzimática que comprende al menos una glicosidasa,
- c.
- incubar la mezcla obtenida en el apartado (b) a una temperatura de entre 20 y 50ºC, y
- d.
- aislar los oligosacáridos del producto obtenido en el apartado (c).
2. Método para la obtención de oligosacáridos
según la reivindicación 1, que además comprende obtener la fibra
insoluble del vegetal según el apartado (a) y dispersar dicha fibra
en un medio líquido, y en el aparado (b) hidrolizar el producto de
la dispersión obtenido.
3. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 ó 2, donde la mezcla enzimática comprende al
menos una glicosidasa que se selecciona entre al menos una
beta-glucanasa o al menos una xilanasa o cualquier
combinación de las mismas.
4. Método según la reivindicación 3, donde la
mezcla enzimática además comprende al menos una glicosidasa
seleccionada entre al menos una celulasa o al menos una pentosanasa
o al menos una arabinasa o cualquier combinación de las mismas.
5. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 4, donde la fibra procede de un vegetal de la
familia Fabaceae.
6. Método según la reivindicación 5, donde el
vegetal de la familia Fabaceae es Glycine max L.
7. Método según la reivindicación 6, donde los
oligosacáridos se obtienen del okara de Glycine max L.
8. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 7, donde la fibra está desengrasada.
9. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 2 a 8, donde el medio líquido en el que se dispersa
la fibra insoluble es tampón acetato a un pH de entre 3,5 y 6,5.
10. Método según la reivindicación 9, donde el
tampón acetato tiene un pH de entre 5,5 y 6,5.
11. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 2 a 8, donde el medio líquido en el que se dispersa
la fibra insoluble es agua destilada.
12. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 11, donde la incubación del apartado (c) se
lleva a cabo a una temperatura de entre 35 y 45ºC.
13. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 12, donde además comprende el tratamiento en
autoclave de la fibra soluble y/o insoluble o, de la fibra insoluble
dispersada en el medio líquido y, en el apartado (b), hidrolizar el
producto obtenido de dicho tratamiento en autoclave.
14. Método según la reivindicación 13, donde el
tratamiento en autoclave se lleva a cabo a una temperatura de entre
115 y 125ºC, una presión de entre 90 y 110 Kpa, y un tiempo de entre
5 y 30 minutos.
15. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 14, donde además comprende la inactivación de
las enzimas de la mezcla incubada según el apartado (c) y, en el
apartado (d), aislar los oligosacáridos del producto obtenido de
dicha inactivación.
16. Método según cualquiera de las
reivindicaciones 2 a 15, donde se dispersa hasta 100 mg de fibra
insoluble por cada mL de medio de reacción.
17. Método para la obtención de oligosacáridos
según la reivindicación 16, donde se dispersa hasta 50 mg de fibra
insoluble por cada mL de medio de reacción.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ES200930375A ES2355788B1 (es) | 2009-06-29 | 2009-06-29 | Método para la obtención de oligosacáridos vegetales. |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
ES200930375A ES2355788B1 (es) | 2009-06-29 | 2009-06-29 | Método para la obtención de oligosacáridos vegetales. |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
ES2355788A1 true ES2355788A1 (es) | 2011-03-31 |
ES2355788B1 ES2355788B1 (es) | 2012-02-06 |
Family
ID=43736322
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
ES200930375A Expired - Fee Related ES2355788B1 (es) | 2009-06-29 | 2009-06-29 | Método para la obtención de oligosacáridos vegetales. |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
ES (1) | ES2355788B1 (es) |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2006114095A1 (en) * | 2005-04-26 | 2006-11-02 | Novozymes A/S | Hydrolysis of arabinoxylan |
-
2009
- 2009-06-29 ES ES200930375A patent/ES2355788B1/es not_active Expired - Fee Related
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2006114095A1 (en) * | 2005-04-26 | 2006-11-02 | Novozymes A/S | Hydrolysis of arabinoxylan |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
MATEOS-APARICIO, I. Aprovechamiento de subproductos de leguminosas para la obtención de productos funcionales. Comparación de metodologías para la caracterización de la fibra alimentaria. 2008. Tesis doctoral (en línea recuperado el 03.09.2010). Recuperado de internet: http://eprints.ucm.es/8175/ * |
PÉREZ-CONESA, D. et al. Principales prebióticos y sus efectos en la alimentación humana. 2004. Anales de Veterinaria. Vol. 20, páginas 5-20. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ES2355788B1 (es) | 2012-02-06 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Aachary et al. | Xylooligosaccharides (XOS) as an emerging prebiotic: microbial synthesis, utilization, structural characterization, bioactive properties, and applications | |
de Souza et al. | Cellulases, hemicellulases, and pectinases: Applications in the food and beverage industry | |
Moreira et al. | An overview of mannan structure and mannan-degrading enzyme systems | |
Aachary et al. | Value addition to corncob: Production and characterization of xylooligosaccharides from alkali pretreated lignin-saccharide complex using Aspergillus oryzae MTCC 5154 | |
Méndez-Líter et al. | Hemicellulases from Penicillium and Talaromyces for lignocellulosic biomass valorization: A review | |
Suryawanshi et al. | Production of mannooligosaccharides from various mannans and evaluation of their prebiotic potential | |
Ou et al. | Feruloylated oligosaccharides: structure, metabolism and function | |
Mathew et al. | Extraction of soluble arabinoxylan from enzymatically pretreated wheat bran and production of short xylo-oligosaccharides and arabinoxylo-oligosaccharides from arabinoxylan by glycoside hydrolase family 10 and 11 endoxylanases | |
Falck et al. | Production of arabinoxylan-oligosaccharide mixtures of varying composition from rye bran by a combination of process conditions and type of xylanase | |
Capetti et al. | Recent advances in the enzymatic production and applications of xylooligosaccharides | |
Napolitano et al. | Treatment of cereal products with a tailored preparation of Trichoderma enzymes increases the amount of soluble dietary fiber | |
Huang et al. | In vitro fermentation of O‑acetyl‑arabinoxylan from bamboo shavings by human colonic microbiota | |
Arumugam et al. | Structure of peanut shell xylan and its conversion to oligosaccharides | |
JP2015523851A (ja) | 糖構成の改変されたバイオ製品を製造するための方法 | |
Chen et al. | Exploring the partial degradation of polysaccharides: Structure, mechanism, bioactivities, and perspectives | |
Sornyotha et al. | An efficient treatment for detoxification process of cassava starch by plant cell wall-degrading enzymes | |
CN104719753A (zh) | 一种可溶性谷物膳食纤维的制备方法 | |
Tsukagoshi et al. | The GH26 β-mannanase RsMan26H from a symbiotic protist of the termite Reticulitermes speratus is an endo-processive mannobiohydrolase: heterologous expression and characterization | |
Klangpetch et al. | Microwave-assisted enzymatic hydrolysis to produce xylooligosaccharides from rice husk alkali-soluble arabinoxylan | |
Rashad et al. | Production of antioxidant xylooligosaccharides from lignocellulosic materials using Bacillus amyloliquifaciens NRRL B-14393 xylanase | |
Li et al. | Preparation and antitumor activity of selenium-modified glucomannan oligosaccharides | |
Chen et al. | Possible beneficial effects of xyloglucan from its degradation by gut microbiota | |
Wan et al. | Production, characterization, and prebiotic activity of oligosaccharides from konjac glucomannan by Bacillus amyloliquefaciens WX-1 | |
Muniglia et al. | Enzymatic aqueous extraction (EAE) | |
Yang et al. | Nondigestible functional oligosaccharides: enzymatic production and food applications for intestinal health |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
FG2A | Definitive protection |
Ref document number: 2355788 Country of ref document: ES Kind code of ref document: B1 Effective date: 20120206 |
|
FD2A | Announcement of lapse in spain |
Effective date: 20180924 |