ES2238254T3 - Biosensor. - Google Patents

Biosensor.

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ES2238254T3
ES2238254T3 ES00311655T ES00311655T ES2238254T3 ES 2238254 T3 ES2238254 T3 ES 2238254T3 ES 00311655 T ES00311655 T ES 00311655T ES 00311655 T ES00311655 T ES 00311655T ES 2238254 T3 ES2238254 T3 ES 2238254T3
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ES00311655T
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Yuko Taniike
Shin Ikeda
Shiro Nankai
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Panasonic Holdings Corp
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Matsushita Electric Industrial Co Ltd
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    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/001Enzyme electrodes
    • C12Q1/004Enzyme electrodes mediator-assisted

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Abstract

Biosensor, que comprende: un sistema de electrodos que incluye un electrodo (4) de trabajo y un contraelectrodo (5), para formar un sistema de medición electroquímica poniéndolo en contacto con una disolución suministrada de la muestra; un elemento de soporte (1, 21, 22, 31, 32) eléctricamente aislante para soportar dicho sistema de electrodos; una primera capa de reactivo (7) formada sobre dicho electrodo (4) de trabajo; y una segunda capa de reactivo (8) formada sobre dicho contraelectrodo (5), en el que dicha primera capa de reactivo (7) no contiene un mediador electrónico y comprende una enzima como principal componente y dicha segunda capa de reactivo (8) no contiene una enzima y comprende un mediador electrónico como componente principal.

Description

Biosensor.
Antecedentes de la invención
La presente invención se refiere a un biosensor para la cuantificación rápida de un sustrato contenido en una muestra con una gran exactitud.
De manera convencional, se han desarrollado procedimientos que utilizan la polarimetría, colorimetría, reductimetría y una variedad de cromatografías como medida para el análisis cuantitativo de azúcares tales como sacarosa y glucosa. Sin embargo, estos procedimientos convencionales son todos muy poco específicos para los azúcares y, por tanto, ofrecen poca exactitud. Entre ellos, la polarimetría es de manipulación sencilla, pero está afectada en gran medida por la temperatura durante la manipulación. Por tanto, este procedimiento no resulta adecuado para la cuantificación sencilla de azúcares en un ámbito doméstico a realizar por personas normales.
En los últimos años, se ha desarrollado una variedad de biosensores que utilizan mejor una acción catalítica de enzimas específica.
A continuación, se explicará un procedimiento de análisis cuantitativo de glucosa como ejemplo del procedimiento para cuantificar un sustrato contenido en una muestra. La cuantificación electroquímica conocida de manera convencional de glucosa incluye un procedimiento que utiliza una combinación de glucosa oxidasa (EC 1.1.3.4: abreviada más adelante en la presente memoria como "GOD") como enzima con un electrodo de oxígeno o un electrodo de peróxido de hidrógeno (véase "Biosensor" ed. por Shuichi Suzuki, Kodansha, por ejemplo).
GOD oxida selectivamente \beta-D-glucosa, como sustrato, a D-glucono-\delta-lactona utilizando oxígeno como mediador electrónico. El oxígeno se reduce a peróxido de hidrógeno durante la reacción de oxidación por GOD en presencia de oxígeno. Se mide una disminución del volumen de oxígeno mediante el electrodo de oxígeno o bien se mide un aumento del volumen de peróxido de hidrógeno mediante el electrodo de peróxido de hidrógeno. La disminución del volumen de oxígeno o, en caso contrario, el aumento del volumen de peróxido de hidrógeno es proporcional al contenido de glucosa en la muestra. De este modo, resulta posible cuantificar glucosa basándose en la disminución del volumen de oxígeno o el aumento del volumen de peróxido de hidrógeno.
En el procedimiento anterior, es posible cuantificar glucosa en la muestra de manera exacta utilizando la especificidad de la reacción enzimática. Sin embargo, tal como se especula a partir de la reacción, este procedimiento de la técnica anterior adolece del inconveniente de que el resultado de la medición está sumamente afectado por la concentración de oxígeno en la muestra. Así, en el caso de que el oxígeno no esté presente en la muestra, la medición no será factible.
Ante tal circunstancia, se ha desarrollado un sensor de glucosa de un nuevo tipo que utiliza como mediador electrónico un compuesto orgánico o un complejo metálico tal como ferricianuro de potasio, un derivado de ferroceno y un derivado de quinona, en lugar de oxígeno en la muestra. El sensor de este tipo oxida el mediador electrónico reducido que resulta de la reacción enzimática en un electrodo de trabajo, de modo que se determine la concentración de glucosa en la muestra basándose en una corriente de oxidación producida por la reacción de oxidación. En este momento, en un contraelectrodo, el mediador electrónico oxidado se reduce y avanza una reacción para generar el mediador electrónico reducido. Con el uso de tal compuesto orgánico o complejo metálico como el mediador electrónico en lugar de oxígeno, resulta posible formar una capa de reactivo colocando con precisión una cantidad conocida de GOD junto con el mediador electrónico en su estado estable sobre el electrodo, permitiendo así la cuantificación exacta de glucosa sin verse afectada por la concentración de oxígeno en la muestra. En este caso, también es posible integrar la capa de reactivo que contiene la enzima y el mediador electrónico con un sistema de electrodos, mientras se mantiene la capa de reactivo en un estado casi seco y, por tanto, recientemente se ha tomado nota de manera considerable de un sensor de glucosa desechable basado en esta tecnología. Un ejemplo típico de tal sensor de glucosa es un biosensor dado a conocer en la publicación de patente japonesa abierta al público Hei 3-202764. Con tal sensor de glucosa desechable, resulta posible medir la concentración de glucosa fácilmente con un dispositivo de medición, simplemente introduciendo una muestra en el sensor conectado de manera que se puede desmontar al dispositivo de medición. La aplicación de tal técnica no está limitada a la cuantificación de glucosa y puede extenderse a la cuantificación de cualquier otro sustrato contenido en la muestra.
Sin embargo, en los biosensores convencionales descritos anteriormente, cuando la muestra contiene un sustrato a altas concentraciones, la reacción enzimática avanza también en el contraelectrodo y, por tanto, el suministro del mediador electrónico al contraelectrodo se vuelve insuficiente, de modo que la reacción en el contraelectrodo se convierte en una etapa determinante de la velocidad, lo que hace imposible obtener una respuesta de corriente proporcional a la concentración del sustrato. Por tanto, tales biosensores adolecen del problema de que no resulta posible obtener la cuantificación de un sustrato cuando la muestra contiene un sustrato a altas concentraciones.
En los últimos años, existe una demanda de un biosensor que muestre una respuesta baja cuando la concentración de sustrato sea cero y una excelente estabilidad durante el almacenamiento. La respuesta obtenida cuando la concentración de sustrato es cero se denomina en lo sucesivo en la presente memoria como "respuesta del blanco".
Breve sumario de la invención
La presente invención proporciona un biosensor que comprende: un sistema de electrodos que incluye un electrodo de trabajo y un contraelectrodo, para formar un sistema de medición electroquímica poniéndose en contacto con una disolución suministrada de la muestra; un elemento de soporte eléctricamente aislante para soportar el sistema de electrodos; una primera capa de reactivo formada sobre el electrodo de trabajo y una segunda capa de reactivo formada sobre el contraelectrodo, en el que la primera capa de reactivo no contiene un mediador electrónico y comprende una enzima como componente principal y la segunda capa de reactivo no contiene una enzima y comprende un mediador electrónico como componente principal.
En un modo preferido de la presente invención, el elemento de soporte comprende una placa de base eléctricamente aislante sobre la que se forman el electrodo de trabajo y el contraelectrodo.
En otro modo preferido de la presente invención, el elemento de soporte comprende una placa de base eléctricamente aislante y un elemento de cubierta eléctricamente aislante para formar una vía de suministro de disolución de la muestra o una sección de almacenamiento de la disolución de la muestra entre el elemento de cubierta y la placa de base, el electrodo de trabajo se forma sobre la placa de base y el contraelectrodo se forma sobre una superficie interna del elemento de cubierta, de modo que dé al electrodo de trabajo.
Se prefiere que el elemento de cubierta comprenda un elemento de lámina que comprenda una sección curvada expandida hacia fuera, para formar una vía de suministro de disolución de la muestra o una sección de almacenamiento de la disolución de la muestra entre el elemento de cubierta y la placa de base.
En un modo más preferido de la presente invención, el elemento de cubierta comprende un separador que presenta una rendija para formar la vía de suministro de disolución de la muestra y una cubierta para cubrir el separador.
Se prefiere que al menos la primera capa de reactivo contenga un polímero hidrófilo.
Aunque las nuevas características de la invención se exponen particularmente en las reivindicaciones adjuntas, se entenderá y apreciará mejor la invención, tanto respecto a su organización como su contenido, junto con otros objetivos y características de la misma, a partir de la siguiente descripción detallada considerada conjuntamente con los dibujos.
Breve descripción de las diversas vistas de los dibujos
La figura 1 es una vista en sección transversal vertical de un sensor de glucosa según un ejemplo de la presente invención.
La figura 2 es una vista en perspectiva en despiece ordenado del sensor de glucosa, omitiéndose las capas de reactivo y la capa de agente tensioactivo del mismo.
La figura 3 es una vista en sección transversal vertical de un sensor de glucosa según otro ejemplo de la presente invención.
La figura 4 es una vista en perspectiva del sensor de glucosa, omitiéndose las capas de reactivo y la capa de agente tensioactivo del mismo.
La figura 5 es una vista en sección transversal vertical de un sensor de glucosa según todavía otro ejemplo de la presente invención.
La figura 6 es una vista en perspectiva en despiece ordenado del sensor de glucosa, omitiéndose las capas de reactivo y la capa de agente tensioactivo del mismo.
La figura 7 es una vista en sección transversal vertical de un sensor de glucosa según un ejemplo comparativo.
Descripción detallada de las realizaciones preferidas
Un biosensor según un modo preferido de la presente invención comprende una placa de base eléctricamente aislante; un electrodo de trabajo y un contraelectrodo formados sobre la placa de base; una primera capa de reactivo formada sobre el electrodo de trabajo y una segunda capa de reactivo formada sobre el contraelectrodo, en el que la primera capa de reactivo no contiene un mediador electrónico y comprende una enzima como componente principal y la segunda capa de reactivo no contiene una enzima y comprende un mediador electrónico como componente principal.
En este biosensor, la reacción enzimática apenas avanza en el contraelectrodo, especialmente cuando la muestra contiene un sustrato en altas concentraciones, puesto que el componente principal de la segunda capa de reactivo sobre el contraelectrodo es el mediador electrónico. Por tanto, la probabilidad de colisión entre la enzima y el mediador electrónico disminuye en la disolución de la muestra en la que se disuelven los reactivos, de modo que disminuye la linealidad de la corriente de respuesta. Sin embargo, puesto que se conserva suficiente mediador electrónico sobre el contraelectrodo para la reacción, la reacción en el contraelectrodo no se convierte en una etapa determinante de la velocidad. Como resultado, la linealidad de la corriente de respuesta se mantiene incluso hasta un intervalo de alta concentración del sustrato.
Un biosensor según otro modo preferido de la presente invención comprende una placa de base eléctricamente aislante; un elemento de cubierta eléctricamente aislante para formar una vía de suministro de disolución de la muestra o una sección de almacenamiento de la disolución de la muestra entre el elemento de cubierta y la placa de base; un electrodo de trabajo formado sobre la placa de base; un contraelectrodo formado sobre una superficie interna del elemento de cubierta de modo que dé al electrodo de trabajo; una primera capa de reactivo formada sobre el electrodo de trabajo y una segunda capa de reactivo formada sobre el contraelectrodo.
El elemento de cubierta comprende un elemento de lámina que presenta una sección curvada expandida hacia fuera, para formar una vía de suministro de disolución de la muestra o una sección de almacenamiento de la disolución de la muestra entre el elemento de cubierta y la placa de base.
Un elemento de cubierta más preferido comprende un separador con una rendija para formar la vía de suministro de disolución de la muestra y una cubierta para cubrir el separador.
En un biosensor de este tipo, ya que la primera capa de reactivo y la segunda capa de reactivo se forman sobre elementos separados, respectivamente, la primera capa de reactivo y la segunda capa de reactivo que presentan composiciones diferentes pueden separarse fácilmente la una de la otra. Además, puesto que el electrodo de trabajo y el contraelectrodo se forman en posiciones opuestas, se facilita la transferencia iónica entre los electrodos, aumentando así adicionalmente la respuesta de corriente.
En un biosensor cuyo elemento de cubierta comprende el separador y la cubierta, dado que aumenta la resistencia física de la cubierta, la primera capa de reactivo y la segunda capa de reactivo no se ponen en contacto entre sí mediante una presión física externa, evitando así la degradación de la actividad enzimática debida al contacto entre la enzima y el mediador electrónico.
En cualquiera de los biosensores de las realizaciones descritas anteriormente, se prefiere que al menos la primera capa de reactivo contenga un polímero hidrófilo. Puesto que el polímero hidrófilo evita la adsorción de proteínas, etc., al electrodo de trabajo, la sensibilidad de la respuesta de corriente se mejora adicionalmente. Además, durante la medición, dado que la viscosidad de una disolución de la muestra aumenta por el polímero hidrófilo disuelto en la disolución de la muestra, se reducen los efectos del impacto físico, etc. sobre la respuesta de corriente, mejorando así la estabilidad de la respuesta de corriente.
En la presente invención, para la placa de base, el separador y la cubierta, es posible utilizar cualquier material que presente una propiedad aislante y suficiente rigidez durante el almacenamiento y la medición. Ejemplos de tal material incluyen resinas termoplásticas tales como polietileno, poliestireno, poli(cloruro de vinilo), poliamida y resina de poliéster saturado, o resinas termoendurecibles tales como una resina de urea, resina de melamina, resina fenólica, resina epoxídica y resina de poliéster no saturado. Entre estas resinas, se prefiere el poli(tereftalato de etileno) en vista de su adhesividad al electrodo.
Para el electrodo de trabajo, es posible utilizar cualquier material conductor si no se oxida él mismo al oxidar el mediador electrónico. Para el contraelectrodo, es posible utilizar un material conductor usado generalmente, tal como paladio, plata, platino y carbono.
Como la enzima, es posible utilizar una adecuada para el tipo de sustrato en la muestra, que el objeto de la medición. Ejemplos de la enzima incluyen fructosa deshidrogenasa, glucosa oxidasa, alcohol oxidasa, lactato oxidasa, colesterol oxidasa, xantina oxidasa y aminoácido oxidasa.
Ejemplos del mediador electrónico incluyen ferricianuro de potasio, p-benzoquinona, metosulfato de fenacina, azul de metileno y derivados del ferroceno. Además, incluso cuando se utiliza oxígeno como el mediador electrónico, se obtiene una respuesta de corriente. Estos mediadores electrónicos se utilizan individualmente o en combinaciones de dos o más.
Son aplicables una variedad de polímeros hidrófilos. Ejemplos del polímero hidrófilo incluyen hidroxietilcelulosa, hidroxipropilcelulosa, metilcelulosa, etilcelulosa, etilhidroxietilcelulosa, carboximetilcelulosa, polivinilpirrolidona, poli(alcohol vinílico), poliaminoácidos tales como polilisina, sulfonato de poliestireno, gelatina y sus derivados, poli(ácido acrílico) y sus sales, poli(ácido metacrílico) y sus sales, almidón y sus derivados y un polímero de anhídrido maleico o un maleato. Entre ellos, se prefieren particularmente carboximetilcelulosa, hidroxietilcelulosa e hidroxipropilcelulosa.
En la siguiente descripción se explicará la presente invención con mayor detalle ilustrando unos ejemplos de la misma.
Ejemplo 1
Se explicará un sensor de glucosa como ejemplo de biosensor.
La figura 1 es una vista en sección transversal vertical de un sensor de glucosa de este ejemplo y la figura 2 es una vista en perspectiva en despiece ordenado, omitiéndose las capas de reactivo y la capa de agente tensioactivo del mismo.
En primer lugar, se estampó una pasta de plata sobre una placa de base 1 eléctricamente aislante compuesta por poli(tereftalato de etileno) mediante estampación serigráfica para formar conductores 2 y 3 y la base de los electrodos descritos más adelante. Luego, se estampó una pasta de carbono conductora que contenía un aglutinante de resina sobre la placa de base 1 para formar un electrodo 4 de trabajo. Este electrodo 4 de trabajo estaba en contacto con el conductor 2. Además, se estampó una pasta aislante sobre la placa de base 1 para formar una capa aislante 6. La capa aislante 6 cubría la parte periférica del electrodo 4 de trabajo, de modo que quedaba al descubierto una zona fija del electrodo 4 de trabajo. A continuación, se formó un contraelectrodo 5 estampando una pasta de carbono conductora que contenía un aglutinante de resina de modo que estuviera en contacto con el conductor 3.
Se añadió por goteo una primera disolución acuosa que contenía GOD como enzima y sin mediador electrónico sobre el electrodo 4 de trabajo de la placa de base 1 y luego se secó para formar una primera capa de reactivo 7. Además, se añadió por goteo una segunda disolución acuosa que contenía ferricianuro de potasio como mediador electrónico y sin enzima sobre el contraelectrodo 5 de la placa de base 1 y luego se secó para formar una segunda capa de reactivo 8. Además, con el fin de conseguir un suministro homogéneo de una muestra, se formó una capa 9 que contenía lecitina como agente tensioactivo, de modo que cubriese la primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8.
Finalmente, la placa de base 1, una cubierta 12 y un separador 10 se adhirieron entre sí en una relación posicional tal como se muestra mediante las líneas discontinuas en la figura 2, para fabricar el sensor de glucosa.
El separador 10 que se va a insertar entre la placa de base 1 y la cubierta 12 presenta una rendija 11 para forma una vía de suministro de disolución de la muestra entre la placa de base 1 y la cubierta 12.
Puesto que una salida 14 de aire de la cubierta 12 se comunica con esta vía de suministro de disolución de la muestra, cuando la muestra se pone en contacto con el orificio 13 de suministro de muestra formado en un extremo abierto de la rendija 11, la muestra alcanza rápidamente la primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8 en la vía de suministro de disolución de la muestra debido a un fenómeno capilar.
Como ejemplo comparativo, se fabricó un sensor de glucosa de la misma manera que este ejemplo con la excepción del procedimiento de formación de las capas de reactivo. La figura 7 es una vista en sección transversal vertical del sensor de glucosa del ejemplo comparativo. Se formó una capa de reactivo 30 añadiendo por goteo una disolución acuosa que contenía GOD y ferricianuro de potasio sobre el electrodo 4 de trabajo y el contraelectrodo 5 y luego secando la disolución acuosa. Además, se formó una capa 9 que contenía lecitina como agente tensioactivo sobre la capa de reactivo 30.
A continuación, con los sensores de glucosa del ejemplo 1 y el ejemplo comparativo, se midió la concentración de glucosa utilizando una disolución que contenía cierta cantidad de glucosa como muestra. La muestra se suministró a la vía de suministro de disolución de la muestra desde el orificio 13 de suministro de muestra y, tras transcurrir un cierto tiempo, se aplicó una tensión de 500 mV al electrodo 4 de trabajo utilizando el contraelectrodo 5 como referencia. Puesto que el separador 10 se interpone entre la cubierta 12 y la placa de base 1, aumenta la resistencia del sensor frente a la presión física externa. En consecuencia, el volumen de la vía de suministro de disolución de la muestra se mantiene constante rápidamente y se reducen los efectos de presión física, etc., sobre la respuesta de corriente.
Se midió el valor de una corriente que fluyó a través del electrodo 4 de trabajo y el contraelectrodo 5 con la aplicación de esta tensión. Como resultado, tanto en el ejemplo 1 como en el ejemplo comparativo, se observó una respuesta de corriente proporcional a la concentración de glucosa en la muestra. Cuando la muestra entró en contacto con la primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8, el ferricianuro potasio, como la forma oxidada del mediador electrónico, se disoció en ion ferricianuro e ion potasio. La glucosa en la muestra, el ion ferricianuro disuelto en la muestra procedente de la segunda capa de reactivo 8 y la GOD reaccionaron entre sí. Como resultado, la glucosa se oxida en gluconolactona y el ion ferricianuro en la forma oxidada se reduce hasta el ion ferrocianuro en la forma reducida. Avanza una reacción de oxidación del ion ferrocianuro al ion ferricianuro sobre el electrodo 4 de trabajo, mientras que avanza una reacción de reducción del ion ferricianuro al ion ferrocianuro sobre el contraelectrodo 5. Puesto que la concentración de ion ferrocianuro es proporcional a la concentración de glucosa, es posible medir la concentración de glucosa basándose en la corriente de oxidación del ion ferrocianuro.
En el sensor de glucosa de este ejemplo, se observó una alta linealidad hasta una concentración de glucosa superior que en el sensor de glucosa del ejemplo comparativo por los siguientes motivos.
Dado que la GOD y el ferricianuro de potasio se soportan por separado sobre el electrodo de trabajo y el contraelectrodo, respectivamente, la reacción enzimática a penas avanza en el contraelectrodo. Por tanto, se conserva una concentración de ferricianuro de potasio suficiente sobre el contraelectrodo, evitando que la reacción en el contraelectrodo se convierta en una etapa determinante de la velocidad incluso cuando la muestra contiene un sustrato en altas concentraciones. Como resultado es posible mantener la linealidad de la corriente de respuesta hasta un intervalo de alta concentración. Por otro lado, en el sensor del ejemplo comparativo, la reacción enzimática avanza sobre el contraelectrodo hasta el punto que es casi equivalente a la del electrodo de trabajo, produciendo una reducción del ion ferricianuro que va a dar ion ferrocianuro. En consecuencia, el ion ferricianuro se vuelve insuficiente para la reacción del contraelectrodo, de modo que la reacción en el contraelectrodo se convierte en una etapa determinante de la velocidad.
Además, en el sensor de glucosa de este ejemplo, disminuyó la respuesta del blanco y no cambió mucho la respuesta de corriente incluso después de un almacenamiento prolongado en comparación con el sensor de glucosa del ejemplo comparativo. Esto es debido a que la GOD y el ferricianuro de potasio se separaron uno del otro, de modo que fue posible evitar el contacto entre la GOD y el ferricianuro de potasio, suprimiendo así un aumento de la respuesta del blanco y la degradación de la actividad enzimática durante un almacenamiento prolongado.
Ejemplo 2
La figura 3 es una vista en sección transversal vertical de un sensor de glucosa de este ejemplo, y la figura 4 es una vista en perspectiva del sensor de glucosa, omitiéndose las capas de reactivos y la capa del agente tensioactivo del mismo.
Se formaron un electrodo 4 de trabajo y un conductor 2 mediante pulverización de paladio sobre una placa de base 21 eléctricamente aislante. A continuación, se definieron el electrodo 4 de trabajo y una sección terminal que se van a introducir dentro del dispositivo de medición mediante el empastado de una lámina 23 aislante sobre la placa de base 21.
Mientras tanto, se formó un contraelectrodo 5 mediante pulverización de paladio sobre la superficie de la pared interna de una sección 24 curvada expandida hacia fuera de un elemento de cubierta 22 eléctricamente aislante. A una parte terminal de la sección 24 curvada se dotó de una salida 14 de aire.
Se añadió por goteo una primera disolución acuosa que contenía GOD como enzima y sin mediador electrónico, sobre el electrodo 4 de trabajo de la placa de base 21 y luego se secó para formar una primera capa de reactivo 7. Además, se añadió por goteo una segunda disolución acuosa que contenía ferricianuro de potasio como mediador electrónico y sin enzima sobre el contraelectrodo 5 del elemento de cubierta 22 para formar una segunda capa de reactivo 8. Adicionalmente, se formó una capa 9 que contenía lecitina como agente tensioactivo sobre la primera capa de reactivo 7.
Finalmente, la placa de base 21 y la cubierta 22 se adhirieron entre sí para fabricar el sensor de glucosa. Por consiguiente, el electrodo 4 de trabajo y el contraelectrodo 5 están situados frente a frente con un espacio formado entre la placa de base 21 y la sección 24 curvada del elemento de cubierta 22 entre ellos. Este espacio sirve como una sección de almacenamiento de la muestra y, cuando una muestra se pone en contacto con un extremo abierto del espacio, la muestra se mueve rápidamente hacia la salida 14 de aire debido a un fenómeno capilar y entra en contacto con la primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8.
A continuación, se midió la concentración de glucosa según el mismo procedimiento que en el ejemplo 1. Como resultado, se observó una respuesta de corriente proporcional a la concentración de glucosa en la muestra. El contraelectrodo 5 se conectó eléctricamente, sujetando una parte terminal de la sección 24 curvada con un clip conectado a un hilo conductor.
En el sensor de glucosa del ejemplo 2, la segunda capa de reactivo 8 sólo contenía ferricianuro de potasio, de modo que se observó una alta linealidad hasta una concentración de glucosa superior que en el sensor de glucosa del ejemplo comparativo, como en el ejemplo 1. Por tanto, en este biosensor, como en el ejemplo 1, disminuyó la respuesta del blanco y no cambió mucho la respuesta de corriente incluso después de un almacenamiento prolongado en comparación con el ejemplo comparativo, puesto que la GOD y el ferricianuro de potasio estaban separados el uno del otro. Además, en comparación con el ejemplo comparativo, se observó un aumento en el valor de la respuesta debido a que el electrodo 4 de trabajo y el contraelectrodo 5 se formaron en posiciones opuestas, de modo que se facilitó la transferencia iónica entre los electrodos.
Ejemplo 3
La figura 5 es una vista de una sección en sección transversal vertical de un sensor de glucosa de este ejemplo, y la figura 6 es una vista en perspectiva en despiece ordenado del sensor de glucosa, omitiéndose las capas de reactivos y la capa de agente tensioactivo del mismo.
En primer lugar, se estampó una pasta de plata sobre una placa de base 31 eléctricamente aislante compuesta por poli(tereftalato de etileno) mediante estampación serigráfica para formar un conductor 2. Luego, se estampó una pasta de carbono conductora que contenía un aglutinante de resina sobre la placa de base 31 para formar un electrodo 4 de trabajo. Este electrodo 4 de trabajo estaba en contacto con el conductor 2. Después, se estampó una pasta aislante sobre la placa de base 31 para formar una capa aislante 6. La capa aislante 6 cubría la parte periférica del electrodo 4 de trabajo, de modo que quedaba al descubierto una zona fija del electrodo 4 de trabajo.
A continuación, se estampó una pasta de plata sobre la superficie interna de una cubierta 32 eléctricamente aislante para formar un conductor 3, y luego se estampó una pasta de carbono conductora para formar un contraelectrodo 5. Adicionalmente, se estampó una pasta aislante para formar una capa aislante 6. La cubierta 32 se dotó de una salida 14 de aire.
Se añadió por goteo una primera disolución acuosa que contenía GOD como enzima y sin mediador electrónico, sobre el electrodo 4 de trabajo de la placa de base 31 y entonces se secó para formar una primera capa de reactivo 7, mientras que se añadió por goteo una segunda disolución acuosa que contenía ferricianuro de potasio como mediador electrónico y sin enzima sobre el contraelectrodo 5 de la cubierta 32 y luego se secó para formar una segunda capa de reactivo 8. Adicionalmente, se formó una capa 9 que contenía lecitina como agente tensioactivo sobre la primera capa de reactivo 7.
Finalmente, la placa de base 31, la cubierta 32 y un separador 10 se adhirieron entre sí en una relación posicional tal como se muestra mediante las líneas discontinuas de la figura 6, para fabricar el sensor de glucosa.
El separador 10 interpuesto entre la placa de base 31 y la cubierta 32 presenta una rendija 11 para formar una vía de suministro de disolución de la muestra entre la placa de base 31 y la cubierta 32. El electrodo 4 de trabajo y un contraelectrodo 5 están colocados frente a frente en la vía de suministro de disolución de la muestra formada en la rendija 11 del separador 10.
Puesto que la salida 14 de aire de la cubierta 32 se comunica con esta vía de suministro de disolución de la muestra, cuando una muestra se pone en contacto con un orificio 13 de suministro de muestra, formado en un extremo abierto de la rendija 11, la muestra alcanza rápidamente la primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8 en la vía de suministro de disolución de la muestra debido a un fenómeno capilar.
A continuación, se midió la concentración de glucosa según el mismo procedimiento que en el ejemplo 1. Como resultado de la medición, se observó una respuesta de corriente proporcional a la concentración de glucosa en la muestra.
En el sensor de glucosa del ejemplo 3, la segunda capa de reactivo 8 sólo contenía ferricianuro de potasio, de modo que se observó una alta linealidad hasta una concentración de glucosa superior que en el sensor de glucosa del ejemplo comparativo, como en el ejemplo 1. También, puesto que el electrodo 4 de trabajo y el contraelectrodo 5 se formaron en posiciones opuestas, aumentó la respuesta de corriente en comparación con el ejemplo comparativo, como en el ejemplo 2.
Además, puesto que la GOD y el ferricianuro de potasio estaban separados uno del otro, como en el ejemplo 1, disminuyó la respuesta del blanco y no cambió mucho la respuesta de corriente incluso después de un almacenamiento prolongado en comparación con el ejemplo comparativo.
Además, dado que se interpuso el separador 10 entre la placa de base 31 y la cubierta 32, aumentó la resistencia del sensor frente a una presión física externa.
Como resultado, la primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8 nunca se pusieron en contacto entre sí mediante presión física, evitándose así que variase la respuesta de corriente por la degradación de la actividad enzimática producida por el contacto entre GOD y el ferricianuro de potasio. Además, ya que el volumen de la vía de suministro de disolución de la muestra se mantuvo constante rápidamente, mejoró la estabilidad de la respuesta de corriente en comparación con el ejemplo 2.
Ejemplo 4
En esta realización se fabricó un sensor de glucosa de la misma manera que en el ejemplo 3, con la excepción del procedimiento de formación de la primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8.
Se añadió por goteo una primera disolución acuosa que contenía GOD como enzima, carboximetilcelulosa como polímero hidrófilo y sin mediador electrónico, sobre el electrodo 4 de trabajo de la placa de base 31 y luego se secó para formar una primera capa de reactivo 7, mientras que se añadió por goteo una segunda disolución acuosa que contenía ferricianuro de potasio como mediador electrónico, carboximetilcelulosa y sin enzima sobre el contraelectrodo 5 de la cubierta 32 y luego se secó para formar una segunda capa de reactivo 8. Adicionalmente, se formó una capa 9 que contenía lecitina como agente tensioactivo sobre la primera capa de reactivo 7.
A continuación, se midió la concentración de glucosa según el mismo procedimiento que en el ejemplo 1. Como resultado de la medición, se observó una respuesta de corriente proporcional a la concentración de glucosa en la muestra.
En el sensor de glucosa de este ejemplo, la segunda capa de reactivo 8 sólo contenía ferricianuro de potasio, de modo que se observó una alta linealidad hasta una concentración de glucosa superior que en el sensor de glucosa del ejemplo comparativo, como en el ejemplo 1. También, dado que el electrodo 4 de trabajo y el contraelectrodo 5 se formaron en posiciones opuestas, se observó un aumento en el valor de respuesta en comparación con el ejemplo comparativo.
Además, puesto que la GOD y el ferricianuro de potasio estaban separados uno del otro, disminuyó la respuesta del blanco y no cambió mucho la respuesta de corriente incluso después de un almacenamiento prolongado en comparación con el ejemplo comparativo.
Además, ya que se interpuso el separador 10 entre la placa de base 31 y la cubierta 32, fue posible evitar que variase la respuesta de corriente por la degradación de la actividad enzimática producida por el contacto entre la GOD y el ferricianuro de potasio. Además, ya que el volumen de la vía de suministro de disolución de la muestra se mantuvo constante rápidamente, mejoró la estabilidad de la respuesta de corriente en comparación con el ejemplo 2.
Además, en comparación con los ejemplos 2 y 3, la respuesta de corriente aumentó adicionalmente por el siguiente motivo. La presencia de carboximetilcelulosa en la primera capa de reactivo 7 evitó la adsorción de proteínas sobre la superficie del electrodo 4 de trabajo y, por tanto, la reacción de electrodo en el electrodo 4 de trabajo avanzó sin complicaciones. Adicionalmente, dado que la viscosidad de la muestra aumentó durante la medición, se redujeron los efectos del impacto físico, etc., sobre el sensor y disminuyeron las variaciones en la respuesta del sensor.
En los ejemplos descritos anteriormente, aunque se aplicó una tensión de 500 mV al electrodo 4 de trabajo usando el contraelectrodo 5 como referencia, la tensión no está necesariamente limitada a 500 mV. Puede aplicarse cualquier tensión que permita la oxidación del mediador electrónico, reducido con la reacción enzimática.
En los ejemplos anteriores, la segunda capa de reactivo formada sobre el contraelectrodo sólo contenía el mediador electrónico, pero también puede contener otros componentes además del mediador electrónico, siempre que la inclusión que tales componentes no haga que la reacción en el contraelectrodo sea una etapa determinante de la velocidad y que la influencia que pueda tener sobre la respuesta del blanco y sobre la estabilidad durante el almacenamiento sea tan pequeña que sea insignificante. También, en esos ejemplos, la primera capa de reactivo formada sobre el electrodo de trabajo contenía o bien sólo la enzima o bien la enzima y el polímero hidrófilo, pero también puede contener los demás componentes, siempre que la influencia que tal inclusión puede tener sobre la respuesta del blanco y sobre la estabilidad durante el almacenamiento sea tan pequeña que sea insignificante.
En los ejemplos descritos anteriormente, sólo se utilizó un tipo de mediador electrónico, pero pueden usarse dos o más tipos de mediadores electrónicos.
La primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8 pueden inmovilizarse sobre el electrodo 4 de trabajo o el contraelectrodo 5, de modo que se insolubilice la enzima o el mediador electrónico. En el caso en el que la primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8 estén inmovilizadas, se prefiere usar un procedimiento de inmovilización por reticulación o un procedimiento de adsorción. Alternativamente, el mediador electrónico y la enzima pueden mezclarse dentro del electrodo de trabajo y el contraelectrodo, respectivamente.
Es posible utilizar un material distinto de la lecitina como agente tensioactivo. Además, en los ejemplos descritos anteriormente, aunque la capa de agente tensioactivo 9 se formó solamente sobre la primera capa de reactivo 7, o sobre la primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8, la formación de la capa de agente tensioactivo 9 no se limita necesariamente a estos ejemplos, y la capa de agente tensioactivo 9 puede formarse en una posición que dé a la vía de suministro de disolución de la muestra, tal como una cara lateral de la rendija 11 del separador 10.
En los ejemplos descritos anteriormente, sólo se describe un sistema de dos electrodos que está constituido por el electrodo de trabajo y el contraelectrodo. Sin embargo, si se adopta un sistema de tres electrodos que incluye un electrodo de referencia adicional, es posible llevar a cabo una medición más exacta.
Se prefiere que la primera capa de reactivo 7 y la segunda capa de reactivo 8 no estén en contacto entre sí y que estén separadas la una de la otra con un espacio interpuesto entre ellas. Por consiguiente, es posible aumentar adicionalmente el efecto de supresión de un aumento en la respuesta del blanco y el efecto de mejora de la estabilidad durante el almacenamiento.
Tal como se describió anteriormente, según la presente invención, es posible obtener un biosensor que presenta una característica de respuesta de corriente favorable hasta un intervalo de alta concentración. Adicionalmente, es posible obtener un biosensor que presenta una baja respuesta del blanco y una alta estabilidad durante el almacenamiento.
Aunque la presente invención se ha descrito en relación a las realizaciones actualmente preferidas, debe entenderse que tal descripción no ha de interpretarse de modo limitativo. Sin duda, resultarán evidentes para los expertos en la materia del sector al que pertenece la presente invención diversas alteraciones y modificaciones, tras la lectura de la descripción anterior.

Claims (6)

1. Biosensor, que comprende:
un sistema de electrodos que incluye un electrodo (4) de trabajo y un contraelectrodo (5), para formar un sistema de medición electroquímica poniéndolo en contacto con una disolución suministrada de la muestra;
un elemento de soporte (1, 21, 22, 31, 32) eléctricamente aislante para soportar dicho sistema de electrodos;
una primera capa de reactivo (7) formada sobre dicho electrodo (4) de trabajo; y
una segunda capa de reactivo (8) formada sobre dicho contraelectrodo (5),
en el que dicha primera capa de reactivo (7) no contiene un mediador electrónico y comprende una enzima como principal componente y dicha segunda capa de reactivo (8) no contiene una enzima y comprende un mediador electrónico como componente principal.
2. Biosensor según la reivindicación 1, en el que dicho elemento de soporte comprende una placa de base (1) eléctricamente aislante sobre la cual se forman dicho electrodo (4) de trabajo y dicho contraelectrodo (5).
3. Biosensor según la reivindicación 1,
en el que dicho elemento de soporte comprende una placa de base (21, 31) eléctricamente aislante y un elemento de cubierta (22,32) eléctricamente aislante para formar una vía de suministro de disolución de la muestra o una sección de almacenamiento de la disolución de la muestra entre dicho elemento de cubierta (22, 32) y dicha placa de base (21, 31),
dicho electrodo (4) de trabajo se forma sobre dicha placa de base (21, 31) y
dicho contraelectrodo (5) se forma sobre una superficie interna de dicho elemento de cubierta (22, 32), de modo que da a dicho electrodo (4) de trabajo.
4. Biosensor según la reivindicación 3,
en el que dicho elemento de cubierta (22) comprende un elemento de lámina que presenta una sección (24) curvada expandida hacia fuera, para formar dicha vía de suministro de disolución de la muestra o dicha sección de almacenamiento de la disolución de la muestra entre dicho elemento de cubierta (22) y dicha placa de base (21).
5. Biosensor según la reivindicación 3, en el que dicho elemento de cubierta comprende un separador (10) que presenta una rendija (11) para formar dicha vía de suministro de disolución de la muestra y una cubierta (32) para cubrir dicho separador (10).
6. Biosensor según cualquiera de las reivindicaciones anteriores, en el que dicha primera capa de reactivo (7) contiene un polímero hidrófilo.
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