ES2231817T3 - Anticuerpos del factor anti-tejido injertados a cdr y procedimientos de uso de los mismos. - Google Patents
Anticuerpos del factor anti-tejido injertados a cdr y procedimientos de uso de los mismos.Info
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Abstract
ESTA INVENCION PROPORCIONA ANTICUERPOS CDR ONTRA EL FACTOR TISULAR HUMANO QUE MANTIENEN LA ALTA AFINIDAD DE LOS ANTICUERPOS MONOCLONALES DE ROEDORES CONTRA EL FACTOR TISULAR, PERO CON UNA INMUNOGENICIDAD REDUCIDA. ESTOS ANTICUERPOS HUMANIZADOS SON POTENTES ANTICOAGULANTES Y, POR CONSIGUIENTE, UTILES PARA EL TRATAMIENTO Y PROFILAXIS DE LA ENFERMEDAD TROMBOTICA EN EL HOMBRE. LA INVENCION TAMBIEN PROPORCIONA METODOS DE OBTENCION DE ANTICUERPOS CDR FARMACEUTICAS PARA ATENUAR O PREVENIR LA COAGULACION.
Description
Anticuerpos del factor
anti-tejido injertados a CDR y procedimientos de uso
de los mismos.
Los anticuerpos monoclonales capaces de inhibir
el factor tisular (TF) son útiles como coagulantes. Sin embargo, los
anticuerpos monoclonales de roedores convencionales, tienen un uso
limitado en aplicaciones terapéuticas y de diagnóstico en humanos
debido a la inmunogenicidad y la corta vida media del suero. La
presente invención proporciona anticuerpos monoclonales injertados a
la CDR contra el TF que retienen la alta afinidad de unión de los
anticuerpos de los roedores pero que tienen inmunogenicidad
reducida. Los presentes anticuerpos humanizados son potentes
anticoagulantes y, por ello, son útiles en el tratamiento y
profilaxis de la enfermedad trombótica humana. Igualmente, la
presente invención proporciona procedimientos para la obtención de
anticuerpos injertados en la CDR y composiciones farmacéuticas para
la atenuación o prevención de la coagulación.
La coagulación de la sangre implica una serie en
cascada de reacciones que conducen a la formación de fibrina. La
cascada de coagulación consiste en dos vías solapadas, ambas de las
cuales son necesarias para la hemostasis. La vía intrínseca
comprende factores proteínicos presentes en la sangre en
circulación, en tanto que la vía extrínseca requiere el factor
tisular, el cual se expresa sobre la superficie de la célula de una
diversidad de tejidos en respuesta a la lesión vascular (Davie y
otros, Biochemistry, vol. 30, pág. 10363, (1991)). Los
agentes que interfieren con la cascada de coagulación, tales como
los derivados de heparina y cumarina, son usos terapéuticos bien
conocidos en la profilaxis de la trombosis venosa (Goodman y
Gilman, eds., The Pharmacological Basis of Therapeutics,
NacMillan Publishing Co., Inc., New York, (1980)).
El factor tisular ha sido investigado como un
objetivo diana para la terapia anticoagulante. El TF es una
glucoproteína de membrana que funciona como un receptor para el
Factor VII y VIIa y, de esta forma, inicia la vía extrínseca de la
cascada de coagulación en respuesta a la lesión vascular. Además de
su papel en el mantenimiento de la hemostasis mediante la
iniciación de la coagulación de la sangre, al TF se le ha implicado
en estados patogénicos. Específicamente, la síntesis y expresión de
la superficie de la célula del TF se la ha implicado en la
enfermedad vascular (Wilcox y otros, Proc. Natl. Acad. Sci.,
vol. 86, pág. 2839, (1989)) y en el choque séptico
gram-negativo (Warr y otros, Blood, vol. 75,
pág. 1481, (1990)).
Ruf y otros (Thrombosis and Haemostasis,
vol. 66, pág. 529, (1991)), han caracterizado el potencial
anticoagulante de los anticuerpos monoclonales múridos contra el TF
humano. La inhibición de la función del TF por la mayoría de los
anticuerpos monoclonales que fueron evaluados, fue dependiente de
la disociación del complejo TF/VIIa que se forma rápidamente cuando
el TF entra en contacto con el plasma. Por ello, dichos anticuerpos
fueron inhibidores relativamente lentos del TF en plasma. Un
anticuerpo monoclonal, el TF8-5G9, fue capaz de
inhibir el complejo TF/VIIa sin disociar el complejo,
proporcionando, de esta forma, un efecto anticoagulante inmediato en
el plasma. Ruf y otros, sugieren que el mecanismo que inactiva al
complejo TF/VIIa, en lugar de prevenir su formación, puede
proporcionar estrategias para la interrupción de la coagulación
in vivo.
El uso terapéutico de anticuerpos monoclonales
contra el TF es limitado, dado que los monoclonales normalmente
disponibles son de origen roedor. El uso de anticuerpos de roedores
en la terapia humana presenta numerosos problemas, siendo el más
significativo de ellos la inmunogenicidad. Se ha encontrado que
dosis repetidas de anticuerpos monoclonales de roedores provocan
una respuesta anti-inmunoglobulina denominada
anticuerpo anti-ratón humano (HAMA), lo que puede
dar como resultado la enfermedad complejo-inmune y/o
la neutralización del anticuerpo monoclonal. Véase, p. ej., Jaffers
y otros, Transplantation, vol. 41, pág. 572, (1986). Si bien
el uso de anticuerpos monoclonales humanos se enfrentaría con esta
limitación, se ha demostrado que es difícil generar grandes
cantidades de anticuerpos monoclonales humanos mediante la
tecnología de hibridoma convencional.
La tecnología recombinante se ha usado en un
esfuerzo para construir anticuerpos "humanizados" que mantengan
la alta afinidad de unión de los anticuerpos monoclonales de
roedores, pero que muestren inmunogenicidad reducida en humanos. Se
han producido anticuerpos quiméricos en los cuales la región
variable (V) de un anticuerpo de ratón está combinada con la región
constante (C) de un anticuerpo humano en un esfuerzo para mantener
la especificidad y afinidad del anticuerpo del roedor, pero
reduciendo la cantidad de proteína que es no-humana
y, por ello, inmunogénica. Aunque la respuesta inmune a anticuerpos
quiméricos es, generalmente, reducida con respecto al anticuerpo del
roedor correspondiente, la respuesta inmune no puede eliminarse
completamente, puesto que la región V del ratón es capaz de
provocar una respuesta inmune (Lobuglio y otros, Proc. Natl.
Ascad, Sci., vol. 86, pág. 4220, (1989); Jaffers y otros,
Transplantation, vol. 41, pág. 572, (1986)).
En un reciente camino para reducir la
inmunogenicidad de anticuerpos de roedores, únicamente las regiones
determinantes de complementariedad (CDRs) del roedor, en lugar del
dominio V entero, se transplantaron a un anticuerpo humano. Dichos
anticuerpos humanizados se conocen como anticuerpos injertados a la
CDR. Las CDRs son regiones de hipervariabilidad en las regiones V
que están flanqueadas por regiones relativamente conservadas
conocidas como regiones de marco de lectura (FR). Cada dominio V
contiene tres CDRs flanqueadas por cuatro FRs. Las CDRs se pliegan
para formar el sitio de unión del antígeno del anticuerpo, en tanto
que los FRs soportan las conformaciones estructurales de los
dominios V. De esta forma, mediante el transplante de las CDRs de
roedores a un anticuerpo humano, puede igualmente teóricamente
transferirse el dominio de unión del antígeno. Owens y otros, en
J. Immunol. Methods, vol. 168, pág. 149, (1994) y Winer y
otros, en Immunology Today, vol. 14, pág. 243, (1993),
revisan el desarrollo de anticuerpos injertados a la CDR.
Orlandi y otros, en Proc. Natl. Acad.
Sci., vol. 86, pág. 3833, (1989), han construido un anticuerpo
humanizado contra el hapteno relativamente simple nitrofenilacetilo
(NP). El anticuerpo injertado a la CDR contenía CDRs de ratón y FRs
humanos, y mostró actividad de unión al NP similar al del anticuerpo
de ratón nativo. Sin embargo, la construcción de anticuerpos
injertados a la CDR que reconocen antígenos más complejos, ha dado
como resultado anticuerpos que tienen actividad de unión
significativamente más baja que los anticuerpos de roedores
nativos. En numerosos casos, se ha demostrado que la mera
introducción de las CDRs de roedores dentro de una base genética de
anticuerpo humano es insuficiente para mantener la actividad de
unión completa, debido, posiblemente, a la distorsión de la
conformación de la CDR por el FR humano.
Por ejemplo, Gorman y otros, en Proc. Natl.
Acad. Sci., vol. 88, pág. 4181, (1991), han comparado dos
anticuerpos humanizados contra CD4 humano y han observado avideces
considerablemente diferentes, dependiendo de la región del marco
de lectura humano particular del anticuerpo humanizado. Co y otros,
en Proc. Natl. Acad. Sci., vol. 88, pág. 2869, (1991),
precisaron un modelo de computadora refinado del anticuerpo múrido
de interés con el fin de identificar los aminoácidos críticos a
considerar en el diseño de un anticuerpo humanizado. Kettelborough
y otros, en Protein Engineering, vol. 4, pág. 773, (1991),
informan de la influencia de los restos del FR particular de un
anticuerpo injertado a la CDR sobre la unión del antígeno, y
proponen que los restos pueden interactuar directamente con el
antígeno, o pueden alterar la conformación de las hélices de la
CDR. De manera similar, Singer y otros, en J. Immunol., vol.
150, pág. 2844, (1993), informan que la humanización óptima de un
anticuerpo monoclonal múrido anti-CD18, depende de
la capacidad del FR seleccionado para soportar la CDR en la
conformación de la unión del antígeno apropiada. De acuerdo con
ello, la recreación del sitio de unión del antígeno requiere la
consideración de las potenciales interacciones intracadena entre el
FR y la CDR, y la manipulación de los restos de aminoácidos del FR
que mantienen contactos con las hélices formadas por las CDRs.
Aunque se han propuesto directrices teóricas generales para el
diseño de anticuerpos humanizados (véase, p.ej., Owens y otros), en
todos los casos el procedimiento debe construirse a la medida y
optimizarse para el anticuerpo de roedor particular de interés.
Existe una necesidad en la técnica de anticuerpos
humanizados con inmunogenicidad reducida y afinidad de unión
comparable con relación al anticuerpo de roedor progenitor para
diversas aplicaciones terapéuticas. En particular, existe una
necesidad de un anticuerpo humanizado contra el factor tisular
humano que tenga actividad anticoagulante y sea útil en el
tratamiento y la prevención de la enfermedad trombótica.
La presente invención se dirige a anticuerpos
injertados a la CDR capaces de inhibir el factor tisular humano, en
los que las CDRs derivan a partir de un anticuerpo monoclonal
no-humano contra el factor tisular y las regiones
FR y constante (C) derivan a partir de uno o más anticuerpos
humanos. En una realización preferida, el anticuerpo monoclonal
múrido es el TF8-5G9.
En otra realización, la presente invención
proporciona un procedimiento para la producción de un anticuerpo
injertado a la CDR capaz de inhibir el factor tisular humano, cuyo
procedimiento comprende la construcción de uno o más vectores de
expresión que contienen ácidos nucléicos conteniendo la
codificación de cadenas pesadas y ligeras del anticuerpo injertado a
la CDR, la transfección de células huéspedes adecuadas con el
vector o vectores de expresión, el cultivo de las células huéspedes
transfectadas, y la recuperación del anticuerpo injertado a la
CDR.
La presente invención proporciona igualmente un
procedimiento para la atenuación de la coagulación, el cual
comprende la administración de un anticuerpo injertado a la CDR
capaz de inhibir el factor tisular humano a un paciente que
necesite de dicha atenuación.
La presente invención proporciona además un
procedimiento de tratamiento o prevención de la enfermedad
trombótica, el cual comprende la administración de un anticuerpo
injertado a la CDR capaz de inhibir el factor tisular humano a un
paciente que necesite de dicho tratamiento o prevención. En una
realización preferida, la enfermedad trombótica es la coagulación
intravascular, la restenosis arterial o la arterioesclerosis.
Otra realización de la presente invención está
dirigida a una composición farmacéutica, la cual comprende
anticuerpos injertados a la CDR capaces de inhibir el factor
tisular humano y que, además, comprende un vehículo aceptable
farmacéuticamente.
La Figura 1 proporciona el nucleótido y las
secuencias de aminoácidos deducidas de la cadena pesada del
anticuerpo monoclonal múrido TF8-5G9.
La Figura 2 proporciona el nucleótido y las
secuencias de aminoácidos deducidas de la cadena ligera del
anticuerpo monoclonal múrido TF8-5G9.
La Figura 3 es un gráfico que representa la
capacidad del anticuerpo injertado a la CDR, TF8HCDR1 x TF8LCDR1,
para unirse al factor tisular humano y para competir con el
anticuerpo monoclonal múrido TF8-5G9 por la unión al
factor tisular. Los símbolos rellenados indican la unión directa de
TF8HCDR1 x TF8LCDR1 y el control positivo quimérico
TF8-5G9 al factor tisular. Los símbolos sin
rellenar indican la unión de competencia de TF8HCDR1 x TF8LCDR1 o
del quimérico TF8-5G9 con el anticuerpo monoclonal
múrido TF8-5G9.
La Figura 4 presenta la secuencia de DNA del
vector de expresión pEe6TF8HCDR20 y la secuencia de aminoácidos de
las regiones de codificación de la cadena pesada injertada a la CDR
de TF8HCDR20.
La Figura 5 presenta la secuencia de DNA del
vector de expresión pEe12TF8LCDR20 y la secuencia de aminoácidos de
las regiones de codificación de la cadena ligera injertada a la CDR
de TF8LCDR3.
La Figura 6 es un gráfico que representa la
capacidad del anticuerpo injertado a la CDR, TF8HCDR20 x
TF8LCDR3, para unirse al factor tisular humano.
TF8LCDR3, para unirse al factor tisular humano.
La Figura 7 es un gráfico que representa la
capacidad del anticuerpo injertado a la CDR, TF8HCDR1 x TF8LCDR1,
para competir con el anticuerpo monoclonal múrido
TF8-5G9 por la unión al factor tisular.
La Figura 8 es un gráfico que representa la
capacidad del anticuerpo injertado a la CDR, TF8HCDR1 x TF8LCDR1,
para inhibir la activación del factor X.
La Figura 9 proporciona el vector de expresión
pEe6TF8HCDR20 que resulta de la subclonación de la cadena pesada
injertada a la CDR de TF8HCDR20 dentro del vector de expresión del
mieloma pEehCMV-BglI. Se han usado las abreviaturas
siguientes: VH es la región variable de la cadena pesada injertada
a la CDR; C\gamma4 es la región constante de IgG4 humano; pA es la
señal de poliadenilación; ampR es el gen
\beta-lactamasa; y hCMV es citomegalovirus
humano.
La Figura 10 proporciona el vector de expresión
pEe12TF8LCDR3 que resulta de la subclonación de la cadena ligera
injertada a la CDR de TF8LCDR3 dentro del vector de expresión del
mieloma pEe12. Se han usado las abreviaturas siguientes: VL es la
región variable de la cadena ligera injertada a la CDR; CK es la
región constante kappa humana; SVE es el promotor temprano SV40; GS
es el cDNA de glutamina sintetasa. Otras abreviaturas son tal como
se han indicado en la Figura 9.
La presente invención proporciona anticuerpos
injertados a la CDR capaces de inhibir el factor tisular humano, en
los que las CDRs derivan a partir de un anticuerpo monoclonal
no-humano contra el factor tisular y las regiones
FR y C derivan a partir de uno o más anticuerpos humanos. La
presente invención proporciona, además, procedimientos para la
obtención y uso de los anticuerpos sujetos injertados a la CDR.
De acuerdo con la presente invención, el
anticuerpo injertado a la CDR es un anticuerpo, en el cual las CDRs
derivan a partir de un anticuerpo monoclonal
no-humano capaz de unirse e inhibir la función del
factor tisular humano, y las regiones FR y C del anticuerpo derivan
a partir de uno o más anticuerpos humanos. Las CDRs derivadas a
partir del anticuerpo no-humano tiene,
preferiblemente, desde aproximadamente 90% hasta aproximadamente
100% de identidad con las CDRs del anticuerpo
no-humano, aunque se contemplan cualquiera y todas
las modificaciones, incluyendo substituciones, inserciones y
deleciones, siempre y cuando que el anticuerpo injertado a la CDR
mantenga la capacidad para unirse e inhibir el factor tisular. Las
regiones de los anticuerpos injertados a la CDR que derivan a
partir de anticuerpos humanos no necesitan tener un 100% de
identidad con los anticuerpos humanos. En una realización
preferida, son retenidos tantos restos de aminoácidos humanos como
es posible con el fin de que la inmunogenicidad sea despreciable,
pero los restos humanos, en particular los restos de la región FR,
son substituidos cuando es preciso y tal como se expone aquí más
adelante de acuerdo con la presente invención. Dichas
modificaciones tal como se describen aquí, son necesarias para
soportar el sitio de unión del antígeno formado por las CDRs, al
mismo tiempo que se maximiza simultáneamente la humanización del
anticuerpo.
Los anticuerpos monoclonales
no-humanos contra el factor tisular a partir de los
cuales pueden derivarse las CDRs, son conocidos en la técnica (Ruf
y otros, (1991); Morrisey y otros, Trombosis Research, vol.
52, pág. 247, (1988)), o pueden producirse por procedimientos bien
conocidos de producción de anticuerpos monoclonales (véase, p. ej.,
Harlow y otros, eds., (1988), Antibodies, A Laboratory
Manual, Cold Spring Harbor Laboratories, Cold Spring Harbor,
New York). El factor tisular humano purificado contra cuyos
anticuerpos monoclonales puede generarse, es, de manera similar,
bien conocido (Morrisey y otros, Cell, vol. 50, pág. 129,
(1987)) y disponible para el técnico experto. Los anticuerpos
monoclonales múridos, y en particular el anticuerpo monoclonal
múrido TF8-5G9 descrito por Ruf y otros y Morrisey y
otros, en Trombosis Research, vol. 52, pág. 247, (1988), y
en la Patente de EE.UU. No. 5.223.427, son particularmente
preferidos.
El técnico normalmente experto puede determinar
las secuencias de las CDRs por referencias a la literatura
científica o los bancos de datos de secuencias publicados, o
mediante clonación y secuenciación de las cadenas ligera y pesada
de los anticuerpos mediante metodología convencional. De acuerdo
con la presente invención, se proporcionan el cDNA y las secuencias
de aminoácidos de la cadena pesada (SEC ID NOS: 1 y 2,
respectivamente) y de la cadena ligera SEC ID NOS: 3 y 4,
respectivamente) del anticuerpo monoclonal múrido
TF8-5G9. En la Figura 1, se proporciona el cDNA y
la secuencia de aminoácidos deducida de la cadena pesada del múrido
TF8-5G9. En la Figura 2, se proporciona el cDNA y
la secuencia de aminoácidos deducida de la cadena ligera del múrido
TF8-5G9.
Cada una de las regiones variables de la cadena
pesada y ligera contienen tres CDRs que se combinan para formar el
sitio de unión del antígeno. Las tres CDRs están rodeadas por
cuatro regiones FR que funcionan fundamentalmente para soportar las
CDRs. Las secuencias de las CDRs comprendidas dentro de las
secuencias de las regiones variables de las cadenas pesada y
ligera, pueden identificarse mediante alineamiento ayudado por
ordenador, de acuerdo con Kabat y otros, en Sequences of
Proteins of Inmmunological Interest, 4th ed., United States
Department of Health and Human Services, US Goverment Printing
Office, Washington, D.C., (1987), o mediante formación de modelos
moleculares de las regiones variables, por ejemplo usando el
programa ENCAD tal como ha sido descrito por Levitt, en J. Mol.
Biol., vol. 168, pág. 505, (1983).
En una realización preferida, las CDRs derivan a
partir del anticuerpo monoclonal múrido TF8-5G9.
Las CDRs de cadena pesada preferida tienen las secuencias
siguientes:
CDR1 | DYYMH | (SEC ID NO:5) | |
CDR2 | LIDPENGNTIYDPKFQG | (SEC ID NO:6) | |
CDR3 | DNSYYFDY | (SEC ID NO:7) |
Las CDRs de cadena ligera preferida tienen las
secuencias siguientes:
CDR1 | KASQDIRKYLN | (SEC ID NO:8) | |
CDR2 | YATSLAD | (SEC ID NO:9) | |
CDR3 | LQHGESPYT | (SEC ID NO:10) |
Las secuencias de las CDRs del múrido u otro
anticuerpo no-humano, y en particular las
secuencias de las CDRs del TF8-5G9, pueden
modificarse mediante inserciones, substituciones y deleciones,
hasta un grado tal que el anticuerpo injertado a la CDR mantenga la
capacidad para unirse e inhibir el factor tisular humano. El
técnico experto normal puede cercionarse del mantenimiento de esta
actividad realizando los ensayos funcionales descritos aquí más
adelante. Las CDRs tienen, por ejemplo, desde aproximadamente 50%
hasta aproximadamente 100% de homología con las CDRs de las SEC ID
NOS:5-10. En una realización preferida, las CDRs
tienen desde aproximadamente 80% hasta aproximadamente 100% de
homología con las CDRs de las SEC ID NOS:5-10. En
una más realización preferida, las CDRs tienen desde aproximadamente
90% hasta aproximadamente 100% de homología con las CDRs de las SEC
ID NOS:5-10. En realización la más preferida, las
CDRs tienen desde aproximadamente 100% de homología con las CDRs de
las SEC ID NOS:5-10.
Las regiones FR y C de los anticuerpos injertados
a la CDR de la presente invención, derivan de uno o más anticuerpos
humanos. Los anticuerpos humanos de la misma clase y tipo que el
anticuerpo a partir del cual derivan las CDRs, son los preferidos.
El FR de la región variable de la cadena pesada deriva,
preferiblemente, del anticuerpo humano KOL (Schmidt y otros,
Hoppe-Seyler's Z. Physiol. Chem., vol. 364,
pág. 713, (1983)). El FR de la región variable de la cadena ligera
deriva, preferiblemente, del anticuerpo humano REI (Epp y otros,
Eur. J. Biochem., vol. 45, pág. 513, (1974)). De acuerdo con
la presente invención, se ha descubierto que ciertos restos del FR
humano son reemplazados, preferiblemente, por el resto
correspondiente del anticuerpo no-humano a partir
del cual derivan las CDRs. Por ejemplo, ciertos restos del FR del
TF8-5G9 son, preferiblemente, retenidos para lograr
la unión óptima al antígeno.
Por conveniencia, se ha adoptado aquí el esquema
de numeración de Kabat y otros. Los restos se han designado
mediante minúsculas o guiones según fuera necesario, para conformar
las secuencias presentes a la secuencia estándar numerada de
Kabat.
De acuerdo con la presente invención, los restos
que son retenidos en la región FR, es decir, restos que no han sido
reemplazados por restos FR humanos, se determinan de acuerdo con la
directrices siguientes. Los restos que son idiosincráticos con el
anticuerpo progenitor, p. ej., TF6-5G9, con respecto
a la secuencia de consenso human de Kabat y otros, son retenidos.
Los restos del anticuerpo progenitor que están de acuerdo con la
secuencia de consenso, son retenidos si el resto correspondiente
del anticuerpo humano, p. ej., KOL o REI, es idiosincrático. Los
restos que forman parte de las estructuras canónicas en hélice del
anticuerpo definidas por Chotia y otros, en Nature, vol.
342, pág. 877, (1989), tal como el resto 71 de las cadenas pesada y
ligera, son retenidos. Los restos previstos para formar hélices,
tales como los restos 28-30 de la cadena pesada,
son retenidos. Los restos previstos para influir en la conformación
de las CDRs, tales como los restos 48 y 49 de la CDR2 precedente de
la cadena pesada, son retenidos. Los restos que han demostrado ser
críticos en la humanización de otros anticuerpos pueden,
igualmente, ser retenidos. Las directrices anteriores son seguidas
hasta el punto necesario como para soportar el sitio de unión del
antígeno formado por las CDRs, al mismo tiempo que simultáneamente
se maximiza la humanización del anti-
cuerpo.
cuerpo.
La secuencia de aminoácidos de una región
variable de cadena pesada injertada a la CDR representativa,
derivada a partir del anticuerpo monoclonal múrido
TF8-5G9 y del anticuerpo monoclonal humano KOL, se
muestra más adelante. La cadena pesada injertada a la CDR se
designó como TF8HCDR1; los restos múridos se retuvieron en el FR en
los restos 6, 17, 23, 24, 28, 29, 30, 48, 49, 68, 71, 73, 78, 88 y
91. Las CDRs están subrayadas.
La secuencia de aminoácidos de una región
variable de cadena ligera injertada a la CDR representativa,
derivada a partir del anticuerpo monoclonal múrido
TF8-5G9 y del anticuerpo monoclonal humano REI, se
muestra más adelante. La cadena ligera injertada a la CDR se
designó como TF8LCDR1; los restos múridos se retuvieron en el FR en
los restos 39, 41, 46 y 105. Las CDRs están subrayadas.
Un anticuerpo injertado a la CDR que contenía las
regiones variables TF8HCDR1 y TF8LCDR1 se ha demostrado, de acuerdo
con la presente invención, que es tan eficaz como el anticuerpo
monoclonal múrido TF8-5G9 en la unión al factor
tisular humano. Además, se ha descubierto que, de acuerdo con la
presente invención, mediante el examen de la estructura molecular
del anticuerpo monoclonal múrido TF8-5G9, y
mediante el diseño, construcción y análisis de los anticuerpos
injertados a la CDR, que las regiones FR pueden humanizarse
adicionalmente sin pérdida de actividad de unión al antígeno. En
particular, la región FR puede retener el resto FR humano en los
restos 6, 17, 68, 73 y 78 de la cadena pesada, y los restos 39, 41,
16 y 105 de la cadena ligera, con mantenimiento de la actividad de
unión al antígeno.
En una realización la más preferida, la región
variable de cadena pesada contiene un FR derivado a partir del
anticuerpo humano KOL, en la que los restos del anticuerpo
monoclonal múrido TF8-5G9 están retenidos en los
aminoácidos 23, 24, 28, 29, 30, 48, 49, 71, 88 y 91. La región
variable de cadena pesada preferida se designó como TF8HCDR20 y
tiene la secuencia siguiente:
En una realización la más preferida, la región
variable de cadena ligera contiene un FR derivado a partir del
anticuerpo humano REI, en la que los restos del anticuerpo
monoclonal múrido TF8-5G9 están retenidos en los
aminoácidos 39 y 105. La región variable de cadena ligera preferida
se designó como TF8LCDR3 y tiene la secuencia siguiente:
Entra dentro del conocimiento del técnico experto
normal el realizar modificaciones menores de las secuencias
anteriores, incluyendo substituciones, deleciones e inserciones de
aminoácidos. Cualquiera de dichas modificaciones entran dentro del
alcance de la presente invención, siempre y cuando que el
anticuerpo injertado a la CDR resultante mantenga la capacidad para
unirse e inhibir el factor tisular humano. El técnico experto
normal puede evaluar la actividad del anticuerpo injertado a la CDR
con referencia los ensayos descritos aquí más adelante.
La región constante humana de los anticuerpos
injertados a la CDR de la presente invención se selecciona con el
fin de minimizar la función efectora. El uso al que se destinan los
anticuerpos injertados a la CDR de la presente invención es el de
bloquear la cascada de coagulación mediante la inhibición del
factor tisular y, por ello, funciones efectoras del anticuerpo, tal
como la fijación del complemento, no son deseables. Los anticuerpos
con funciones efectoras mínimas incluyen IgG2, IgG4, IgA, IgD e
IgE. En una realización preferida de la presente invención, la
región constante de cadena pesada es la región constante IgG4
humana, y la región constante de cadena ligera es la región
constante IgG4 kappa humana.
Dado que las funciones efectoras pueden no ser
deseables para usos terapéuticos, la presente invención contempla
además fragmentos activos de los anticuerpos injertados a la CDR, y
en particular fragmentos Fab y fragmentos F(ab')_{2}. Los
fragmentos activos son aquellos fragmentos capaces de inhibir el
factor tisular humano. Los fragmentos Fab y fragmentos
F(ab')_{2} pueden obtenerse por medios convencionales, por
ejemplo, por escisión de los anticuerpos injertados a la CDR de la
invención con la enzima proteolítica apropiada tal como papaína o
pepsina, o por producción recombinante. Los fragmentos activos
mantienen los sitios de unión al antígeno de los anticuerpos
injertados a la CDR y, de esta forma, son similarmente útiles
terapéuticamente.
La capacidad de los anticuerpos injertados a la
CDR diseñados y construidos tal como se expone de acuerdo con la
presente invención para unirse e inhibir el factor tisular humano,
puede evaluarse mediante ensayos funcionales. Por ejemplo, en un
ensayo rápido y conveniente, los vectores de expresión que
contienen ácidos nucléicos con la codificación de las cadenas
pesada y ligera injertadas a la CDR, pueden
co-transfectarse dentro células huéspedes adecuadas
y expresarse transitoriamente. Los anticuerpos resultantes pueden
evaluarse mediante ensayos estándar con el fin de determinar la
capacidad para unirse al factor tisular humano, y para determinar la
capacidad para competir por la unión al factor tisular con el
anticuerpo no-humano a partir del cual derivan las
CDRs.
Por ejemplo, la expresión transitoria de ácidos
nucléicos que contienen la codificación de las cadenas pesada y
ligera injertas a la CDR en células COS, proporciona un sistema
rápido y conveniente para comprobar la expresión y función del gen
anticuerpo. Los ácidos nucléicos que contienen la codificación de
las cadenas pesada y ligera injertas a la CDR, respectivamente, son
clonados dentro de un vector de expresión de célula de mamífero, por
ejemplo pSG5, descrito por Green y otros, en Nucleic Acids
Res., vol. 16, pág. 369, (1988), y comercialmente disponible de
Stratagene Cloning Systems, La Jolla, CA. El vector de expresión
pSG5 proporciona sitios de restricción únicos para la inserción de
los genes de cadena pesada y ligera, y la expresión in vivo
está bajo el control del promotor temprano SV40. La terminación
transcripcional está señalada por la secuencia de la señal de
poliadenilación de SV40.
Los vectores de expresión basados en el pSG5 que
contienen los ácidos nucléicos con la codificación de las cadenas
pesada y ligera, son co-transfectados dentro de
células COS y cultivados bajo condiciones adecuadas para la
expresión transitoria. A continuación, los medios de cultivo de
células son recolectados y examinados para determinar su expresión
de anticuerpos, por ejemplo mediante un ensayo inmunoenzimático
(ELISA), con el fin de determinar qué niveles adecuados de
anticuerpo se han producido. A continuación, puede usarse un ensayo
ELISA para evaluar la capacidad del anticuerpo injertado a la CDR
para unirse al factor tisular humano. El factor tisular humano se
inmoviliza sobre una placa de microvaloración y se agrega el
sobrenadante de células COS que contiene el anticuerpo injertado a
la CDR, seguido de una incubación a temperatura ambiente durante
aproximadamente una hora. A continuación, las placas se lavan con
un tampón que contiene detergente adecuado tal como solución salina
tamponada con fosfato (PBS)/Tween, seguido de la adición de los
componentes de un sistema de detección adecuado. Por ejemplo, se
agrega anticuerpo policlonal de cadena kappa
anti-humano de cabra conjugado con peroxidasa de
rábano picante, seguido de lavado y, a continuación, la adición de
substrato para la peroxidasa de rábano picante, y detección. Los
anticuerpos injertados a la CDR que entran dentro del alcance de la
presente invención, son aquellos que son capaces de unirse al factor
tisular humano hasta un grado comparable al del anticuerpo
no-humano a partir del cual derivan las CDRs, tal
como se determina mediante el ensayo anterior.
La capacidad de los anticuerpos injertados a la
CDR para inhibir la actividad del factor tisular humano in
vivo, puede evaluarse de manera conveniente mediante el ensayo
in vitro siguiente, el cual imita los episodios de
coagulación in vivo. En respuesta a la lesión vascular in
vivo, el factor tisular se une al factor VII y facilita la
conversión del factor VII en una serina proteasa (factor VIIa). El
complejo factor VIIa-factor tisular convierte el
factor X en una serina proteasa (factor Xa). El factor Xa forma un
complejo con el factor Va (procedente de la vía de coagulación
intrínseca), dando como resultado la conversión de protrombina en
trombina, la cual, a su vez, da como resultado la conversión de
fibrinógeno en fibrina. En un ensayo funcional in vitro
conveniente, el factor tisular se incuba en presencia del factor
VIIa y el anticuerpo del factor anti-tisular
injertado a la CDR producido en el sistema de expresión transitorio
anteriormente descrito. Se agrega el factor X y se incuba la mezcla
de reacción, seguido de un ensayo para determinar la actividad del
factor Xa usando un substrato cromogénico para el factor Xa
(Sprectrozyme FXa, American Diagnostica, Inc., Greenwich, CT). De
esta forma, la capacidad del anticuerpo injertado a la CDR para
inhibir la activación del factor X proporciona una medida de la
capacidad del anticuerpo injertado a la CDR para inhibir la
actividad del factor tisular humano.
Los anticuerpos injertados a la CDR incluidos
dentro del alcance de la presente invención, son aquellos que son
capaces de inhibir el factor tisular humano hasta un grado
comparable al del anticuerpo no-humano a partir del
cual derivan las CDRs, tal como se determina mediante el ensayo
anterior. En una realización, el anticuerpo injertado a la CDR
tiene al menos un 50% de la actividad inhibidora del
TF8-5G9 por el factor tisular humano. En una
realización preferida, el anticuerpo injertado a la CDR tiene al
menos un 70% de la actividad inhibidora del TF8-5G9
por el factor tisular humano. En una realización más preferida, el
anticuerpo injertado a la CDR tiene al menos un 80% de la actividad
inhibidora del TF8-5G9 por el factor tisular
humano. En una realización la más preferida, el anticuerpo injertado
a la CDR tiene al menos un 90% de la actividad inhibidora del
TF8-5G9 por el factor tisular humano.
En otra realización, la presente invención
proporciona un procedimiento para la producción de un anticuerpo
injertado a la CDR capaz de inhibir el factor tisular humano. El
procedimiento comprende la construcción de un vector de expresión
que contiene un ácido nucléico con la codificación de la cadena
pesada del anticuerpo injertado a la CDR y un vector de expresión
que contiene un ácido nucléico con la codificación de la cadena
ligera del anticuerpo injertado a la CDR, la transfección de las
células huéspedes adecuadas con los vectores de expresión, el
cultivo de las células huéspedes transfectadas bajo condiciones
adecuadas para la expresión de las cadenas pesada y ligera, y la
recuperación del anticuerpo injertado a la CDR. Como alternativa,
puede usarse un vector de expresión que contenga ácidos nucléicos
con la codificación de las cadenas pesada y ligera.
Las técnicas de biología molecular estándar, por
ejemplo las descritas por Sambrook y otros, en Molecular
Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Press, Cold
Spring Harbor, NY, (1989), pueden usarse para obtener ácidos
nucléicos con la codificación de las cadenas pesada y ligera de los
anticuerpos injertados a la CDR de la presente invención. Un ácido
nucléico con la codificación del dominio variable injertado a la
CDR, puede construirse aislando el cDNA con la codificación del
anticuerpo a humanizar, p. ej., el anticuerpo monoclonal múrido
TF8-5G9, mediante metodología de clonación
convencional a partir del hibridoma que produce el anticuerpo, o
mediante la amplificación mediante la reacción en cadena de la
polimerasa (PCR) de los genes de la región variable, tal como ha
sido descrita por ejemplo por Winter y otros, seguido de
mutagénesis dirigida al sitio, para substituir nucleótidos que
contienen la codificación de los restos humanos deseados dentro de
las regiones del FR. Como alternativa, puede aislarse el cDNA que
contiene la codificación del anticuerpo humano, seguido de
mutagénesis dirigida al sitio, para substituir los nucleótidos que
contienen la codificación de los restos múridos deseados dentro de
las CDRs.
Los ácidos nucléicos que contienen la
codificación del dominio variable injertado a la CDR, pueden
igualmente sintetizarse mediante ensamblado de oligonucleótidos
sintéticos, por ejemplo usando DNA polimerasa y DNA ligasa. A
continuación, las regiones variables sintéticas resultantes pueden
amplificarse mediante PCR. Los ácidos nucléicos que contienen la
codificación de dominios variables injertados a la CDR, pueden
igualmente construirse mediante procedimientos de solapado de
hebras por PCR que son conocidos en la técnica y han sido revisados
por Oewns y otros.
De acuerdo con ello, una vez determinadas las
secuencias de aminoácidos deseadas de los dominios variables
injertados a la CDR de acuerdo con la presente invención, el
técnico experto normal puede obtener ácidos nucléicos que contengan
la codificación de los dominios variables. Además, el técnico
experto sabe que, debido a la degeneración del código genético,
pueden construirse varias secuencias de ácidos nucléicos que
contienen el código de dominios variables injertados a la CDR.
Todas dichas secuencias de ácido nucléico son contempladas por la
presente invención.
Los ácidos nucléicos que contienen la
codificación de los dominios variables injertados a la CDR están
ligados a los ácidos nucléicos apropiados que contienen la
codificación de la región constante de cadena pesada o ligera del
anticuerpo humano. Las secuencias de ácidos nucléicos que contienen
la codificación de las regiones constantes de cadena pesada o
ligera humanas son conocidas en la técnica. Entra dentro del
conocimiento del técnico experto normal el incluir secuencias que
faciliten la transcripción, traducción y secreción, por ejemplo
codones de iniciación, secuencias líderes, la secuencia de consenso
de Kozak (Kozak, J. Mol. Biol., vol. 196, pág. 947, (1987)) y
similares, así como sitios de endonucleasa de restricción para
facilitar la clonación dentro de vectores de expresión.
De acuerdo con ello, la presente invención
proporciona además ácidos nucléicos que contienen la codificación de
las cadenas pesada y ligera de anticuerpos injertados a la CDR,
capaces de inhibir el factor tisular humano, en los que las CDRs
derivan a partir de un anticuerpo minoclonal múrido contra el
factor tisular y las regiones FR y C derivan a partir de uno o más
anticuerpos humanos.
De acuerdo con la presente invención, se
construyeron los ácidos nucléicos representativos que contienen la
codificación de las cadenas pesada y ligera injertadas a la CDR. La
cadena pesada injertada a la CDR comprende una región variable que
contiene regiones del FR derivadas a partir del anticuerpo humano
KOL y CDRs derivadas a partir del anticuerpo monoclonal múrido
TF8-5G9 y, además comprende una región constante
derivada a partir de la cadena pesada de IgG4 humano. La cadena
ligera injertada a la CDR comprende una región variable que
contiene regiones del FR derivadas a partir del anticuerpo humano
REI y CDRs derivadas a partir del anticuerpo monoclonal múrido
TF8-5G9 y, además comprende una región constante
derivada a partir de la cadena kappa de IgG4 humano. Los ácidos
nucléicos que contienen la codificación de las cadenas pesada y
ligera se construyeron mediante el ensamblado de las regiones
variables procedentes de nucleótidos sintéticos, la amplificación
de las regiones variables ensambladas mediante PCR, la purificación
de los ácidos nucléicos amplificados, y el ligamiento del ácido
nucléico que contiene la codificación de la región variable dentro
de un vector que contiene un ácido nucléico con la codificación de
la región constante humana apropiada.
Las secuencias de los ácidos nucléicos
representativos que contienen la codificación de las cadenas pesada
y ligera injertadas a la CDR, se presentan como los nucleótidos
1-2360 de la SEC ID NO:15 y los nucleótidos
1-759 de la SEC ID NO:20, respectivamente.
La secuencia de ácido nucléico que contiene la
codificación de una cadena pesada preferida (nucleótidos
1-2360 de la SEC ID NO:15) se ha designado como el
gen TF8HCDR20. La secuencia de ácido nucléico contiene las regiones
siguientes: sitio de restricción 5' EcoRI (nucleótidos
1-6); secuencia de Kozak (nucleótidos
7-15); codón de iniciación y secuencia conductora
(nucleótidos 16-72); región variable injertada a la
CDR (nucleótidos 73-423); dominio CH1 de IgG4
humano (nucleótidos 424-717); intrón 2 de IgG4
humano (nucleótidos 718-1110); bisagra de IgG4
humano (nucleótidos 1111-1146); intrón 3 de IgG4
humano (nucleótidos 1147-1267); dominio CH2 de IgG4
humano (nucleótidos 1268-1594); intrón 4 de IgG4
humano (nucleótidos 1595-1691); dominio CH3 de IgG4
humano (nucleótidos 1692-2012); región no traducida
3' (nucleótidos 2013-2354); extremo 3' BamHI
cortado y empalmado al sitio BclI del vector de expresión
(nucleótidos 2355-2360).
La secuencia de ácido nucléico que contiene la
codificación de un gen de cadena ligera preferida (nucleótidos
1-759 de la SEC ID NO:20) se ha designado como el
gen TF8LCDR3. La secuencia de ácido nucléico contiene las regiones
siguientes: sitio de restricción 5' EcoRI (nucleótidos
1-5); secuencia de Kozak (nucleótidos
6-8); codón de iniciación y secuencia conductora
(nucleótidos 9-68); región variable injertada a la
CDR (nucleótidos 69-392); región constante kappa
humana (nucleótidos 393-710); región no traducida 3'
(nucleótidos 711-753); extremo 3' BamHI
cortado y empalmado al sitio BclI del vector de expresión
(nucleótidos 758-759).
Las secuencias preferidas anteriores pueden
modificarse por el técnico experto normal para tener en cuenta la
degeneración del código genético, y para realizar adiciones,
deleciones, y substituciones conservadoras y no conservadoras que
den como resultado un mantenimiento de la función del ácido
nucléico, es decir, que contenga el código de una cadena pesada o
ligera de un anticuerpo injertado a la CDR capaz de inhibir el
factor tisular humano. Los sitios de restricción y las secuencias
que facilitan la transcripción y traducción pueden alterarse o
substituirse según sea necesario, dependiendo del vector y del
sistema huésped elegido para la expresión.
Los vectores de expresión y húespedes adecuados
para la producción de los anticuerpos injertados a la CDR de la
presente invención, son conocidos por el técnico experto normal.
Los vectores de expresión contienen secuencias reguladoras, tales
como replicones y promotores, capaces de dirigir la replicación y
expresión de secuencias de ácidos nucléicos heterólogos en una
célula huésped particular. Igualmente, los vectores pueden contener
genes de selección, potenciadores, secuencias señal, sitios de
unión de ribosoma, sitios de corte y empalme de RNA, sitios de
poliadenilación, secuencias terminadoras de transcripción, etc. Los
vectores pueden construirse mediante procedimientos bien conocidos
en la técnica, u obtenerse a partir de fuentes comerciales.
Preferiblemente, los vectores de expresión tienen sitios de
restricción convenientes en los cuales se insertan los ácidos
nucléicos que contienen la codificación de las cadenas del
anticuerpo de la invención. Los vectores de expresión de mieloma en
los cuales la expresión del gen del anticuerpo es impulsado por el
promotor-potenciador citomegalovirus humano or son
los preferidos.
Los vectores de expresión que contienen un ácido
nucléico con la codificación de la cadena pesada injertada a la CDR
bajo el control de un promotor adecuado y los vectores de expresión
que contienen un ácido nucléico con la codificación de la cadena
ligera injertada a la CDR bajo el control de un promotor adecuado,
son co-transfectados dentro de una célula huésped
adecuada. En otra realización, se proporcionan ácidos nucléicos que
contienen la codificación tanto de la cadena pesada como la ligera,
en un único vector para transfección de una célula huésped
adecuada.
Las células huéspedes o líneas de células
adecuadas para la expresión de los anticuerpos injertados a la CDR
de la presente invención, incluyen células bacterianas, células de
levaduras, células de insectos, y células de mamíferos tales como
células de ovario de hamster chino (CHO), células COS, células
fibroblasto y células mieloides. Las células de mamífero son las
preferidas. Las células CHO, COS y mieloma son particularmente
preferidas. Las células de mieloma son preferidas para el
establecimiento de líneas de células productoras de anticuerpos
injertados a la CDR permanentes. La expresión de anticuerpos en
células de mieloma, bacterias y levadora ha sido revisada por
Sandhu en Critical Reviews in Biotechnology, vol. 12, pág.
437, (1992). La expresión en células de mamíferos ha sido revisada
por Owens y otros.
La transfección de células huéspedes mediante la
expresión de vectores que contienen ácidos nucléicos con la
codificación de las cadenas pesada y ligera injertadas a la CDR,
puede realizarse mediante procedimientos bien conocidos para un
experto normal en la técnica. Dichos procedimientos incluyen, por
ejemplo, transfección con cloruro cálcico, transfección con fosfato
cálcico, lipofección y electroporación. Los procedimientos y
condiciones de cultivo adecuados para la producción de los
anticuerpos injertados a la CDR son, igualmente, bien conocidos en
la técnica. Los anticuerpos injertados a la CDR pueden purificarse
mediante procedimientos convencionales, incluyendo precipitación
con sulfato amónico, cromatografía de afinidad, electroforésis en
gel, y similares. La capacidad de los anticuerpos injertados a la
CDR para unirse e inhibir el factor tisular humano puede evaluarse
mediante los ensayos in vitro descritos anteriormente.
Los anticuerpos injertados a la CDR de la
presente invención tienen una diversidad de utilidades. Por
ejemplo, los anticuerpos son capaces de unirse al factor tisular
humano y, de esta forma, son útiles en ensayos para determinar el
factor tisular humano a partir de muestras de flúido corporal, para
la purificación del factor tisular humano, etc.
Los anticuerpos injertados a la CDR de la
presente invención son capaces de inhibir el factor tisular humano.
El factor tisular humano es bien conocido por ser un elemento
esencial en la cascada de coagulación humana. La capacidad de los
anticuerpos de la presente invención para interrumpir la cascada de
coagulación se demuestra mediante ensayos in vitro, en los
cuales los anticuerpos previenen la activación del factor X. De
acuerdo con ello, los presentes anticuerpos son útiles en la
atenuación de la coagulación. Por ello, la presente invención
proporciona un procedimiento de atenuación de la coagulación que
comprende la administración de una cantidad eficaz terapéuticamente
del anticuerpo injertado a la CDR capaz de inhibir el factor
tisular humano a un paciente que necesite dicha atenuación.
Numerosos trastornos trombóticos se caracterizan
por una excesiva o inapropiada coagulación y son tratados o
prevenidos eficazmente mediante la administración de agentes que
interfieren con la cascada de coagulación. De acuerdo con ello, la
presente invención proporciona además un procedimiento de
tratamiento o prevención de un trastorno trombótico que comprende la
administración de una cantidad eficaz terapéuticamente del
anticuerpo injertado a la CDR capaz de inhibir el factor tisular
humano a un paciente que necesite dicho tratamiento o prevención.
En una realización preferida, el trastorno trombótico es la
coagulación intravascular, restenosis arterial o la
arterioesclerosis. Los anticuerpos de la invención pueden usarse en
combinación con otros anticuerpos o agentes terapéuticos.
Una cantidad eficaz terapéuticamente de los
anticuerpos de la presente invención puede determinarse por el
técnico experto normal con respecto al estado del paciente, la
condición a tratar, el procedimiento de administración, etc. Una
cantidad eficaz terapéuticamente es la dosificación necesaria para
aliviar, eliminar, o prevenir el trastorno trombótico, tal como se
determina mediante parámetros convencionales. Por ejemplo, una
dosis eficaz terapéuticamente de un anticuerpo injertado a la CDR
de la presente invención puede ser desde aproximadamente 0,1 mg
hasta aproximadamente 20 mg por 70 kg de peso corporal. Una
dosificación preferida es aproximadamente 1,0 mg hasta
aproximadamente 5 mg por 70 kg de peso corporal.
Un paciente que necesite de dicho tratamiento es
un paciente que sufre de un trastorno caracterizado por una
inapropiada o excesiva coagulación, o un paciente con riesgo de
dicho trastorno. Por ejemplo, una terapia anticoagulante es útil
para prevenir la trombosis venosa postoperatoria, y la restenosis
arterial posterior a la angioplastia de balón.
Los anticuerpos injertados a la CDR de la
presente invención son útiles de la misma manera como agentes
terapéuticos comparables, y el nivel de dosificación es del mismo
orden de magnitud que el generalmente usado con los agentes
terapéuticos comparables. Los anticuerpos presentes pueden
administrarse en combinación con un vehículo aceptable
farmacéuticamente mediante procedimientos conocidos por un experto
normal en la técnica.
Otra realización de la presente invención está
dirigida a una composición farmacéutica que comprende al menos un
anticuerpo injertado a la CDR capaz de inhibir el factor tisular
humano y que comprende, además, un vehículo aceptable
farmacéuticamente. Tal como aquí se usa, un "vehículo aceptable
farmacéuticamente" incluye todos y cada uno de los disolventes,
medios de dispersión, recubrimientos, agentes antibacterianos y
antihongos, agentes isotónicos y retardadores de la absorción, y
similares. El uso de dichos medios y agentes para substancias
activas farmacéuticamente es bien conocido en la técnica. Excepto en
tanto en cuanto cualquier medio o agente sea incompatible con el
ingrediente activo, su uso se contempla en las composiciones
terapéuticas. Igualmente, pueden incorporarse dentro de las
composiciones ingredientes activos suplementarios.
Los anticuerpos pueden administrarse por vías
bien conocidas incluyendo la oral y parenteral, p. ej.,
intravenosa, intramuscular, intranasal, intradérmica, subcutánea, y
similares. La administración parenteral y particularmente la
administración intravenosa es la preferida. Dependiendo de la vía
de administración, la composición farmacéutica puede requerir
recubrimientos protectores.
Las formas farmacéuticas adecuadas para uso
inyectable, incluyen soluciones o dispersiones acuosas estériles y
polvos estériles para la preparación en su momento de soluciones o
dispersiones inyectables estériles. En todos los casos, la forma de
solución final deber ser estéril y fluida. Los vehículos típicos
incluyen un disolvente o medio de dispersión conteniendo, por
ejemplo, soluciones acuosas tamponadas (es decir, tampones
biocompatibles), etanol, poliol tal como glicerol, propileno
glicol, polietileno glicol, mezclas adecuadas de los mismos,
tensioactivos y aceites vegetales. Los anticuerpos pueden
incorporarse dentro de liposomas para administración parenteral. La
esterilización puede realizarse mediante procedimientos reconocidos
en la técnica, incluyendo, pero sin limitarse a ellos, la adición de
agentes antibacterianos o antihongos, por ejemplo, paraben,
clorobutanol, fenol, ácido sórbico o timersal. Además, pueden
incorporarse dentro de las composiciones sujeto, agentes isotónicos
tales como azúcares o cloruro sódico.
La producción de soluciones inyectables estériles
conteniendo los anticuerpo sujeto, se realiza mediante la
incorporación de estos anticuerpos en la cantidad requerida en el
disolvente apropiado, con diversos de los ingredientes enumerados
anteriormente, según se requiera, seguido de esterilización,
preferiblemente esterilización por filtración. Para obtener un polvo
estéril, las soluciones anteriores se secan al vacío o se
criodesecan, según sea necerario.
Los ejemplos siguientes ilustran adicionalmente
la presente invención.
Se generaron dos DNA bibliotecas a partir de RNA
hibridoma de TF8-5G9 cebado con oligo (dt), usando
procedimientos de biología molecular estándar tal como han sido
descritos por Sambrook y otros. El cDNA se clonó dentro del vector
plásmido Librarian II de Invitrogen (San Diego, CA), y las
bibliotecas se rastrearon para determinar los clones cDNA que
contenían el código de la HC y LC de IgG múrido. A pesar de la
construcción de dos bibliotecas independientes, no pudo aislarse un
clon cDNA de longitud total para la cadena pesada. Para obtener la
secuencia 5' perdida de la cadena pesada, se generó un cDNA
biblioteca de TF8-5G9 cebado aleatoriamente. En
consecuencia, el cDNA de cadena pesada tenía dos piezas: un clon 5'
de 390 nucleótidos y un clon 3' de 1392 nucleótidos. Los dos clones
de HC se solapan en 292 nucleótidos.
Los clones de HC y LC se secuenciaron
completamente mediante el procedimiento de terminación de cadena
dideoxi de Sanger y otros (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol.
74, pág. 5463, (1977)). Con el fin de verificar la secuencia de la
región variable, la secuencia se obtuvo a partir de cDNA
amplificado mediante PCR que había sido sintetizado a partir de RNA
hibridoma de TF8-5G9 total. El RNA hibridoma de
TF8-5G9 total se aisló mediante el procedimiento de
tiocianato de guanidinio de Chrigwin y otros (Biochemistry,
vol. 18, pág. 5294, (1970)). El cDNA se sintetizó usando el juego
GeneAmp RNA Polymerasa Chain Reaction (PCR) de Perkin Elmer
(Norwalk, CT), con un cebador oligo (dt). Los componentes del mismo
juego se usaron en la PCR para amplificar las regiones variables de
la LC y HC usando cebadores basados en la secuencia que había sido
obtenida para los clones cDNA. Los fragmentos de región variable
amplificada se purificaron sobre gel y se secuenciaron de acuerdo
con el procedimiento de Tracy y otros (BioTechniques, vol.
11, pág. 68, (1991)) sobre un secuenciador de DNA fluorescente
automatizado Modelo 373A de Applied Biosystems, Inc. (Foster City,
CA). La secuencia para la LC y HC de TF8-5G9 a
partir de la amplificación de RNA y la secuencia obtenida a partir
de los clones cDNA estaban de acuerdo. La secuencia de la región
variable de la HC de TF8-5G9 con la traducción de la
proteína se muestra en la Figura 1 y la SEC ID NO:1, y la de la LC
se muestra en la Figura 2 y la SEC ID NO:3.
Con el fin de ensayar la actividad de unión de la
LC y HC anti-TF injertada a la CDR individualmente,
se construyeron LC y HC de TF8-5G9 quiméricas. Esto
permitió ensayar la LC injertada a la CDR para determinar la
capacidad de unión de TF en combinación con la HC quimérica, y
ensayar la HC injertada a la CDR en combinación con la LC
quimérica.
Se diseñaron cebadores para amplificar la región
variable de la LC de TF8-5G9 usando como moldes
clones cDNA en el vector Librarian II. El cebador 5' se diseñó con
un sitio EcoRI, en tanto que el cebador 3' se diseñó con un
sitio NarI. Se usó la PCR para amplificar la región variable
de la LC, generándose un fragmento de 433 bp con un extremo 5'
EcoRI y un extremo 3' NarI. El fragmento incluía la
secuencia de señal procedente del clon cDNA de la LC de
TF8-5G9, pero incorporaba un cambio en 2 bases en el
codón arginina inmediatamente después del codón de iniciación ATG.
Este cambio retuvo el resto arginina, pero hizo que la secuencia
estuviera de acuerdo con la secuencia de consenso de Kozak con el
fin de mejorar potencialmente la traducción del mRNA de la LC. El
fragmento de región variable de la LC amplificado mediante PCR se
digerió con las enzimas de restricción EcoRI y NarI y
se purificó mediante electroforésis sobre un gel de agarosa Nusieve
al 2% y Seakem al 1% (FMC Bio Products, Rockland,
ME).
ME).
El DNA se extrajo de las capas de gel y se
purificó mediante el procedimiento Geneclean (Bio 101, La Jolla,
CA). El gen de la LC de TF8-5G9 quimérico de
longitud total se genera mediante la clonación de este DNA dentro
de los sitios EcoRI y NarI de un vector pSP73
(Promega, Madison, WI), el cual contiene la región constante kappa
humana. El gen se aisló a partir del vector pSP73 mediante
digestión con EcoRI y se subclonó dentro del sitio
EcoRI del vector de expresión de célula de mamífero pSG5
(Stratagene Cloning Systems, La Jolla, CA).
El gen de la HC de TF8-5G9
quimérico se ensambló de una manera similar a la de la HC
quimérica. Puesto que no se aisló el cDNA de la HC de longitud
total a partir de las bibliotecas de cDNA del vector Librarian II,
el fragmento de región variable de la HC que se generó mediante la
PCR a partir del RNA de la célula del hibridoma
TF8-5G9 total, se usó como el molde. Los cebadores
que incorporaron un sitio EcoRI en el extremo 5' y un sitio
SacI en el extremo 3', se usaron en la PCR para generar un
fragmento de 430 bp que contenía la secuencia de Kozak, el codón de
iniciación, la secuencia señal y la región variable de la HC de
TF8-5G9. Este fragmento se digerió con las enzimas
de restricción EcoRI y SacI, y se purificó sobre gel
usando el mismo procedimiento usado con la construcción de la LC
quimé-
rica.
rica.
El gen de la HC quimérica de
TF78-5G9 de longitud total se construyó clonando el
fragmento de la región variable dentro de los sitios EcoRI y
SacI del vector de expresión pSG5 que contiene la región
constante IgG4 humana.
Los dominios de la región variable de los genes
de la HC y LC injertados a la CDR, se diseñaron con un EcoRI
colgante en el extremo 5' seguido de una secuencia de Kozak para
mejorar la expresión del anticuerpo. Las secuencias conductoras se
derivaron a partir de las cadenas pesada y ligera del anticuerpo
monoclonal múrido B72.3 (Whittle y otros, Protein
Engineering, vol. 1, pág. 499, (1987)). El extremo 3' de las
regiones variables se diseñó de forma que tuviera colgantes que
permitieran el corte y empalme al DNA de región constante humano
apropiado.
En las cadenas pesada y ligera del
TF8-5G9 injertado a la CDR inicialmente diseñado,
las CDRs se derivaron a partir de la secuencia de
TF8-5G9 múrido, mientras que los marcos de lectura
se derivaron fundamentalmente a partir de la secuencia del
anticuerpo humano. El anticuerpo humano KOL (Schmidt y otros) se
usó para los marcos de lectura de la cadena pesada, mientras que el
dímero de anticuerpo humano (Epp y otros) se usó para los marcos de
lectura de la cadena ligera.
Se usaron diversos criterios para la selección de
los restos de marco de lectura múrido en el diseño de las regiones
variables de la cadena pesada y ligera injertada a la CDR de
TF8-5G9. Los restos del marco de lectura que, en
una posición particular, son idiosincráticos con
TF8-5G9, se retuvieron como secuencia múrida
asumiéndose que contribuían a sus características de unión única.
Igualmente, los restos múridos TF8-5G9 se retuvieron
en las posiciones del marco de lectura en las cuales estaban de
acuerdo con la secuencia de consenso humana, pero en las cuales los
restos correspondientes en KOL o REI fueron idiosincráticas. Los
restos que forman parte de estructuras canónicas en hélice del
anticuerpo, tal como el resto 71 (numeración de acuerdo con Kabat y
otros) de las cadenas pesada y ligera, se retuvieron igualmente como
secuencia múrida. Los restos del marco de lectura que forman
hélices, tales como los restos 26-30 de la HC, se
mantuvieron como secuencia múrida TF8-5G9 en las
posiciones en las que la secuencia múrida difiere de la humana. Los
restos de los que se sabe que influyen directamente en la
conformación de las CDRs, tales como 48 y 49 que preceden
inmediatamente a la CDR2 de la HC, se retuvieron igualmente como
secuencia
múrida.
múrida.
La secuencia de aminoácidos de la región variable
para la HC de TF8-5G9 injertada a la CDR
inicialmente diseñada, la TF8HCDR1, se muestra en la SEC ID NO:1.
Los restos múridos se retuvieron en las posiciones del marco de
lectura 6, 17, 23, 24, 28, 29, 30, 48, 49, 68, 71, 73, 78, 88 y 91.
La región variable de la HC injertada a la CDR se unió a una región
constante IgG4 humana.
La secuencia de aminoácidos de la región variable
para la LC de TF8-5G9 injertada a la CDR
inicialmente diseñada, la TF8LCDR1, se muestra en la SEC ID NO:12.
Los restos múridos se retuvieron en las posiciones del marco de
lectura 39, 41, 46 y 105. La región variable de la LC injertada a la
CDR se unió a una región constante kappa huma-
na.
na.
La región variable para la HC y la LC injertada a
la CDR descrita anteriormente, se ensamblaron cada una a partir de
13 oligonuclótidos sintéticos, los cuales fueron sintetizados por
Research Genetics, Inc., Huntsville, AL. Estos oligonucleótidos
tenían unas longitudes comprendidas dentro del intervalo de desde
42 hasta 80 bases, y contenían la codificación de ambas hebras de
región variable. Cuando los 6 pares de oligonucleótidos
complementarios se reasociaron, los colgantes generados tuvieron
una longitud de 17 a 24 bases. Estos pares de oligonucleótidos se
combinaron, se reasociaron a sus colgantes complementarios, y se
ligaron, proporcionando las regiones variables de doble hebra de
longitud total.
Los oligonucleótidos de la región variable de la
HC se ensamblaron dentro de un fragmento de 452 bp, el cual
contenía un sitio 5' EcoRI y un sitio 3' SacI. La
reacción en cadena de la polimerasa se usó para amplificar este
fragmento. El DNA amplificado resultante se purificó sobre un gel de
agarosa Nusieve al 2% y Seakem al 1% (FMC). La banda de tamaño
apropiado de DNA se escindió y el DNA se recuperó mediante el
procedimiento Geneclean (Bio 101). A continuación, el fragmento se
digerió con EcoRI y SacI, y se purificó nuevamente
mediante el procedimiento Geneclean. Este fragmento de región
variable de la HC con los extremos EcoRI y SacI se
clonó dentro de los sitios EcoRI y SacI del vector
pSport-1 (GIBCO-BRL Life
Technologies, Gaithersburg, MD). El DNA procedente de diversos
clones se aisló y secuenció con el fin de verificar el ensamble de
la región variable apropiada. Todos los clones tenían cambios de
bases inesperados. Un clon con los menores cambios de bases (dos
desapareamientos en las bases 133 y 140) fue el seleccionado para
corregirlo mediante mutagénesis dirigida al sitio, de acuerdo con
Kunkel (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol. 82, pág. 488,
(1985)). En resumen, las células competentes CJ236 (ung-, dut-)
(Invitrogen Corporation, San Diego, CA), se transformaron con el
vector pSport que contenía la región variable de la HC injertada a
la CDR con el desapareamiento de las dos bases. Los moldes de DNA
incorporados con uridina, de hebra doble, se purificaron a partir
del fago después de la infección del fago ayudante M13 (Stratagene
Cloning Systems) de las células transformadas. Los oligos de la
mutagénesis que contenían los cambios de bases deseados se
sintetizaron sobre un sintetizador de DNA Modelo 380A de Applied
Biosystems. Los oligos de la mutagénesis se reasociaron al DNA
molde, y se usó DNA Polymerase T7 y DNA Lygase T4 (Mutagene INVitro
Mutagenesis Kit, Bio-Rad Laboratories, Richmond, CA)
para incorporar el oligo en una hebra de DNA recién sintetizada.
Las células competentes DH5\alpha (GIBCO-BRL Life
Technologies) se transformaron con el DNA de doble hebra. La hebra
incorporada a uridina original se destruyó, mientras que la hebra
recién sintetizada que contenía el oligo de la mutagénesis se
replicó. El DNA fagémido se preparó a partir de los clones
resultantes de la mutagénesis y las regiones variables se
secuenciaron con el fin de identificar los clones que tenían
incorporados los cambios deseados. El fragmento de región variable
EcoRI/SacI de la HC corregida se escindió del vector
pSport, se purificó y se ligó dentro de los sitios
EcoRI/SacI de un vector pSG5 que contenía la región
constante IgG4 humana. Esto dió como resultado la generación de un
gen de la HC de TF8-5G9 humanizado de longitud
total, el TF8HCDR1, en el vector de expresión pSG5 de la célula COS.
El vector se designó como pSG5TF8HCDR1.
La región variable de la LC de
TF8-5G9 injertada a la CDR, se amplificó igualmente
mediante la PCR a partir de los oligonucleótidos sintéticos
ensamblados dentro de un fragmento de 433 bp que contenía un sitio
5' EcoRI y un sitio 3' NarI. Este fragmento se
purificó tal como se ha descrito anteriormente para la HC, se
digerió con EcoRI y NarI y se purificó mediante el
procedimiento Geneclean. Este fragmento se clonó dentro de los
sitios EcoRI y NarI de un vector pSG5 que contenía la
región constante kappa humana. Esto dió como resultado la
generación de un gen de la LC de TF8-5G9 humanizado
de longitud total, el TF8LCDR1, en el vector de expresión pSG5 de la
célula COS. Se secuenciaron siete clones, encontrándose que uno
tenía la secuencia de la LC injertada a la CDR deseada. El vector
se designó como pSG5TF8LCDR1.
La expresión transitoria de genes anticuerpo en
células COS-1 proporciona un sistema rápido y
conveniente para determinar la expresión y función del gen
anticuerpo. Las células COS-1 se obtuvieron de la
American Type Culture Collection (CRL 1650) y se cultivaron en
medio Eagle modificado de Dulbecco (DMEM, de GIBCO BRL Life
Technologies) con suero vacuno fetal al 10%. El factor de expresión
de pSG5TF8HCDR1 se co-transfectó dentro de células
COS con el vector de expresión pSG5 de la LC quimérica usando el
procedimiento DEAE-dextrano, seguido de choque con
DMSO, tal como ha sido descrito por Lopata y otros, en Nucleic
Acids Res., vol. 14, pág. 5707, (1984). Después de 4 días de
cultivo, los medios se recolectaron de las cavidades y se examinaron
para determinar los niveles de expresión de anticuerpo.
Los niveles de anticuerpo se determinaron
mediante un ensayo de ensamblado basado en ELISA. Las placas se
recubrieron con un anticuerpo específico Fc
anti-humano de cabra. Se agregaron diversas
diluciones del sobrenadante de células COS que contenían el
anticuerpo secretado, se incubaron durante una hora y se lavaron.
Se agregó un anticuerpo de cadena kappa anti-humano
de cabra ligado a peroxidasa de rábano picante, se incubó durante
una hora y se lavó. Con fines de detección, se agregó el substrato
para la peroxidasa de rábano picante. Se encontró que los niveles de
anticuerpo en los medios de células COS eran casi indectables para
el TF8HCDR1 x LC quimérica. Después de un examen más profundo de la
secuencia de la región variable de TF8HCDR1, se encontró que un
cambio de base no esperado, el cual se había producido durante el
procedimiento de mutagénesis dirigida al sitio descrito en el
Ejemplo 3, introdujo un codón de parada dentro del marco de lectura
4 del gen TF8HCDR1. Esta substitución se corrigió mediante la
mutagénesis dirigida al sitio anteriormente descrita. La
secuenciación completa de la región variable confirmó que se había
realizado la corrección sin introducirse ningún cambio adicional.
Mediante la transfección de este gen TF8HCDR1 corregido con la LC
quimérica, se obtuvieron niveles de expresión razonables.
Las células COS que habían sido
co-transfectadas con el vector de expresión de la
LC injertada a la CDR, el pSGTF8LCDR1, y o bien la HC quimérica o
el TF8HCDR1, produjeron anticuerpo a niveles razonables. Los niveles
de anticuerpo en los sobrenadantes de células COS variaron desde
0,5 \mug hasta 10,0 \mug por ml.
Se usó un ensayo ELISA para determinar la
capacidad del anticuerpo TF8-5G9 injertado a la
CDR, el TF8HCDR1 x TF8LCDR1, para unirse al factor tisular. El
factor tisular se inmovilizó sobre una placa de microvaloración. El
sobrenadante de célula COS de ensayo, que contenía el anticuerpo
injertado a la CDR, se agregó a la cavidad, y se incubó durante una
hora a temperatura ambiente. Después de tres lavados con PBS/Tween,
se agregó un anticuerpo policlonal de cadena kappa
anti-humano de cabra conjugado con peroxidasa de
rábano picante, se incubó durante una hora a temperatura ambiente y
se lavó. Con fines de detección, se agregó el substrato para la
peroxidasa de rábano picante. El control positivo fue el anticuerpo
quimérico TF8-5G9. El anticuerpo
TF8-5G9 injertado a la CDR fue capaz de unirse al
factor tisular hasta un grado comparable al del anticuerpo
TF8-5G9 quimérico (Figura 3, símbolos
rellenados).
Igualmente, se examinó la capacidad del
anticuerpo humanizado para competir con el TF8-5G9
múrido por la unión al factor tisular. Se agregaron simultáneamente
cantidades variables del sobrenadante de células COS que contenían
el anticuerpo injertado a la CDR de ensayo y una cantidad fija de
TF8-5G9 múrido a cavidades recubiertas con factor
tisular. Se dejó que la unión se produjera durante una hora a
temperatura ambiente. La cavidades se lavaron tres veces con
PBS/Tween. Se agregó un anticuerpo de cadena kappa
anti-humano de cabra ligado a peroxidasa de rábano
picante, se incubó durante una hora y se lavó. Con fines de
detección, se agregó el substrato para la peroxidasa de rábano
picante. El anticuerpo positivo compitió tan bien como el anticuerpo
quimérico con el TF8-5G9 quimérico por la unión al
TF.
Estos datos indican que el anticuerpo injertado a
la CDR inicialmente diseñado, el TF8HCDR1 x TF8LCDR1, fue
aproximadamente tan activo como el TF8-5G9
quimérico en la unión al TF y en la competencia con el anticuerpo
múrido por la unión al TF.
Durante el examen de la estructura molecular del
TF8-5G9 múrido, se encontró que los restos del marco
de lectura en las posiciones 27, 68, 73 y 78 estaban situados sobre
la superficie del anticuerpo y no tenían un contacto visible con
las CDRs. Estos restos del marco de lectura eran de la secuencia
múrida en TF8HCDR1, pero cambiaron a la secuencia KOL humana en
diversas combinaciones con el fin de generar una serie de cadenas
pesadas injertadas a la CDR con variaciones en los restos del marco
de lectura. Los cambios se realizaron mediante el procedimiento de
mutagénesis dirigida al sitio tal como se ha descrito en el Ejemplo
3. Cada versión de cadena pesada injertada a la CDR se expresó en
células COS en combinación con la LC injertada a la CDR, TF8LCDR1,
y se ensayó para determinar su capacidad para unirse al FT y
competir con el TF8-5G9 múrido por la unión. Cada
versión de la cadena pesada injertada a la CDR en combinación con
TF8LCDR1 se mostró que se unía al TF con una afinidad comparable al
TF8-5G9 quimérico. Cada HC injertada a la CDR en
combinación con TF8LCDR1 fue capaz de competir con el
TF8-5G9 múrido por la unión al TF hasta un grado
comparable al del anticuerpo quimérico.
Los cambios en la secuencia desde el múrido al
humano para las posiciones del marco de lectura de la HC 6, 17, 68,
73 y 78, no afectaron negativamente la capacidad de unión al
antígeno del anticuerpo. La versión de la HC injertada a la CDR que
tenía secuencia humana en todas estas posiciones, y que por ello
fue la HC más humanizada, fue la TF8HCDR20.
Se determinó la secuencia completa del gen
TF8HCDR20. La secuencia de DNA se muestra en forma de un inserto
EcoRI/BamHI de 2360 bp con traducción de proteína en
el vector de expresión pEe6TF8HCDR20 en la Figura 4 y en la SEC ID
NO:15.
Las regiones esenciales del gen son las
siguientes:
Nucleótido # | \hskip1cm Región |
1-6 | Sitio de restricción 5' EcoRI |
7-15 | Secuencia de Kozak |
16-72 | Codón de iniciación y secuencia conductora |
73-423 | Región variable injertada a la CDR |
424-717 | Dominio CH1 de IgG4 humano |
718-1110 | Intrón 2 de IgG4 humano |
1111-1146 | Bisagra de IgG4 humano |
1147-1267 | Intrón 3 de IgG4 humano |
1268-1594 | Dominio CH2 de IgG4 humano |
1595-1691 | Intrón 4 de IgG4 humano |
1692-2012 | Dominio CH3 de IgG4 humano |
2013-2354 | Región 3' no traducida |
2355-2260 | Extremo 3' BamHI cortado y empalmado al sitio BclI del vector de expresión |
La LC injertada a la CDR inicialmente diseñada,
la TF8LCDR1, contenía cuatro restos de marco de lectura procedentes
de la secuencia TF8-5G9 múrida. En dos de estas
posiciones, 39 y 105, la secuencia de marco de lectura REI humana
es única de REI; sin embargo, la secuencia de la LC de
TF8-5G9 múrida está de acuerdo con la secuencia de
consenso humana. Los otros dos restos de marco de lectura múridos,
trp41 y thr46, son únicos de TF8-5G9. Se generaron
diversas versiones de la LC injertada a la CDR, en las cuales la
secuencia en estas cuatro posiciones se cambiaron del múrido al REI
humano en diversas combinaciones. Estos cambios se realizaron
mediante mutagénesis dirigida al sitio. Cada versión de la LC
injertada a la CDR se expresó en células COS en combinación con la
HC injertada a la CDR, la TF8HCDR20, y se ensayó para determinar la
capacidad para unirse al factor tisular y competir con el
TF8-5G9 múrido por la unión. Cada versión de la LC
injertada a la CDR, en combinación con TF8HCDR20, se mostró que se
unía al TF con una afinidad comparable al TF8-5G9.
Igualmente, cada versión de la LC injertada a la CDR, en
combinación con TF8HCDR20, fue capaz de competir con el
TF8-5G9 múrido por la unión al TF de una manera
comparable al del control TF8-5G9 quimérico.
Los cambios en la secuencia desde el múrido al
humano para las posiciones del marco de lectura de la LC 39, 41 y
105, no afectaron negativamente la capacidad del anticuerpo para
reconocer al antígeno. La HC injertada a la CDR elegida fue la
TF8LCDR3, en la cual la secuencia TF8-5G) múrida se
usó en las posiciones 39 y 105, ya que estas están de acuerdo con la
secuencia de consenso humana. El anticuerpo TF8-5G9
injertado a la CDR preferido es el TF8HCDR20 x TF8LCDR3.
Se determinó la secuencia completa del gen
TF8LCDR3, la cual se muestra como un inserto
EcoRI/BamHI de 759 bp con traducción de proteína en
el vector de expresión pEe12TF8LCDR3 en la Figura 5 y en la SEC ID
NO:20. Las regiones esenciales del gen son las siguientes:
Nucleótido # | \hskip1cm Región |
1-5 | Sitio de restricción 5' EcoRI |
6-8 | Secuencia de Kozak |
9-68 | Codón de iniciación y secuencia conductora |
69-392 | Región variable injertada a la CDR |
393-710 | Región constante kappa humana |
711-753 | Región 3' no traducida |
754-759 | Extremo 3' BamHI cortado y empalmado al sitio BclI del vector de expresión |
La unión del anticuerpo TF8-5G9
injertado a la CDR, TF8HCDR20 x TF8LCDR3, al TF se comprobó tal como
se ha descrito en el Ejemplo 5, encontrándose que era comparable a
la del TF8-5G9 quimérico tal como se ilustra en la
Figura 6. La capacidad del TF8-5G9 injertado a la
CDR para competir con el anticuerpo múrido por la unión al TF es
comparable a la del TF8-5G9 quimérico tal como se
muestra en la Figura 7.
Para medir el nivel de inhibición de la
activación del factor X por el anticuerpo TF8-5G9
injertado a la CDR, se usó un ensayo in vitro. En este
ensayo, el TF forma un complejo proteolítico activo con el factor
VII. A continuación, este complejo convierte el factor X en el
factor Xa mediante proteolísis. El Xa activado enzimáticamente
escinde un substrato, el Spectrozyme FXa, el cual libera un
cromógeno. El nivel de cromógeno, tal como se determina mediante
densidad óptica, es una indicación de la activación del factor X
debida a la actividad TF-factor VIIa.
Se prepararon las mezclas de reacción siguientes
en tubos de vidrio de borosilicato de 12x75 mm:
25 \mul de TBS (Tris 50 mM, pH 7,4, NaCl 150
mM),
15 \mul de CaCl_{2} 20 mM/suero bovino fetal
(BSA) al 1%,
20 \mul de solución de factor tisular placental
humano (preparado mediante la reconstitución de un vial de
Thromborel S, Curtin Matheson Scientific #269-338,
con 4,0 ml de dH_{2}O y diluyendo a 1:10 en TBS),
30 \mul de Factor VII (Enzyme Research Labs
#HFVII 1007 a 237,66 ng/ml en TBS),
30 \mul de TBS o TF8-5G9 o
TF8MCDR20 x TF8LCDR3 a 1,18 \mug/ml o tal como se indica en la
Figura 8.
Las mezclas de reacción se incubaron a 37ºC
durante diez minutos antes de la adición del Factor X. (En algunos
casos, la mezcla de reacción se pre-incubó durante
cinco minutos antes de la adición del Factor VII o del anticuerpo,
seguido de una incubación de diez minutos antes de la adición del
Factor X). Se agregaron 30 \mul de solución del Factor X (Enzyme
Research Labs, DHFX, 247,38 \mu/ml en TBS) y la mezcla se incubó
a 37ºC durante tres minutos. La activación del Factor X se terminó
pipeteando 40 \mug de la mezcla de reacción dentro de 160 \mul
de tampón de parada (Tris 50 mM, pH 7,4, EDTA 100 mM, NaCl 150 mM)
en placas de microvaloración de 96 cavidades. Cada tubo de mezcla de
reacción se pipeteó dentro de tres cavidades de microvaloración. A
cada cavidad se agregaron 50 \mul de substrato Spectrozyme FXa
(American Diagnostica #222, 1 \muM/ml en TBS). La DO_{405} se
leyó sobre un lector de placa cinética de Molecular Devices con
lecturas tomadas cada veinte segundos durante diez minutos. La
actividad del Factor X se registró como mDO/minuto, y las
velocidades de la enzima sobre la porción lineal de la curva de
reacción se compararon con el fin de determinar la inhibición de la
activación del factor X mediante los anticuerpos
anti-FT.
Tal como se muestra en la Figura 8, el anticuerpo
F8-5G9 injertado a la CDR es aproximadamente tan
eficaz como el TF8-5G9 múrido en la inhibición de
la activación del factor X. Esto indica que el
TF8-5G9 injertado a la CDR es funcionalmente
activo.
Con el fin de establecer una línea de producción
de anticuerpo injertado a la CDR permanente, los genes
TF8HCDR20 y TF8LCDR3 se subclonaron dentro de vectores de expresión de células de mieloma. El TF8HCDR20 de cadena pesada se subclonó dentro de los sitios EcoRI y BclI del vector de expresión de mieloma pEe6hCMV-BqlII descrito por Stephens y otros en Nucleic Acids Res., vol. 17, pág. 7110, (1989), para producir el pEe6TF8HCDR20. El TF8LCDR3 de cadena ligera se subclonó dentro de los sitios EcoTI y BclI del vector de expresión de mieloma pEe12, para producir el pEe12TF8LCDR3. Los vectores de expresión de cadena pesada y ligera se ilustran en las Figuras 9 y 10, respectivamente. En ambos vectores, la transcripción del gen anticuerpo fue impulsada por el promotor-potenciador citomegalovirus humano (hCMV), el cual se sitúa directamente en 5' con respecto al sitio de clonación múltiple. La secuencia de la señal de poliadenilación se sitúa 3' con respecto al sitio de clonación múltiple y las señales de terminación de transcripción. Cada vector contiene el gen \beta-lactamasa para permitir la selección por ampicilina en E. coli. El vector pEe12 contiene un gen cDNA glutamino sintetasa bajo el control transcripcional del promotor temprano SV40. La glutamino sintetasa permite que los transfectantes de células de mieloma sean seleccionados en medios libres de glutamina. Las células de mieloma están exentas de actividad glutamino sintetasa y dependen de un suministro de glutamina en los medios de cultivo. Las células que han sido transfectadas con el vector pEe12, las cuales contienen el gen glutamino sintetasa, son capaces de sintetizar glutamina a partir de glutamato y pueden sobrevivir en ausencia de glutamina.
TF8HCDR20 y TF8LCDR3 se subclonaron dentro de vectores de expresión de células de mieloma. El TF8HCDR20 de cadena pesada se subclonó dentro de los sitios EcoRI y BclI del vector de expresión de mieloma pEe6hCMV-BqlII descrito por Stephens y otros en Nucleic Acids Res., vol. 17, pág. 7110, (1989), para producir el pEe6TF8HCDR20. El TF8LCDR3 de cadena ligera se subclonó dentro de los sitios EcoTI y BclI del vector de expresión de mieloma pEe12, para producir el pEe12TF8LCDR3. Los vectores de expresión de cadena pesada y ligera se ilustran en las Figuras 9 y 10, respectivamente. En ambos vectores, la transcripción del gen anticuerpo fue impulsada por el promotor-potenciador citomegalovirus humano (hCMV), el cual se sitúa directamente en 5' con respecto al sitio de clonación múltiple. La secuencia de la señal de poliadenilación se sitúa 3' con respecto al sitio de clonación múltiple y las señales de terminación de transcripción. Cada vector contiene el gen \beta-lactamasa para permitir la selección por ampicilina en E. coli. El vector pEe12 contiene un gen cDNA glutamino sintetasa bajo el control transcripcional del promotor temprano SV40. La glutamino sintetasa permite que los transfectantes de células de mieloma sean seleccionados en medios libres de glutamina. Las células de mieloma están exentas de actividad glutamino sintetasa y dependen de un suministro de glutamina en los medios de cultivo. Las células que han sido transfectadas con el vector pEe12, las cuales contienen el gen glutamino sintetasa, son capaces de sintetizar glutamina a partir de glutamato y pueden sobrevivir en ausencia de glutamina.
El vector de expresión pEe6TF8HCDR20 es un
plásmido de 7073 bp cuya secuencia de DNA se muestra en la Figura 4
y la SEC ID NO:15. Las regiones de codificación del gen TF8HCDR20
están traducidas. Las regiones esenciales de este vector son las
descritas a continuación:
1. Nucleótidos #1-2360: El gen de
la HC injertada a la CDR, el TF8HCDR20, se describe en el Ejemplo 6.
El gen de la HC se insertó en un fragmento
EcoRI/BamHI dentro de los sitios
EcoRI/BclI del vector pEe6hCMV-BqlII.
2. Nucleótidos #2361-2593: Esta
región contiene la codificación de la señal de poliadenilación del
gen temprano SV40 (nucleótidos 2770-2537 de SV40),
el cual actúa como un terminador transcripcional. Este fragmento
está flanqueado por un sitio 5' BclI y un sitio 3'
BamHI. El extremo 3' BamHI del gen de cadena pesada
se cortó y empalmó al sitio 5' BclI de la señal de
poliadenilación, eliminándose, de esta forma, ambos sitios.
3. Nucleótidos #2594-3848: Esta
región es un fragmento BamHI-BglI procedente de
pBR328 (nucleótidos 375-2422), pero con una deleción
entre los sitios SaI y AvaI (nucleótidos
651-1425 de pBR328), seguido de la adición de un
ligador SalI al sitio AvaI. Esta región contiene el
origen bacteriano de replicación Col E1.
4. Nucleótidos #3849-4327: Este
es un sitio del fragmento BglI-XmnI procedente del
gen \beta-lactamasa de pSP64 (Promega Corporation,
Madison, WI). Este gen proporciona resistencia a la ampicilina a
bacterias transformadas con este vector.
5. Nucleótidos #4328-4885: Este
es un fragmento XmnI-HindIII del plásmido pCT54
basado en Col E1, descrito por Emtage y otros, en Proc. Natl.
Acad. Sci. USA, vol. 80, pág. 3671, (1983). El sitio
HindIII se convirtió en un sitio BqlII mediante la
adición de un ligador, seguido de la adición del promotor hCMV
descrito más abajo.
6. Nucleótidos #4886-7022: Estos
nucleótidos contienen la codificación del fragmento Pst-lm
de la cepa AD 169 del citomegalovirus humano (hCMV), descrito por
Geenway y otros, en Gene, vol. 18, pág. 355, (1982), el cual
contiene la región de codificación para el promotor temprano
intermedio central hCMV. Este fragmento Pst-lm se clonó
dentro del sitio HindIII de pEe6hCMV mediante la adición de
oligonucleótidos de la secuencia siguiente a cualquier extremo del
fragmento:
\hskip3cm5' GTCACCGTCCTTGACACGA 3'
\hskip3cm3' ACGTCAGTGGCAGGAACTGTGCTTCGA 5'
El fragmento de 2100 bp resultante se insertó de
manera tal que el promotor dirigió la transcripción hacia el sitio
EcoRI de pEe6hCMV. El oligonucleótico anterior sirvió para
recrear la secuencia no traducida 5' completa del gen
hCMV-MIE, la secuencia irrelevante agregada en el
extremo 5' verdadero del fragmento. El sitio HindIII en el
extremo 5' se convirtió, posteriormente, en un sitio BglII
mediante la adición de un ligador adicional.
7. Nucleótidos #7023-7073: El
poliligador pSP64 con los sitios BamHI y SaII
separados.
El vector de expresión pEe12TF8LCDR3 es un
plásmido de 7864 bp cuya secuencia de DNA se muestra en la Figura 5
y la SEC ID NO:20. Las regiones de codificación del gen TF8LCDR3
están traducidas. Las regiones esenciales de este vector son las
descritas a continuación:
1. Nucleótidos #1-759: El gen de
la LC injertada a la CDR, el TF8HLDR3, se describe en el Ejemplo 3.
El gen se insertó en un fragmento EcoRI/BamHI dentro de los sitios
EcoRI/BclI del vector de expresión pEe12.
2. Nucleótidos #760-3284: Estas
regiones del pEe12 son idénticas a las regiones codificadas por los
nucleótidos 2361-4885 del vector pEe6TF8HCDR20
descrito anteriormente (regiones #2-5).
3. Nucleótidos #3285-5736: Esta
región contiene la codificación del cDNA glutamino sintetasa de
ovario de hamster chino bajo el control transcripcional del
promotor temprano SV40 y seguido por las señales de poliadenilación
y de corte y empalme de SV40 procedentes del vector pSV2.dhfr,
descrito por Subramani y otros, en Mol. Cell. Biol., vol. 1,
pág. 854, (1981). Lo que sigue a continuación describe la
modificación de esta región: Un fragmento NaeI-PvuII
de 1200 bp, el cual contenía una secuencia de codificación de GS
completa, se escindió del clon \lambdaGS1.1 del cDNA de ovario de
hamster chino, descrito por Hayward y otros, en Nucleic Acids
Res., vol. 14, pág. 999, (1986). Después de la adición de un
ligador HindIII al sitio NaeI y un ligador
BglII al sitio PvuII (con la destrucción, en
consecuencia de los sitios NaeI y PvuII), el fragmento
de 1200 bp se clonó en lugar de las secuencias DHFR en pSV2.dhfr,
entre los sitios HindIII y BglII, para formar
pSV2.GS. El único sitio PvuII restante en pSV2BamGS
se convirtió en un sitio BamHI mediante la adición de un
ligador oligonucleótido para formar pSV2BamGS. Un sitio
EcoRI en el cDNA de GS se destruyó mediante mutagénesis
dirigida al sitio sin alterar la secuencia de aminoácidos en
pSV2BamGS y el sitio HindIII se destruyó rellenándole
con DNA polimerasa I. Un fragmento BamHI de 2451 bp
procedente de este plásmido, el cual contenía la unidad de
transcripción del híbrido SV40-GS completa, se
escindió e insertó en el sitio BglII del sitio
pEe6hCMV-BglII de pEe6hCMV- BglII, de manera que dicha
transcripción a partir del promotor temprano SV40 se desarrolló
hacia el promotor hCMV.
4. Nucleótidos #5734-7864: Esta
región es idéntica a la del promotor hCMV y al poliligador pSP64
codificada por los nucleótidos 4886-7073 del vector
pEe6TF8HCDR20 descritos anteriormente (regiones 6 y 7).
Con el fin de asegurar que ambos vectores
pEe6TF8HCDR20 y pEe12TF8LCDR3 co-transfectaron
células de mieloma, los vectores se unieron en concatémeros. Ambos
vectores pEe6TF8HCDR20 y pEe12TF8LCDR3 se digerieron en el único
sitio SalI. El vector pEe6TF8HCDR20 linealizado en
SalI se fosfatasó en sus extremos 5' con el fin de prohibir
el ligamiento de dos vectores pEe6TF8HCDR20 entre sí. Este vector
de la HC fosfatasado se ligó en una relación molar de 2:1 al
pEe12TF8LCDR3 linealizado en SalI. Los concatémeros
resultantes tenían más probablemente la composición siguiente:
Este DNA concatemerizado se extrajo con fenol y
cloroformo, y se precipitó con acetato amónico y etanol. El
precipitado de DNA se resuspendió en agua destilada hasta una
concentración de 1 \mug/\mul y se usó para transfectar células
de mieloma.
Las líneas de células transformadas establemente
que expresan el anticuerpo TF8-5G9 humanizado, se
prepararon mediante la transfección de vectores de expresión de
cadena pesada y ligera injertadas a la CDR dentro de células de
mieloma de ratón NSO. La selección de las células transfectadas se
realizó usando el gen marcador seleccionable dominante, glutamino
sintetasa (GS).
La línea de células de mieloma de ratón NSO,
obtenida de Celltech, Ltd., es un subclon derivado a partir de
NS-1 y no expresa cadenas ligeras intracelulares.
Estas células se cultivaron en medio de Eagle modificado de
Dulbecco (DMEM) con adición de glutamina y suero bovino fetal (FBS)
al 10%. Para preparar la transfección, las células se recolectaron
en fase semi-log del ciclo de desarrollo, se
centrifugaron durante 5 minutos, se lavaron con solución salina
tamponada con fosfato (PBS), se centrifugaron nuevamente, y el
gránulo de células se resuspendió en 2,2 ml de PBS. La concentración
de células final fue de 2,18x10^{7} ml. Las células se
mantuvieron sobre hielo durante todo el procedimiento.
El DNA a transfectar (pEe12TF8LCDR3 x
pEe6TF8HCDR20) se preparó en forma de un concatémero tal como se ha
descrito en el Ejemplo 9. El DNA y las células NSO se agregaron a
una cubeta BioRad Gene Pulser de 0,4 cm en el orden siguiente:
40 \mul (40 \mug) de DNA concatémero,
320 \mul de agua doblemente destilada,
40 \mul de 10 x PBS,
400 \mul de células NSO (8,72x10^{6}
células).
La transfección se realizó mediante
electroporación, siguiendo un protocolo suministrado por Celltech,
Ltd. En este procedimiento, las células y el DNA en tampón PBS se
expusieron una breve descarga de alto voltaje de electricidad que
produjo la formación de microporos transitorios sobre la membrana
de la célula. La transferencia de DNA se produce a través de estas
aberturas. Para preparar la eletroporación, la suspensión de células
NSO y de DNA se mezcló suavemente y se incubó sobre hielo durante 5
minutos. La cubeta se colocó en un BioRad Gene Pulser y se
administraron 2 descargas eléctricas consecutivas fijadas a 3
\muF (capacitancia) y 1,5 V (voltaje). Después de la
electroporación, la cubeta se volvió a colocar sobre el hielo
durante 5 minutos. A continuación, la suspensión se diluyó en medio
de desarrollo precalentado y se distribuyó dentro de siete placas
de 96 cavidades. Las placas de control que contenían las células
electroporadas sin DNA se prepararon igualmente al mismo tiempo
para medir la presencia de mutantes espontáneos. Las placas se
introdujeron en una incubadora a 37ºC con CO_{2} al 5%.
La glutamino sintetasa, codificada por el gen GS,
es una enzima que convierte el glutamato en glutamina. Las células
NSO requieren glutamina para su desarrollo debido a los niveles
inadecuados de expresión de gen GS endógeno. En el DNA concatémero,
este gen está localizado sobre el vector pEe12TF8LCDR3. Las células
transfectadas que incorporan el gen GS se transforman en
glutamino-independientes. Las células que no
integran el gen GS dentro de su genoma permanecen
glutamino-dependientes y no sobreviven en medio
libre de glutamina. Aproximadamente 18 horas después de la
electroporación, a todas las placas se las suministró medio de
selección libre de glutamina y se devolvieron a la incubadora hasta
que aparecieron colonias viables.
Aproximadamente 3 semanas después de la
transfección, se observaron colonias macroscópicas distintas. Estas
se rastrearon para determinar la expresión del anticuerpo
humanizado intacto usando el conjunto ELISA tal como se ha descrito
en el Ejemplo 5. Los sobrenadantes del cultivo de tejidos
procedentes de las cavidades que contenían las colonias, se
rastrearon a una dilución de 1:10. Las cavidades que mostraron
actividad positiva superior al estándar de 25 ng/ml, se
subcultivaron y expandieron para análisis posterior.
Para la selección de altos productores, la
producción de anticuerpo se cuantificó después de un período de
desarrollo de 96 horas. Los matraces de cultivo de tejidos se
sembraron con 2x10^{5} células en 10 ml de medio de selección y
se incubaron a 37ºC, con CO_{2} al 5%, durante 96 horas. Al final
de dicho período de tiempo, se tomó una parte alícuota para
determinar la concentración de células y el título del anticuerpo.
La evaluación de la producción de anticuerpo se calculó en forma de
\mug/ml y pg/célula/96 horas. Los más altos productores a partir
de esta transfección fueron:
Línea de células | \mug/ml | pg/célula/96 horas |
\hskip-2mm 2B1 | 26,3 | 24,3 |
3E11 | 27,6 | 59,9 |
\hskip-2mm 4G6 | 30,2 | 41,9 |
El anticuerpo injertado a la CDR, el TF8HCDR20 x
TF8LCDR3, se comparó con el anticuerpo múrido
TF8-5G9 para determinar su capacidad para proteger
ratas a partir de la coagulación intravascular diseminada (DIC)
inducida experimentalmente. En el modelo DIC, las ratas se
expusieron con tromboplastina humana (un extracto de tejido bruto
que contenía actividad TF), dando como resultado la consunción del
fibrinógeno y la muerte. El pretratamiento de las ratas con
anticuerpo anti-TF se demostró que protegía a las
ratas de la consunción del fibrinógeno y la posterior muerte.
La tromboplastina humana se preparó tal como se
describe en la Patente de EE.UU. 5.223.427. La solución salina de
control o los 30 \mu/ml del anticuerpo TF8-5G9 o
del injertado a la CDR, se inyectó a través de la vena de la cola
de las ratas, seguido de la inyección de tromboplastina equivalente
a 200 ng de TF recombinante. Los tiempos de coagulación se
determinaron a los minutos T=0 y T=1 como una medida de la
concentración de fibrinógeno. Los tiempos de coagulación son
proporcionales a la concentración de fibrinógeno, con un tiempo de
coagulación de 60 segundos correspondiente a una reducción del 80%
en la concentración de fibrinógeno. Los tiempos de coagulación
superiores a 60 segundos no pueden medirse con exactitud y se
registraron como 60 segundos.
A continuación, se muestra la supervivencia y los
tiempos de coagulación para tres estudios representativos.
\newpage
Supervivientes
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Tiempos de
coagulación
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Tiempos de
coagulación
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
Tiempos de
coagulación
Treinta y tres de las veinticuatro ratas de
control tenían tiempos de coagulación superiores a 60 segundos, lo
que indica que virtualmente todas las ratas no tratadas consumieron
más del 80% de su fibrinógeno. Tanto las ratas tratadas con
anticuerpo múrido como injertado a la CDR tuvieron tiempos de
coagulación similares a un minuto de 44,5 y 40 segundos. Además,
únicamente seis de las ratas tratadas con anticuerpo múrido y nueve
de las ratas tratadas con anticuerpo injertado a la CDR tuvieron
tiempos de coagulación superiores a 60 segundos. De acuerdo con
ello, tanto los anticuerpos múrido como injertado a la CDR fueron
capaces de neutralizar el TF y, de esta forma, proteger a las ratas
de la consunción del fibrinógeno y la muerte.
<110> ORTHO PHARMACEUTICAL CORPORATION
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> ANTICUERPOS DEL FACTOR
ANTI-TEJIDO INJERTADOS A LA CDR Y PROCEDIMIENTOS
PARA USO DE LOS MISMOS
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> P018373EP
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<140> EP 96922399.9
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
1996-06-06
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> PCT/US96/09287
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
1996-06-06
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> US 08/480120
\vskip0.400000\baselineskip
<151>1995-06-07
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn versión 3.2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1489
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (11)...(1390)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 460
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3.
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 937
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (5)...(706)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3.
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 937
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (5)...(706)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 234
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp.
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus musculus
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Asp Tyr Tyr Met His}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> MUS
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Leu Ile Asp Pro Glu Asn Gly Asn Thr Ile Tyr
Asp Pro Lys Phe Gln}
\sac{Gly}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> MUS
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Asp Asn Ser Tyr Tyr Phe Asp Tyr}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> MUS
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Lys Ala Ser Gln Asp Ile Arg Lys Tyr Leu
Asn}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> MUS
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Tyr Ala Thr Ser Leu Ala Asp}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> MUS
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Leu Gln His Gly Glu Ser Pro Tyr Thr}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 117
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp. quimérico; homo
sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 108
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp. quimérico; homo
sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 117
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp. quimérico; homo
sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 108
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Chimeric Mus sp.; homo
sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 7073
\vskip0.400000\baselineskip
<212> DNA
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp. quimérico; homo
sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (61)..(717)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1111)..(1146)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1268)..(1594)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1692)..(2012)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 219
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp. quimérico; homo
sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp. quimérico; homo
sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Glu Ser Lys Tyr Gly Pro Pro Cys Pro Ser Cys
Pro}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 109
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Chimeric Mus sp.; homo
sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 107
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Mus sp. quimérico; homo
sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 20
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<211> 7864
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<212> DNA
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<213> Mus sp. quimérico; homo
sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> Diversas características
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (4324)..(4324)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> n es a, c, g ó t
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<400> 20
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Claims (27)
1. Un anticuerpo injertado a la CDR capaz de
inhibir el factor tisular humano, en el que las regiones
determinantes complementarias (CDRs) derivan a partir de un
anticuerpo monoclonal múrido TF8-5G9 y las regiones
constante (C) y de marco de lectura (FR) derivan a partir de uno o
más anticuerpos humanos, en el que la cadena pesada comprende
restos derivados del anticuerpo monoclonal múrido
TF8-5G9 en las posiciones 23, 24, 28, 29, 30, 48,
49, 71, 78, 88 y 91, y la cadena ligera comprende restos derivados
a partir del anticuerpo monoclonal múrido TF8-5G9
en las posiciones 39 y 105, en el que los restos están numerados de
acuerdo con el sistema de numeración de
Kabat.
Kabat.
2. El anticuerpo injertado a la CDR de la
Reivindicación 1, en el que dichas CDRs de la cadena pesada tienen
las secuencias de aminoácidos:
y dichas CDRs de la cadena ligera
tienen las secuencias de
aminoácidos:
3. El anticuerpo injertado a la CDR de la
Reivindicación 1 o la Reivindicación 2, en el que el FR de la cadena
pesada deriva a partir del anticuerpo humano KOL.
4. El anticuerpo injertado a la CDR de la
Reivindicación 1 o la Reivindicación 3, en el que el FR de la cadena
ligera deriva a partir del anticuerpo humano REI.
5. El anticuerpo injertado a la CDR de una
cualquiera de las Reivindicaciones 1 a 4, en el que la región
variable de la cadena pesada tiene la secuencia de aminoácidos de
la SEC ID NO:11.
6. El anticuerpo injertado a la CDR de una
cualquiera de las Reivindicaciones 1 a 5, en el que la región
variable de la cadena ligera tiene la secuencia de aminoácidos de
la SEC ID NO:12.
7. El anticuerpo injertado a la CDR de una
cualquiera de las Reivindicaciones 1 a 4, en el que la región
variable de la cadena pesada tiene la secuencia de aminoácidos de
la SEC ID NO:13.
8. El anticuerpo injertado a la CDR de una
cualquiera de las Reivindicaciones 1 a 4 o la Reivindicación 7, en
el que la región variable de la cadena ligera tiene la secuencia de
aminoácidos de la SEC ID NO:14.
9. El anticuerpo injertado a la CDR de una
cualquiera de las Reivindicaciones 1 a 8, en el que la región
constante de la cadena pesada es la región constante IgG4
humana.
10. El anticuerpo injertado a la CDR de la
Reivindicación 9, en el que la región constante de la cadena ligera
es la región constante kappa humana.
11. El anticuerpo injertado a la CDR, TF8HCDR1 x
TF8LCDR1, en el que TF8HCDR1 comprende una región variable de cadena
pesada que tiene la secuencia dada en la SEC ID NO:11 unida a una
región constante IgG4 humana y en el que TF8LCDR1 comprende una
región variable de cadena ligera que tiene la secuencia dada en la
SEC ID NO:12 unida a una región constante kappa humana.
12. El anticuerpo injertado a la CDR, TF8HCDR20 x
TF8LCDR3, en el que TF8HCDR20 comprende la región variable de cadena
pesada que tiene la secuencia dada en la SEC ID NO:13 y TF8LCDR3
comprende la región variable de cadena ligera que tiene la
secuencia dada en la SEC ID NO:14.
13. El anticuerpo injertado a la CDR de una
cualquiera de las Reivindicaciones 1 a 12, para la inhibición del
factor tisular humano.
14. Un fragmento del anticuerpo injertado a la
CDR de una cualquiera de las Reivindicaciones 1 a 13, en el que
dicho fragmento es capaz de inhibir el factor tisular humano.
15. Un fragmento de la Reivindicación 14, en el
que dicho fragmento es un fragmento Fab o F(ab')_{2}.
16. Un procedimiento para la producción del
anticuerpo injertado a CDR de una cualquiera de las Reivindicaciones
1 a 17, que comprende la co-transfección de una
célula huésped con un vector de expresión que comprende un ácido
nucléico que contiene la codificación de la cadena pesada del
anticuerpo injertado a la CDR y un vector de expresión que
comprende un ácido nucléico que contiene la codificación de la
cadena ligera del anticuerpo injertado a la CDR; el cultivo de la
célula huésped transfectada; y la recuperación de dicho anticuerpo
injertado a la CDR.
17. Un procedimiento para la producción del
anticuerpo injertado a CDR de una cualquiera de las Reivindicaciones
1 a 13, que comprende la transfección de una célula huésped con un
vector de expresión que comprende un ácido nucléico que contiene la
codificación de la cadena pesada del anticuerpo injertado a la CDR
y un ácido nucléico que contiene la codificación de la cadena ligera
del anticuerpo injertado a la CDR; el cultivo de la célula huésped
transfectada; y la recuperación de dicho anticuerpo injertado a la
CDR.
18. El procedimiento de la Reivindicación 16 o la
Reivindicación 17, en el que dicho ácido nucléico que contiene la
codificación de la cadena pesada del anticuerpo injertado a la CDR
tiene la secuencia de nucleótidos 1-2369 de la SEC
ID NO:15 y, preferiblemente, en el que dicho vector de expresión que
comprende un ácido nucléico que contiene la codificación de la
cadena pesada del anticuerpo injertado a la CDR es
pEe6TF8HCDR20.
19. El procedimiento de una cualquiera de las
Reivindicaciones 16 a 18, en el que dicho ácido nucléico que
contiene la codificación de la cadena ligera injertado a la CDR
tiene la secuencia de nucleótidos 1-759 de la SEC ID
NO:20 y, preferiblemente, en el que dicho vector de expresión que
comprende un ácido nucléico que contiene la codificación de la
cadena ligera del anticuerpo injertado a la CDR es
pEe12TF8LCDR3.
20. El procedimiento de una cualquiera de las
Reivindicaciones 16 a 19, en el que dicha célula huésped es una
célula bacteriana, una célula de levadura, una célula de insecto o
una célula de mamífero, tal como una célula CHO, una célula COS o
una célula de mieloma.
21. Un ácido nucléico que contiene la
codificación de la cadena pesada del anticuerpo injertado a la CDR o
un fragmento del mismo, de una cualquiera de las Reivindicaciones 1
a 15.
22. Un ácido nucléico que contiene la
codificación de la cadena ligera del anticuerpo injertado a la CDR o
un fragmento del mismo, de una cualquiera de las Reivindicaciones 1
a 15.
23. El ácido nucléico de la Reivindicación 21,
que tiene la secuencia de nucleótidos 1-2360 de la
SEC ID NO:15.
24. El ácido nucléico de la Reivindicación 22,
que tiene la secuencia de nucleótidos 1-759 de la
SEC ID NO:20.
25. Un anticuerpo injertado a la CDR de acuerdo
con una cualquiera de las Reivindicaciones 1 a 13, o un fragmento
del mismo de acuerdo con la Reivindicación 14 ó 15, capaz de
inhibir el factor tisular humano para uso en la atenuación de la
coagulación o para uso en el tratamiento o la prevención de un
trastorno trombótico.
26. Una composición farmacéutica que comprende al
menos un anticuerpo injertado a la CDR de acuerdo con una cualquiera
de las Reivindicaciones 1 a 13, o un fragmento del mismo de acuerdo
con la Reivindicación 14 ó 15, capaz de inhibir el factor tisular
humano y un vehículo aceptable farmacéuticamente.
27. La composición farmacéutica de la
Reivindicación 26, para uso en la atenuación de la coagulación o
para uso en el tratamiento o la prevención de un trastorno
trombótico.
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