ES2201055T3 - Vacunas de adenovirus recombinante. - Google Patents

Vacunas de adenovirus recombinante.

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Micheal David Lubeck
Robert James Natuk
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Abstract

SE MUESTRA LA PRODUCCION DE ANTICUERPOS O DE INMUNIDAD MEDIATIZADA DE CELULAS A UN ORGANISMO INFECCIOSOS EN UN MAMIFERO DE SANGRE CALIENTE. LA PRODUCCION COMPRENDE LA ADMINISTRACION A DICHO MAMIFERO DE SANGRE CALIENTE INTRANASAL, INTRAMUSCULAR O SUBCUTANEAMENTE, LOS ADENOVIRUS RECOMBINANTES VIVOS EN EL QUE LA PROTEINA ESTRUCTURAL DE VIRION ESTA SIN CAMBIAR DESDE QUE EN EL ADENOVIRUS NATIVO SE PRODUCE EL ADENOVIRUS RECOMBINANTE A PARTIR DE ESTE, Y QUE CONTIENE EL GEN QUE CODIFICA EL ANTIGENO QUE CORRESPONDE A DICHOS ANTICUERPOS O QUE COMPRENDE DICHA INMUNIDAD MEDIATIZADA DE CELULAS. LAS VACUNAS QUE CONTIENEN LOS ADENOVIRUS RECOMBINANTES TAMBIEN SON DESCRITAS. ALGUNOS DE LOS ADENOVIRUS RECOMBINANTES TAMBIEN SON NUEVOS PER SE.

Description

Vacunas de adenovirus recombinante.
Antecedentes de la invención
Un objetivo principal de la investigación biomédica es proporcionar protección contra las enfermedades víricas mediante la inmunización. Una estrategia ha sido la utilización vacunas con gérmenes muertos. Sin embargo, son necesarias grandes cantidades de material para que la vacuna con gérmenes muertos retenga una masa antigénica suficiente. Además, las vacunas con gérmenes muertos se contaminan frecuentemente con productos indeseables durante su preparación. Las vacunas heterólogas con gérmenes vivos, que utilizan adenovirus modificado apropiadamente, que es en sí mismo una vacuna, parecen excelentes inmunógenos [Chanock R., JAMA, 195, 151 (1967)]. La presente invención se refiere a vacunas que utilizan adenovirus como vector.
La adenovacuna comercializada en la actualidad comprende adenovirus vivos, infecciosos, en una forma farmacéutica con recubrimiento entérico. Tras la administración al paciente que se va a vacunar, el virus se transporta a través de las vías respiratorias superiores (donde se cree que se produce la infección que provoca la enfermedad) y se libera en el intestino. En el intestino, el virus se reproduce en la pared intestinal, donde, aunque no es capaz de causar enfermedad adenovírica, provoca, no obstante, la formación de anticuerpos contra el adenovirus, confiriendo de este modo inmunidad contra la enfermedad adenovírica. En la presente invención se utiliza un adenovirus vivo, infeccioso, que ha sido modificado para contener genes que codifican antígenos producidos por otros patógenos. Tras su liberación, el virus se reproducirá y expresará separadamente tanto el antígeno adenovírico como el antígeno del patógeno, provocando de este modo la formación de anticuerpos o de inmunidad celular tanto contra el adenovirus como contra el otro patógeno. Por "virus vivo" se entiende, en contraposición a virus "muerto", un virus que es, bien por sí mismo o junto con material genético adicional, capaz de producir progenie idéntica. Por "infeccioso" se entiende la capacidad de introducir el genoma vírico en las células.
Roy propuso, en la publicación de patente europea 80.806 (1983), un método para producir inmunidad contra las enfermedades microbianas mediante la administración de un microbio que contiene un gen foráneo que expresará un antígeno de un segundo microbio contra el que se confiere inmunidad. Se afirma que las preparaciones orales preferidas tienen recubrimiento entérico. Dulbecco propuso vacunas con adenovirus recombinantes en las que la proteína de la superficie del adenovirus está modificada para que contenga en su estructura un segmento de una proteína foránea que producirá una respuesta biológica deseada tras su administración a animales. [Publicación internacional PCT WO 83/02393 (1983)]. Davis describe vacunas orales procedentes de adenovirus recombinantes. [Patente británica GB 2166349 B].
El virus de la inmunodeficiencia humana de tipo 1 (VIH-1) se ha asociado etiológicamente al síndrome de la inmunodeficiencia humana (SIDA) y a trastornos relacionados. [Barre-Sinoussi, F., Science 220: 868 (1983); Gallo, R., Science 224: 500 (1984); Popovic, M., Science 224: 497 (1984); Sarngadharan, M., Science 224: 506 (1984)]. El SIDA es ahora una epidemia mundial para la que, actualmente, no hay ninguna vacuna o curación. La mayoría de los esfuerzos para el desarrollo de vacunas se han centrado en la glicoproteína de la cubierta (env) como antígeno que puede proporcionar inmunidad protectora. Los antisueros preparados contra la gp 120 purificada pueden neutralizar el VIH-1 in vitro. [Crowl, R., Cell 41: 979 (1985); Putney, S., Science 234: 1392 (1986); Ho, D., J. Virol. 61: 2024 (1987); Nara, P., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84: 3797 (1987)]. El antígeno de la cubierta del VIH-1 ha sido producido en diferentes sistemas de expresión, entre ellos Escherichia coli [Crowl, R., Cell 41: 979 (1985); Chang, T., Bio/Technology 3: 905 (1985); Dawson, G., J. Infect. Dis. 157: 149 (1988)] así como células de mamífero [Chakrabarti, S., Nature 320: 535 (1986); Dewar, R., J. Virol. 63: 129 (1989); Rekosh, D., Proc. Natl. Acad. Sci.USA 85: 334 (1988); Whealy, M., J. Virol. 62: 4185 (1988)] de levadura [Barr, P., Vaccine 5: 90 (1987)] y de insectos [Hu, S., Nature 328: 721 (1978); Rusche, J., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84: 6294 (1987)].
Se evaluaron el virus de la vacuna recombinante, vivo, que expresaba la glicoproteína env completa del VIH-1 [Hu, S., J. Virol. 61: 3617 (1987)] o la glicoproteína env gp 120 recombinante purificada [Berman, P., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85: 5200 (1988)] en chimpancés, como candidatos para vacunas. La inmunización activa con estas vacunas provocó buenas respuestas de inmunidad celular así como actividad de linfocitos T citotóxicos contra el antígeno env [Zarling, J., J. Immunol. 139: 988 (1987)]. Todos los animales experimentales presentaron seroconversión, a juzgar por los análisis de ELISA y de inmunotransferencia. Sin embargo, los chimpancés inmunizados no desarrollaron títulos, o bien desarrollaron títulos muy bajos, de anticuerpos neutralizantes contra el VIH-1. La prueba de provocación con virus vivos no consiguió proteger a los chimpancés contra estas vacunas. Se encontraron anticuerpos neutralizantes de tipo específico contra el VIH-1 en los chimpancés, en la etapa temprana de la infección, dirigidos contra un dominio variable (V3) de la mitad C-terminal de gp 120 [Goudsmit, J., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85: 4478 (1988)]. También se ha comprobado que la gp 120 recombinante sintetizada en células de insectos provoca respuestas de inmunidad humoral en cabras (Rusche J., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84: 6294 (1987)]. Zagury [Nature 332: 728 (1988)] ha demostrado reacciones inmunitarias anamnésicas tanto humorales como celulares en seres humanos, utilizando un virus de la vacuna recombinante que expresaba gp 160. [Chakrabarti, S., Nature 320: 535 (1986); Hahn, B., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82: 4813 (1985)]. También se comprobaron tanto la inmunidad celular específica de grupo como la citotoxicidad celular contra células T4 infectadas. Estos resultados indican que puede alcanzarse la inmunidad contra el VIH-1 en seres humanos utilizando una vacuna basada en la env recombinante. Recientemente, Desrosiers ha demostrado que la vacunación con el virus de la inmunodeficiencia de los simios (SIV) entero inactivado puede proteger a macacos de la prueba de provocación con SIV vivos. [Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86: 6353 (1989)]. Estos datos ofrecen esperanzas de que sea posible la protección, con vacunas, contra la infección por el virus del SIDA humano, VIH-1.
Chanda describe elevados niveles de expresión de las glucoproteínas de la cubierta del VIH-1 en presencia del gen rev, utilizando formas recombinantes del adenovirus de tipo 7, independiente de colaboradores. [Virology 175: 535 (1990)]. Vernon describe la caracterización ultraestructural de la subunidad gag del VIH-1 en un sistema de vector de adenovirus recombinante. [J. Gen. Virology 72: 1243 (1991)]. Vernon describe asimismo la preparación de los adenovirus recombinantes del VIH-1, Ad7-rev-gag y Ad4-rev-gag.
La presente invención proporciona la utilización de un adenovirus recombinante vivo para preparar un medicamento para su utilización en el tratamiento para producir anticuerpos o inmunidad celular contra el virus de la inmunodeficiencia humana de tipo 1, en el que la proteína estructural del virión permanece invariable respecto a la del adenovirus nativo a partir del cual se ha producido el adenovirus recombinante, y que contiene el gen que codifica el antígeno correspondiente a dichos anticuerpos o que induce dicha inmunidad celular, en el que el adenovirus recombinante se selecciona a parir de uno o más del grupo formado por:
Ad7-tplenv-tplHrev, Ad7-tplgag-tplHrev, Ad7-rev-gag, Ad4-tplenv-tplHrev, Ad4- tplgag-tplHrev, Ad4-rev-gag, Ad5-tplenv-tplHrev, y Ad5-tplgag-tplHrev,
estando destinado el medicamento para su administración intranasal a un mamífero del orden de los Primates, incluido el hombre.
En una realización adicional de la invención, el medicamento comprende además una o más de una proteína subunitaria del virus de la inmunodeficiencia humana de tipo 1. Preferiblemente, la proteína subunitaria es env o gag.
Aunque la descripción se refiere específicamente a adenovirus que tienen una deleción en la región temprana 3 (E3), también pueden utilizarse como vectores adenovirus que están atenuados, contienen una lesión sensible a la temperatura o una deleción E1.
En una realización preferida, el método de tratamiento incluye administrar el adenovirus recombinante tanto de modo profiláctico a un mamífero susceptible al VIH-1 como en forma de inmunoterapia tras la detección del VIH en dicho mamífero. Se utilizaron pautas de administración con los siguientes adenovirus recombinantes para producir las respuestas contra el VIH.
Nombre del virus Nombre descriptivo Nombre de la ATCC
Ad7-env Ad7-tplenv-tplHrev VR-2299
Ad7-gag Ad7-tplgag-tplHrev VR-2393
Ad7-gag-1 Ad7-rev-gag VR-2392
Ad4-env Ad4-tplenv-tplHrev VR-2293
Ad4-gag Ad4-tplgag-tplHrev VR-2391
Ad4-gag-1 Ad4-rev-gag VR-2390
Ad5-env Ad5-tplenv-tplHrev VR-2297
Ad5-gag Ad5-tplgag-tplHrev VR-2298
En relación con la tabla anterior, Ad4, Ad5 y Ad7 se refieren a adenovirus humanos de tipo 4, 5 y 7, respectivamente, en los que la región E3 se ha eliminado por deleción. Env se refiere al gen de la glicoproteína de la cubierta del VIH (gp 160). Gag se refiere al gen gag/pro del VIH. Rev se refiere al gen regulador del VIH. Hrev se refiere una versión modificada del gen rev, en la que se cambiaron las secuencias nucleotídicas sin cambiar la secuencia aminoácida, empleando codones de uso frecuente en seres humanos. Tpl se refiere a la secuencia del líder tripartito corriente arriba del adenovirus, con una secuencia intercalada entre el primer y el segundo líder, que se han colocado delante de los genes recombinantes.
En realizaciones adicionales de la presente invención se proporcionan virus X-tplY-tplHrev recombinantes vivos, en los que X es Ad4, Ad5 o Ad7, e Y es env o gag.
Como se describe en detalle más adelante, la administración intranasal de virus Ad-VIH recombinantes a chimpancés sin experiencia previa del virus dio lugar a la sensibilización y al refuerzo de las respuestas inmunitarias tanto humorales como celulares dirigidas contra los antígenos recombinantes del VIH. Se comprobó que los adenovirus recombinantes administrados a chimpancés producían anticuerpos contra las proteínas env y gag del VIH. Se observaron anticuerpos de IgG específicos contra el VIH en las secreciones nasales, salivales y vaginales tras la administración de los adenovirus recombinantes y se observaron anticuerpos de IgA específicos contra el VIH en las secreciones nasales y salivales. El primer grupo de virus recombinantes (Ad7) parecía liberarse durante un período de tiempo más prolongado y provocó la mejor respuesta con anticuerpos anti-Ad. Los resultados también demostraron que la administración de vacunas Ad-VIH por la vía intranasal era superior a la administración de virus recombinantes con recubrimiento entérico por la vía oral.
Las respuestas inmunitarias óptimas dirigidas contra los antígenos del VIH requerían infección primaria con inmunización de refuerzo con un Ad-VIH recombinante heterotípico para provocar un alto nivel de anticuerpos de unión contra el VIH. La administración intranasal de los virus Ad-VIH sensibilizó eficazmente a los chimpancés para responder con altas concentraciones de anticuerpos neutralizantes contra el VIH-1 tras la posterior inmunización de refuerzo con la proteína subunitaria del VIH-1.
Preparación de adenovirus recombinantes representativos
Los siguientes Ejemplos muestran la construcción de adenovirus recombinantes representativos de la presente invención. Los virus recombinantes se propagaron en células A549 y después se titularon en células A549.
Ejemplo 1 Ad7-gag-1
La construcción de adenovirus recombinantes que contenían el gen de la proteína de la cubierta del VIH ha sido descrita [Chanda, P., Virology 175: 535 (1990)]; se utilizó un procedimiento similar para incorporar gag y pro [véase Vernon, S., J. Gen. Virology 72: 1243 (1991)]. Brevemente, se construyó un fragmento de ADN que contenía las regiones codificantes completas de gag y pro (335 a 2165 pb) de la cepa LAV del VIH-1 [Wain-Hobson, S., Cell 40: 9, (1985)] con un sitio Sa/I único delante del codón AUG del gen gag y un sitio XbaI en la posición 2165 pb, para la inserción del elemento vírico de respuesta rev (rre; 7178 a 7698 pb). Un fragmento SaI de 2,37 kb que contenía las tres secuencias del VIH-1, se insertó en un sitio SaI en una casete de expresión que contenía el principal promotor tardío (MLP) del adenovirus de tipo 7 (Ad7), el líder tripartito (TPL) con una secuencia intercalada entre los líderes primero y segundo y el sitio de poliadenilación (poli-A) de hexon, como se describe en Chanda [Virology 175: 535 (1990)]. La casete se insertó 159 pb desde el extremo derecho de un genoma Ad7 [Sussenbach, The Adenoviruses, Ginsberg, ed., Plenum Press, pp. 34-124 (1984)] que contenía el gen rev del VIH-1 [Feinberg, M., Cell 46: 807 (1986); Sodroski, J., Nature 321: 412 (1986)] en una región E3 [79,5 a 88,4 unidades cartográficas (m.u.)] eliminada por deleción [Chanda, P., Virology 175: 535 (1990)].
Ejemplo 2 Ad4-gag-1
Siguiendo el procedimiento para la construcción del adenovirus recombinante Ad7- gag-1 en el Ejemplo 1, se insertaron una casete de expresión similar que contenía secuencias Ad4 análogas y las tres regiones codificantes del VIH en un sitio 139 pb desde el extremo derecho de un genoma Ad4 que contenía el gen rev del VIH-1 en una deleción E3 entre 76 y 86 m.u.
Ejemplo 3 Ad5-env
El Ad5-tplenv-tplHrev contiene la secuencia codificante completa de la gp160 del VIH-1 (cepa LAV) y una versión modificada del gen rev, llamada Hrev. Tanto el gen env como el rev están precedidos por una copia sintética del líder tripartito del Ad5 (Ad5-tpl). El Ad5-tpl se sintetizó químicamente y se clonó en el vector pTZ. Después, la secuencia de ADN de la gp160 se insertó detrás del Ad5-tpl, para crear el clon Ad5-tplenv/PTZ18R. El Hrev (\sim360 pb) también se sintetizó químicamente, cambiando las secuencias nucleotídicas sin cambiar la secuencia de aminoácidos con ayuda de la utilización de diferentes codones. Esto se realizó para evitar la recombinación homóloga, ya que existen algunas secuencias idénticas entre env y rev. De modo análogo al de la construcción Ad5-tplenv, se insertó también el gen Hrev detrás del tpl en el vector pTZ18R, para crear el plásmido Ad5-tplHrev. La secuencia completa que contenía Ad5-tplHrev se cortó y se insertó detrás de Ad5-tplenv, para crear el plásmido Ad5-tplenv-tplHrev. Este plásmido se insertó a continuación en la región E3 eliminada por deleción de la cepa Marietta del Ad5 (deleción 78,8-85,7_m.u.) en la posición 78,8 m.u. Este plásmido se linealizó con la enzima BglI y después se mezcló con el fragmento SnaB1 0-87 m.u. procedente del virus Ad5 de tipo salvaje purificado. Después de transfectar las células A549 con las mezclas de ADN, se escogieron placas del virus recombinante, se purificaron tres veces en placas y se confirmaron sus estructuras genómicas por análisis de los sitios de endonucleasas de restricción en ADN extraído de células infectadas por el método de Hirt. [J. Mol Bio. 26: 365 (1967)].
\newpage
Ejemplo 4 Ad5-gag
El Ad5-tplgag-tplHrev contiene las regiones gag y pro completas, así como el gen rev modificado, Hrev. Una copia del líder tripartito sintético del Ad5 se colocó delante de los genes gag y Hrev. Un fragmento de ADN que contenía las regiones gag y pro completas (335 a 2165 pb de la cepa LAV del VIH-1) se construyó con un sitio SalI único delante del codón AUG del gen gag y un sitio Xba en la posición 2165 pb, para la inserción del elemento de respuesta rev vírico (rre; 7178-7698 pb). Se construyeron dos plásmidos independientes Ad5-tplgag así como Ad5-tplHrev, de modo similar al descrito para Ad5-tplenv-tplHrev. Después, el fragmento Ad5-tplHrev se insertó detrás de Ad5-tplgag, para crear el plásmido Ad5-tplgag-tplHrev. Después se insertó el fragmento Ad5-tplgag-tplHrev en el sitio XbaI único en la posición 78,8 del mapa de la cepa Marietta del Ad5 con una deleción E3 (deleción E3 78,8-85,7 m.u.). Después, el plásmido final que contenía la secuencia Ad5 se linealizó y se mezcló con el fragmento vírico SnaB1 0-87 m.u. para la transfección. Se escogieron placas recombinantes, se purificaron tres veces en placas y se analizaron por análisis de Hirt del ADN extraído de las células infectadas.
Ejemplo 5 Cápsulas con recubrimiento entérico
Los adenovirus recombinantes se cultivaron en células A549 y se recogieron después de 3 ciclos de congelación-descongelación. Los lisados clarificados de células infectadas se liofilizaron y se envasaron 60 a 100 mg en cápsulas de gelatina nº 2 utilizando un émbolo de una jeringa de 1 ml en condiciones de deshumidificación. Las cápsulas se recubrieron con ftalato acetato de celulosa al 10% en acetona/etanol al 100% (1:1) mojando manualmente cada extremo 6 veces y secando al aire entre cada ocasión. En estas condiciones se formó un recubrimiento de 69 a 77 mg de ftalato acetato de celulosa. Se analizaron muestras de cápsulas para comprobar su resistencia al líquido gástrico simulado (pepsina al 0,32%, NaCl al 0,2% pH 1,2) a 37ºC, utilizando un aparato de análisis de desintegración VanKel durante 1 h. Las cápsulas se inspeccionaron para determinar agujeros o fisuras y se transfirieron a un tubo de 15 ml que contenía 10 ml de líquido intestinal simulado (pancreatina al 1,0%, fosfato de potasio monobásico 0,05 M pH 7,5) y se sometieron a rotación a 37ºC. Todas las cápsulas analizadas fueron resistentes al líquido gástrico simulado durante 1 h a 37ºC con agitación y comenzaron a disolverse en el plazo de 15 min en líquido intestinal simulado. La cantidad de virus se valoró en monocapas de células A549 confluentes mediante un ensayo de placas, y la estabilidad del ADN vírico se confirmó por análisis de Hirt.
Pautas de tratamiento
La inmunogenicidad de los adenovirus recombinantes para el VIH se evaluó en chimpancés utilizando tres pautas de tratamiento. La primera pauta de tratamiento consistía en administrar los adenovirus recombinantes por vía oral, por medio de una cápsula con recubrimiento entérico (Ejemplo 5) a las 0, 7 y 26 semanas, seguido por una dosis de refuerzo con las proteínas subunitarias env + gag utilizando Alum como adyuvante. La segunda pauta de tratamiento consistía en tratar además a los chimpancés que habían sido sometidos a la pauta 1 a las 46 y 58 semanas con una dosis de refuerzo adicional de adenovirus recombinantes administrados por vía intranasal. La tercera pauta de tratamiento consistía en administrar adenovirus recombinantes por vía intranasal a chimpancés sin experiencia previa de tratamiento a las 0, 24 y 52 semanas, seguido por una dosis de refuerzo con la subunidad env a la semana 72.
La siguiente tabla presenta un resumen de las pautas de tratamiento 1 y 2.
Pautas de tratamiento 1 y 2
Inmunización Tiempo Chimpancés 1 y 2 Chimpancé 3
Pauta 1
Primaria* 0 semanas 1,5 x 10^{7} ufp de Ad7-env 1,5 x 10^{7} ufp de Ad7-env
2,0 x 109 ufp de Ad7-gag-1
1^{er} Refuerzo* 7 semanas 1,1 x 10^{10} ufp de Ad4-env 1,1 x 10^{10} ufp de Ad4-env
1,0 x 10^{10} ufp de Ad4-gag-1
2^{o} Refuerzo* 26 semanas 7,9 x 10^{10} ufp de Ad5-env 7,9 x 10^{10} ufp de Ad5-env
3^{er} Refuerzo^{+} 34 semanas 200 \mug de env en Alum al 0,2% 200 \mug de env en Alum al 0,2%
500 \mug de env en Alum al 0,2%
(Continuación)
Inmunización Tiempo Chimpancés 1 y 2 Chimpancé 3
Pauta 2
1^{er} Refuerzo 46 semanas 1,0 x 10^{8} ufp de Ad7-env 1,0 x 10^{8} ufp de Ad7-env
intranasal 1,0 x 10^{8} ufp de Ad7-gag
1^{er} Refuerzo 58 semanas 1,0 x 10^{8} ufp de Ad4-env 1,0 x 10^{8} ufp de Ad4-env
intranasal 1,0 x 10^{8} ufp de Ad4-gag
* Cada dosis se administró en cápsulas de gelatina con recubrimiento entérico, en 3 dias consecutivos.
^{+} Administrada por vía intramuscular.
La siguiente tabla presenta un resumen de la pauta de tratamiento 3.
Pauta de tratamiento 3
Inmunización Tiempo Chimpancés 4 y 5 Chimpancé 6
Primaria* 0 semanas 1,0 x 10^{7} ufp de Ad7-env 1,5 x 10^{7} ufp de Ad7-env
1,0 x 10^{7} ufp de Ad7-gag
1^{er} Refuerzo* 24 semanas 1,0 x 10^{7} ufp de Ad4-env 1,5 x 10^{7} ufp de Ad4-env
1,0 x 10^{7} ufp de Ad4-gag
2^{o} Refuerzo* 52 semanas 1,0 x 10^{7} ufp de Ad5-env 1,5 x 10^{7} ufp de Ad5-env
1,0 x 10^{7} ufp de Ad5-gag
3^{er} Refuerzo^{+} 75 semanas 0,5 mg de env
* Administrada por vía intranasal
^{+} Administrada por vía intramuscular.
Medición de la inmunogenicidad
Pauta de tratamiento 1
Inoculaciones en chimpancés
Tres chimpancés (2 machos y 1 hembra) que habían dado resultados negativos en los análisis de la presencia de anticuerpos neutralizantes contra los adenovirus humanos de tipo 4 y 7 se evaluaron utilizando la pauta de tratamiento 1. Se administraron cápsulas con recubrimiento entérico que contenían adenovirus recombinantes, utilizando una sonda gástrica, con anestesia, en tres días consecutivos. Dos chimpancés (1 y 2) recibieron ambos virus recombinantes env y gag, mientras que el tercer chimpancé (3) recibió sólo virus recombinantes env.
Las preparaciones de subunidades procedentes de adenovirus, que contenían los productos del gen env o gag, se purificaron a partir de cultivos de células A549 infectadas [véase Vernon, S., J. Gen. Virology 72: 1243 (1991) y Natuk, R., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89: 7777 (1992)]. Los antígenos recombinantes se formularon con adyuvante Alum y se administraron por vía intramuscular 200 \mug/dosis de partículas de env y 500 \mug/dosis de partículas de gag.
Se recogieron muestras de sangre entera, suero y heces a diferentes tiempos durante el transcurso del experimento. Se preparó la sangre entera para obtener poblaciones de leucocitos para FACS, CTL del VIH (utilizando virus de la vacuna recombinantes que expresaban VIH-env, VIH-gag, o los productos del gen lac) y para ensayos linfoproliferativos con gp160, gp120 y p24 purificadas del VIH recombinante. Las muestras de suero y de heces se almacenaron a -70ºC hasta su utilización.
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Detección de adenovirus recombinantes en muestras de heces
Se descongelaron muestras de heces de chimpancés y se prepararon suspensiones al 10% (V/V) en DMEM que contenía antibióticos. Se utilizaron suspensiones de heces clarificadas para infectar monocapas de células A549 confluentes en placas de cultivo de tejidos de 60 mm. Tras un período de adsorción de 1 h, se eliminó por lavado el material no unido y se aplicó una capa de medio con agar al 0,5% sobre las monocapas. Se dejó desarrollar las placas durante 7-10 días y las placas se visualizaron por tinción con rojo neutro, se contaron y se retiró suavemente la capa de agar, teniendo cuidado de no perturbar la monocapa de células. La hoja de células se transfirió a filtros de nitrocelulosa (Millipore Tipo HA, 0,45 \mum), previamente empapados en SSC 20X, que se colocaron sobre la hoja de células y se dejaron en contacto con la monocapa de células durante 2 a 4 minutos. Los filtros se retiraron, se secaron con aire y se calentaron durante 2 h en una estufa de vacío a 80ºC. Los filtros de nitrocelulosa se lavaron dos veces con SSc 3X/SDS al 0,1% a temperatura ambiente y se prehibridaron e hibridaron siguiendo procedimientos estándar [Poncet, D., J. Virol. Methods 26: 27 (1989)]. Se añadieron sondas de oligonucleótidos marcados con ^{32}P al tampón de hibridación (1 x 10^{6} CPM) y se incubaron toda la noche a 42ºC. Se prepararon sondas de ADN para detectar secuencias específicas de fibra de Ad4, fibra de Ad5, fibra de Ad7, VIH-env o VIH-gag. [Wain-Hobson, Cell 40: 9 (1985)]. Los filtros se lavaron, se autorradiografiaron y se contaron las señales de hibridación.
Procedimientos de análisis de neutralización de adenovirus
Se prepararon diluciones dobles sucesivas (empezando con 1:4) de suero de perro termoinactivado (56ºC durante 30 min) en placas de microvaloración de 96 pocillos (0,05 ml/pocillo) y se mezclaron con 0,05 ml de medio que contenía 30-100 TCID_{50} del virus durante 1 h a 37ºC. A cada pocillo se añadieron 0,05 ml de medio que contenía 2 x 10^{4} células A549 y las placas se incubaron a 37ºC con CO_{2} al 5% durante 7-10 días. Todas las muestras se realizaron por duplicado. Se incluyeron testigos de virus y células no infectadas en cada ensayo para determinar el punto final en los sueros analizados. Los títulos se expresaron como los recíprocos de la dilución mínima a la que se observaba el 50% del efecto citopático.
Detección de anticuerpos anti-VIH por ELISA e inmunotransferencia
La detección anticuerpos anti-VIH y las respuestas de los chimpancés con anticuerpos contra antígenos del VIH-1 se midieron analizando varias diluciones con kits comerciales de ELISA y de inmunotransferencia, siguiendo las instrucciones del fabricante (DuPont, Wilmington, DE).
Resultados
Se recogieron heces de cada chimpancé antes y después de la inoculación con virus y se almacenaron a -70ºC. Se prepararon suspensiones de cada muestra al diez por ciento y se utilizaron para infectar monocapas de células A549 confluentes. Tras 7-10 días, se identificaron placas víricas por tinción con rojo neutro y las monocapas de células se transfirieron a membranas de nitrocelulosa. Se hibridaron muestras representativas con varias sondas de oligonucleótidos marcados para detectar secuencias específicas de genes de Ad4, Ad5, Ad7, VIH-env o VIH-gag. La identificación de virus Ad-VIH recombinantes específicos pudo determinarse por esta técnica de hibridación de placas. Ninguno de los virus recombinantes se liberó en las heces durante más de 7 días tras la inoculación. Los títulos máximos estuvieron siempre asociados a las muestras de los días 1-3 y representaban probablemente los virus del inóculo que no se habían absorbido. Estudios previos con chimpancés utilizando virus Ad-HBsAg recombinantes habían sugerido que los virus Ad-HBsAg recombinantes podían detectarse durante 30-40 días tras la inoculación. En el caso de la vía de administración por cápsula con recubrimiento entérico parece ser que estos virus recombinantes no se replicaron bien in vivo.
La seroconversión al serotipo de vectores de adenovirus utilizado se determinó por procedimientos de análisis de neutralización. Se midieron títulos séricos de anticuerpos anti-adenovirus muy bajos a modestos para los 3 serotipos utilizados en cada uno de los chimpancés.
La seroconversión a los productos de los genes del VIH recombinante se determinó o bien por técnicas de ELISA o de inmunotransferencia. No se detectó respuesta de ELISA en ninguno de los chimpancés antes de la segunda inoculación de refuerzo con el virus Ad5-env recombinante. Dos semanas después de la inoculación con Ad5-env pudieron medirse respuestas anti-env en 2 de los 3 animales. La inyección intramuscular de preparaciones de gag y/o env tuvo un ligero efecto de refuerzo en 1 de los 3 animales. El análisis de inmunotransferencia resultó mucho más sensible que el de ELISA y presentaba la ventaja adicional de identificar qué productos de los genes env y/o gag estaban siendo reconocidos como inmunógenos. Se midieron títulos séricos de anticuerpos bajos, tanto tras la dosis primaria con virus Ad7 recombinante como con la primera dosis de refuerzo con virus Ad4 recombinantes. Se observó un aumento significativo en los títulos séricos de anticuerpos contra los productos del gen env tras la segunda inmunización de refuerzo con el virus Ad5-env recombinante. Se observaron aumentos significativos en los 2 animales que recibieron los productos del gen gag tras la inyección con preparaciones de subunidades. A pesar de los relativamente buenos títulos de anticuerpos contra los antígenos del VIH observados en la inmunotransferencia, sólo 1 de los 3 animales respondió con anticuerpos séricos neutralizantes. Esta respuesta fue muy baja en el chimpancé 2 (título de 10 a 20).
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Estos resultados se resumen en la siguiente tabla.
Resultados obtenidos utilizando la pauta de tratamiento 1
Titulos máximos
Liberación de anti-VIH en
del virus Titulo máximo inmunotrans- Titulo máximo
Chimpancé Virus recombinante de anti-Adeno ferencia de anti-VIH
n^{o} recombinante Heces (días) neutralizantes env gag neutralizantes
1 Ad7-env, Ad7-gag-1 2,2 128 - 20 <10
Ad4-env, Ad4-gag-1 2,2 8 - 20 <10
Ad5-env 7+ 128 100 - <10
subunidad: env + gag 100 1000 <10
2 Ad7-env, Ad7-gag-1 3,2 64 - 20 <10
Ad4-env, Ad4-gag-1 1,7 128 20 100 <10
Ad5-env 7+ 64 10000 - 20
subunidad: env + gag 1000 10000 10
3 Ad7-env 2 6 20 N/A* <10
Ad4-env 1 128 20 N/A <10
Ad5-env 7+ 512 1000 N/A <10
subunidad: env 100 N/A <10
*N/A= No aplicable
La inmunidad celular se midió en una población de células mononucleares de sangre periférica de chimpancés. Se midió la actividad CTL específica para el VIH determinando la lisis de células diana singénicas infectadas con formas recombinantes del virus de la vacuna que expresaban o bien los productos del gen VIH-env, o los productos del gen VIH-gag, o el producto del gen lac (testigo de citotoxicidad no específica). Un indicio de la actividad CTL específica para el VIH se midió de esta manera.
Se realizaron ensayos linfoproliferativos para determinar si las preparaciones de env (gp160, gp120) o gag (p24) recombinantes purificadas eran capaces de estimular la blastogénesis. No se midió ninguna proliferación tras la inoculación primaria y sólo 1 de los 3 animales mostró una respuesta linfoproliferativa tras la administración de la primera dosis de refuerzo con virus Ad4 recombinantes. Los 3 animales respondieron con respuestas proliferativas tras la segunda dosis de refuerzo (Ad5-env) y la tercera dosis de refuerzo (preparaciones con subunidades).
Medición de la inmunogenicidad
Pauta de tratamiento 2
Inoculaciones en chimpancés y recogida de datos
Tres chimpancés (2 machos y 1 hembra) que habían sido previamente inoculados con virus Ad-VIH recombinantes en cápsulas con recubrimiento entérico y que habían recibido dosis de refuerzo con subunidades gag y/o env procedentes de adenovirus (pauta de tratamiento 1) se infectaron por vía intranasal con virus Ad7-VIH (semana 46), y 12 semanas después (semana 58) con virus Ad4-VIH. Los adenovirus recombinantes se administraron en medio de cultivo de tejidos diluido con solución salina tamponada con fosfato, gota a gota, en las fosas nasales de los chimpancés, con anestesia. Dos chimpancés (números 1 y 2) recibieron ambos virus recombinantes env y gag, mientras que el tercer chimpancé (número 3) recibió sólo virus recombinantes env.
Se recogieron muestras de sangre entera, suero y heces a diferentes tiempos durante el transcurso del experimento y se prepararon como se describe en la Pauta 1. La detección de adenovirus en las muestras de heces o en exudados nasales, los procedimientos de análisis de neutralización de adenovirus y la detección de anticuerpos contra el VIH se realizaron según los procedimientos descritos en la Pauta 1.
Resultados
La primera dosis intranasal de refuerzo con virus Ad7 recombinantes se administró en una dosis de 1x10^{8} ufp/ chimpancé. En el momento de la administración del virus, los chimpancés 3, 1 y 2 tenían títulos séricos de anticuerpos neutralizantes anti-Ad7 de < 4, 8 y 64, respectivamente, derivados de inmunizaciones orales previas. Se examinaron exudados nasales y muestras de heces para determinar la presencia de virus recombinantes liberados, por medio de una técnica de hibridación en placas. Se detectó el virus Ad7-env recombinante en los exudados nasales hasta un máximo de 7 días tras la inoculación en dos de los animales. Se comprobó que los virus Ad7-env y Ad7-gag recombinantes estaban presentes en muestras de heces de 5 a 12 días tras la inoculación. Hubo correlación entre el título sérico de Ad7 y la capacidad de detectar virus recombinantes en los exudados nasales y en las muestras de heces. Dos animales presentaron una respuesta marginal con anticuerpos anti-VIH, que se vio considerablemente aumentada por las dosis intranasales de refuerzo. El tercer animal experimentó una menor respuesta. Entonces pudieron detectarse en los tres animales anticuerpos neutralizantes, de bajo título, dirigidos contra el VIH. Se detectaron anticuerpos secretores en exudados nasales que contenían anticuerpos de unión anti-gag y/o env. No se observaron signos o síntomas de enfermedad respiratoria en estos animales como resultado de la administración intranasal de los virus Ad7 recombinantes.
Tres meses después, se inmunizaron los chimpancés con virus Ad4 recombinantes a una dosis única de 1x10^{8} ufp/chimpancé/virus. Estos animales tuvieron títulos séricos de anticuerpos neutralizantes anti-Ad4 entre 128 y 256, debido a la inmunización oral previa en el momento de la prueba de provocación intranasal. A los 3 días después de la infección, 2 de los animales (2 y 3) tuvieron un ligero catarro. El tercer animal (número 1) murió el día 5 de una neumonía bacteriana (se aisló Streptococcus pneumoniae). Los otros dos animales presentaron ruidos respiratorios ásperos durante la auscultación y se aisló S. pneumoniae a partir de ambos chimpancés. Se iniciaron tratamientos con antibióticos y ambos chimpancés se recuperaron.
Durante el examen retrospectivo de esta situación se realizaron varias observaciones. En el momento de la administración intranasal, el chimpancé número 1 ya tenía fiebre y un hemograma anómalo. Hubo un número desproporcionado de células polimorfonucleares presentes y un nivel del 5% de células en cayado (células polimorfonucleares inmaduras); en conjunto, esta información indica que tuvo lugar una infección bacteriana significativa antes de la inoculación con el virus. Las muestras de autopsia del pulmón, hígado, bazo y suero fueron todas negativas en lo referente a la presencia de adenovirus infecciosos, según reveló el cultivo de tejidos utilizando 3 pasadas en ciego en monocapas de células A549 susceptibles. Se obtuvieron resultados similares por técnicas de hibridación en placas. Las muestras del pulmón y del hígado incluidas en parafina resultaron negativas en lo referente a la presencia de antígenos de adenovirus, utilizando un kit comercial de inmunofluorescencia para antígenos de adenovirus. Se observaron cuerpos de inclusión en secciones de pulmón teñidas con H&E. Hubo un desacuerdo entre los expertos acerca de si estas inclusiones fueron causadas, o no, por adenovirus. Varias semanas después, otro chimpancé tuvo un desenlace similar en el mismo centro de primates y murió. Aunque es probable que la administración de adenovirus recombinantes haya tenido sólo un papel mínimo, si alguno, en provocar la muerte del chimpancé número 1, se consideró prudente administrar antibióticos de forma profiláctica antes y después de cualquier otra administración intranasal de adenovirus recombinantes a los chimpancés.
La siguiente tabla muestra los resultados obtenidos utilizando la pauta de tratamiento 1 y los virus Ad7 recombinantes en la Pauta 2.
Resultados obtenidos utilizando las pautas de tratamiento 1 y 2
Títulos máximos
Liberación de anti-VIH en
del virus Título máximo inmunotrans- Titulo máximo
Chimpancé Virus recombinante de anti-Adeno ferencia de anti-VIH
n^{o} recombinante Heces (días) neutralizantes env gag neutralizantes
1 Pauta 1
\hskip0.3cm Ad7-env, Ad7-gag-1 2,2 128 - 20 <10
\hskip0.3cm Ad4-env, Ad4-gag-1 2,2 8 - 20 <10
\hskip0.3cm Ad5-env 7+ 128 100 - <10
\hskip0.3cm subunidad: env + gag 100 1000 <10
Pauta 2
\hskip0.3cm Ad7-env, Ad7-gag 12 512 10000 10000 10
2 Pauta 1
\hskip0.3cm Ad7-env, Ad7-gag-1 3,2 64 - 20 <10
\hskip0.3cm Ad4-env, Ad4-gag-1 1,7 128 20 100 <10
\hskip0.3cm Ad5-env 7+ 64 10000 - 20
\hskip0.3cm subunidad: env + gag 1000 10000 10
Pauta 2
\hskip0.3cm Ad7-env, Ad7-gag 9 8192 1000 10000 20
(Continuación)
Títulos máximos
Liberación de anti-VIH en
del virus Título máximo inmunotrans- Titulo máximo
Chimpancé Virus recombinante de anti-Adeno ferencia de anti-VIH
n^{o} recombinante Heces (días) neutralizantes env gag neutralizantes
3 Pauta 1
\hskip0.3cm Ad7-env 2 6 20 N/A* <10
\hskip0.3cm Ad4-env 1 128 20 N/A <10
\hskip0.3cm Ad5-env 7+ 512 1000 N/A <10
\hskip0.3cm subunidad: env 100 N/A <10
Pauta 2
\hskip0.3cm Ad7-env 7 256 10000 N/A 10
*N/A= No aplicable
Medición de la inmunogenicidad
Pauta de tratamiento 3
Inoculaciones en chimpancés y recogida de datos
Tres chimpancés (2 machos y 1 hembra) que resultaron negativos en el escrutinio referente a la presencia de anticuerpos neutralizantes contra los adenovirus humanos de tipo 4, 5 y 7 se evaluaron utilizando la pauta de tratamiento 3. Dos chimpancés (números 4 y 5) recibieron ambos virus recombinantes env y gag, mientras que el tercer chimpancé (número 6) recibió sólo virus recombinantes env. Se administraron antibióticos a los chimpancés de forma profiláctica y no se observaron trastornos respiratorios.
Se recogieron muestras de sangre entera, suero y heces a diferentes tiempos durante el transcurso del experimento y se prepararon como se describe en la Pauta 1. La detección de adenovirus en muestras de heces o exudados nasales, los ensayos de neutralización adenovirus y de detección de anticuerpos contra el VIH se realizaron según los procedimientos descritos en la Pauta 1.
Resultados 1ª inmunización con virus Ad7 recombinantes
Los virus recombinantes se liberaron en las heces durante 22 a 34 días después de la infección. No se detectaron virus recombinantes en las secreciones nasales examinadas 2 semanas después de la infección. La seroconversión al serotipo de vectores de adenovirus utilizado se determinó por ensayos de neutralización. Se midieron excelentes títulos séricos de anticuerpos anti-adenovirus en los 3 chimpancés, dirigidos contra los serotipos Ad7 utilizados en cada uno de los chimpancés. La seroconversión a los productos genéticos del VIH recombinante se determinó por inmunotransferencia. Cuatro semanas después de la inmunización primaria con los virus Ad7 recombinantes, pudieron medirse respuestas anti-env y anti-gag en 2 de los 3 chimpancés. A las 20 semanas después de la infección, los 3 animales presentaron niveles medibles de anticuerpos contra antígenos del VIH. No se encontraron anticuerpos secretores en los exudados nasales examinados durante las 4 primeras semanas después de la inmunización primaria. Ninguno de los 3 chimpancés desarrolló respuestas detectables con anticuerpos neutralizantes anti-VIH.
1ª inmunización de refuerzo con virus Ad4 recombinantes
Los virus Ad4 recombinantes se liberaron en las heces durante 14-28 días después de la infección. El examen de los exudados nasales demostró que los virus Ad4 recombinantes podían detectarse en los 3 chimpancés durante por lo menos 7 días después de la infección. Se desarrollaron respuestas significativas anti-Ad4 contra el serotipo Ad4 tras la administración intranasal. La magnitud fue ligeramente inferior a la medida contra los virus Ad7 recombinantes. Se midieron excelentes respuestas a la dosis de refuerzo contra los antígenos gag y/o env en los tres animales. Se midieron respuestas con un bajo título (1:2) de anticuerpos anti-gag y/o anti-env en los exudados nasales de los chimpancés 4 y 5. Tampoco se midieron anticuerpos neutralizantes anti-VIH en ninguno de los animales.
2ª inmunización de refuerzo con virus Ad5 recombinantes
Los virus Ad5 recombinantes se liberaron en las heces durante 8 días después de la infección. No se detectaron virus recombinantes en los exudados nasales a las 0, 1 ó 2 semanas después de la infección. Se midieron anticuerpos secretores IgG e IgA en los exudados nasales de los 3 animales. Se detectaron anticuerpos secretores en la saliva de los 3 animales y en los exudados vaginales del único chimpancé hembra. Se detectaron anticuerpos neutralizantes anti-VIH específicos de tipo en los tres chimpancés.
Tablas resumen: La siguiente tabla muestra los resultados obtenidos utilizando la pauta de tratamiento 3.
Resultados obtenidos utilizando la pauta de tratamiento 3
Titulos máximos
Liberación de anti-VIH en
del virus Titulo máximo inmunotrans- Titulo máximo
Chimpancé Virus recombinante de anti-Adeno ferencia de anti-VIH
n^{o} recombinante Heces (dias) neutralizantes env gag neutralizantes
4 Ad7-env, Ad7-gag 22,22 1024 100 1000 <10
Ad4-env, Ad4-gag 14,14 128 10000 10000 <10
Ad5-env, Ad5-gag 8,8 32 10000 10000 20
subunidad: env N/A* N/A >10000 10000 640
5 Ad7-env, Ad7-gag 34,27 1024 100 10000 <10
Ad4-env, Ad4-gag 14,14 512 10000 10000 <10
Ad5-env, Ad5-gag 8,8 32 10000 10000 20
subunidad: env N/A N/A 1000 10000 320
6 Ad7-env 34 1024 100 N/A <10
Ad4-env 28 512 10000 N/A <10
Ad5-env 8 32 10000 N/A 40
subunidad: env N/A N/A >10000 N/A 320
*N/A= No aplicable
La siguiente tabla resume las respuestas anti-VIH detectadas en secreciones de chimpancés tras la inmunización intranasal de refuerzo con los virus Ad5-VIH recombinantes.
Respuestas con anticuerpos anti-VIH detectadas en secreciones
Secreción analizada
Semanas
Chimpancé Antígeno tras el Nasal Saliva Vaginal
número reconocido refuerzo** IgA IgG IgA IgG IgA IgG
4 env 0 -* 360 - - - -
1 180 360 - - - 90
2 180 2880 20 20 - 90
4 720 1440 - 20 - 360
gag 0 - 180 - - - -
1 360 360 - 20 - 90
2 720 2880 - 20 - 90
4 720 720 - 20 - 90
5 env 0 - - - - N/A^{+} N/A
1 - 90 - - N/A N/A
2 - 2880 - - N/A N/A
4 - 360 - - N/A N/A
(Continuación)
Secreción analizada
Semanas
Chimpancé Antígeno tras el Nasal Saliva Vaginal
número reconocido refuerzo** IgA IgG IgA IgG IgA IgG
gag 0 - - - - N/A N/A
1 - 90 - - N/A N/A
2 90 1440 - - N/A N/A
4 - 360 - - N/A N/A
6 env 0 - - - - N/A N/A
1 - - - - N/A N/A
2 - 1440 20 20 N/A N/A
4 - 360 - - N/A N/A
* - equivale a menos de 90 para los exudados nasales y vaginales, y menos de 20 para las muestras
salivales.
^{+} N/A = no aplicable
El adenovirus recombinante vivo que se va a utilizar según la invención para la producción de vacunas puede construirse insertando en un adenovirus un gen que codifica un antígeno que corresponde a un anticuerpo contra un organismo infeccioso en animales de sangre caliente o que induce la inmunidad celular contra un organismo infeccioso en animales de sangre caliente. La inserción puede realizarse según se describe en P.K. Chanda et al., Virology, 175, 535-547 (1990); véase en particular la página 539.
El adenovirus recombinante vivo que se va a utilizar según la invención puede purificarse en placas. Pueden aumentarse las cantidades del virus para la producción de vacunas por replicación en un hospedador adecuado. La replicación puede realizarse en cultivo celular. Las células del cultivo celular son preferiblemente células BK (de riñón bovino) o células de carcinoma humano, particularmente células de carcinoma cervical humano, por ejemplo, la línea celular HeLa, o células de carcinoma de pulmón humano, por ejemplo, la línea celular A549. El virus puede almacenase a -70ºC en un medio tal como DMEM con suero de ternero fetal al 5%.
Para la administración intranasal, la vacuna puede comprender el virus con un estabilizante, por ejemplo, SPGA (sacarosa, fosfato, glutarato y albúmina) y, cuando convenga, uno o más azúcares.
La invención se utiliza preferiblemente para el tratamiento de mamíferos del orden de los Primates (incluido el hombre).

Claims (12)

1. Utilización de un adenovirus recombinante para preparar un medicamento para su utilización en el tratamiento para producir anticuerpos o inmunidad celular contra el virus de la inmunodeficiencia humana de tipo 1, en el que la proteína estructural del virión permanece invariable respecto a la del adenovirus nativo a partir del cual se ha producido el adenovirus recombinante, y que contiene el gen que codifica el antígeno correspondiente a dichos anticuerpos o que induce dicha inmunidad celular, en el que el adenovirus recombinante se selecciona a partir de uno o más del grupo formado por:
Ad7-tplenv-tplHrev, Ad7-tplgag-tplHrev, Ad7-rev-gag,
Ad4-tplenv-tplHrev, Ad4-tplgag-tplHrev, Ad4-rev-gag, Ad5-tplenv-tplHrev y Ad5-tplgag-tplHrev, estando destinado el medicamento para su administración intranasal a un mamífero del orden de los Primates, incluido el hombre.
2. Utilización según la reivindicación 1, que comprende además la utilización de una o más de una proteína subunitaria del virus de la inmunodeficiencia humana de tipo 1 para preparar un medicamento para su administración en dicho método para producir anticuerpos o inmunidad celular.
3. Utilización según la reivindicación 2, en la que la subunidad es env o gag.
4. Utilización según las reivindicaciones 2 ó 3, en la que se administran una o más dosis del adenovirus recombinante vivo, con la administración subsiguiente de una o más dosis de una proteína que es una subunidad del virus de la inmunodeficiencia humana de tipo 1.
5. Utilización según cualquiera de las reivindicaciones 2 a 4, en la que la proteína que es una subunidad del virus de la inmunodeficiencia humana de tipo 1 es env.
6. Adenovirus recombinante vivo que es X-tplY-tplHrev; en el que X es Ad4, Ad5 o Ad7, e Y es env o gag.
7. Adenovirus recombinante según la reivindicación 6, que es el Ad4-tplenv-tplHrev.
8. Adenovirus recombinante según la reivindicación 6, que es el Ad5-tplenv-tplHrev.
9. Adenovirus recombinante según la reivindicación 6, que es el Ad7-tplenv-tplHrev.
10. Adenovirus recombinante según la reivindicación 6, que es el Ad4-tplgag-tplHrev.
11. Adenovirus recombinante según la reivindicación 6, que es el Ad5-tplgag-tplHrev.
12. Adenovirus recombinante según la reivindicación 6, que es el Ad7-tplgag-tplHrev.
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