DE69834651T2 - Filtermaterial zur entfernung von weissen blutkörperchen - Google Patents

Filtermaterial zur entfernung von weissen blutkörperchen Download PDF

Info

Publication number
DE69834651T2
DE69834651T2 DE69834651T DE69834651T DE69834651T2 DE 69834651 T2 DE69834651 T2 DE 69834651T2 DE 69834651 T DE69834651 T DE 69834651T DE 69834651 T DE69834651 T DE 69834651T DE 69834651 T2 DE69834651 T2 DE 69834651T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
filter medium
leukocyte
hydrophilic
groups
medium according
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
DE69834651T
Other languages
English (en)
Other versions
DE69834651D1 (de
Inventor
Tatsuya Fukuda
Norio Thoma
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Asahi Kasei Medical Co Ltd
Original Assignee
Asahi Kasei Medical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Asahi Kasei Medical Co Ltd filed Critical Asahi Kasei Medical Co Ltd
Application granted granted Critical
Publication of DE69834651D1 publication Critical patent/DE69834651D1/de
Publication of DE69834651T2 publication Critical patent/DE69834651T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61MDEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M1/00Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
    • A61M1/34Filtering material out of the blood by passing it through a membrane, i.e. hemofiltration or diafiltration
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D67/00Processes specially adapted for manufacturing semi-permeable membranes for separation processes or apparatus
    • B01D67/0081After-treatment of organic or inorganic membranes
    • B01D67/0088Physical treatment with compounds, e.g. swelling, coating or impregnation
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D39/00Filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D39/08Filter cloth, i.e. woven, knitted or interlaced material
    • B01D39/083Filter cloth, i.e. woven, knitted or interlaced material of organic material
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D39/00Filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D39/08Filter cloth, i.e. woven, knitted or interlaced material
    • B01D39/086Filter cloth, i.e. woven, knitted or interlaced material of inorganic material
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D39/00Filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D39/14Other self-supporting filtering material ; Other filtering material
    • B01D39/16Other self-supporting filtering material ; Other filtering material of organic material, e.g. synthetic fibres
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D67/00Processes specially adapted for manufacturing semi-permeable membranes for separation processes or apparatus
    • B01D67/0081After-treatment of organic or inorganic membranes
    • B01D67/0093Chemical modification
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D67/00Processes specially adapted for manufacturing semi-permeable membranes for separation processes or apparatus
    • B01D67/0081After-treatment of organic or inorganic membranes
    • B01D67/0093Chemical modification
    • B01D67/00931Chemical modification by introduction of specific groups after membrane formation, e.g. by grafting
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61MDEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M2202/00Special media to be introduced, removed or treated
    • A61M2202/04Liquids
    • A61M2202/0413Blood
    • A61M2202/0439White blood cells; Leucocytes
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2239/00Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D2239/04Additives and treatments of the filtering material
    • B01D2239/0414Surface modifiers, e.g. comprising ion exchange groups
    • B01D2239/0421Rendering the filter material hydrophilic
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2239/00Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D2239/04Additives and treatments of the filtering material
    • B01D2239/0471Surface coating material
    • B01D2239/0478Surface coating material on a layer of the filter
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2239/00Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D2239/12Special parameters characterising the filtering material
    • B01D2239/1216Pore size
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2239/00Aspects relating to filtering material for liquid or gaseous fluids
    • B01D2239/12Special parameters characterising the filtering material
    • B01D2239/1291Other parameters
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01DSEPARATION
    • B01D2323/00Details relating to membrane preparation
    • B01D2323/38Graft polymerization

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Inorganic Chemistry (AREA)
  • Textile Engineering (AREA)
  • Manufacturing & Machinery (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Anesthesiology (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • External Artificial Organs (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

  • Fachgebiet
  • Die vorliegende Erfindung betrifft ein leukocytenentfernendes Filtermedium zur Entfernung von Leukocyten aus einer leukocytenhaltigen Flüssigkeit, wie einem Vollblutprodukt oder einem Erythrocytenkonzentrat, und ein Verfahren zur Entfernung von Leukocyten in einem Blutzentrum durch Verwendung des leukocytenentfernenden Filtermediums.
  • Technischer Hintergrund
  • Auf dem Gebiet der Bluttransfusion wird neben der sogenannten Vollbluttransfusion, die das Transfundieren eines Vollblutprodukts umfasst, das durch Zugabe eines Antikoagulans zu von einem Blutspender entnommenem Blut erhalten wird, auch eine sogenannte Komponententransfusion, die das Abtrennen einer für einen Blutempfänger notwendigen Blutkomponente aus dem Vollblutprodukt und Transfundieren der Blutkomponente umfasst, allgemein durchgeführt. Die Komponententransfusion wird unterteilt in Erythrocytentransfusion, Thrombocytentransfusion, Plasmatransfusion usw., je nach der Blutkomponentenspezies, die für einen Blutempfänger notwendig ist. Zu den Blutkomponentenprodukten, die in diesen Bluttransfusionen verwendet werden, gehören Erythrocytenprodukte, Thrombocytenprodukte, Plasmaprodukte usw. In den letzten Jahren wurde häufig eine sogenannte leukocytenfreie Bluttransfusion verwendet, bei der ein Blutprodukt transfundiert wird, nachdem es von Leukocyten befreit wurde, die als Kontaminanten darin enthalten sind. Der Grund dafür ist, dass sich herausgestellt hat, dass relativ leichte Nebenwirkungen, die mit einer Bluttransfusion einhergehen, wie Kopfschmerzen, Übelkeit, Schüttelfrost, nichthämolytische pyretische Reaktion usw., sowie schwere Nebenwirkungen, wie Alloantigen- Sensibilisierung, virale Infektion, Posttransfusions-GVHD usw., die schwere Auswirkungen auf einen Blutpatienten haben, hauptsächlich durch Leukocyten verursacht werden, die als Kontaminanten in einem bei der Transfusion verwendeten Blutprodukt enthalten sind.
  • Es heißt, dass es zur Verhinderung der relativ leichten Nebenwirkungen, wie Kopfschmerzen, Übelkeit, Schüttelfrost, Pyrexie usw., ausreicht, die Leukocyten in einem Blutprodukt zu entfernen, bis ihr Restanteil kleiner als 10–1 bis 10–2 ist. Es heißt auch, dass es zur Verhinderung der schweren Nebenwirkungen, wie Alloantigen-Sensibilisierung, virale Infektion usw., ausreicht, die Leukocyten zu entfernen, bis ihr Restanteil kleiner als 10–4 bis 10–6 ist.
  • Verfahren zur Entfernung von Leukocyten aus einem Blutprodukt werden grob in zwei Kategorien eingeteilt, nämlich Zentrifugationsverfahren, bei denen Leukocyten mit einer Zentrifuge abgetrennt und entfernt werden, indem man sich den Unterschied in der relativen Dichte der Blutkomponenten zu Nutze macht, und Filterverfahren, bei denen Leukocyten durch Verwendung eines Filtermediums entfernt werden, das aus einem faserigen Material oder einem porösen Element, wie einem porösen Material mit miteinander verbundenen Hohlräumen, besteht. Die Filterverfahren werden zur Zeit häufig verwendet, da sie Vorteile haben, wie ausgezeichnete Leukocytenentfernungsfähigkeit, leichte Bedienung und geringe Kosten. Von den Filterverfahren ist ein Verfahren zur Entfernung von Leukocyten durch Adhäsion oder Adsorption unter Verwendung eines Vliesstoffs oder eines porösen Materials mit miteinander verbundenen Hohlräumen als Filtermedium zur Zeit wegen seiner besonders ausgezeichneten Leukocytenentfernungsfähigkeit am weitesten verbreitet.
  • Was den Mechanismus der Entfernung von Leukocyten durch Verwendung des oben genannten, aus einem faserigen Material oder einem porösen Material bestehenden Filtermediums betrifft, wird davon ausgegangen, dass die Entfernung hauptsächlich dadurch verursacht wird, dass Leukocyten, die mit der Oberfläche des Filtermediums in Kontakt gebracht werden, an der Oberfläche des Filtermediums haften oder daran adsorbiert werden. Daher wurden eine Erhöhung der Häufigkeit der Kollision zwischen dem Filtermedium und den Leukocyten, d.h. eine Reduktion des Faserdurchmessers oder der Porengröße des Filtermediums, oder eine Erhöhung der Packungsdichte des Filtermediums in einer Filterapparatur als Mittel erforscht, um die Leukocytenentfernungsfähigkeit von herkömmlichen Filtermedien zu verbessern. Es gibt jedoch eine Grenze bei der Verbesserung der Leukocytenentfernungsfähigkeit durch Verwendung nur der obigen Mittel im Falle eines Produkts mit einem hohen Gehalt an Roten Blutkörperchen, wie einem Vollblutprodukt oder Erythrocytenprodukt. Das heißt, die Häufigkeit des Kontakts von Roten Blutkörperchen, die in einer hohen Konzentration in dem Produkt enthalten sind, mit dem Filtermedium und der Widerstand gegen den Flüssigkeitsdurchtritt nehmen mit zunehmender Häufigkeit des Kontakts von Leukocyten mit dem Filtermedium zu. Es gibt also Probleme wie eine verlängerte Behandlungszeit und Hämolyse aufgrund des Aufbrechens der Erythrocytenmembran.
  • Andererseits wurden Untersuchungen auf der Grundlage der Kenntnis der chemischen Oberflächeneigenschaften von Filtermedien durchgeführt. JP-A-1/249063 offenbart ein Filtermedium mit einer hydrophilen und negativ geladenen Oberfläche. WO 87/05812 offenbart ein Filtermedium, das nichtionische hydrophile Gruppen und basischen Stickstoff enthaltende funktionelle Gruppen enthält und einen Gehalt der basischen Stickstoff enthaltenden funktionellen Gruppen von weniger als 4,0 Gew.-% und nicht weniger als 0,2 Gew.-% aufweist. Diese Techniken sind jedoch zur Aufrechterhaltung der Leukocytenentfernungsfähigkeit bestimmt, während die Durchtrittsrate von Blutplättchen, die als sehr adhäsive Zellen bekannt sind, verbessert wird, und bringen kaum eine weitere Verbesserung der Leukocytenentfernungsfähigkeit. Die in EP 0 500 472A2 offenbarte Technik ist nicht für die Erhöhung der Entfernungsrate von Leukocyten bestimmt, sondern für die Erhöhung der Entfernungsrate von Blutplättchen, während eine zufriedenstellende Fähigkeit zum Durchlassen von Roten Blutkörperchen aufrechterhalten wird, indem man bei der Entfernung von Leukocyten und Blutplättchen aus einem Erythrocytenprodukt ein Filtermedium mit einem positiven Zetapotential verwendet.
  • JP-A-6/247862 (EP-A-O 606 646) offenbart ein Filtermedium, das basische funktionelle Gruppen und nichtionische hydrophile Gruppen enthält, ein Stoffmengenverhältnis der basischen funktionellen Gruppen zu den nichtionischen hydrophilen Gruppen von weniger als 6 und nicht weniger als 0,6 hat und die basischen funktionellen Gruppen in einer Dichte von weniger als 0,1 mäq/m2 und nicht weniger als 5 × 10–5 mäq/m2 enthält. Dieses Filtermedium hat jedoch keine ausreichende inhibitorische Wirkung auf die Adhäsion von Roten Blutkörperchen und bringt kaum eine stabile Verbesserung der Leukocytenentfernungsfähigkeit.
  • Offenbarung der Erfindung
  • Ein erstes Ziel der vorliegenden Erfindung besteht darin, ein Filtermedium bereitzustellen, das die Adhäsion von Roten Blutkörperchen unterdrückt, eine sehr hohe Affinität zu Leukocyten hat, eine besonders hohe Leukocytenentfernungsfähigkeit hat, einen zufriedenstellenden Fluss einer leukocytenhaltigen Flüssigkeit ermöglicht und eine ausgezeichnete Blutverträglichkeit aufweist. Dieses Filtermedium weist wenigstens auf seiner Oberfläche hydrophile basische Gruppen auf, die wenigstens einen nichtionischen hydrophilen Teil und wenigstens einen basischen Teil enthalten, wobei sich der oder die hydrophilen Teile näher am Ende der hydrophilen basischen Gruppe befinden als der oder die basischen Teile. Die Erfinder fanden heraus, dass das obige erste Ziel erreicht werden kann, indem man ein solches leukocytenentfernendes Filtermedium verwendet.
  • Das heißt, die vorliegende Erfindung bezieht sich auf ein leukocytenentfernendes Filtermedium, das Leukocyten aus einer leukocytenhaltigen Flüssigkeit entfernt und wenigstens auf seiner Oberfläche hydrophile basische Gruppen aufweist, die durch die folgende Formel (1) dargestellt werden und wenigstens einen nichtionischen hydrophilen Teil und wenigstens einen basischen Teil enthalten, dadurch gekennzeichnet, dass sich der bzw. die nichtionischen hydrophilen Teile im terminalen Bereich befinden, der in der Formel, die die chemische Struktur der Filtermediumoberfläche darstellt, einen größeren Abstand von dem Teil, der die hydrophile basische Gruppe trägt, hat als der bzw. die basischen Teile:
    Figure 00050001
    wobei R1 eine Struktur ist, die einen hydrophilen Teil enthält, und R2 eine Struktur, die einen hydrophilen Teil enthält, oder eine Struktur, die keinen hydrophilen Teil enthält, wie eine Alkylgruppe oder Wasserstoff, ist.
  • Ein zweites Ziel der vorliegenden Erfindung besteht darin, ein Verfahren zur Entfernung von Leukocyten in einem Blutzentrum mit sehr hoher Effizienz aus einer leukocytenhaltigen Flüssigkeit, wie einem Vollblutprodukt, einem Erythrocytenkonzentrat oder dergleichen, während die Anhaftung von Roten Blutkörperchen unterdrückt wird, anzugeben. Die Erfinder fanden heraus, dass das obige zweite Ziel erreicht werden kann, indem man eine Apparatur verwendet, die wenigstens einen Einlass, einen Filter, der das leukocytenentfernende Filtermedium der vorliegenden Erfindung umfasst, das in geeigneter Weise darin angeordnet ist, und einen Auslass umfasst, wobei eine leukocytenhaltige Flüssigkeit durch den Einlass eingeführt und die durch den Filter filtrierte Flüssigkeit aus dem Auslass gewonnen wird.
  • Das heißt, die vorliegende Erfindung bezieht sich auf ein Verfahren zur Entfernung von Leukocyten in einem Blutzentrum aus einer leukocytenhaltigen Flüssigkeit, umfassend das Verwenden einer Vorrichtung, die wenigstens 1) einen Einlass, 2) einen Filter, der das leukocytenentfernende Filtermedium gemäß Anspruch 1 umfasst, und 3) einen Auslass umfasst, wobei das Verfahren das Einführen der leukocytenhaltigen Flüssigkeit durch den Einlass und das Gewinnen der durch den Filter filtrierten Flüssigkeit aus dem Auslass umfasst.
  • Kurzbeschreibung der Zeichnungen
  • 1 ist eine elektronenmikroskopische Aufnahme des leukocytenentfernenden Filtermediums der vorliegenden Erfindung, die nach der Filtration von Blut durch das Filtermedium aufgenommen wurde.
  • 2 ist eine elektronenmikroskopische Aufnahme eines Filtermediums, an dem eine große Menge Roter Blutkörperchen haftet, die nach der Filtration von Blut durch das Filtermedium aufgenommen wurde.
  • Beste Methode zur Durchführung der Erfindung
  • Das leukocytenentfernende Filtermedium der vorliegenden Erfindung umfasst ein Grundmaterial, das das Filtermedium bildet, und hydrophile basische Gruppen auf der Oberfläche des Grundmaterials, deren hydrophile Teile sich näher am Ende der hydrophilen basischen Gruppe befinden als der oder die basischen Teile. Das Filtermedium der vorliegenden Erfindung umfasst irgendein Filtermedium mit einer solchen Struktur, solange seine hydrophilen basischen Gruppen auf der Oberfläche wenigstens einen hydrophilen Teil in der Nähe des Endes (terminaler Bereich) der hydrophilen basischen Gruppe aufweisen, auch wenn die hydrophile basische Gruppe noch einen hydrophilen Teil in einem anderen Bereich als dem terminalen Bereich aufweist. Der hier verwendete Ausdruck "umfasst hydrophile basische Gruppen auf der Oberfläche des Grundmaterials" bedeutet, dass ein Monomer, das eine oder mehrere hydrophile basische Gruppen enthält, oder ein Polymer, das hydrophile basische Gruppen enthält, durch irgendein wohlbekanntes Verfahren, wie durch kovalente Bindung, ionische Bindung, physikalische Adsorption, Einbettung, Niederschlagsinsolubilisierung usw. auf die Oberfläche des Grundmaterials, das das Filtermedium bildet, gebracht wurde, so dass es nicht freigesetzt wird, oder dass das Grundmaterial, das das Filtermedium bildet, aus einem Polymermaterial (oder makromolekularen Material) mit hydrophilen basischen Gruppen besteht, so dass sich die hydrophilen basischen Gruppen auf der Oberfläche des Grundmaterials befinden können. In beiden Fällen umfasst das Filtermedium der vorliegenden Erfindung das resultierende Filtermedium.
  • Außerdem bedeutet der hier verwendete Ausdruck "terminaler Bereich der hydrophilen basischen Gruppe" einen Bereich in einem größeren Abstand (Länge) von dem Teil, der die hydrophile basische Gruppe trägt (im Folgenden auch als Trageteil bezeichnet), als der basische Teil in der Formel, die die chemische Struktur der Oberfläche des Filtermediums darstellt. Hier bedeutet der Ausdruck "Trageteil" einen Teil, wo die hydrophile basische Gruppe in Kontakt mit dem das Filtermedium bildenden Grundmaterial steht. Wenn zum Beispiel insbesondere hydrophile basische Gruppen selbst über ein Monomer, das eine oder mehrere hydrophile basische Gruppen enthält, oder ein Polymer, das hydrophile basische Gruppen enthält, durch eine kovalente Bindung, ionische Bindung oder dergleichen auf das Grundmaterial, das das Filtermedium bildet, aufgebracht werden, wird der Teil, wo die hydrophile basische Gruppe an das Grundmaterial gebunden ist, als Trageteil bezeichnet. Wenn ein Polymer, das durch Verwendung eines polymerisierbaren Monomers, das eine oder mehrere hydrophile basische Gruppen enthält, erhalten wird, durch physikalische Adsorption über eine Beschichtung oder dergleichen auf die Oberfläche des Grundmaterials, das das Filtermedium bildet, aufgebracht wird, wird die Hauptkette des Polymers als Trageteil bezeichnet. Wenn das Filtermedium aus einem Polymermaterial (oder makromolekularen Material) besteht, das hydrophile basische Gruppen als Seitenketten aufweist, wird der Teil, wo die Seitenkette an die Hauptkette des Polymermaterials (oder makromolekularen Materials) gebunden ist, als Trageteil bezeichnet.
  • Das heißt, das leukocytenentfernende Filtermedium der vorliegenden Erfindung ist ein Filtermedium, das auf seiner Oberfläche hydrophile basische Gruppen aufweist, die eine solche spezifische Struktur haben, dass sich wenigstens ein hydrophiler Teil in einem Bereich befindet, wo der bzw. die hydrophilen Teile (beim In-Kontakt-Bringen des Filtermediums mit Blut) leichter mit Blutzellen, wie Roten Blutkörperchen und Leukocyten, die in dem Blut enthalten sind, in Kontakt kommen als der bzw. die basischen Teile der hydrophilen basischen Gruppe.
  • Folgendes wurde herausgefunden: Überraschenderweise wird durch Aufbringen von hydrophilen basischen Gruppen, die ein solches strukturelles Merkmal aufweisen, auf die Oberfläche eines Filtermediums eine hemmende Wirkung auf die Adhäsion von Roten Blutkörperchen verursacht, und es wird ein leukocytenentfernendes Filtermedium erhalten, das eine sehr hohe Affinität zu Leukocyten hat und die Blutbehandlungszeit nicht verlängert. Aus der in 1 gezeigten elektronenmikroskopischen Aufnahme geht hervor, dass Rote Blutkörperchen kaum an dem leukocytenentfernenden Filtermedium der vorliegenden Erfindung haften.
  • Als die Erfinder andererseits die Filtration eines Erythrocytenkonzentrats, das eine besonders niedrige Proteinkonzentration hatte, unter Verwendung eines Filtermediums untersuchten, das auf der Oberfläche unabhängig hydrophile Teile und basische Teile aufwies, aber im Unterschied zur vorliegenden Erfindung keine hydrophile basische Gruppe aufwies, das heißt, insbesondere ein Filtermedium, das mit Polymeren, die aus polymerisierbaren Monomeren mit einer Dialkylaminogruppe erhalten wurden, und solchen aus polymerisierbaren Monomeren mit einer Hydroxygruppe mit einem hohen Gehalt an Einheiten des polymerisierbaren Monomers mit der Dialkylaminogruppe beschichtet war, wurden Phänomene wie eine Verlängerung der Behandlungszeit und Verschlechterung der Leukocytenentfernungsfähigkeit beobachtet. Als das Filtermedium, das solche Phänomene gezeigt hatte, mit einem Elektronenmikroskop beobachtet wurde, wurde die Anhaftung einer großen Menge von Roten Blutkörperchen an die Oberfläche des Filtermediums beobachtet, wie in 2 gezeigt ist. Da ein Vollblutprodukt oder ein Erythrocytenprodukt, wie das Erythrocytenkonzentrat, etwa 1000mal so viele Erythrocyten wie Leukocyten enthält, wird vermutet, dass eine große Menge von Roten Blutkörperchen an dem Filtermedium haftete und die Poren des Filtermediums verstopfte, wodurch die Behandlungszeit verlängert wurde. Es wird auch vermutet, dass Rote Blutkörperchen auch an den Adsorptionsstellen des Filtermediums hafteten, an denen ursprünglich Leukocyten adsorbiert werden sollten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit dadurch verschlechtert wurde. Folgendes wurde ebenfalls herausgefunden: Wenn der Gehalt an Dialkylaminogruppen in dem oben genannten Polymer reduziert wird, kann die Anhaftung von Roten Blutkörperchen unterdrückt werden, obwohl es wie erwartet schwierig ist, die Leukocytenentfernungsfähigkeit zu verbessern.
  • Obwohl der Grund dafür, dass das leukocytenentfernende Filtermedium der vorliegenden Erfindung die oben beschriebenen ganz ausgezeichneten Leistungseigenschaften aufweist, noch nicht zu Tage getreten ist, kann spekuliert werden, dass sie möglicherweise auf den folgenden Mechanismus zurückzuführen sind. Ein Material, das nichtionische hydrophile Teile, wie Hydroxygruppen, Polyethylenoxidketten oder dergleichen, aufweist, unterdrückt häufig die Anhaftung von Blutzellen. Andererseits können basische Teile Zellen aufgrund ihrer positiven Ladungen durch elektrostatische Wirkung adsorbieren. Es wird vermutet, dass die Anhaftung von Roten Blutkörperchen in den basischen Teilen unterdrückt wird, indem man einen solchen nichtionischen hydrophilen Teil (solche nichtionischen hydrophilen Teile) wie oben im terminalen Bereich der hydrophilen basischen Gruppe platziert, so dass der bzw. die nichtionischen hydrophilen Teile öfter mit Zellen in Kontakt kommen können als der bzw. die basischen Teile. Da Leukocyten andererseits adhäsiver und größer sind als Rote Blutkörperchen, sind sie der Wirkung des bzw. der basischen Teile ausgesetzt, die einer elektrostatischen Anziehung ähnelt. Es wird also vermutet, dass Leukocyten effizient und selektiv an den basischen Teilen adsorbiert werden.
  • Weiterhin scheint das Filtermedium der vorliegenden Erfindung, das hydrophile basische Gruppen auf der Oberfläche aufweist, eine sehr hohe Affinität zu Leukocyten und eine hemmende Wirkung auf die Freisetzung von Leukocyten, sobald sie an dem Filtermedium adsorbiert sind, zu haben. Dies kann aufgrund der folgenden Tatsache vermutet werden: Als das Filtermedium der vorliegenden Erfindung, das hydrophile basische Gruppen auf der Oberfläche aufweist, in einem experimentellen System, bei dem eine Anhaftung von Roten Blutkörperchen kaum verursacht werden konnte, wo nämlich der Einfluss der Anhaftung von Roten Blutkörperchen ausgeschlossen ist, mit einem Filtermedium verglichen wurde, das basische Gruppen, wie Dialkylaminogruppen, auf der Oberfläche aufweist, hatte das Filtermedium der vorliegenden Erfindung, das hydrophile basische Gruppen auf der Oberfläche aufweist, eine erheblich höhere Leukocytenentfernungsfähigkeit als das andere, obwohl die Dichte der auf die Oberfläche dieses Filtermediums aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen und die Dichte der auf die Oberfläche des anderen Filtermediums aufgebrachten basischen Gruppen im Wesentlichen dieselbe war.
  • Das heißt, das Aufbringen von hydrophilen basischen Gruppen, die die spezifische Struktur aufweisen, auf die Oberfläche eines Filtermediums, das in der vorliegenden Erfindung gefunden wurde, ist sehr wichtig, um die Anhaftung von Roten Blutkörperchen sowie die Verschlechterung der Leukocytenentfernungsfähigkeit und die Verlängerung der Behandlungszeit, die offenbar auf die Anhaftung von Roten Blutkörperchen zurückzuführen sind, zu verhindern und die Affinität zu Leukocyten stark zu verbessern.
  • Außerdem befindet sich der bzw. befinden sich die hydrophilen Teile in der hydrophilen basischen Gruppe gemäß der vorliegenden Erfindung vorzugsweise am äußersten Ende der hydrophilen basischen Gruppe. Der Grund dafür ist, dass die hemmende Wirkung auf die Anhaftung von Roten Blutkörperchen häufig dadurch verstärkt wird, dass sich der bzw. die hydrophilen Teile am äußersten Ende der hydrophilen basischen Gruppe befinden.
  • Es hat sich gezeigt, dass das leukocytenentfernende Filtermedium der vorliegenden Erfindung eine ausgezeichnete Blutverträglichkeit hat. Nichtionische hydrophile Teile, wie Hydroxygruppen, induzieren häufig die Komplementaktivierung, aber das leukocytenentfernende Filtermedium der vorliegenden Erfindung verursachte kaum die Komplementaktivierung. Außerdem hatte das leukocytenentfernende Filtermedium der vorliegenden Erfindung eine derart sehr gute Blutver träglichkeit, dass es nur eine geringe Menge von Gerinnungsfaktoren, zum Beispiel Faktor VIII, adsorbierte und kaum Hämolyse verursachte.
  • Der hier verwendete Ausdruck "nichtionischer hydrophiler Teil" bedeutet einen Teil mit einer Struktur, die sehr schwierig zu ionisieren ist und eine hochgradig hydrophile Morphologie aufweist. Die Einführung der nichtionischen hydrophilen Teile erleichtert das Benetzen der Oberfläche des Filtermediums zum Zeitpunkt des Kontakts der Oberfläche mit dem Blut und ist daher effektiv zur Verhinderung eines einseitigen Fließens des Bluts. Folglich wird der Blutflussbereich im Filtermedium erhöht, und damit kann die Einführung solcher Teile auch zur Verstärkung der Leukocytenentfernungsfähigkeit des Filtermediums beitragen.
  • Spezielle Beispiele für den hier genannten nichtionischen Hydrophilen Teil sind Hydroxygruppen, Amidgruppen, Ethergruppe, Nitrogruppe, Nitrosogruppe, Sulfoxidgruppe, Sulfonylgruppe, Phosphorylgruppe, Phosphogruppe, Carboxamid, Sulfonamid, Thiosäureamid, Cyanogruppe, Cyanat, Thiocyanat, Isothiocyanat usw. Von diesen sind die Hydroxygruppe, Amidgruppe und Ethergruppen, wie eine Polyethylenoxidkette mit einer Anzahl von Ethylenoxid-Repetiereinheiten von nicht mehr als 10 und nicht weniger als 2, die chemisch stabil und hochgradig hydrophil sind, besonders zu bevorzugen. Die Hydroxygruppe ist am meisten zu bevorzugen.
  • Der hier verwendete Ausdruck "basischer Teil" bedeutet einen Teil, der ein Proton aufnehmen und dadurch positiv geladen werden kann. Wegen seiner positiven Ladung bewirkt der basische Teil eine Adsorption von negativ geladenen Leukocyten unter physiologischen Bedingungen durch elektrostatische Wechselwirkung und kann damit die Affinität zu Leukocyten verbessern.
  • Spezielle Beispiele für einen basischen Teil, der in der vorliegenden Erfindung verwendet werden kann, sind eine sekundäre Aminogruppe, tertiäre Aminogruppe und stickstoffhaltige heterocyclische Gruppen mit einem Pyrrol-, Pyrazol-, Pyrrolidin-, Piperidingerüst oder dergleichen. Von diesen sind sekundäre und tertiäre Aminogruppen zu bevorzugen, da sie chemisch stabil sind und sehr unbedenklich sind, wenn sie in medizinischen Geräten verwendet werden.
  • Der hier verwendete Ausdruck "hydrophile basische Gruppe" bedeutet eine funktionelle Gruppe mit einer Struktur, die den bzw. die oben genannten nichtionischen hydrophilen Teile und basischen Teile umfasst. Insbesondere bedeutet der Ausdruck eine funktionelle Gruppe, die durch die folgende Formel (1) dargestellt wird: Formel (1)
    Figure 00120001
    wobei R1 eine Struktur ist, die einen hydrophilen Teil enthält;
    R2 eine Struktur, die einen hydrophilen Teil enthält, oder eine Struktur, die keinen hydrophilen Teil enthält, wie eine Alkylgruppe oder Wasserstoff, ist.
  • Von solchen hydrophilen basischen Gruppen sind Monohydroxyalkylaminogruppen und Bis(hydroxyalkyl)aminogruppen, die gebildet werden, indem man wenigstens eine Hydroxygruppe über ein oder mehrere Kohlenstoffatome an ein Stickstoffatom bindet, zu bevorzugen. Außerdem beträgt die Zahl der Kohlenstoffatome des Alkylteils in der Hydroxyalkylaminostruktur vorzugsweise nicht mehr als 10 und nicht weniger als 1, besonders bevorzugt nicht mehr als 5 und nicht weniger als 1.
  • Das Verfahren zum Aufbringen der hydrophilen basischen Gruppen gemäß der vorliegenden Erfindung auf die Oberfläche des Grundmaterials, das das Filtermedium bildet, unterliegt keiner besonderen Einschränkung, und es können ver schiedene wohlbekannte Verfahren eingesetzt werden. Das Verfahren umfasst zum Beispiel ein Verfahren, das die Einführung eines Monomers mit einer oder mehreren hydrophilen basischen Gruppen durch ein Pfropfverfahren, wie Strahlungspfropfen oder Plasmapfropfen, umfasst, ein Verfahren, das die Beschichtung mit einem Polymer mit hydrophilen basischen Gruppen umfasst, und ein Verfahren, das die Umsetzung von aktiven Gruppen auf der Oberfläche des Grundmaterials mit einer chemischen Spezies, wie einem Monomer, das eine oder mehrere hydrophile basische Gruppen aufweist, oder einem Polymer, das hydrophile basische Gruppen aufweist, umfasst.
  • Das polymerisierbare Monomer, das eine oder mehrere hydrophile basische Gruppen aufweist und das in dem Pfropfverfahren oder dem Polymerbeschichtungsverfahren verwendet werden kann, umfasst zum Beispiel (Meth)acrylsäure-Derivate, wie N-Mono(hydroxyalkyl)aminoethyl(meth)acrylat, N,N-Bis(hydroxyalkyl)aminoethyl(meth)acrylat, N-Mono(hydroxyalkyl)amino-2-hydroxypropyl(meth)acrylat, N,N-Bis(hydroxyalkyl)amino-2-hydroxypropyl(meth)acrylat, N-(Methoxypolyoxyethyl)aminoethyl(meth)acrylat, N,N-Bis(methoxypolyoxyethyl)-aminoethyl(meth)acrylat usw., Styrol-Derivate, wie N-Hydroxyaminostyrol usw., und Vinylderivate, wie N-(Hydroxyalkyl)aminoethylene usw. In der vorliegenden Beschreibung steht das Wort "(Meth)acrylat" für Acrylat oder Methacrylat, und das Wort "(Meth)acrylsäure" steht für Acrylsäure oder Methacrylsäure. Von den Monomeren, die oben beispielhaft genannt sind, sind die (Meth)acrylsäure-Derivate wegen ihrer leichten Synthese und ausgezeichneten Handhabbarkeit zu bevorzugen. Von den (Meth)acrylsäure-Derivaten sind solche mit einer Mono-(hydroxyalkyl)aminogruppe oder einer Bis(hydroxyalkyl)aminogruppe besonders zu bevorzugen.
  • Wenn die Oberfläche des Grundmaterials, das das Filtermedium bildet, durch Verwendung des Pfropfverfahrens oder des Polymerbeschichtungsverfahrens modifiziert wird, können auch andere polymerisierbare Monomere, die keine hydrophile basische Gruppe aufweisen, auf die Oberfläche aufgebracht werden. Als andere polymerisierbare Monomere können ohne besondere Einschränkung beliebige polymerisierbare Monomere verwendet werden, doch sind (Meth)acrylsäure-Derivate, zum Beispiel Hydroxyethyl(meth)acrylat und Methyl(meth)-acrylat, wegen ihrer ausgezeichneten Handhabbarkeit zu bevorzugen.
  • Wenn die Oberfläche des Grundmaterials mit einem Polymer beschichtet wird, das durch Verwendung wenigstens eines polymerisierbaren Monomers, das eine oder mehrere hydrophile basische Gruppen aufweist, und eines oder mehrerer anderer polymerisierbarer Monomere als Monomerkomponenten erhalten wird, kann außerdem jedes Copolymer, wie ein statistisches Copolymer, ein Blockcopolymer, ein alternierendes Copolymer oder dergleichen, als Polymer verwendet werden, doch ein statistisches Copolymer ist wegen dessen leichter Copolymerisation zu bevorzugen. Die Arten der polymerisierbaren Monomere zur Gewinnung des oben genannten Copolymers unterliegen zwar keiner besonderen Einschränkung, doch ist ein Copolymer, das aus zwei oder drei Arten von polymerisierbaren Monomeren erhalten wird, wegen seiner leichten Herstellung zu bevorzugen.
  • Als weiteres Verfahren zur Einführung von hydrophilen basischen Gruppen, so dass das Grundmaterial für das leukocytenentfernende Filtermedium der vorliegenden Erfindung sie auf der Oberfläche haben kann, sei ein Verfahren erwähnt, bei dem eine chemische Spezies, die eine oder mehrere hydrophile basische Gruppen aufweist, wie ein Hydroxyalkylamin, zum Beispiel Diethanolamin, mit einem Grundmaterial, das aktive Gruppen, wie Epoxygruppen, Carboxygruppen, Säurehalogenidgruppen oder dergleichen, auf der Oberfläche aufweist, umgesetzt wird, so dass die hydrophilen basischen Gruppen eingeführt werden. Wenn ein Grundmaterial verwendet wird, das keine solchen aktiven Gruppen auf der Oberfläche aufweist, können die aktiven Gruppen auf die Oberfläche des Grundmaterials aufgebracht werden, indem man ein Monomer, das die aktive Gruppe aufweist, wie Glycidyl(meth)acrylat oder (Meth)acrylsäure, durch Strahlungspfropfen mittels Gammastrahlen, Elektronenstrahlen oder dergleichen auf die Oberfläche des Grundmaterials aufbringt oder indem man ein Polymer unter Verwendung des oben genannten Monomers, das eine aktive Gruppe aufweist, als Monomerkomponente synthetisiert und die Oberfläche des Grundmaterials mit diesem Polymer beschichtet.
  • Von den verschiedenen, oben beschriebenen Verfahren sind das Pfropfverfahren und das Polymerbeschichtungsverfahren zu bevorzugen, da sie relativ leichte Arbeitsschritte umfassen. Insbesondere ist das Polymerbeschichtungsverfahren wegen seiner ausgezeichneten Produktivität ein besonders zu bevorzugendes Einführungsverfahren.
  • Die Dichte der auf die Oberfläche des leukocytenentfernenden Filtermediums der vorliegenden Erfindung aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen ist vorzugsweise kleiner als 1000 μÄq/m2 und nicht kleiner als 0,1 μÄq/m2. Wenn die Dichte der eingeführten hydrophilen basischen Gruppen kleiner als 0,1 μÄq/m2 ist, wird die Leukocytenentfernungsfähigkeit häufig in unerwünschter Weise verschlechtert. Wenn die Dichte andererseits größer als 1000 μÄq/m2 ist, nehmen die Kosten in unerwünschter Weise zu. Die Dichte ist besonders bevorzugt kleiner als 100 μÄq/m2 und nicht kleiner als 0,2 μÄq/m2, ganz besonders bevorzugt kleiner als 30 μÄq/m2 und nicht kleiner als 0,5 μÄq/m2.
  • Die Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums der vorliegenden Erfindung aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen kann nach einem wohlbekannten Verfahren, wie Röntgenphotoelektronenspektroskopie (XPS), Auger-Elektronenspektroskopie (AES), Sekundärionenmassenspektroskopie (SIMS), attenuierte Totalreflexion-Fourier-Transform-Infrarotspektroskopie (ATR-FTIR) oder dergleichen, gemessen werden. Es ist auch möglich, Substanzen mit einem geeigneten Verfahren aus der Oberfläche eines Filtermediums zu extrahieren und die in den extrahierten Substanzen enthaltenen hydrophilen basischen Gruppen mit einem wohlbekannten Verfahren, wie kernmagnetischer Resonanzspektroskopie (NMR), zu messen. Die Dichte der aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen kann auch unter Verwendung von Säure-Base-Titration oder eines Farbstoff-Adsorptionsverfahrens bestimmt werden. Von den obigen verschiedenen Verfahren ist das Farbstoff-Adsorptionsverfahren zu bevorzugen, da es leichte Arbeitsschritte umfasst. Das Farbstoff-Adsorptionsverfahren umfasst das Adsorbieren eines Farbstoffs, wie Trypan-Blau, das eine negative Ladung trägt, am basischen Teil der hydrophilen basischen Gruppe und das Bestimmen der Menge der auf der Oberfläche des Filtermediums vorhandenen hydrophilen basischen Gruppen anhand der Menge des adsorbierten Farbstoffs oder der durch die Adsorption verursachten Extinktionsänderung. Insbesondere wird eine wässrige Lösung, die Trypan-Blau enthält, und einen pH-Wert von etwa 6 aufweist, als ursprüngliche Lösung hergestellt. Dann wird das Filtermedium 16 Stunden lang oder länger bei Raumtemperatur durch Imprägnierung mit einer ausreichenden Menge der ursprünglichen Lösung mit der ursprünglichen Lösung in Kontakt gebracht. Anschließend wird die Extinktion des Überstands nach Imprägnierung des Filtermediums mit der ursprünglichen Lösung durch Verwendung von sichtbarem Licht mit einer Wellenlänge von 578 nm gemessen, und die Dichte der eingeführten hydrophilen basischen Gruppen pro Gewichtseinheit des Filtermediums oder pro Flächeneinheit des Filtermediums wird aus der Differenz zwischen den Extinktionen der ursprünglichen Lösung und des Überstands berechnet.
  • Wenn die Dichte der eingeführten hydrophilen basischen Gruppen pro Gewichtseinheit des Filtermediums unter Verwendung des Farbstoff-Adsorptionsverfahrens oder eines der verschiedenen anderen, oben beschriebenen Verfahren berechnet wird und der berechnete Wert in die Dichte der eingeführten hydrophilen basischen Gruppen pro Flächeneinheit des Filtermediums umgerechnet wird, kann die Umrechnung durchgeführt werden, indem man die Oberfläche pro Gewichtseinheit des Filtermediums durch ein Quecksilberinjektionsverfahren misst und die Dichte der eingeführten hydrophilen basischen Gruppen pro Gewichtseinheit des Filtermediums durch den gemessenen Wert dividiert. Die Oberfläche pro Gewichtseinheit des Filtermediums wird durch das Quecksilberinjektionsverfahren gemessen, indem man wie folgt vorgeht. Zuerst wird eine geeignete Menge einer Probe von jedem Teil des Filtermediums erhalten, der als im Wesentlichen homogen gilt, und das Gewicht (W) der Probe wird gemessen. Dann wird die Probe des Filtermediums in ein Quecksilberporosimeter (Poresizer Modell 9310 PC 2A der Shimadzu Corp. (Japan) oder eine Apparatur mit den gleichen Leistungsmerkmalen) eingesetzt, und ihre Oberfläche (A) wird in einem Druckbereich von 0,1 bis 180 psia gemessen. Die Oberfläche pro Gewichtseinheit des Filtermediums wird anhand der folgenden Gleichung (I) berechnet: Oberfläche pro Gewichtseinheit = A/W (m2/g) (I)
  • In diesem Fall wird die Probenahme in drei oder mehr Teilen des Filtermediums durchgeführt, und der Durchschnitt der für die Proben jeweils erhaltenen Oberflächenwerte wird als Oberfläche pro Gewichtseinheit des Filtermediums genommen.
  • Auf der Oberfläche des leukocytenentfernenden Filtermediums der vorliegenden Erfindung ist das Verhältnis der Anzahl der basischen Teile zur Anzahl der nichtionischen hydrophilen Teile vorzugsweise kleiner als 0,5 und nicht kleiner als 0,01. Wenn das Verhältnis der Anzahl der basischen Teile zur Anzahl der hydrophilen Teile kleiner als 0,01 ist, ist es in unerwünschter Weise fast unmöglich, eine ausreichende verbessernde Wirkung auf die Leukocytenentfernungsfähigkeit zu erhalten. Wenn das Verhältnis der Anzahl der basischen Teile zur Anzahl der hydrophilen Teile größer als 0,5 ist, nimmt die Anzahl der anhaftenden Roten Blutkörperchen häufig in unerwünschter Weise zu. Das Verhältnis der Anzahl der basischen Teile zur Anzahl der hydrophilen Teile beträgt besonders bevorzugt weniger als 0,3 und nicht weniger als 0,03. Wenn die nichtionischen hydrophilen Teile Polyethylenoxidketten sind, wird jede Polyethylenoxidkette unabhängig von der Zahl der Ethylenoxid-Repetiereinheiten oder der Länge der Polyethylenoxidkette als ein hydrophiler Teil betrachtet.
  • Als Grundmaterial, das das Filtermedium in der vorliegenden Erfindung bildet, seien Vliesstoffe, die durch ein Schmelzblasverfahren, ein Flash-Spinnverfahren, ein Papierherstellungsverfahren oder dergleichen hergestellt werden, sowie Faserprodukte, wie Papiere, Gewebe, Gewirke und dergleichen, poröse Materialien (schwammartige Strukturen) mit miteinander verbundenen Poren, poröse Membranen usw. erwähnt. Von diesen sind die Vliesstoffe und die porösen Materialien zu bevorzugen, da sie Strukturen haben, die eine effiziente Entfernung von Leukocyten ermöglichen.
  • Wenn das Grundmaterial, das das Filtermedium bildet, aus Fasern besteht, umfassen die Ausgangsfasern synthetische Fasern, wie Polyamide, Polyester, Polyacrylnitrile, Polytrifluorethylene, Polymethylmethacrylate, Polystyrole, Polyethylene, Polypropylene usw., regenerierte Fasern und gereinigte Fasern, wie Cellulose und dergleichen, halbsynthetische Fasern, wie Celluloseacetat und dergleichen, natürliche Fasern, wie Hanf, Baumwolle, Seide usw., und anorganische Fasern, wie Glasfasern. Von diesen sind die synthetischen Fasern, wie Polyester, Polypropylene, Polyethylene und dergleichen, und die regenerierten Fasern und gereinigten Fasern, wie Cellulose und dergleichen, wegen ihrer leichten Herstellung und leichten Handhabung zu bevorzugen.
  • Wenn die Faser zu dem Grundmaterial verarbeitet wird, kann das Grundmaterial außerdem entweder eines sein, das Fasern mit einem im Wesentlichen gleichmäßigen Faserdurchmesser umfasst, oder es kann eines sein, das ein Gemisch aus zwei oder mehr Arten von Fasern mit verschiedenen Faserdurchmessern ist, wie das in WO 97/23266 offenbarte Grundmaterial.
  • Der mittlere Faserdurchmesser der Fasern beträgt vorzugsweise weniger als 3,0 um und nicht weniger als 0,01 um. Wenn der mittlere Faserdurchmesser kleiner als 0,01 um ist, ist die mechanische Festigkeit der Fasern in unerwünschter Weise gering, so dass die stabile Produktion des Filtermediums fast unmöglich ist. Wenn der mittlere Faserdurchmesser 3,0 um oder mehr beträgt, ist die Kollisionshäufigkeit zwischen dem Filtermedium und den Leukocyten in unerwünschter Weise gering, so dass es unwahrscheinlich ist, dass die Wirkungen der vorliegenden Erfindung zur Geltung kommen. Der mittlere Faserdurchmesser ist besonders bevorzugt kleiner als 2,0 um und nicht kleiner als 0,1 um. Der hier genannte mittlere Faserdurchmesser der Fasern wird nach dem folgenden Verfahren bestimmt. Teile, die als im Wesentlichen homogen gelten, werden als Proben aus dem leukocytenentfernenden Filtermedium oder dem das Filter bildenden Filtergrundmaterial ausgewählt, und die Proben werden unter Verwendung eines Rasterelektronenmikroskops oder dergleichen photographiert. Bei der Probenahme wird das Filtermedium oder das Grundmaterial in Abschnitte von etwa 0,5 cm im Quadrat unterteilt, und sechs der Abschnitte werden zufällig als Proben ausgewählt. Drei oder mehr, vorzugsweise fünf oder mehr, Teile jedes ausgewählten Abschnitts werden bei einer Vergrößerung von 2000 oder mehr photographiert. Eine karierte transparente Folie, auf die längs und quer in regelmäßigen Abständen von ungefähr 0,1 mm bis 10 mm Linien gezeichnet sind, wird auf jedes Photo gelegt. Für eine Faser an einem Schnittpunkt zwischen der vertikalen Linie und der horizontalen Linie, d.h. einem Gitterpunkt, wird die Faserbreite in einer Richtung senkrecht zur Faserachse als Faserdurchmesser gemessen. Die Messung wird an 50 oder mehr Fasern, vorzugsweise 100 oder mehr Fasern, durchgeführt, um einen Mittelwert zu bilden, der als mittlerer Faserdurchmesser definiert ist. Daten, die zum Beispiel in den folgenden Fällen erhalten wurden, werden jedoch weggelassen: der Fall, bei dem eine Menge von Fasern miteinander überlappen und die Breite der Faser am Schnittpunkt nicht gemessen werden kann, da die anderen Fasern den Blick auf die Faser verdecken; und der Fall, bei dem eine Menge von Fasern durch Schmelzen oder dergleichen eine dicke Faser bilden.
  • Wenn das Grundmaterial, das das Filtermedium bildet, ein poröses Material oder eine poröse Membran ist, umfasst das Ausgangsmaterial dafür Polyacrylnitril, Polysulfon, Cellulose, Celluloseacetat, Polyvinylformal, Polyester, Polymethacrylat, Polyurethan usw. Die mittlere Porengröße des porösen Materials oder der porösen Membran beträgt vorzugsweise weniger als 30 um und nicht weniger als 1 um. Wenn die mittlere Porengröße kleiner als 1 um ist, wird die Behandlungszeit durch den Widerstand gegen Durchtritt von Erythrocyten leicht in unerwünschter Weise verlängert. Wenn die mittlere Porengröße größer als 30 um ist, nimmt die Kollisionshäufigkeit zwischen dem Filtermedium und den Leukocyten in unerwünschter Weise ab, und es ist unwahrscheinlich, dass die Wirkungen der vorliegenden Erfindung zur Geltung kommen. Die mittlere Porengröße ist vorzugsweise kleiner als 15 um und nicht kleiner als 5 um. Die hier genannte mittlere Porengröße ist ein Wert, der nach einem Quecksilberinjektionsverfahren gemessen wird. Im Einzelnen: Wenn die Menge des bei einem Quecksilberinjektionsdruck von 0,1 psia injizierten Quecksilbers als 0% und die Menge des bei einem Quecksilberinjektionsdruck von 180 psia injizierten Quecksilbers als 100% genommen wird, ist die mittlere Porengröße definiert als Porengröße, die einem Quecksilberinjektionsdruck entspricht, bei dem die Menge des injizierten Quecksilbers 50% beträgt.
  • Das zweite Ziel der vorliegenden Erfindung besteht darin, ein Verfahren zur Entfernung von Leukocyten in einem Blutzentrum mit sehr hoher Effizienz aus einer leukocytenhaltigen Flüssigkeit, wie einem Vollblutprodukt, einem Erythrocytenkonzentrat oder dergleichen, während die Anhaftung von Roten Blutkörperchen unterdrückt wird, anzugeben. Die Erfinder führten ernsthafte Untersuchungen durch und fanden in der Folge heraus, dass das obige zweite Ziel erreicht werden kann, indem man die leukocytenhaltige Flüssigkeit durch Verwendung einer Apparatur filtriert, die erhalten wird, indem man das leukocytenentfernende Filtermedium der vorliegenden Erfindung in geeigneter Weise in einen Behälter, der wenigstens einen Einlass und einen Auslass aufweist, packt und die filtrierte Flüssigkeit gewinnt.
  • Die leukocytenhaltige Flüssigkeit, die durch die Verwendung der Apparatur, die mit dem leukocytenentfernenden Filtermedium der vorliegenden Erfindung gepackt ist, filtriert werden soll, umfasst Vollblutprodukte, Erythrocytenkonzentrate, Thrombocytenkonzentrate usw. Durch Filtrieren einer solchen leukocytenhaltigen Flüssigkeit durch Verwendung der Apparatur, die mit dem leukocytenentfernenden Filtermedium der vorliegenden Erfindung gepackt ist, können Leukocyten effizient entfernt werden, und außerdem können befriedigende Ergebnisse einschließlich der Unterdrückung der Erythrocytenadhäsion im Falle eines Erythrocytenprodukts, das Rote Blutkörperchen in einer Konzentration von 1 × 109/ml oder mehr enthält, wie eines Vollblutprodukts oder eines Erythrocytenkonzentrats, erhalten werden.
  • Wenn von den Erythrocytenprodukten ein Erythrocytenkonzentrat mit einer Plasmaproteinkonzentration von 25 g/l oder weniger, insbesondere 10 g/l oder weniger, filtriert wird, indem man die Apparatur verwendet, die mit dem leukocytenentfernenden Filtermedium der vorliegenden Erfindung gepackt ist, wird insbesondere eine merkliche hemmende Wirkung auf die Adhäsion von Roten Blutkörperchen beobachtet.
  • Wenn Leukocyten gleichzeitig mit der Bluttransfusion an einem Bett in einem Krankenhaus entfernt werden, indem man die Apparatur verwendet, die mit dem leukocytenentfernenden Filtermedium der vorliegenden Erfindung gepackt ist, wird eine leukocytenhaltige Flüssigkeit vorzugsweise mit einer Geschwindigkeit von weniger als 15 g/min und nicht weniger als 1 g/min filtriert. Wenn Leukocyten andererseits in einem Blutzentrum oder dergleichen aus einem Blutprodukt für die Transfusion entfernt werden, indem man die Apparatur verwendet, die mit dem leukocytenentfernenden Filtermedium der vorliegenden Erfindung gepackt ist, wird diese leukocytenhaltige Flüssigkeit vorzugsweise mit einer Geschwindigkeit von weniger als 50 g/min und nicht weniger als 15 g/min filtriert.
  • Weiterhin können in einer Extrakorporalkreislauftherapie für Autoimmunkrankheiten usw. Leukocyten entfernt werden, indem man die Apparatur verwendet, die mit dem leukocytenentfernenden Filtermedium der vorliegenden Erfindung gepackt ist.
  • Wie oben beschrieben, hat das leukocytenentfernende Filtermedium der vorliegenden Erfindung eine sehr hohe Affinität zu Leukocyten und hat auch eine hemmende Wirkung auf die Adhäsion von Roten Blutkörperchen, so dass es eine hohe Leukocytenentfernungsfähigkeit und eine befriedigende Blutdurchflussfähigkeit erreichen kann. Da das Filtermedium außerdem eine ganz ausgezeichnete Blutverträglichkeit hat, kann es als Material für medizinische Geräte eine ideale Unbedenklichkeit gewährleisten.
  • Die vorliegende Erfindung wird unter Bezugnahme auf die folgenden Beispiele näher veranschaulicht, die nicht als den Umfang der Erfindung einschränkend angesehen werden sollten.
  • Beispiel 1
  • Glycidylmethacrylat wurde bis zu einer Konzentration von 1 mol/l zu Toluol (Reinheit 99% (GC), hergestellt von den Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) gegeben, und Diethanolamin wurde langsam bis zu einer Konzentration von 1,1 mol/l in die resultierende Lösung getropft, so dass kein Wärmeaufbau verursacht wurde, was ein Gesamtvolumen von 500 ml ergab. Hydrochinonmonomethylether (MEHQ) wurde als Polymerisationsinhibitor bis zu einer Konzentration von 0,005 mol/l hinzugefügt, und die Reaktion wurde 6 Stunden lang bei 60 °C durchgeführt. Nach Beendigung der Reaktion wurde die Reaktionslösung durch Vakuumdestillation, fraktionierte Extraktion, Flüssigchromatographie und dergleichen gereinigt. So wurde N,N-Bis(hydroxyethyl)amino-2-hydroxypropylmethacrylat (im Folgenden als GA bezeichnet), das eine Hydroxyethylaminogruppe als hydrophile basische Gruppe aufweist, synthetisiert.
  • Dann wurde in Ethanol (spezielle Qualität) ein Polymer durch herkömmliche radikalische Lösungspolymerisation aus dem obigen GA und 2-Nydroxyethylmethacrylat (im Folgenden als HEMA bezeichnet) synthetisiert. Was die Polymerisationsbedingungen betrifft, so wurde die Monomerkonzentration in Ethanol auf 1 mol/l eingestellt, V-65 (hergestellt von Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) wurde als Polymerisationsstarter bis zu einer Konzentration von 0,01 mol/l hinzugefügt, und die Polymerisation wurde 4,5 Stunden lang unter Stickstoff bei 50 °C durchgeführt. Nach Beendigung der Polymerisation wurde die Reaktionslösung tropfenweise in destilliertes Wasser gegeben, um ein Polymer auszufällen, das dann gefriergetrocknet wurde. Der GA-Gehalt des erhaltenen Polymers wurde durch Säure-Base-Titration gemessen, wobei sich zeigte, dass das Polymer etwa 5 Mol-% GA-Einheiten enthielt (dieses Polymer wird im Folgenden als HGA-5 bezeichnet).
  • Polyester-Vliesstoffe mit mittleren Faserdurchmessern von etwa 1,8 um bzw. etwa 1,2 um, die durch ein Schmelzblasverfahren hergestellt wurden, wurden in einen Behälter mit einem Bluteinlass und einem Blutauslass mit einer effektiven Filterquerschnittsfläche von 67 mm × 67 mm gepackt, so dass die Packungsdich te etwa 0,20 g/cm3 betragen könnte. Der Vliesstoff mit einem mittleren Faserdurchmesser von etwa 1,8 um wurde auf der Bluteinlassseite bis zu einer Dicke von etwa 1,5 mm platziert, und unterhalb dieses Vliesstoffs wurde der Vliesstoff mit einem mittleren Faserdurchmesser von etwa 1,2 um bis zu einer Dicke von etwa 3,0 mm platziert. Der Behälter wurde mit einer ethanolischen Lösung von HGA-5-Polymer mit einer Konzentration von 0,1 Gew.-% gefüllt und 1 Minute lang stehen gelassen. Dann wurde die überschüssige Lösung mit Stickstoffgas weggeblasen, und der Behälter wurde 16 Stunden lang im Vakuum bei 45 °C getrocknet, wobei eine Filterapparatur entstand. Das leukocytenentfernende Filtermedium in der hergestellten Filterapparatur hatte die hydrophilen basischen Gruppen auf seiner Oberfläche mit einer mittleren Aufbringungsdichte von 1,7 μÄq/m2.
  • Nach dem Zentrifugieren von 456 ml Vollblut, das durch Zugabe von 56 ml einer CPD-Lösung (Zusammensetzung: Natriumcitrat 26,3 g/l, Zitronensäure 3,27 g/l, Glucose 23,20 g/l, Natriumdihydrogenphosphat-Dihydrat 2,51 g/l) als Antikoagulans zu 400 ml Blut hergestellt wurde, wurden das Plasma und die Leukocytenschicht entfernt, und 95 ml einer MAP-Lösung (Zusammensetzung: Natriumcitrat 1,50 g/l, Zitronensäure 0,20 g/l, Glucose 7,21 g/l, Natriumdihydrogenphosphat-Dihydrat 0,94 g/l, Natriumchlorid 4,97 g/l, Adenin 0,14 g/l, Mannit 14,57 g/l) als Erythrocytenkonservierungslösung wurden zu dem Rückstand gegeben, um ein Erythrocytenkonzentrat (Hämatokrit etwa 64%, Plasmaproteinkonzentration etwa 4 g/l) herzustellen, das 10 Tage lang bei 4 °C aufbewahrt wurde. Um winzige Aggregate zu entfernen, die in dem Erythrocytenkonzentrat enthalten waren, wurde es danach filtriert, wobei man einen Filter verwendete, der erhalten wurde, indem man Vliesstoff mit einem mittleren Faserdurchmesser von etwa 33 um und Vliesstoff mit einem mittleren Faserdurchmesser von etwa 12 um bis zu Dicken von etwa 1,2 mm bzw. etwa 2,3 mm von der Bluteinlassseite zur Blutauslassseite in einem Behälter, der eine effektive Filterquerschnittsfläche von 67 mm × 67 mm hatte, platzierte, so dass die Packungsdichte etwa 0,25 g/cm3 betrug.
  • Nachdem man 325 g des von winzigen Aggregaten freien Erythrocytenkonzentrats stehen gelassen hatte, bis es Raumtemperatur von 24 °C erreichte, wurde das Konzentrat durch den mit HGA-5 beschichteten Filter mit einer statischen Druckhöhe von 1 m filtriert. Vor Beginn der Filtration wurde der Filter über eine Blutleitung mit einem Blutbeutel, der das Erythrocytenkonzentrat enthielt, verbunden, und dann wurde der Blutbeutel durch Quetschen von Hand zusammengedrückt, damit sich der Filter mit dem Blut füllte. Nachdem der Filter so mit dem Blut gefüllt worden war, wurde die Filtration durchgeführt, bis das Blut aus dem Beutel geleert war, und das filtrierte Blut wurde aufgefangen. In diesem Fall war die Filtrationszeit definiert als die Zeit, die das Blut benötigte, um sich aus dem Beutel zu entleeren, nachdem das Blut durch den Auslass des Filters zu fließen begonnen hatte.
  • Die Leukocytenkonzentrationen im Erythrocytenkonzentrat vor der Filtration (im Folgenden als Flüssigkeit vor der Filtration bezeichnet) und in dem aufgefangenen Erythrocytenkonzentrat (im Folgenden als aufgefangene Flüssigkeit bezeichnet), das Volumen der Flüssigkeit vor der Filtration und das der aufgefangenen Flüssigkeit wurden gemessen, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit wurde gemäß der folgenden Gleichung (II) berechnet: Leukocytenentfernungsfähigkeit = – log {(Leukocytenkonzentration in aufgefangener Flüssigkeit × Volumen der aufgefangenen Flüssigkeit)/(Leukocytenkonzentration in Flüssigkeit vor der Filtration x Volumen der Flüssigkeit vor der Filtration)} (II)
  • Als Volumina der Flüssigkeit vor der Filtration und der aufgefangenen Flüssigkeit wurden die Werte genommen, die durch Dividieren der jeweiligen Gewichte durch die Dichte (1,075 g/ml) des Blutprodukts erhalten wurden. Die Leukocytenkonzentration der Flüssigkeit vor der Filtration wurde gemessen, indem man die Flüssigkeit vor der Filtration mit Türk-Lösung auf das Zehnfache verdünnte, die resultierende Verdünnung in ein Hämocytometer des Bürker-Türk-Typs goss und die Leukocyten unter einem Lichtmikroskop zählte. Die Leukocytenkonzentration der aufgefangenen Flüssigkeit wurde nach dem folgenden Verfahren gemessen. Die aufgefangene Flüssigkeit wurde mit Leukoplate-Lösung (hergestellt von SOBIODA) auf das Fünffache verdünnt. Die verdünnte Lösung wurde gründlich gemischt und dann 6 bis 10 Minuten lang bei Raumtemperatur stehen gelassen. Die verdünnte Lösung wurde 6 Minuten lang mit 2750 × g zentrifugiert, und der Überstand wurde entfernt, so dass das Gewicht des Rückstands auf 1,02 g eingestellt wurde. Die so erhaltene Probenflüssigkeit wurde gründlich gemischt und dann in ein Hämocytometer des Nageotte-Typs gegossen, und die Leukocyten wurden unter einem Lichtmikroskop gezählt, wodurch die Leukocytenkonzentration gemessen wurde.
  • Als Ergebnis wurde gefunden, dass die Filtrationszeit 10,4 Minuten betrug und die Leukocytenentfernungsfähigkeit 4,45 betrug. Das Filtermedium nach der Filtration des Bluts wurde gründlich mit physiologischer Kochsalzlösung gewaschen, mit 0,2% Glutaraldehyd fixiert und dann gefriergetrocknet. Das so behandelte Filtermedium nach der Filtration des Bluts wurde mit einem Rasterelektronenmikroskop beobachtet, und es zeigte sich, dass fast kein Rotes Blutkörperchen daran haftete.
  • Beispiel 2
  • Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass ein Polymer, das etwa 25 Mol-% GA-Einheiten enthielt (im Folgenden als HGA-25 bezeichnet), durch dasselbe Syntheseverfahren wie in Beispiel 1 erhalten wurde und der Filter nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 mit HGA-25 beschichtet wurde. Die mittlere Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen betrug 7,3 μÄq/m2, die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit betrug 10,2 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 5,24. An dem Filtermedium hafteten nach der Filtration des Bluts fast keine Roten Blutkörperchen.
  • Beispiel 3
  • Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass ein Polymer, das etwa 40 Mol-% GA-Einheiten enthielt (im Folgenden. als HGA-40 bezeichnet), durch dasselbe Syntheseverfahren wie in Beispiel 1 erhalten wurde und der Filter nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 mit HGA-40 beschichtet wurde. Die mittlere Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen betrug 10,6 μÄq/m2, die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit betrug 10,9 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 5,12. An dem Filtermedium hafteten nach der Filtration des Bluts fast keine Roten Blutkörperchen.
  • Beispiel 4
  • Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass ein Polymer, das etwa 70 Mol-% GA-Einheiten enthielt (im Folgenden als HGA-70 bezeichnet), durch dasselbe Syntheseverfahren wie in Beispiel 1 erhalten wurde und der Filter nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 mit HGA-70 beschichtet wurde. Die mittlere Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen betrug 15,4 μÄq/m2, die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit betrug 11,5 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 4,93. An dem Filtermedium hafteten nach der Filtration des Bluts fast keine Roten Blutkörperchen.
  • Vergleichsbeispiel 1
  • Ein Polymer wurde nach demselben Polymerisationsverfahren wie in Beispiel 1 aus N,N-Diethylaminoethylmethacrylat (im Folgenden als DE bezeichnet) und HEMA synthetisiert. Der DE-Gehalt des erhaltenen Polymers betrug etwa 5 Mol-% (dieses Polymer wird im Folgenden als HDE-5 bezeichnet). Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass der Filter nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 mit diesem Polymer beschichtet wurde. Die mittlere Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten basischen Gruppen (Diethylaminogruppen) betrug 1,8 μÄq/m2, die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit betrug 11,3 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 3,41. An dem Filtermedium hafteten nach der Filtration des Bluts fast keine Roten Blutkörperchen.
  • Vergleichsbeispiel 2
  • Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass ein Polymer, das etwa 25 Mol-% DE-Einheiten enthielt (im Folgenden als HDE-25 bezeichnet), durch dasselbe Polymerisationsverfahren wie in Vergleichsbeispiel 1 erhalten wurde und der Filter nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 mit HDE-25 beschichtet wurde. Die mittlere Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten basischen Gruppen betrug 8,1 μÄq/m2, die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit betrug 35,7 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 2,84. Es wurden Rote Blutkörperchen beobachtet, die nach der Filtration des Bluts an dem Filtermedium hafteten.
  • Vergleichsbeispiel 3
  • Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass ein Polymer, das etwa 40 Mol-% DE-Einheiten enthielt (im Folgenden als HDE-40 bezeichnet), durch dasselbe Polymerisationsverfahren wie in Vergleichsbeispiel 1 erhalten wurde und der Filter nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 mit HDE-40 beschichtet wurde. Die mittlere Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten basischen Gruppen betrug 12,3 μÄq/m2, die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit betrug 62,3 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 2,90. Es wurde eine große Menge von Roten Blutkörperchen beobachtet, die nach der Filtration des Bluts an dem Filtermedium hafteten.
  • Vergleichsbeispiel 4
  • Ein Polymer wurde nach demselben Polymerisationsverfahren wie in Beispiel 1 aus N,N-Diethylamino-2-hydroxypropylmethacrylat (im Folgenden als DP be zeichnet) und HEMA synthetisiert. Der DP-Gehalt des erhaltenen Polymers betrug etwa 40 Mol-% (dieses Polymer wird im Folgenden als HDP-40 bezeichnet). Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass der Filter nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 mit diesem Polymer beschichtet wurde. So wurden hydrophile basische Gruppen, die keinen hydrophilen Teil am Ende aufwiesen, mit einer mittleren Aufbringungsdichte von 12,0 μÄq/m2 auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebracht. Die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit betrug 54,5 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 2,73. Es wurde eine große Menge von Roten Blutkörperchen beobachtet, die nach der Filtration des Bluts an dem Filtermedium hafteten.
  • Vergleichsbeispiel 5
  • Durch denselben Filter wie in Beispiel 1, außer dass er keine Polymerbeschichtung aufwies, wurde dasselbe Erythrocytenkonzentrat nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 filtriert. Als Ergebnis betrug die Blutfiltrationszeit 12,2 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 3,23. An dem Filtermedium hafteten nach der Filtration des Bluts fast keine Roten Blutkörperchen.
  • Tabelle 1 fasst die in Beispiel 1 bis 4 und Vergleichsbeispiel 1 bis 5 erhaltenen Ergebnisse zusammen.
    Figure 00290001
  • Beispiel 5
  • N-Methyl-N-hydroxyethylamino-2-hydroxypropylmethacrylat (im Folgenden als GM bezeichnet) wurde nach demselben Verfahren wie bei der GA-Synthese in Beispiel 1 aus Glycidylmethacrylat und N-Methyl-N-hydroxyethylamin synthetisiert.
  • Ein Polymer wurde nach demselben Polymerisationsverfahren wie in Beispiel 1 aus GM und HEMA synthetisiert. Der GM-Gehalt des erhaltenen Polymers betrug etwa 25 Mol-% (dieses Polymer wird im Folgenden als HGMA-25 bezeichnet). Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass der Filter nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 mit diesem Polymer beschichtet wurde. Die mittlere Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen (N-Methyl-N-hydroxyethylamino-Gruppen) betrug 7,7 μÄq/m2, die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit betrug 11,8 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 4,54. An dem Filtermedium hafteten nach der Filtration des Bluts fast keine Roten Blutkörperchen.
  • Beispiel 6
  • Ein Polymer wurde nach demselben Polymerisationsverfahren wie in Beispiel 1 aus GA, HEMA und Methylmethacrylat (im Folgenden als MMA bezeichnet) synthetisiert. Das erhaltene Polymer hatte einen GA-Gehalt von etwa 20 Mol-% und einen HEMA- und MMA-Gehalt von jeweils etwa 40 Mol-%, gemessen durch Säure-Base-Titration, kernmagnetische Resonanzspektroskopie (NMR) und Elementaranalyse (dieses Polymer wird im Folgenden als HGMA-20 bezeichnet). Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass ein Filter nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 mit diesem Polymer beschichtet wurde. Die mittlere Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen (N-Methyl-N-hydroxyethylamino-Gruppen) betrug 6,5 μÄq/m2, die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit betrug 13,4 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 4,87. An dem Filtermedium hafteten nach der Filtration des Bluts fast keine Roten Blutkörperchen.
  • Beispiel 7
  • Zu einer Lösung von Triethylenglycolmonomethylether in Pyridin, deren Konzentration auf 0,1 mol/l eingestellt worden war, wurde Thionylchlorid langsam unter Kühlung bis zu einer Konzentration von 0,13 mol/l gegeben, und das resultierende Gemisch wurde etwa 1 Stunde lang bei Raumtemperatur gerührt. Wasser und verdünnte Schwefelsäure wurden unter Kühlung hinzugefügt, um das überschüssige Thionylchlorid zu zersetzen, und danach wurde das Reaktionsprodukt mit Chloroform extrahiert. Die Extraktlösung wurde mit einer gesättigten wässrigen Natriumhydrogencarbonatlösung gewaschen und dann unter reduziertem Druck destilliert. So wurde eine Verbindung synthetisiert, die durch Ersatz der terminalen Hydroxygruppe durch ein Chloratom gebildet wurde. N-Methylallylamin (0,1 mol) wurde in 50 ml absolutem Ethanol gelöst, und die resultierende Lösung wurde gekühlt, und dann wurde die oben genannte chlorierte Verbindung (0,1 mol) hinzugefügt, und es wurde 30 Minuten lang gerührt, um ein polymerisierbares Monomer zu synthetisieren, das eine Ethylenoxidkette als hydrophilen Teil und eine Aminogruppe als basischen Teil aufwies (dieses Monomer wird im Folgenden als EA bezeichnet).
  • Figure 00310001
  • Ein Polymer wurde nach demselben Polymerisationsverfahren wie in Beispiel 1 aus EA und HEMA synthetisiert. Der EA-Gehalt des erhaltenen Polymers betrug etwa 25 Mol-% (dieses Polymer wird im Folgenden als HEA-25 bezeichnet). Das Verfahren von Beispiel 1 wurde wiederholt, außer dass ein Filter nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 mit diesem Polymer beschichtet wurde. Die mittlere Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen betrug 6,3 μÄq/m2, die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit betrug 12,1 Minuten, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 4,07. An dem Filtermedium hafteten nach der Filtration des Bluts fast keine Roten Blutkörperchen.
  • Beispiel 8
  • Polyestervlies (5 g) mit einem mittleren Faserdurchmesser von 1,2 μm wurde in eine 10%ige wässrige Lösung von tertiärem Butanol (300 ml), die 6 ml Methacrylsäure enthielt, eingetaucht. Diese Probelösung wurde mit etwa 1 kGy Gammastrahlen bestrahlt, um die Methacrylsäure durch Pfropfpolymerisation auf die Oberfläche des Vliesstoffs aufzubringen. Der mit Gammastrahlen bestrahlte Vliesstoff wurde 10 Minuten lang bei Raumtemperatur unter Schütteln mit Methanol und dann 2 Stunden lang unter Schütteln mit warmem Wasser von 40 °C gewaschen. Dieser Vliesstoff, der der Pfropfpolymerisation unterzogen worden war, wurde 16 Stunden lang bei 40 °C im Vakuum getrocknet und dann in eine Chloroformlösung eingetaucht, die Triethanolamin in einer Konzentration von 0,02 mol/l enthielt. Schwefelsäure wurde hinzugefügt, und das resultierende Gemisch wurde 6 Stunden lang unter Rückfluss erhitzt. Durch das obige Verfahren wird eine Veresterung zwischen Carboxygruppen auf der Oberfläche des Vliesstoffs und den Hydroxygruppen von Triethanolamin bewirkt, wobei ein leukocytenentfernendes Filtermedium hergestellt wurde, das hydrophile basische Gruppen (Bis(hydroxyethyl)aminogruppen) auf der Oberfläche aufwies. Die Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten hydrophilen basischen Gruppen betrug 6,9 μÄq/m2.
  • Das erhaltene Filtermedium wurde bis zu einer Dicke von 3,0 mm und mit einer Packungsdichte von etwa 0,20 g/cm3 in einen Behälter mit einer effektiven Filterquerschnittsfläche von 67 mm × 67 mm gepackt. Auf das Filtermedium wurde ein Vliesstoff mit einem mittleren Faserdurchmesser von etwa 1,8 um, der keiner Pfropfpolymerisation unterzogen worden war, bis zu einer Dicke von 1,5 mm in den Behälter gepackt, um eine Filterapparatur herzustellen.
  • Unter Verwendung dieser Filterapparatur wurde dasselbe Erythrocytenkonzentrat nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 filtriert, und für die für das Filtrieren des Bluts erforderliche Zeit wurden 12,3 Minuten gefunden, und die Leukocytenentfernungsfähigkeit betrug 4,39. An dem Filtermedium hafteten nach der Filtration des Bluts fast keine Roten Blutkörperchen.
  • Beispiel 9
  • Dieselben Polyestervliesstoffe mit mittleren Faserdurchmessern von 1,8 um bzw. 1,2 um wie in Beispiel 1 wurden mit einer Packungsdichte von 0,24 g/cm3 in einen Behälter mit einer effektiven Filterquerschnittsfläche von 67 mm × 67 mm gepackt. Der Vliesstoff mit einem mittleren Faserdurchmesser von 1,8 um wurde auf der Bluteinlassseite bis zu einer Dicke von etwa 0,5 mm platziert, und unterhalb dieses Vliesstoffs wurde der Vliesstoff mit einem mittleren Faserdurchmesser von 1,2 um bis zu einer Dicke von etwa 4,7 mm platziert. Der Behälter wurde mit einer 0,5-Gew.-%igen ethanolischen Lösung von HGA-25-Polymer gefüllt und 1 Minute lang stehen gelassen. Dann wurde die überschüssige Lösung mit Stickstoffgas weggeblasen, und der Behälter wurde 16 Stunden lang im Vakuum bei 45 °C getrocknet, wobei eine Filterapparatur entstand. Das leukocytenentfernende Filtermedium in der so hergestellten Filterapparatur hatte hydrophile basische Gruppen auf seiner Oberfläche mit einer mittleren Aufbringungsdichte von 16,8 μÄq/m2.
  • Winzige Aggregate, die in CPD-haltigem frischem humanem Vollblut (Hämatokrit 39%) enthalten waren, das nach der Blutentnahme 16 Stunden lang bei Raumtemperatur konserviert wurde, wurden nach demselben Verfahren wie in Beispiel 1 entfernt. Dann wurden 515 g des humanen Vollbluts durch Verwendung der hergestellten Filterapparatur mit einer statischen Druckhöhe von 0,7 m filtriert. Die Temperatur des CPD-haltigen frischen humanen Vollbluts unmittelbar vor Beginn der Filtration betrug 25 °C. Die Konzentration an aktiviertem Komplement C3a und die Menge an Faktor VIII als Blutgerinnungsfaktor wurden neben der Blutfiltrationszeit und der Leukocytenentfernungsfähigkeit gemessen.
  • Als Ergebnis wurde gefunden, dass die Filtrationszeit 19,6 Minuten und die Leukocytenentfernungsfähigkeit 4,18 betrug. Die Konzentration von C3a und die Menge an Faktor VIII in der aufgefangenen Flüssigkeit waren von denjenigen in der Flüssigkeit vor der Filtration nicht verschieden.
  • Vergleichsbeispiel 6
  • Unter Verwendung derselben Filterapparatur wie in Beispiel 9, außer dass sie durch Beschichtung mit einer 0,5-Gew.-%igen ethanolischen Lösung von HDE-25-Polymer erhalten wurde, wurde CPD-haltiges frisches humanes Vollblut nach demselben Verfahren wie in Beispiel 9 filtriert. Die mittlere Dichte der auf die Oberfläche des Filtermediums aufgebrachten basischen Gruppen betrug 18,6 μÄq/m2.
  • Als Ergebnis betrug die Filtrationszeit 24,5 Minuten und die Leukocytenentfernungsfähigkeit 3,73. Im Vergleich zu der Flüssigkeit vor der Filtration war die Konzentration an C3a in der aufgefangenen Flüssigkeit ungefähr verdoppelt, und die Menge an Faktor VIII war um etwa 30% gesenkt.

Claims (20)

  1. Leukocytenentfernendes Filtermedium, das Leukocyten aus einer leukocytenhaltigen Flüssigkeit entfernt und wenigstens auf seiner Oberfläche hydrophile basische Gruppen aufweist, die durch die folgende Formel (1) dargestellt werden und wenigstens einen nichtionischen hydrophilen Teil und wenigstens einen basischen Teil enthalten, dadurch gekennzeichnet, dass sich der bzw. die nichtionischen hydrophilen Teile im terminalen Bereich befinden, der in der Formel, die die chemische Struktur der Filtermediumoberfläche darstellt, einen größeren Abstand von dem Teil, der die hydrophile basische Gruppe trägt, hat als der bzw. die basischen Teile:
    Figure 00350001
    wobei R1 eine Struktur ist, die einen hydrophilen Teil enthält, und R2 eine Struktur, die einen hydrophilen Teil enthält, oder eine Struktur, die keinen hydrophilen Teil enthält, wie eine Alkylgruppe oder Wasserstoff, ist.
  2. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 1, wobei sich der bzw. die hydrophilen Teile am äußersten Ende der hydrophilen basischen Gruppe befinden.
  3. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 1 oder 2, wobei es sich bei dem bzw. den hydrophilen Teilen um eine Hydroxygruppe handelt.
  4. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 1, wobei es sich bei dem bzw. den basischen Teilen um eine sekundäre Aminogruppe und/oder eine tertiäre Aminogruppe handelt.
  5. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 1, wobei die hydrophilen basischen Gruppen Hydroxyalkylaminogruppen sind.
  6. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 5, wobei die Zahl der Kohlenstoffatome des Alkylteils der Hydroxyalkylaminogruppe nicht größer als 10 und nicht kleiner als 1 ist.
  7. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 1, auf dessen Oberfläche ein polymerisierbares Monomer eingeführt ist, das eine oder mehrere der hydrophilen basischen Gruppen aufweist.
  8. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 1, auf dessen Oberfläche ein Polymer eingeführt ist, das Einheiten eines polymerisierbaren Monomers umfasst, welches eine oder mehrere der hydrophilen basischen Gruppen aufweist.
  9. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 8, wobei das Polymer ein Copolymer des polymerisierbaren Monomers, das eine oder mehrere der hydrophilen basischen Gruppen aufweist, und eines oder mehrerer anderer polymerisierbarer Monomere, die keine hydrophile basische Gruppe enthalten, ist.
  10. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß einem der Ansprüche 7 bis 9, wobei das polymerisierbare Monomer, das eine oder mehrere der hydrophilen basischen Gruppen enthält, ein (Meth)acrylsäure-Derivat ist.
  11. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 7 oder 8, wobei das polymerisierbare Monomer, das eine oder mehrere der hydrophilen basischen Gruppen aufweist, oder das Polymer, das Einheiten eines polymerisierbaren Monomers umfasst, welches eine oder mehrere der hydrophilen basischen Gruppen aufweist, durch ein Pfropfverfahren und/oder ein Beschichtungsverfahren eingeführt ist.
  12. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 1, auf dessen Oberfläche hydrophile basische Gruppen durch Bindung einer chemischen Spezies, die die hydrophilen basischen Gruppen enthält, an aktive Gruppen auf der Oberfläche eines Grundmaterials, welches das Filtermedium bildet, eingeführt sind.
  13. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 12, wobei die chemische Spezies, die die hydrophilen basischen Gruppen enthält, ein Hydroxyalkylamin ist.
  14. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 12, wobei die aktiven Gruppen wenigstens einer Art sind, die aus der Gruppe ausgewählt ist, die aus Epoxygruppen, Carboxygruppen und Säurehalogeniden besteht.
  15. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 1, wobei die Dichte der hydrophilen basischen Gruppen, die pro Flächeneinheit eingeführt sind, kleiner als 1000 μÄq/m2 und nicht kleiner als 0,1 μÄq/m2 ist.
  16. Leukocytenentfernendes Filtermedium gemäß Anspruch 1, wobei das Verhältnis der Zahl der basischen Teile zur Zahl der hydrophilen Teile kleiner als 0,5 und nicht kleiner als 0,01 ist.
  17. Verfahren zur Entfernung von Leukocyten in einem Blutzentrum aus einer leukocytenhaltigen Flüssigkeit, umfassend das Verwenden einer Vorrichtung, die wenigstens 1) einen Einlass, 2) einen Filter, der das leukocyten entfernende Filtermedium gemäß Anspruch 1 umfasst, und 3) einen Auslass umfasst, das Einführen der leukocytenhaltigen Flüssigkeit durch den Einlass und das Gewinnen der durch den Filter filtrierten Flüssigkeit aus dem Auslass.
  18. Verfahren zur Entfernung von Leukocyten gemäß Anspruch 17, wobei die leukocytenhaltige Flüssigkeit ein Erythrocytenprodukt ist, das Erythrocyten in einer Konzentration von 1 × 109 Zellen/ml oder mehr enthält.
  19. Verfahren zur Entfernung von Leukocyten gemäß Anspruch 18, wobei das Erythrocytenprodukt ein Erythrocytenkonzentrat ist.
  20. Verfahren zur Entfernung von Leukocyten gemäß Anspruch 19, wobei das Erythrocytenkonzentrat eine Plasmaproteinkonzentration von 25 g/l oder weniger hat.
DE69834651T 1997-08-28 1998-08-25 Filtermaterial zur entfernung von weissen blutkörperchen Expired - Fee Related DE69834651T2 (de)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP24781297 1997-08-28
JP24781297 1997-08-28
PCT/JP1998/003762 WO1999011304A1 (fr) 1997-08-28 1998-08-25 Substance filtrante recuperant les leucocytes

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE69834651D1 DE69834651D1 (de) 2006-06-29
DE69834651T2 true DE69834651T2 (de) 2007-04-26

Family

ID=17169039

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE69834651T Expired - Fee Related DE69834651T2 (de) 1997-08-28 1998-08-25 Filtermaterial zur entfernung von weissen blutkörperchen

Country Status (10)

Country Link
US (1) US6352642B1 (de)
EP (1) EP1016426B1 (de)
JP (1) JP4271265B2 (de)
KR (1) KR100343092B1 (de)
CN (1) CN1177620C (de)
AT (1) ATE326990T1 (de)
AU (1) AU726974B2 (de)
CA (1) CA2301726C (de)
DE (1) DE69834651T2 (de)
WO (1) WO1999011304A1 (de)

Families Citing this family (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR100463615B1 (ko) * 1999-11-01 2004-12-29 아사히 카세이 메디칼 가부시키가이샤 백혈구 선택 제거 필터
JP2002161048A (ja) * 2000-11-24 2002-06-04 Terumo Corp 血小板放出因子調製用フィルター及び血小板放出因子の調製方法
CN1479592A (zh) * 2000-12-05 2004-03-03 ���ռ����ɷ����޹�˾ 使红细胞沉降的方法
JP4252449B2 (ja) 2001-07-31 2009-04-08 旭化成メディカル株式会社 白血球除去フィルター素材コート用ポリマー及びフィルター材
EP1452193B1 (de) * 2001-12-03 2009-02-18 Asahi Kasei Medical Co., Ltd. Filter für die selektive eliminierung von leukozyten
WO2003106518A1 (ja) * 2002-06-17 2003-12-24 旭メディカル株式会社 生体適合性ポリマーおよびそれを用いた白血球選択除去フィルター材
EP1555027A4 (de) * 2002-10-16 2008-06-04 Asahi Kasei Medical Co Ltd PLASMAPRûPARAT ODER SERUMPRûPARAT UND VERFAHREN ZU SEINER HERSTELLUNG
CN101862564B (zh) * 2010-03-16 2012-03-21 苏州市玮琪生物科技有限公司 一种微量血样预处理***及其制备工艺
TWI410269B (zh) * 2010-09-16 2013-10-01 私立中原大學 白血球過濾材料及其過濾方法
EP2495025A1 (de) * 2011-03-04 2012-09-05 Fresenius Medical Care Deutschland GmbH Filter zur Entfernung von Mikrovesikeln aus biologischen Flüssigkeiten sowie Verfahren und Vorrichtungen damit
CA2900670C (en) * 2013-02-18 2021-09-14 Wisconsin Alumni Research Foundation Methods and compositions for protein concentration
TWI605865B (zh) * 2013-06-07 2017-11-21 Nissan Chemical Ind Ltd Blood filter and its manufacturing method
US9782707B2 (en) 2014-03-24 2017-10-10 Fenwal, Inc. Biological fluid filters having flexible walls and methods for making such filters
US10376627B2 (en) 2014-03-24 2019-08-13 Fenwal, Inc. Flexible biological fluid filters
US9796166B2 (en) 2014-03-24 2017-10-24 Fenwal, Inc. Flexible biological fluid filters
US9968738B2 (en) 2014-03-24 2018-05-15 Fenwal, Inc. Biological fluid filters with molded frame and methods for making such filters
US10159778B2 (en) 2014-03-24 2018-12-25 Fenwal, Inc. Biological fluid filters having flexible walls and methods for making such filters
JP2017525489A (ja) 2014-08-26 2017-09-07 スリーエム イノベイティブ プロパティズ カンパニー 炎症性メディエーター並びに顆粒球及び単球を血液から除去するためのシステム
CN106117590A (zh) * 2016-06-22 2016-11-16 广州新克力生物科技有限公司 一种白细胞过滤膜的改性方法
CN106117580A (zh) * 2016-06-23 2016-11-16 广州新克力生物科技有限公司 一种用于滤除白细胞的滤膜改性剂及其改性方法
CA3034065C (en) * 2016-08-18 2021-07-27 Asahi Kasei Medical Co., Ltd. Filter element for blood processing filter, blood processing filter and leukocyte removal method

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4711793A (en) * 1980-10-27 1987-12-08 Cuno Incorporated Process for charge modifying a microphorous membrane
DE3785993T2 (de) 1986-03-28 1994-02-10 Asahi Medical Co Filtermedium zur selektiven beseitigung von leucocyten.
CA1335713C (en) 1988-02-17 1995-05-30 David Boris Pall Device and method for separating leucocytes from platelet concentrate
CA1329559C (en) * 1988-03-03 1994-05-17 Keiji Naoi Leukocyte separator and method of making the same
US5344561A (en) * 1989-05-09 1994-09-06 Pall Corporation Device for depletion of the leucocyte content of blood and blood components
US5217627A (en) * 1990-11-06 1993-06-08 Pall Corporation System and method for processing biological fluid
JP3124565B2 (ja) 1991-02-22 2001-01-15 テルモ株式会社 白血球除去フィルターおよび白血球除去装置
US5498336A (en) * 1991-02-22 1996-03-12 Terumo Kabushiki Kaisha Leukocyte-removing filter and leukocyte-removing apparatus furnished therewith
EP0561379B1 (de) * 1992-03-17 1998-07-08 ASAHI MEDICAL Co., Ltd. Filtermedium mit begrenzter negativer Oberflächenladung für die Behandlung von Blutmaterial
US5547576A (en) * 1992-07-06 1996-08-20 Terumo Kabushiki Kaisha Pathogenic substance removing material and a blood filter containing the material
JP3657013B2 (ja) * 1992-12-28 2005-06-08 旭化成メディカル株式会社 白血球除去フィルター材料、白血球除去装置および白血球除去方法
DE69314154T2 (de) 1992-12-28 1998-04-30 Asahi Medical Co Filtermaterial, Vorrichtung und Verfahren zum Abtrennen von Leukozyten
ES2259947T3 (es) * 1996-07-08 2006-11-01 Pall Corporation Membrana polimera con carga positiva.

Also Published As

Publication number Publication date
EP1016426B1 (de) 2006-05-24
ATE326990T1 (de) 2006-06-15
CN1177620C (zh) 2004-12-01
CA2301726C (en) 2003-06-10
EP1016426A1 (de) 2000-07-05
CN1268893A (zh) 2000-10-04
JP4271265B2 (ja) 2009-06-03
EP1016426A4 (de) 2001-08-22
US6352642B1 (en) 2002-03-05
CA2301726A1 (en) 1999-03-11
KR20010023349A (ko) 2001-03-26
AU726974B2 (en) 2000-11-30
WO1999011304A1 (fr) 1999-03-11
DE69834651D1 (de) 2006-06-29
KR100343092B1 (ko) 2002-07-05
AU8750498A (en) 1999-03-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69834651T2 (de) Filtermaterial zur entfernung von weissen blutkörperchen
DE68902698C5 (de) Verfahren zur Trennung von Blut in Blutkomponenten und Einheit zur Trennung von Blutkomponenten.
DE60131696T2 (de) Blutfilter mit (Meth)Acrylcopolymerisate enthaltend Glykolether- und Aminoalkyl-Einheiten
DE3115608C2 (de) Vorrichtung für die Adsorption von Blutproteinen
DE69133218T2 (de) Methode und filtersystem zur entfernung von leukozyten
DE69629280T2 (de) Filtrationsmittel zum entfernen von leukocyten
DE69634829T2 (de) Verfahren und vorrichtung zur leukozytenfiltration
DE69831077T2 (de) Filtermedium zur trennung von leukozyten
DE3125980A1 (de) "polymethylmethacrylatmembran"
DE60035219T2 (de) Filter für die selektive entfernung von leukozyten
KR0129797B1 (ko) 백혈구를 제거하기 위한 여과재, 장치 및 방법
DE60027291T2 (de) Elektrisch geladene membran
DE3225603A1 (de) Kugelfoermige poroese granulate mit einer silanolgruppe auf ihrer oberflaeche sowie ihre verwendung zur herstellung einer blutreinigungsvorrichtung
EP1590065A1 (de) Filter zur abtrennung von leukozyten aus vollblut/oder blutpräparaten, verfahren zur herstellung dieser filter, vorrichtung und verwendung
KR20040024877A (ko) 백혈구 제거 필터 소재 코팅용 폴리머 및 필터재
DE69919831T2 (de) Leukozytenfilter und Verfahren zu seiner Herstellung
DE2812174A1 (de) Die blutgerinnung nicht foerdernde, biologisch vertraegliche gegenstaende
EP0154246A1 (de) Phasenträger für die Verteilungschromatographie von Makromolekülen, Verfahren zu ihrer Herstellung und ihre Verwendung
DE4308807A1 (de) Verfahren zur Herstellung hydrophiler Membranen
DE69530761T2 (de) Methode und poröser träger zur entfernung von verunreinigungen
WO2002022253A2 (de) Adsorbens mit unterschiedlich modifizierten oberflächenbereichen, verfahren zu dessen herstellung und verwendung davon
US20030146150A1 (en) Novel leukapheretic filter
DE19900681B4 (de) Verwendung von Anionaustauschermembranen zur Entfernung von Endotoxinen aus Nukleinsäure-haltigen Lösungen
EP0416377A2 (de) Cellulosische Membranen
DE2314137A1 (de) Produkt, verfahren und vorrichtung zur bildung von stabilen komplexen von polyanionen, die in biologischen fluessigkeiten vorkommen

Legal Events

Date Code Title Description
8364 No opposition during term of opposition
8339 Ceased/non-payment of the annual fee