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HINTERGRUND DER ERFINDUNG
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Gebiet der Erfindung
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Diese
Erfindung betrifft das Gebiet der Herstellung integrierter Bauteile
und genauer das Herstellen integrierter Bauteile zur Verwendung
bei mikrofluidischen Anwendungen, so wie biologischen Anwendungen; im
letzteren Fall sind solche Bauteile oft als Biochips bekannt. Biochips
erfordern die Herstellung von Mikrokanälen für die Verarbeitung biologischer
Fluide, und die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zum
Herstellen solcher Kanäle.
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Beschreibung des Standes der
Technik
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Der
Stand der Technik ist im allgemeinen in zwei Arten von Bauteilen
aufgeteilt: passive und aktive. Beide Arten schließen Mikrokanäle für den Transport
biologischer Fluide ein. Bei passiven Bauteilen befindet sich die
gesamte Steuerschaltung für
den Fluidstrom auf externer Schaltung. Aktive Bauteile umfassen
Steuerschaltung, die direkt im Biochip enthalten ist.
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Die
folgenden erteilten Patente der USA zeigen den Stand der Technik,
der die Herstellung von Biochips mit Mikrokanälen für das Verarbeiten biologischer
Fluide betrifft:
US-Patent Nr.
6 186 606 „Microfluidic systems
incorporating varied channel dimensions";
US
Patent Nr. 6 180 536 „Suspended
moving channels and channel actuators for ...";
US
Patent Nr. 6 174 675 „Electrical
current for controlling fluid parameters in ...";
US Patent
Nr. 6 172 353 , „System
and method for measuring low power signals";
US
Patent Nr. 6 171 865 , „Simultaneous analyte determination
and reference balancing ...;
US
Patent Nr. 6 171 850 , „Integrated devices and systems
for performing temperature ...";
US Patent Nr. 6 171 067 , „Micropump";
US Patent Nr. 6 170 981 , "In situ micromachined
mixer for microfluidic analytical ...";
US
Patent Nr. 6 167 910 , "Multi-layer
microfluidic devices";
US Patent Nr. 6 159 739 , "Device and method
for 3-dimensional alignment of particles ...";
US
Patent Nr. 6 156 181 , "Controlled
fluid transport microfabricated polymeric substrates";
US Patent Nr. 6 154 226 ," Parallel print array";
US Patent Nr. 6 153 073 , "Microfluidic devices
incorporating improved channel ...";
US
Patent Nr. 6 150 180 , "High
throughput screening assay systems in mi crosacel ...";
US Patent Nr. 6 150 119 , "Optimized high-throughput
analytical system";
US Patent Nr. 6 149 870 , "Apparatus for in
situ concentration and/or dilution of ...";
US
Patent Nr. 6 149 787 , "External
material accession systems and methods";
US
Patent Nr. 6 148 508 „ "Method of making
a capillary for electrokinetic transport of ...";
US
Patent Nr. 6 146 103 , "Micromachined
magnetohydrodynamic actuators and sensors";
US
Patent Nr. 6 143 248 , "Capillary
microvalve";
US Patent Nr. 6 143 152 , "Microfabricated capillary
array electrophoresis device and ...";
US
Patent Nr. 6 137 501 , "Addressing
circuitry for microfluidic printing apparatus";
US
Patent Nr. 6 136 272 , "Device
for rapidly joining and splitting fluid layers";
US
Patent Nr. 6 136 212 , "Polymer-based
micromachining for microfluidic devices";
US
Patent Nr. 6 132 685 , "High
throughput microfluidic systems and methods";
US
Patent Nr. 6 131 410 , "Vacuum
fusion bonding of glass plates";
US Patent Nr. 6 130 098 , "Moving microdroplets";
US Patent Nr. 6 129 854 , "Low temperature material
bonding technique";
US Patent Nr. 6 129 826 "Methods and systems
for enhanced fluid transport";
US Patent Nr. 6 126 765 , "Method of producing
microchannel/microcavity structures";
US
Patent Nr. 6 126 140 , "Monolithic
bi-directional microvalve with enclosed drive ...";
US Patent Nr. 6 123 798 , "Methods of fabricating
polymeric structures incorporating ...";
US
Patent Nr. 6 120 666 , "Microfabricated
device and method for multiplexed ...";
US
Patent Nr. 6 118 126 , "Method
for enhancing fluorescence";
US Patent Nr. 6 107 044 , "Apparatus and methods
for sequencing nucleic acids in ...";
US
Patent Nr. 6 106 685 , "Electrode combinations
for pumping fluids";
US Patent Nr. 6 103 199 , "Capillary electroflow
apparatus and method";
US Patent Nr. 6 100 541 , "Microfluidic devices
and systems incorporating integrated ...";
US
Patent Nr. 6 096 656 , "Formation
of microchannels from low-temperature ...";
US
Patent Nr. 6 091 502 , "Device
and method for performing spectral measurements in ...";
US Patent Nr. 6 090 251 , "Microfabricated structures
for facilitating fluid introduction ...";
US
Patent Nr. 6 086 825 , "Microfabricated
structures, for facilitating fluid introduction ...";
US Patent Nr. 6 086 740 , "Multiplexed microfluidic
devices and systems";
US Patent Nr. 6 082 140 , "Fusion bonding and
alignment fxture";
US Patent Nr. 6 080 295 , "Electropipettor and
compensation means for electrophoretic ...";
US
patent Nr. 6 078 340 , "Using
silver salts and reducing reagents in microfluidic printing";
US Patent Nr. 6 074 827 , "Microfluidic method
for nucleic acid purification and processing";
US
Patent Nr. 6 074 725 , "Fabrication
of microfluidic circuits by printing techniques";
US
Patent Nr. 6 073 482 , "Fluid
flow module";
US Patent Nr. 6 071 478 , "Analytical system
and method";
US Patent Nr. 6 068 752 , "Microfluidic devices
incorporating improved channel. ...";
US
Patent Nr. 6 063 589 , "Devices
and methods for using centripetal acceleration to ...";
US Patent Nr. 6 062 261 , "Microfluidic circuit
designs for performing electrokinetic ...";
US
Patent Nr. 6 057 149 , "Microscale
devices and reactions in microscale devices";
US
Patent Nr. 6 056 269 , "Microminiature valve
having silicon diaphgragm";
US Patent Nr. 6 054 277 , "Integrated microchip
genetic testing system";
US Patent Nr. 6 048 734 , "Thermal micovalves
in a fluid flow method";
US Patent Nr. 6 048 498 , "Microfluidic devices
and systems";
US Patent Nr. 6 046 056 , "High throughput screening
assay systems in microscale ...";
US Patent Nr. 6 043 080 , "Integrated nucleic
acid diagnostic device";
US Patent Nr. 6 042 710 , "Methods and compositions
for performing molecular separations";
US
Patent Nr. 6 042 709 ; "Microfluidic
sampling system and methods";
US Patent Nr. 6 012 902 , "Micropump";
US Patent Nr. 6 011 252 , "Method and apparatus
for detecting low light levels";
US Patent Nr. 6 007 775 , "Multiple analyte
diffusion based chemical sensor";
US Patent Nr. 6 004 515 , "Methods and apparatus
for in situ concentration and/or ...";
US
Patent Nr. 6 001 231 , "Methods and
systems for monitoring and controlling fluid ...";
US
Patent Nr. 5 992 820 "Flow
control in microfluidics devices by controlled bubble ...";
US Patent Nr. 5 989 402 , "Controller/detector
interfaces for microfluidic systems";
US
Patent Nr. 5 980 719 , "Electrohydrodynamic
receptor";
US Patent Nr. 5 972 710 , "Microfabricated diffusion-based
chemical sensor";
US Patent Nr. 5 972 187 , "Electropipettor and
compensation means for electrophoretic bias";
US
Patent Nr. 5 965 410 , "Electrical
current for controlling fluid parameters in ...";
US
Patent Nr. 5 965 001 , "Variable
control of electroosmotic and/or electrophoretic ...";
US 5 946 995 , "Methods and systems for enhanced fluid
transport";
US Patent Nr. 5 958 694 , "Apparatus and methods
for sequencing nucleic acids in ...";
US
Patent Nr. 5 958 203 , "Electropipettor
and compensation means for electrophoretic bias";
US Patent
Nr. 5 957 579 , "Microfluidic
systems incorporating varied channel dimensions";
US
Patent Nr. 5 955 028 , "Analytical
system and method";
US Patent Nr. 5 948 684 , "Simultaneous analyte
determination and reference balancing ...";
US
Patent Nr. 5 948 227 , "Methods
and systems for performing electrophoretic ...";
US
Patent Nr. 5 942 443 , "High
throughput screening assay systems in microscale ...";
US Patent Nr. 5 932 315 , "Microfluidic structure
assembly with mating microfeatures";
US
Patent Nr. 5 932 100 "Microfrabricated
differential extraction device and method ...";
US
Patent Nr. 5 922 604 , "Thin
reaction chambers for containing and handling liquid ...";
US Patent Nr. 5 922 210 , "Tangential flow planar
microfabricated fluid filter and method ...";
US Patent
Nr. 5 885 470 , "Controlled
fluid transport in microfabricated polymeric ...";
US
Patent Nr. 5 882 465 , "Method
of manufacturing microfluidic devices";
US
Patent Nr. 5 880 071 , Electropipettor and compensation
means for electrophoretic bias";
US Patent Nr. 5 876 675 , "Microfluidic devices
and systems";
US Patent Nr. 5 869 004 , "Methods and apparatus
for in situ concentration and/or ...":
US
Patent Nr. 5 863 502 , "Parallel
reaction cassette and associated devices";
US
Patent Nr. 5 856 174 , "Integrated
nucleic acid diagnostic device";
US Patent Nr. 5 855 801 , "IC-processed microneedles";
US Patent Nr. 5 852 495 , "Fourier detection
of species migrating in a microchannel";
US
Patent Nr. 5 849 208 , "Making
apparatus for conducting biochemical analyses";
US
Patent Nr. 5 842 787 , "Microfluidic
systems incorporating varied channel dimensions";
US
Patent Nr. 5 800 690 , "Variable
control of electroosmotic and/or electrophoretic ...";
US Patent Nr. 5 779 868 , "Electropipettor and
compensation means for electrophoretic bias";
US
Patent Nr. 5 755 942 , "Partitioned
microelectronic device array";
US Patent Nr. 5 716 852 , "Microfabricated diffusion-based
chemical sensor";
US Patent Nr. 5 705 018 , "Micromachined peristaltic
pump";
USA Patent Nr. 5 699 157 , "Fourier detection
of species migrating in a microchannel";
US
Patent Nr. 5 591 139 , "IC-processed
Microneedles"; und
US Patent Nr. 5 376 252 , "Microfluidic structure
and process for its manufacture".
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Das
folgende veröffentlichte
Papier beschreibt einen Polydimethylsiloxan(PDMS)-Biochip, der zur
Kapazitätserfassung
biologischer Einheiten (Mauszellen) in der Lage ist: L. L. Sohn,
O. A. Saleh, G. R. Facer, A. J. Beavis, R. S. Allan und D. A. Notterman, "Capacitance cytometry:
Measuring biological cells one by one', Proceedings of the National Academy
of Sciences (USA), Band 97, Nr. 20, 26. September 2000, Seiten 10687–10690.
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Die
obengenannten US-Patente zeigen an, daß passive Biochip-Bauteile
mit Mikrokanälen
weitgehend aus der Kombination verschiedener Polymersubstrate hergestellt
werden, so wie: Acrylonitril-Butadien-Styrol-Copolymer, Polycarbonat,
Polydimethylsiloxan (PDMS), Polyethylen, Polymethylmethacrylat (PMMA),
Polymethylpenten, Polypropylen, Polystyrol, Polysulfon, Polytetrafluorethylen
(PTFE), Polyurethan, Polyvinylchlorid (PVC), Polyvinylidinfluorid
(PVF) oder einem anderen Polymer. In diesem Fall wird Lithographie oder
mechanisches Prägen
verwendet, um vor dem Zusammensetzen und dem thermisch unterstützten Verbinden
dieses Substrates mit einem anderen Substrat ein Netzwerk aus Mikrokanälen in einem
dieser Substrate zu definieren. Das Ergebnis ist ein einfaches passives
Biochip-Bauteil mit Mikrokanälen,
das mit leitenden Schichten zur Verbindung mit einem externen Prozessor
bemustert werden kann, der zum Einleiten der Fluidbewegung durch
Elektrophorese oder Elektroosmose, und für die Analyse und Datenerzeugung
verwendet wird.
1 zeigt ein Beispiel eines solchen
passiven Biochip-Bauteils mit Mikrokanälen, das aus dem Verbinden
solcher polymeren Substrate erhalten worden ist, wie es in dem
US-Patent Nr. 6 167 910 beschrieben
ist.
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Die
US-Patente des Standes der Technik zeigen auch, daß passive
Biochip-Bauteile mit Mikrokanälen aus
der Kombination verschiedener mikrobearbeiteter Siliciumdioxid-
oder Quarz-Substrate hergestellt werden kann. Wiederum ist der Zusammenbau
und das Schmelzbinden erforderlich. Das Ergebnis ist ein einfaches passives
Biochip-Bauteil, das mit leitenden Schichten zur Verbindung mit
einem externen Prozessor bemustert werden kann.
2 zeigt
ein Beispiel eines solchen passiven Biochip-Bauteils mit Mikrokanälen, das
aus dem Verbinden derartiger Siliciumdioxid-Substrate erhalten worden
ist, wie es in dem
US-Patent
Nr. 6 131 410 beschrieben worden ist.
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Diese
Patente des Standes der Technik zeigen auch, daß ein passives Biochip-Bauteil
mit Mikrokanälen
aus einem passiven, mikrobearbeiteten Siliciumsubstrat hergestellt
werden kann. In diesem Fall wird das Siliciumsubstrat als ein passives
strukturelles Material benutzt. Wieder ist das Zusammensetzen und
das Schmelzbinden wenigstens zweier Unteranordnungen erforderlich.
Das Ergebnis ist ein einfacher passiver Biochip, der mit einem externen
Prozessor verbunden werden muß.
3 zeigt
ein Beispiel eines solchen passiven Biochip-Bauteils mit Mikrokanälen, das
aus einem passiven, mikrobearbeiteten Siliciumsubstrat gemäß den Lehren
des
US-Patentes Nr. 5 705 018 erhalten
worden ist.
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Die
früheren
Patente zeigen auch an, daß ein
aktives Biochip-Bauteil mit Mikrobehältern aus einem aktiven, mikrobearbeiteten
Siliciumsubstrat hergestellt werden kann. In diesem Fall wird die
Steuerelektronik, die in das Siliciumsubstrat integriert ist, als
ein aktiver Fluidprozessor auf dem Chip und als Kommunikationseinrichtung
benutzt. Das Ergebnis ist ein hochentwickelter Biochip, der in zuvor
definierten Behältern
verschiedene fluidische Operationen, Analyse und (Fern-)Datenkommunikationsfunktionen
ohne die Notwendigkeit eines externen Fluidprozessors, der die Fluidbewegung,
Analyse und Datenerzeugung steuert, ausführen kann.
4 zeigt
ein Beispiel eines aktiven Biochip-Bauteils mit Mikrobehältern, das
aus einem aktiven, mikrobearbeiteten Siliciumsubstrat erhalten worden
ist, wie es in dem
US-Patent Nr. 6 117
643 beschrieben ist.
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Das
veröffentlichte
Papier offenbart, daß die
Kapazitätserfassung
biologischer Einheiten auf passivem Polydimethylsiloxan(PDMS)-Biochips
durchgeführt
werden kann, indem goldbeschichtete Kondensatorelektroden bei relativ
geringer Frequenz von 1 kHz mit einem externen Detektor verwendet
werden. 5 zeigt ein Beispiel eines
solchen passiven Polydimethylsiloxan(PDMS)-Biochips mit Goldelektroden.
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ZUSAMMENFASSUNG DER ERFINDUNG
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Die
vorliegende Erfindung betrifft eine verbesserte Herstellungstechnik
für aktive
Biochip-Bauteile
mit Mikrokanälen
aus einem aktiven mikrobearbeiteten Siliciumsubstrat, die zu einem
hochentwickelten Biochip-Bauteil führt, das Fluidbewegung und
Erfassung biologischer Einheiten in Mikrokanälen durchführen kann. Gemäß der vorliegenden
Erfindung wird ein Verfahren zur Herstellung einer Mikrostruktur
für Anwendungen
in der Mikrofluidik zur Verfügung
gestellt, mit den Schritten Bereitstellen eines Siliciumsubstrats,
das CMOS-Schaltkreise
enthält
und eine obere leitfähige
Schicht aufweist, die eine erste Elektrode bildet; Ausbilden einer
isolierenden Schutzschicht über
der oberen leitfähigen
Schicht; Ausbilden einer Opferschicht aus ätzbarem Material über der
Schutzschicht; Ausbilden einer Siliciumnitrid-Trägerschicht über der Opferschicht aus ätzbarem
Material; Aufbringen einer Maskenschicht über der Trägerschicht, um eine oder mehrere Öffnungen
zu definieren, die in der Trägerschicht
auszubilden sind; Durchführen
eines anisotropen Ätzens
durch die eine oder die mehreren Öffnungen hindurch, um eine
oder mehrere Bohrungen zu erzeugen, die durch die Trägerschicht
zu der Schicht aus ätzbarem
Material hindurchgehen; Durchführen
eines isotropen Ätzens
in die Opferschicht durch die eine oder die mehreren Bohrungen,
um einen Mikrokanal auszubilden, der sich unter der Trägerschicht
erstreckt; Abscheiden einer Siliciumdioxidschicht durch PECVD über der
Trägerschicht,
bis über
die oder jede Öffnung überhängende Teile
der Schicht aufeinandertreffen und dadurch den in dem ätzbaren
Material gebildeten Mikrokanal schließen; Wegätzen von Bereichen der Siliciumdioxidschicht
rund um eine oder mehrere Öffnungen
unter Beibehaltung von Teilen der Siliciumdioxidschicht, welche
die eine oder die mehreren Öffnungen
verschließen;
und Abscheiden einer Elektrodenstruktur auf der Trägerschicht
rund um die Teile der Siliciumdioxidschicht, welche die eine oder
die mehreren Öffnungen
verschließen.
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Die
Erfindung umfaßt
das Bilden einer Struktur, die einen Stapel aus Schichten aufweist.
Es wird von einem Fachmann verstanden werden, daß die kritischen Schichten
nicht notwendigerweise direkt auf einander abgeschieden werden müssen. Es
ist möglich,
daß bei
bestimmten Anwendungen zwischenliegende Schichten vorliegen können, und
tatsächlich
sind bei der bevorzugten Ausführungsform
derartige Schichten, zum Beispiel eine Opferschicht aus TiN, unter
der Trägerschicht
vorhanden.
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Die
Erfindung bietet einen einfachen Ansatz für die Herstellung aktiver Biochip-Bauteile
mit Mikrokanälen
aus einem aktiven mikrobearbeiteten Siliciumsubstrat direkt über einem
komplementären
Metalloxidhalbleiterbauteil, CMOS-Bauteil, oder einem Hochspannungs-CMOS-Bauteil.
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CMOS-Bauteile
sind zu sehr kleinen Erfassungspegeln in der Lage, eine wichtige
Voraussetzung, um elektronische Kapazitätserfassung (Identifikation)
von biologischen Einheiten mit niedrigen Signalpegeln durchzuführen. CMOS-Bauteile
können
die erforderliche Datenverarbeitungs- und (Fern-)kommunikationsfunktionen
durchführen.
Hochspannungs-CMOS-Bauteile
mit angemessenen Betriebsspannungen und Betriebsströmen sind
in der Lage, die erforderliche Mikrofluidik in den Mikrokanälen durchzuführen und
erlauben die Integration eines vollständigen Konzepts eines Laboratory-on-a-Chip.
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Die
Erfindung offenbart eine Technik, um in vorliegende CMOS- und Hochspannungs-CMOS-Prozesse die
mikrobearbeitenden Schritte einzubauen, welche die Entwicklung der
aktiven Mikrokanäle
mit daran angebrachten Elektroden ermöglichen, die verwendet werden,
um die Fluidbewegung hervorzurufen und/oder um die biologischen
Einheiten zu identifzieren. Die Mikrokanäle werden ohne die Verwendung
eines zweiten Substrates und ohne die Verwendung thermischen Bindens
verschlossen. Tatsächlich
sollten alle beschriebenen mikrobearbeitenden Schritte bevorzugt
bei einer Temperatur ausgeführt
werden, die 450°C
nicht übersteigt,
um den Abbau der darunterliegenden CMOS- und Hochspannungs-CMOS-Bauteile zu verhindern
und jedwede mechanische Probleme zu verhindern, so wie Kunststoffdeformation,
Abschälen,
Rißbildung,
Delaminieren und weitere derartige mit hoher Temperatur zusammenhängenden
Probleme mit den dünnen
Schichten, die bei der Mikrobearbeitung des Biochips verwendet werden.
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Die
Materialkombination, die bei der beschriebenen mikrobearbeitenden
Sequenz verwendet wird, ist nicht typisch für mikroelektromechanische Systeme
(MEMS), die typischerweise Polysilicium, das bei niedrigerem Druck
aus der chemischen Gasphase abgeschieden worden ist, LPCVD-Polysilicium,
und Siliciumdioxid, das plasmagestützt aus der chemischen Gasphase
abgeschieden worden ist, PECVD SiO2, als
Kombination verwendet. Die Verwendung von LPCVD-Polysilicium ist
allgemein wegen seiner erforderlichen Abscheidetemperatur von mehr
als 550°C
nicht geeignet.
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Die
Erfindung benutzt bevorzugt als ein innovatives Opfermaterial die
kollimierte reaktive physikalische Gasphasenabscheidung (Collimated
Reactive Physical Vapour Deposition) von Titannitrid, CRPVD TiN. Bei
diesem Prozeß wird
das TiN mit der Unterstützung
eines Kollimators abgeschieden, der die Atome auf die Trägerfläche richtet.
Dieses Opfermaterial CRPVD TiN wird wegen seiner ausgezeichneten
mechanischen Eigenschaften und seine ausgezeichnete Selektivität gegenüber Lösungen für das isotrope
Naßätzen verwendet,
die eingesetzt werden, um die Mikrokanäle in dicken Schichten aus
plasmagestützt
aus der chemischen Gasphase abgeschiedenem, PECVD, SiO2 zu
definieren.
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Typischerweise
sind die Kondensatorelektroden entweder LPCVD-Polysilicium (vor
den mikrobearbeitenden Schritten abgeschieden) oder physikalisch
aus der Gasphase abgeschiedene Aluminiumlegierung, PVC Al-Legierung.
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KURZBESCHREIBUNG DER ZEICHNUNGEN
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Die
Erfindung wird nun in weiteren Einzelheiten lediglich beispielhaft
mit Bezug auf die beigefügten Zeichnungen
beschrieben, wobei:
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1 ein
Beispiel eines passiven Biochip-Bauteils mit Mikrokanälen zeigt,
das aus der Verbindung polymerer Substrate erhalten worden ist,
wie es in dem
US-Patent Nr. 6
167 910 beschrieben ist;
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2 ein
Beispiel eines passiven Biochip-Bauteils mit Mikrokanälen zeigt,
das aus der Verbindung von Siliciumdioxidsubstraten erhalten worden
ist, wie es in dem
US-Patent
Nr. 6 131 410 beschrieben ist;
-
3 ein
Beispiel eines passiven Biochip-Bauteils mit Mikrokanälen zeigt,
das aus einem passiven mikrobearbeiteten Siliciumsubstrat erhalten
worden ist, wie es in dem
US-Patent Nr. 5 705
018 beschrieben ist.
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4 ein
Beispiel eines aktiven Biochip-Bauteils mit Mikrobehältern zeigt,
das aus einem aktiven mikrobearbeiteten Siliciumsubstrat erhalten
worden ist, wie es in dem
US-Patent
Nr. 6 117 643 beschrieben ist;
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5 ein Beispiel eines passiven Polydiemthylsiloxan(PDMS)-Biochips
mit Goldelektroden zeigt, wie es in dem Artikel von L. L. Sohn,
O. A. Saleh, G. R. Facer, A. J. Beavis, R. S. Allan und D. A. Notterman, „Capacitance
cytometry: Measuring biological cells one by one', Proceedings of the National Academy
of Siences (USA), Band 97, Nr. 20, 26. September 2000, Seiten 10687–10690 beschrieben
ist;
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6 Schritt
1 einer mikrobearbeitenden Sequenz für einen Biochip veranschaulicht
(Abscheiden von 0.1 μm
PECVD Si3N4 bei
400°C);
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7 die
Schritte 2 bis 6 der mikrobearbeitenden Sequenz für einen
Biochip veranschaulicht (Abscheiden von 0.10 μm CRPVD TiN bei 400°C, Abscheiden
von 10.0 μm
PECVD SiO2 bei 400°C, Abscheiden von 0.10 μm CRPVD TiN
bei 400°C,
Abscheiden von 0.40 μm
PECVD Si3N4 bei
400°C, Abscheiden
von 0.20 μm
CRPVD TiN bei 400°C);
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8 den
Schritt 7 der mikrobearbeitenden Sequenz für einen Biochip veranschaulicht
(erstes Muster, gefolgt von teilweisem anisotropem reaktiven Ionenrückätzen);
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9 den
Schritt 8 der mikrobearbeitenden Sequenz für einen Biochip veranschaulicht
(zweites Muster, gefolgt von anisotropem reaktiven Ionenrückätzen und Ätzlöchern);
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10 den
Schritt 9 der mikrobearbeitenden Sequenz für einen Biochip veranschaulicht
(Abscheiden von 0.10 μm
CRPVD TiN bei 400°C);
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11 den
Schritt 10 der mikrobearbeitenden Sequenz für einen Biochip veranschaulicht
(anisotropes reaktives Ionenrückätzen von
0.10 μm
CRPVD TiN);
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12 den
Schritt 11 der mikrobearbeitenden Sequenz für einen Biochip veranschaulicht
(gesteuertes isotropes Naßätzen des
PECVD SiO2);
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13 den
Schritt 12 der mikrobearbeitenden Sequenz für einen Biochip veranschaulicht
(isotropes nasses Entfernen von freiliegendem CRPVD TiN mit etwas
Hinterschneiden);
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14 den
Schritt 13 der mikrobearbeitenden Sequenz für einen Biochip veranschaulicht
(Abscheiden von 1.40 μm
PECVD SiO2 bei 400°C);
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15 den
Schritt 14 der mikrobearbeitenden Sequenz veranschaulicht (drittes
Muster und isotropes Nassätzen
des PECVD SiO2 bei 400°C);
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16 den
Schritt 15 der mikrobearbeitenden Sequenz für einen Biochip veranschaulicht
(standardmäßiges Abscheiden
PVD Ti/CRPVD TiN/PVD Al-Legierung/CRPVD TiN bei 400°C);
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17 den
Schritt 16 der mikrobearbeitenden Sequenz für einen Biochip veranschaulicht
(standardmäßiges anisotropes
RIE – Reactive
Ion Etching – von
PVD Ti/CRPVD TiN/PVC Al-Legierung/CRPVD TiN);
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18 rasterelektronenmikrographische,
SEM – Scanning
Electron Micrograph, Querschnittansichten zeigt, die die ausgezeichnete
mechanische Stabilität
einer TiN-Schicht zeigt, die über
dem Mikrokanal liegen soll;
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19 eine
rasterelektronenmikrographische, SEM, Draufsicht ist, die einen
Mikrokanal zeigt, der durch Naßätzen dicken
PECVD SiO2 durch eine 1.00 μm breite Öffnung gebildet
ist; und
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20 rasterelektronenmikrographische,
SEM, Querschnittansichten und Draufsichten sind, die den Verschluß der Mikrokanäle mit PECVD
SiO2 zeigen.
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GENAUE BESCHREIBUNG DER BEVORZUGTEN
AUSFÜHRUNGSFORMEN
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Gemäß den Grundsätzen der
Erfindung wird ein Biochip auf einem vorliegenden CMOS- oder Hochspannungs-CMOS-Bauelement
hergestellt. Mit Bezug auf 6 wird als
ein vorbereitender Schritt ein herkömmlicher CMOS-Prozeß verwendet,
um ein CMOS-Bauelement 10 bis zur dielektrischen Isolation 11 zwischen
der letzten LPCVD-Polysiliciumebene 12 und der ersten Metallisierungsebene
herzustellen. Die dielektrische Isolation 11, üblicherweise
als das Zwischenebenendielektrikum ILD (Inter Level Dielectric)
bezeichnet, liegt vor dem Beginn der mikrobearbeitenden Schritte
vor. Ein Kontakt wird durch diese dielektrische Isolation geöffnet, um
die letzte LPCVD-Polysiliciumschicht 12 zu erreichen, die
für die
Kapazitätserfassung
als eine Elektrode verwendet wird, welche mit dem CMOS-Bauteil verbunden
ist, und/oder als eine Elektrode, die für die Fluidbewegung mit den
Hochspannungs-CMOS-Bauelementen
verbunden ist.
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Nach
dem Vorbereiten des Vorläuferbauteiles
wird eine Anzahl von Schichten abgeschieden, wie es in den folgenden
Figuren gezeigt ist. Eine Schicht 14 mit ungefähr 0.10 μm PECVD Si3N4 bei 400°C wird auf der
Schicht 12 abgeschieden. Als nächstes, wie in 7 gezeigt,
wird eine Anzahl Schichten auf der Schicht 14 abgeschieden.
Zunächst
wird eine Schicht 16 mit ungefähr 0.10 μm CRPVD TiN 16 bei
400°C abgeschieden.
Danach wird eine Schicht 18 mit ungefähr 10.0 μm PECVD SiO2 bei
400°C abgeschieden.
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Als
nächstes
wird eine Schicht 20 mit ungefähr 0.10 μm CRPVD TiN bei 400°C auf der
Schicht 18 abgeschieden. In den nächsten Schritt wird eine Schicht 22 mit
ungefähr
0.40 μm
PECVD Si3N4 bei
400°C auf der
Schicht 20 abgeschieden. Anschließend wird eine Schicht 24 mit
ungefähr
0.20 μm
CRPVD TiN bei 400°C abgeschieden.
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In
dem nächsten
Schritt, wie es in der 8 gezeigt ist, wird eine erste
mikrobearbeitende Maske aufgelegt, um einen MEMS-Bereich zu definieren,
und diesem folgt das anisotrope reaktive Ionenätzen (Anisotropic RIE – Reactive
Ion Etching) des Schichtaufbaus 20, 22, 24 aus
CRPVD TiN/PECVD Si3N4/CRPVD
TiN, gefolgt von dem teilweise anisotropen RIE der Schicht 18 aus
PECVD SiO2, um eine Schulter 17 zu
bilden.
-
Anschließend, wie
es in 9 gezeigt ist, wird eine zweite mikrobearbeitende
Maske aufgelegt, um isotrope Naßätzöffnungen 26 zu
definieren. Diesem folgt ein anisotropisches RIE des Schichtaufbaus 22, 24, 26 aus
CRPVD TiN/PECVD Si3N4/CRPVD
TiN und anschließend
das Abschließen
des anisotropen RIE der Schicht 18 aus PECVD SiO2 außerhalb
des MEMS-Bereichs,
um so die untere Schicht 16 aus CRPVD TiN bei 16a zu
erreichen und die Schulter 17 zu beseitigen. Der Grad des
Durchdringens h des anisotropen Ätzens
in die Schicht 18 aus PECVD SiO2 des
zukünftigen
Mikrokanals ist nicht kritisch.
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Als
nächstes,
wie es in der 10 gezeigt ist, wird eine Schicht 28 mit
ungefähr
0.10 μm
CRPVD TiN bei 400°C
auf der Schicht 26 abgeschieden. Dann, wie in 11 gezeigt,
wird ein anisotropes RIE der Schicht 28 aus CRPVD TiN durchgeführt, um 'Abstandhalter' 30 aus
CRPVD TiN auf vertikalen Seitenwänden
zu bilden, wobei die Bodenschicht entfernt wird, um Öffnungen
zu bilden, wo ein isotropes Naßätzen durchgeführt wird,
und auch um den Teil 28a zu entfernen, der sich über der
Schulter 16a erstreckt. Es wird verstanden werden, daß in 11 nur
eine Öffnung
gezeigt ist, obwohl typischerweise mehrere vorliegen werden.
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In
dem nächsten
Schritt, der in 12 gezeigt ist, wird ein isotropes
Naßätzen bei
dem PECVD SiO2 18 durchgeführt, indem
entweder eine Mischung aus Ethylenglycol, C2H4O2H2,
Ammoniumfluorid, NH4F, und Essigsäure, CH3COOH, oder als Alternative eine Mischung
aus Ammoniumfluorid, NH4F, Flußsäure, HF,
und Wasser, H2O, verwendet wird, um die
Mikrokanäle 34 zu
definieren. Diese beiden isotropen Naßätzungen sind selektiv für CRPVD
TiN, das verwendet wird, um die obere Schicht 22 aus PECVD
Si3N4 zu schützen.
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Anschließend an
das isotrope Naßätzen wird
der Schichtaufbau aus CRPVD TiN/PECVD Si3N4/CRPVD TiN über den Mikrokanälen 34 angebracht.
Die mechanischen Eigenschaften und die relative Dicke der Schichten 20, 22 aus
CRPVD TiN und der Schicht 22 aus PECVD Si3N4 werden so eingestellt, daß die Struktur mechanisch
stabil ist, d. h. sich über
dem definierten Mikrokanal nicht nach oben oder nach unten biegt,
nicht von den Kanten des darunterliegenden PECVD SiO2 abschält, nicht
abbricht oder zusammenfällt. 18 zeigt eine
rasterelektronenmikrographische, SEM, Querschnittsansicht, welche
die ausgezeichnete mechanische Stabilität einer TiN-Schicht zeigt,
die über
dem Mikrokanal angebracht werden soll. Die Bilder dienen nur SEM-Zwecken
und beschreiben nicht das optimale Bauteil. 18 zeigt
eine rasterelektronenmikrographische, SEM, Draufsicht, die einen
Mikrokanal darstellt, der durch Naßätzen dicken PECVD SiO2 durch eine 1.00 μm breite Öffnung gebildet ist. Das Bild
dient nur SEM-Zwecken und beschreibt nicht das optimale Bauelement.
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In
dem nächsten
Schritt, der in 13 gezeigt ist, wird das isotrope
nasse Entfernen des CRPVD TiN durchgeführt, indem eine Mischung aus
Ammoniumhydroxid, NH4OH, Wasserstoffperoxid,
H2O2, und Wasser, H2O, verwendet wird. Dieses isotrope nasse
Entfernen ist selektiv für
das PECVD SiO2 und für das PECVD Si3N4. Anschließend an das isotrope Naßätzen wird
die Schicht aus PECVD Si3N4 über den
Mikrokanälen
angebracht, wobei ihre mechanischen Eigenschaften und die Dicke
angepaßt
werden, so daß die
Schicht mechanisch stabil ist, d. h. sich über dem definierten Mikrokanal
nicht nach oben oder nach unten biegt, nicht von den Kanten des
darunterliegenden PECVD SiO2 abschält, nicht
abbricht oder zusammenfällt.
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In
dem folgenden Schritt, der in 14 gezeigt
ist, wird der Verschluß der Öffnung 26 mit
dem Abscheiden einer Schicht 40 aus ungefähr 1.40 μm PECVD SiO2 bei 400°C
bewirkt. Dies ist möglich,
weil der natürliche Überhang
des PECVD SiO2 auf vertikalen Flächen ein
seitliches Wachstum des abgeschiedenen Materials auf diesen Flächen und
schließlich
einen Verschluß der Öffnungen
erlaubt. Dieser Verschluß der Öffnungen
mit PECVD SiO2 ist kritisch, da er die Bildung
eines eingeschlossenen Mikrokanals 34 ohne das Erfordernis
des Verbindend zweier Substrate erlaubt und anders als der Stand
der Technik die Herstellung aktiver Mikrokanäle im Gegensatz zu geöffneten
Mikrobehältern
ermöglicht.
Etwas PECVD SiO2-Material 41 wird an dem Boden
des Mikrokanals über
der Elektrode 12 abgeschieden. 19 zeigt
rasterelektronenmikrographische, SEM, Querschnittsansichten und
Draufsichten, die den Verschluß der
Mikrokanäle
mit PECVD SiO2 zeigen. Wieder dienen die
Bilder nur für
den Zweck der SEM und beschreiben jedoch nicht das optimale Bauteil.
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In
dem nächsten
Schritt, der in 15 gezeigt ist, wird eine dritte
mikrobearbeitende Maske aufgelegt, um das isotrope Naßätzen des
oberen PECVD SiO2 zu definieren, wo später PVD-Al-Legierungselektroden definiert
werden. Dieses isotrope Naßätzen des
oberen PECVD SiO2, wobei entweder eine Mischung
aus Ethylenglycol, C2H4O2H2, Ammoniumfluorid,
NH2F, und Essigsäure, CH3CCOH,
oder als Alternative eine Mischung aus Ammoniumfluorid, NH4F, Flußsäure, HF,
und Wasser, H2O, verwendet wird, ist selektiv
für die
darunterliegende Schicht aus PECVD Si3N4 innerhalb ebenso wie außerhalb des MEMS-Bereichs und
hinterläßt eine
Brücke
aus SiO2 40, welche die Öffnung 26 verschließt.
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Als
nächstes,
wie in der 16 gezeigt, wird das Abscheiden
einer Struktur 42 aus PVD Ti/CRPVD TiN/PVD Al-Legierung/CRPVD
TiN bei 400°C über dem
MEMS-Bereich durchgeführt,
um obere Elektroden zu bilden, ebenso wie über dem Nicht-MEMS-Bereich,
um Verbindungen zu bilden.
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Bei
dem letzten Schritt, der in 17 gezeigt
ist, wird ein anisotropes RIE auf der Schicht 42 aus PVD Ti/CRPVD
TiN/PVD Al-Legierung/CRPVD TiN durchgeführt, welche obere Elektroden
in dem MEMS-Bereich ebenso wie Verbindungen über dem Nicht-MEMS-Bereich definiert.
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Die
Kombination aus MEMS-Bereichen und Nicht-MEMS-Bereichen definiert
nun einen Biochip, der dann fertiggestellt werden kann, indem die
verbleibenden standardmäßigen CMOS-Herstellungsschritte
abgearbeitet werden.
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Der
Fachmann wird verstehen, daß viele
Variationen bei den beschriebenen Prozessen möglich sind.
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Das
Substrat könnte
verschiedene Typen Niederspannungs-Bauelemente enthalten, einschließlich: empfindlichem
MOS vom N-Typ, empfindlichem MOS vom P-Typ, Hochgeschwindigkeitsbipolar-NPN,
Hochgeschwindigkeitsbipolar-PNP, Bipolar-NMOS, Bipolar-PMOS oder jedewedes
andere Halbleiterbauelement, das zur Erfassung niedriger Signale
und/oder den Betrieb bei hoher Geschwindigkeit in der Lage ist.
Als Alternative könnte
das Substrat verschiedene Typen von Hochspannungsbauelementen enthalten,
einschließlich: MOM
mit doppelt diffundierter Senke vom N-Typ, MOS mit doppelt diffundierter
Senke vom P-Typ, MOS mit erweiterter Senke vom N-Typ, MOS mit erweiterter
Senke vom P-Typ, Bipolar-PNP, Bipolar-PNP, Bipolar-NMOS, Bipolar-PMOS,
Bipolar-CMOS-DMOS, Graben-MOS
oder irgendein anderes Halbleiterbauelement, das zum Betrieb bei
hohen Spannungen geeignet ist, wobei die Spannungen im Bereich von
10 bis 2000 Volt liegen.
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Das
Substrat könnte
ein Verbundhalbleiterbereich sein, der auf dem Chip zu optoelektronischen
Funktionen in der Lage ist, so wie Laseremission und Photoerfassung.
In diesem Fall könnte
das Substrat sein: Silicium mit derartigen optoelektronischen Funktionen
auf dem Chip, ein III-V-Verbundhalbleiter, ein II-VI-Verbundhalbleiter,
ein II-IV-Verbundhalbleiter oder Kombinationen aus II-III-IV-V-Halbleitern.
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Die
untere Kondensatorelektrode aus Polysilicium oder Al-Legierung des
Schritts 0 könnte
durch andere elektrisch leitende Schichten ersetzt werden, so wie:
Kupfer, Gold, Platin, Rhodium, Wolfram, Molybden, Siliziden oder
Polyziden.
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Die
Opferschicht 16 aus TiN könnte dicker, dünner gemacht
werden oder einfach weggelassen werden, wenn die Selektivität des Naßätzens (17)
schlechter, besser oder einfach gut genug ist, um das übermäßige Ätzen des
Materials zu verhindern, das sich unter dieser Opferschicht aus
TiN befindet, oder sie könnte einfach
weggelassen werden, wenn das Fluid, das innerhalb des Mikrokanals
vorliegt, in physikalischem Kontakt mit der Elektrode sein muß, die sich
unter dieser Schicht aus TiN befindet.
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Die
Schicht 18 aus SiO2 des definierten
Mikrokanals könnte
dicker oder dünner
als 10.0 μm
gemacht werden, abhängig
von der geforderten Größe des Mikrokanals.
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Das
SiO2-Material des Mikrokanals 18 könnte durch
eine rotationsgegossene Polyimidschicht ersetzt werden. In diesem
Fall würde
ein isotropes Naßätzen, das
für die
anderen Schichten selektiv ist, verwendet werden müssen, um
die Bildung des Mikrokanals in dem Polyimidfilm zu erlauben; dieselbe
Dünn/Dick-Polymerfilm-Abscheidetechnik
könnte
verwendet werden, um den Verschluß der Öffnungen über den Mikrokanälen sicherzustellen;
niedrigere Metallisierungstemperaturen wären zu verwenden, um die thermische
Zersetzung des Polyimidfilms zu verhindern.
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Das
SiO2-Material 18 könnte mit
verschiedenen Elementen legiert werden, so wie: Wasserstoff, Bor, Kohlenstoff,
Stickstoff, Fluor, Aluminium, Phosphor, Chlor oder Arsen.
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Die
Opferschicht 20 aus TiN könnte dicker, dünner gemacht
werden oder einfach weggelassen werden, wenn die Selektivität des Naßätzens (12)
schlechter, besser oder einfach gut genug ist, um das übermäßige Ätzen des
Materials, das sich über
dieser Opferschicht aus TiN befindet, zu verhindern.
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Die
Opferschichten 20, 24 und 28 aus TiN
könnten
durch andere Opferschichten mit mechanischen Eigenschaften ersetzt
werden, welche das Verwerten, Delaminieren, Rißbildung oder andere Verschlechterung
in der abgehängten
Struktur mit ausgezeichneter Selektivität für isotrope Naßätzlösungen,
die verwendet werden, um die Mikrokanäle zu definieren, verhindern.
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Die
Opferschichten aus CRPVD TiN könnten
durch andere Techniken abgeschieden werden, einschließlich: metallorganische
chemische Gasphasenabscheidung, MOCVD, chemische Gasphasenabscheidung
bei niedrigem Druck, LPCVD, plasmaunterstützte chemische Gasphasenabscheidung,
PECVD, Langdurchgangsabscheidung, LTD – Long Through Deposition –, Hohlkathodenabscheidung,
HCD – Hollow
Cathode Deposition, und Hochdruckionisationsabscheidung, HPID – High Pressure
Ionization Deposition.
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Die
obere Schicht 22 aus Si3N4 könnte
dicker oder dünner
als 0.40 μm
gemacht werden, abhängig
von ihren mechanischen Eigenschaften und von den mechanischen Eigenschaften
der umgebenden Materialien, um mechanische Probleme zu vermeiden,
so wie plastische Deformation, Abschälen, Reißen, Delaminieren und weitere
solche Probleme in dem Ätzschritt,
der in 12 gezeigt ist.
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Die
Opferschicht 23 aus TiN könnte dicker, dünner gemacht
werden oder einfach weggelassen werden, wenn die Selektivität des Naßätzens der 12 schlechter,
besser oder einfach gut genug ist, um das übermäßige Ätzen des Materials zu verhindern,
das sich unter dieser Opferschicht aus TiN befindet.
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Das
teilweise anisotrope RIE, das in 8 gezeigt
ist, könnte
weggelassen werden, wenn es kein Erfordernis gibt, in dem Bauteil
MEMS-Bereiche und Nicht-MEMS-Bereiche zu definieren.
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Das
Abscheiden und das teilweise RIE des CRPVD TiN, das jeweils in 10 und 11 veranschaulicht
ist, welches 'Abstandhalter' aus CRPVD TiN auf
vertikalen Seitenwänden
der Öffnungen
liefert, könnte
weggelassen werden, wenn die Selektivität des Naßätzens, das in 12 gezeigt
ist, derart ist, daß es kein
Erfordernis gibt, diese 'Abstandhalter' aus CRPVD TiN auf
vertikalen Seitenwänden
der Öffnungen
zu haben.
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Die
Opferschicht 28 aus TiN, die in 10 gezeigt
ist, könnte
dicker oder dünner
gemacht werden, wenn die Selektivität des Naßätzens, das in 12 gezeigt
ist, schlechter oder besser ist, um das übermäßige Ätzen des Materials zu verhindern,
das sich hinter dieser Opferschicht aus TiN befindet.
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Das
nasse isotrope Ätzen
des PECVD SiO2, das in 12 gezeigt
ist, könnte
durchgeführt
werden, indem andere flüssige
Mischungen verwendet werden, als entweder: a) das C2H4O2H2,
NH4F und CH3COOH oder
als Alternative b) NH4F, HF und H2O, um die Mikrokanäle richtig zu definieren. Irgendwelche
andere isotrope Naßätztechniken
könnten
für das
PECVD SiO2 verwendet werden, wenn sie selektiv
genug für
die Bodenschicht von 14 (oder für
die Bodenelektrode 12, wenn keine solche Bodenschicht verwendet
wird) und für die
Kombination aus Schichten, die während
dieses isotropen Naßätzens angebracht
worden sind.
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Das
isotrope nasse Entfernen des CRPVD TiN, das in 13 gezeigt
ist, kann weggelassen werden, wenn das zu opfernde CRPVD TiN in
der Abfolge nicht verwendet wird. Das isotrope nasse Entfernen des
CRPVD TiN, das in 13 gezeigt ist, könnte auch
durchgeführt
werden, indem andere flüssige
Mischungen, als NH4OH, H2O2 und H2O verwendet
werden, wenn das isotrope nasse Entfernen selektiv für das PECVD
SiO2 und die anderen Schichten in Kontakt
mit dem isotropen nassen Entfernen ist.
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Das
SiO2-Material des Mikrokanals, in 14 gezeigt,
könnte
dicker oder dünner
als 1.40 μm
gemacht werden, abhängig
von der Größe der Öffnung,
die gefüllt
werden soll.
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Das
SiO2-Material des Mikrokanals, in 14 gezeigt,
könnte
durch einen abgeschiedenen Polymerfilm (wobei Plasmapolymerisierung
oder eine andere Dünn/Dick-Polymerfilmabscheidetechnik
verwendet wird), ersetzt werden, so wie: Acrylonitril-Butadien-Styrolcopolymer,
Polycarbonat, Polydimethylsiloxan (PDMS), Polyethylen, Polymethylmethacrylat
(PMMA), Polymethylpenten, Polypropylen, Polystyrol, Polysulfon,
Polytetrafluorethylen (PTFE), Polyurethan, Polyvinylchlorid (PVC),
Polyvinylidinfluorid (PVF). Das SiO2-Material
des Mikrokanals könnte
auch mit verschiedenen Elementen legiert werden, so wie: Wasserstoff, Bor,
Kohlenstoff, Stickstoff, Fluor, Aluminium, Phosphor, Chlor oder
Arsen.
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Das
isotrope Naßätzen des
oberen PECVD SiO2, in 15 gezeigt,
könnte
durchgeführt
werden, indem andere flüssige
Mischungen verwendet werden als: a) das C2H4O2H2,
NH4F und CH3COOH
oder als Alternative b) NH4F, HF und H2O. Andere isotrope Naßätztechniken könnten eingesetzt
werden, wenn sie selektiv genug für die untere angebrachte Schicht
der 13 sind.
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Das
isotrope Naßätzen des
oberen PECVD SiO2, in 15 gezeigt,
könnte
durch ein geeignetes Trockenätzen
ersetzt werden, wenn ein solches Ätzen selektiv genug für die untere
angebrachte Schicht der 13 ist.
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Die
obere Elektrode aus Al-Legierung, in den 16 und 17 gezeigt,
könnte
weggelassen werden, um die Anzahl der mikrobearbeitenden Schritte
zu minimieren.
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Die
obere Elektrode aus Al-Legierung, in 16 gezeigt,
könnte
durch eine leitende Schicht mit höheren Schmelzpunkt ersetzt
werden, wenn die anderen Schichten in einer solchen Weise kombiniert
werden können,
daß mechanische
Probleme vermieden werden, so wie plastische Deformation, Abschälen, Rißbildung,
Delaminieren und andere solche mit hoher Temperatur verbundene Probleme.
In dem Fall könnte
die Beschränkung
der Temperatur auf 450°C
bei den beschreibenden mikrobearbeitenden Schritten auf 750°C ohne Verschlechterung
der darunterliegenden CMOS- und Hochspannungs-CMOS-Bauelemente erhöht werden.
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Die
obere Elektrode aus PVD Ti/CRPVD TiN/PVD Al-Legierung/CRPVD TiN,
in 16 gezeigt, könnte durch
LPCVD-Polysilicium ersetzt werden, bei Temperaturen, die im Bereich
von 530 bis 730°C
liegen, oder durch mittels plasmaunterstützter chemischer Gasphasenabscheidung
abgeschiedenem Polysilicium, PECVD-Polysilicium, von 330 bis 630°C, wenn die
anderen Schichten in einer solchen Weise kombiniert werden können, um
mechanische Probleme zu vermeiden, so wie: plastische Deformation,
Abschälen,
Rißbildung,
Delaminieren und andere mit hoher Temperatur verbundene Probleme.
In dem Fall könnte
die Beschränkung
auf 450°C
bei den beschriebenen mikroverarbeitenden Schritten auf 750°C ohne Verschlechterung
der darunterliegenden CMOS- und Hochspannungs-CMOS-Bauteile erhöht werden.
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Das
obere PVD Ti/CRPVD TiN/PVD Al-Legierung/CRPVD TiN, das in 16 gezeigt
ist, könnte
auch durch eine andere Verbindungsstruktur ersetzt und bei einer
anderen Temperatur als 400°C
abgeschieden werden.
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Die
Erfindung kann bei Anwendungen eingesetzt werden, die die Verwendung
aktiver (Elektronik auf dem Chip) Mikrokanäle umfassen, so wie andere
mikrofluidische Anwendungen als die oben angesprochene Erfassung
und/oder Fluidbewegung; Systeme mit mikrochemischer Erfassung/Analyse/Reaktor;
Systeme mit mikrobiologischer Erfassung/Analyse/Reaktor; Systeme
mit mikrobiochemischer Erfassung/Analyse/Reaktor; mikrooptofluidische
Systeme; Mikrofluidzuführsysteme;
Mikrofluidverbindungssysteme; Mikrofluidtransportsysteme; Mikrofluidmischsysteme;
Systeme mit Mikroventilen/Pumpen; Mikroströmungs/ Drucksysteme; mikrofluidische
Steuersysteme; Mikroheiz/Kühlsysteme;
mikrofluidische Packungen; Mikro-Tintenstrahldrucker; Bauteile für ein Laboratorium
auf einem Chip, LOAC – Laboratory-On-A-Chip,
andere MEMS, die Mikrokanäle erfordern,
und andere MEMS, die einen verschlossenen Kanal erfordern.
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Die
Erfindung betrifft eine verbesserte Herstellungstechnik für Biochip-Bauelemente
mit Mikrokanälen, bevorzugt
für aktive
Bauteile aus einem aktiven mikrobearbeitenden Siliciumsubstrat,
das zu einem verbesserten Biochip-Bauteil führt, die über die Verbindung in Mikrokanäle verschiedene
fluidische, analytische und Datenkommunikationsfunktionen durchführen kann,
ohne die Notwendigkeit eines externen Fluidprozessors für die Fluidbewegung,
Analyse und die Datenerzeugung.
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REFERENZEN, DIE IN DER BESCHREIBUNG GENANNT
SIND
-
Diese
Liste der Referenzen, die von dem Anmelder genannt sind, dient nur
der Bequemlichkeit des Lesers. Sie bildet keinen Teil des europäischen Patentdokumentes.
Obwohl große
Sorgfalt getroffen worden ist, die Referenzen zu übernehmen,
können
Fehler oder Weglassungen nicht ausgeschlossen werden, und das EPA
lehnt alle Verantwortlichkeit in dieser Hinsicht ab. Patentdokumente,
die in der Beschreibung genannt sind
-
Nicht-Patentliteratur, die in der Beschreibung
genannt ist
-
- • L.
L. SOHN; O. A. SALEH; G. R. FACER; A. J. BEAVIS; R. S. ALLAN; D.
A. NOTTERMAN. Capacitance cytometry: Measuring biological cells
one by one. Proceedings of the National Academy of Siences (USA,
26 September 2000, vol. 97 (20), 10687–10690 [0004][0019]