DE2910014A1 - Verfahren zur kultivierung von algen - Google Patents
Verfahren zur kultivierung von algenInfo
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Description
PATENTANWÄLTE
DR. WALTER KRAUS DIPLOMCHEMIKER · DR.-ING. ANNEKATE WEISERT DIPL.-ING. FACHRICHTUNG CHEMIE
IRMGARDSTRASSE 15 · D-8OOO MÜNCHEN 71 · TELEFON 089/79 7O 77-79 7O 78 -TELEX O5-212156 kpatd
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- 5- ■ ■
. 2122 WK/ps
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Verfahren zur Kultivierung von Algen
030019/0583 '
" r~ 2B1ÜÖ14
Beschreibung
Die Erfindung betrifft die Kultivierung von Algen. Die
Erfindung betrifft insbesondere ein Verfahren zur Kultivierung von Algen, bei dem das Wachstum der Algen gefördert
wird und Algen mit verbesserter Qualität und mit erhöhter Ausbeute erhalten werden können. Die Erfindung
betrifft weiterhin ein bei diesem Verfahren verwendetes Deckmaterial.
Mit der weltweit erfolgenden Zunahme der Bevölkerung in den letzten Jahren wird das Problem des Nahrungsmittelmangels immer drängender. Da die Kultivierung von Erdpflanzen
begrenzt ist, ist ein erhebliches Interesse an
der Kultivierung von Algen entstanden, welche als eine Maßnahme angesehen werden kann, um den Nahrungsmittelmangel
zu überwinden. Die Quellen für Algen sind überschießend,
und es besteht die große Möglichkeit, sie durch günstige Maßnahmen in Massenproduktion herzustellen. Einige
Algen, wie Chlorella, Spirulina und Scenedesmus, sind bereits auf technischer Basis kultiviert worden. Diese Algen
werden durch Kultivierung in Außenpools oder in Tanks erzeugt. Die erstere, im Freien erfolgende Kultivierung
hat den Nachteil, daß sie hinsichtlich des Ortes Beschränkungen unterworfen ist und daß der Durchsatz durch Wetterbedingungen
beeinflußt wird. Dazu kommt noch, daß die Qualität der gezüchteten Algen entsprechend solchen Bedingungen,
wie dem Ort der Kultivierung und dem Wetter, variiert. Die letzgenannte Methode der Tankkultivierung
hat ebenfalls Nachteile, da groß dimensionierte Vorrichtungen erforderlich sind und aufgrund der Tatsache, daß
künstliche Lichtstrahlen angewendet werden, der Durchsatz niedrig ist, wobei die Qualität der Algen nicht vollständig
zufriedenstellend ist.
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
29ID014
Meeresgräser, wie Tang (Gattung Porphyra, z.B. P. tenera),
Gattung Laminaria (z.B. Laminaria japonica) und Gattung
Undaria (z.B. Uhdaria pinnetifida), werden in einigen Teilen der Welt für den menschlichen Verbrauch kultiviert.
Es ist Jedoch noch keine zufriedenstellende Verbesserung der Ausbeute und der Qualität dieser Meeresgräser erzielt
worden.
Um Algen zu kultivieren, die als wichtige Nahrungsmittelquellen
angesehen werden, wurden nun Untersuchungen über die Förderung des Algenwachstums, die Erhöhung der Ausbeute
der Algen und die Verbesserung ihrer Qualität in Verbindung mit Lichtbestrahlungsbedingungen durchgeführt. Diese
Untersuchungen haben zu der überraschenden Entdeckung geführt, daß dann, wenn Algen in einem Lichtfeld kultiviert
werden, das im wesentlichen von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 340 nm frei ist, das Wachstum der Algen gefördert
wird und daß bei einigen Typen von Algen ihre Qualität, beispielsweise das Aussehen, das Aroma und die Weichheit
beim Genuß, erheblich verbessert werden können.
Durch die Erfindung wird daher ein Verfahren zur Kultivierung von Algen zur Verfügung gestellt, bei dem man die
Algen in einem Lichtfeld wachsen läßt bzw. züchtet, das im wesentlichen von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr
als 340 nm frei ist.
Die Algen, auf die das erfindungsgemäße Verfahren anwendbar
ist, stellen eine Art von Cryptogamae-Pflanzen dar, die, ungeachtet, ob sie einzellig oder komplex strukturiert
sind, reproduktive Organe erzeugen, die im Prinzip immer einzellig sind, Chlorophyll tragen und eine Photosynthese
vornehmen. In taxonomischer Hinsicht enthalten die Algen acht Pflanzenreiches: Cyanophyta oder Blau-Grün-Algen,
Rhodophyta oder Rotalgen, Chrysophyta oder GeIb-
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ORIGINAL INSPECTED
~*~ 2970014
Grün-Algen, Pyrrhophyta oder Dinoflagellate, Phaesophyta
oder Braunalgenr Euglenophyta, Chlorophyta oder Grünalgen
und Charophyta.
Das erfindungsgemäße Verfahren kann allgemein auf Algen aller dieser Klassen angewendet werden, und zwar ungeachtet,
ob es sich um einzellige Algen oder große Algen handelt.
Erfindungsgemäß können verschiedene Grade der Wachstumsförderung, ein erhöhter Durchsatz und/oder eine verbesserte
Qualität erhalten werden. Diese Effekte sind besonders dann hervorragend, wenn das erfindungsgemäße Verfahren
auf Algen der Klassen Cyanophyta, Rhodophyta, Chrysophyta, Phaeophyta und Chlorophyta angewendet wird.
Nachstehend werden Beispiele für typische Algen angegeben, auf die das erfindungsgemäße Verfahren angewendet werden
kann. In der folgenden Aufstellung sind typische Beispiele
von Arten in Klammern nach der Angabe der Gattungen angegeben.
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
-n- 29100 H
Klasse Cyanophyta
A. ltateifcl. Cyanophyceae
A-I. Ordng. Chroococcales A-l-1. Familie Chroococcaceae
Gattg. Anacystis (A. nidulance), " Aphanocapsa Nägelx (A. pulchra)v
" Aphanothece Nägeli (A. sacrum),
" Chroococcus Hägeli (C. turgidus),
" Coelosphaerium liägeli»
" Glaucocystis Itzigsohn (G. nostochinearum),
" Gloeocapsa Eützing, " Gloeochaete Lagerheim (G. wittrockiana),
M Gloeothece Fageli (G. linearis),
11 ■■ Gompho sphaeria Kützxng (G. aponina)»
" Merismopedia Meyen (Γ?. elegans),
" Ilicrocystis Klitzning (Π. aeruginosa)»
M Synechococcus Nägeli (S. aeruginosus) ijnd
n Synechocystis Sauvageau (S. aquatilis).
A-I-2. Familie Entophysalidaceae
Gattg. Chlorogloea Wille und 11 Entophysalis Kützxng.
A-2. Ordng. Chamaesiphonales A-2-1. Familie Dermocarpaceae
Gattg. Dermocarpa Crouan.
Ö3Ö019/OS83
ORIGINAL INSPECTED
-Ef-
Α-2-2. Familie Chamaesiphonaceae Gattg. Chamaesiphon A. Braun et Grunow
(C. incrustans). A-2-3. Familie Siphononemaceae
Gattg. Siphononema Geitler.
A-3· Ordng. Pleurocapsales
A-3-1. Familie Pleurocapsaceae
Gattg. Pleuroeapsa 'Thuret et Hauck und
n . Xenococcus Thuret.
A-3-2. Familie Hyellaceae Gattg. Hydrococcus Ktitzing. und
" Hyella Bornet. A-M-. Ordng. Iiostocales
A-4--1. Familie Oscillatoriaceae
Gattg. Arthrospira Stizenverger (A. juneri),
" Gomontiella Teodoresco, " . Lyngbya Agardh (L. contorta)«
Microcoleus Desmazieres (M. vaginatus),
" Oscillatoria Vaucher (O-. formosa),
" Phormidium % Kutzing (P. autumnale)»
11 Po rphyro siphon Kutzing,
" Schizothrix Kutzing (S. purpurascens)»
" . Spirulina Turpin (S. princeps), " Symploca Kutzing (S. muscorum) vind
" Trichodesmium "Ehrenberg (T. lacustre).
A-4—2. Familie ITostocaceae
Gattg. Anabaena Bory (A. spiroides), 11 Anabaenopsis Woloszynska (A. arnordii),
~ 29100U
Gattg. Aph'anizomemcm Morren (A. flos-aquae),
" Cylindrospermum Ktltzing (C. muscicola)»
η Nodularia Martens (N. spumigena)i
" Ho s to c Vauctier (IT. verr co sinn, N. commune» IT. commune var. flagelliforme) und
" Vollea Boxnet et Flahault.
A-4-3. Familie riicrochaetaceae
" Cylindrospermum Ktltzing (C. muscicola)»
η Nodularia Martens (N. spumigena)i
" Ho s to c Vauctier (IT. verr co sinn, N. commune» IT. commune var. flagelliforme) und
" Vollea Boxnet et Flahault.
A-4-3. Familie riicrochaetaceae
Gattg. riicrochaete Thuret.
A-4--4-. Familie Eivulariaceae
Gattg. Amphitnrix Kiitzing,
n Calothrix Agardh (C. braunii)».
n Dichothrix Zanardini,
n Gloeotrichia Agardh,
11 Raphidiopsis Fritsch et Eich, und
n ■■ Rivularia Roth (R. globiceps).
A-4-5. Familie Scytonemataceae
Gattg. Plectonenva Ihuret, .
" Scytonema Agardh und Ir Tolypothrix Kützing.
A-4--6. Familie Brachytrichiaceae
Gattg. Brachytrichia Zanardini.
A-5. Ordng. Stigonematales A-5-1. Familie Pulvinular^iaceae
Gattg. PuIvinularia Borzi.
A-5-2. Familie Capsosiraceae
Gattg. Gapsosira (C. brebissonii).
A-5-3· Familie Nostochopsidaceae
Gattg. Mastigocoleus Lagerheim,
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BAD ORIGINAL
29100Τ4
Gattg. Nostochopsis Viood (W. wictraiannii).
Familie Stigonemataceae
Gattg.= Pischerella Gomont (F. major),
" Hapalosiphon Nägeli (H. intricatus),
11 MastigoeLadus Ghon"(M. 1 amino sus),
" Stigonema Agardh (S. ocellatum) und
n Westiella Borzi.
In der Klasse Cyanophyta werden Algen der Gattungen
Aphanocapsa, Aphanothece, Anacystis, Microcystis, Oscilla
toria, Spirulina, Anabaena und Nostoc bevorzugt. Solche der Gattungen Anacystis, Microcystis, Spirulina, Anabaena
und Nostoc werden besonders bevorzugt.
Klasse Rhodophyta
A. Unterkl. PROTOFLORIDEOPHYCEAE (PROTOFLORIDEAE, BANGIOPHYCEAE)
A. Unterkl. PROTOFLORIDEOPHYCEAE (PROTOFLORIDEAE, BANGIOPHYCEAE)
A-I. Ordng. Porphyridiales
A-l-1. Familie Porphsrrdiaceae
Gattg. Porphyridium Nägeli (P. cruentum) und
η . Vanhoeffenia Wille (V. antractica).
A-l-2. Familie Cyanidiaceae
Gattg. Cyanidium Geitler (C cardarium).
Δ--2» Ordng. Goni&trichales
A-2-1. Familie Goniotrichaceae
Gattg..· Asterocystris Gobi,
11 Goniotrichum Kützing (G. alsidii).
A-2-2. Familie Pharagmonemataceae
Gattg. Kyliniella Skuja (K. latrica) und 11 Pharagmonema Zopf (P. sordidum).
0SÖ019/O583 ,
ORIGINAL INSPECTED
'Iffy. 2911301
A-3- Ordng. Bangiales A-3-1· Familie · Erythropeltidaceae
Gattg. Erythroeladia Rosenvinge (E. subintegra) »
n ■ Erythropeltis Schmitz^
w Erythrotri cliia Areschoug (E. came a) und
w Porphyropsit, Rosenvinge (P. coccinea).
A-3-2. Familie Bangiaceae Gattg. Bangia Lyngbye (B„ fuscopurpuxea) xxnd.
n Porphyra Agardh (P. tenera).
A-4. Ordng. · Compsopogon al es
A-4—1. Familie Compsopogonaceae
Gattg. Compsopogon Montagne (C. oishii). A-5. Ordng. Rhodochaetales
A-5-1. Familie Rhodochaetaceae
Gattg. .Rhodoctiaete Thuxet.
B. Unterkl. FLORIDEOPHYCEAE (FLORIDEAE)
B-I. Ordng. Uemaliales B-l-1. Familie Acrocliaetiaceae
Gattg. Acrochaetiiim Nägeli,
n . Chantransia Fries (C. secundata) und
" Rhodochorton Wägeli (R. howei).
B-l-2. Familie Batrachospermaceae
Gattg. Batrachospenmam Roth (B. moniliforme) und
" Sirodotia Kylin (S. huillense).
B-l-3· Familie Lemaneaceae Gattg. Lemanea Bory.
B-l-4. Familie Naccariaceae Gattg.
> I'laccaria Endlicher.
030Ö19/0583
ORlGJNAL JNSPECTED
Β—1—5· Familie Bonnemaisoniaceae
Gattg. Asparagopsis riontagne (A. taxiformis),
11 Bonnemaisonia Agardh (B. hamif era) *
" Delisea Lamouroux (D. fimbriata) und
" Ptilonia J. Agardh (P. okadai). B-l-6. Familie Thoreaceae
Gattg. Thorea Bory (T. ramosissima).
B-l-7» Familie Helminthocladiaeeae
Gattg. CumafTloea Setchel et Gardner,
" Dermonema (Greville) Harvey (D. frappieri), " Helminthocladia J, Agardh (H„ australis),
" Liagora Lamouroux (L. caenomyce)«
11 · ITemalion Targioni-Tozzetti (N. vermiculare)»
und
Gattg. Trichogloes Kützing (T. requienii).
B-I-8· Familie Chaetangiaceae
Gattg. ^ctinotrichia Decaisne (A. fragilis)^
n Galaxaura Laraouroux (G. fastigiata),
" Gloiophloea J. Agardh (G. okamurai) und n Scinaia Bivona (S. japonica).
B-2. Ordng. Gelidiales
B-2-1. Familie Gelidiaceae
B-2-1. Familie Gelidiaceae
Gattg. Acanthopeltis Okamura (A. japonica)»
11 Gelidiella Feldmann et Hamel (G. acerosa)»
" Gelidium Lamotiroux (G* amansii),
" . Pterocladia J. Agardh (D. tennis) und
w Yatabelld Okamura (Y. hirsuta).
B-3. Ordng. Cryptonemiales
Ö3Ö019/0S83
" " 7 q ι η r>
; /
B- 3-1. Familie Cruoriaceae AOIU!4
Gattg. Cruoria Fries.
B-3-2. Familie Dumontiaceae
B-3-2. Familie Dumontiaceae
Gattg. Constantinea Posteis et Ruprecht
(C. subulifera),
Gattg. Dilsea Stackhouse (D. edulis),
n Dudresnaya Bonnemaison (D. japonica),
" Dumontia Lamourovix (D. incrassata),
w Farlowia J. Agardti (P. irregularis),
n Hyalo siphonia Okam-ura (H. caepitosa),
" IIeodilsea Tokida (N. yendoana) und
M Pikea Harvey (P- californica)..
B-3-3. Familie Rhizophyllidaceae
Gattg. Chondrococcus Eützing (C. japonica), " Contarinia Zanardini (C. okanrurai) und
" Rhodopeltis (Harv.) Schmitz (R. borealis).
B-3-^- Familie- Squamariaceae
Gattg. Cruoriopsis Dufour (C. japonica), " Hildenbrandia Nardo CH- rosea, H»
rivularis) wad
Gattg. ^eyssonnelia Decaisne (P. caulifera).
B-3-5. Familie Corallinaceae
Gattg. lmphiroa Lamouroux (A, dilatata)»
n Cheilosporum (Aresch.) Tendo (C.
jungermanniaides),
Gattg. Choreonema Schmitz (C. thuretii), n Corallina Lamouroux (C. officinalis),
n - . Dermatolithon Foslie (D. tumidulum),
030019/0 5.8 3 -
ORIGINAL INSPECTED
'
2 91O O V
Gattg. Fosliella Howe (F. zostericola),
11 Goniolithon Foslie (G„ sp.), 11 Hydrolithon Foslie (H. reinboldii),
" Jania Lamouroux (J. arborescens)» 11 Joculator Manza (J. maximus),
11 Lithophyllum Philippi (L. yendoi),
" Lithophorella Philippi (L. sp.)»
n Lithotharcnion Philippi (L. simulans),
11 Hastophora Harvey (M. rosea),
11 Melobaria Lamourotix und
11 Pachyarthron Man7la (P. cretaceum).
B-3-6. Familie Grateloupiaceae
Gattg. ■ Aeodes J. Agardh (A. lanceolata), n · Carpopeltis Schmitz (C. angusata),
" Cryptonemia J. Agardh (C„ schmitziana),
" Cyrtymenia Schmitz (C. sparsa)5
" Grateloupia Agardh (G. filicina),
" Halymenia J. Agardh (H. agardhii), " Pachymenia J. Agardh (P. carnosa)*
« Polyopes J. Agardh (P. polyideoides) und w Prionitis J. Agardh (P. patens).
B-3-7- Familie GIoiosiphoniaceae
Gattg. GIoiostiphonia Ceramichael (G. capillaris),
Gattg. Schimmelmannia Schousb (S. plumosa). B-3-8. Familie. Endocladiaceae
Gattg. · Endocladia J. Agardh) und w Gloeopeltis J. Agardh (G. tenax).
030019/05 83
ORIGINAL INSPECTED
B-3-9· Familie- Tichocarpaceae
Gattg. Tichocarpus Ruprecht (T. crinitus). B-3-10. Familie Callimeniaceae
Gattg. Callophyllis RtLt ζ ing (C. crispate),
" Callymenia J. Agardh (C. perforate) und " Euthora J.Agardh (E. fruticulosa).
B-3-11. Familie choreocolaceae
" Callymenia J. Agardh (C. perforate) und " Euthora J.Agardh (E. fruticulosa).
B-3-11. Familie choreocolaceae
Gattg. Choreocolax Reinsch
B-4-. Ordng. Gigartinales
B-4-1. Familie Calosiphonxaceae
Gattg.. Bertholdia Schmitz (B. japonica) und
M Calosiphonia Crouan (C. vermicularis). B-4—2. Familie Nemastomataceae
Gattg. Wemastoma J. Agardh (N. nakamurae),
" Platoma (Schousb.) Schmitz (P. izunosimensis) und
Gattg. Schizymenia J. Agardh (S« dubyi).
B-4-3- Familie Sebdeniaceae
Gattg. Sebdenia Berth (S. Yamadai).
B-4-4. Familie Gracilariaceae
Gattg. - Ceratodictyon Zanardini (C. spongiosum),
" Gelidiopsis Schmitz (G. hachijoensis),
" Gracilaria Greville (G. verrucosa) und " Tylotus J. Agardh (T. lichienoides).
B-4-5. Familie Plocamiaceae
B-4-5. Familie Plocamiaceae
Gattg. Plocamium (Lainour.) Lyngbye (P. telfairiae).
B-4-6. Familie Sphaerococcaceae
Gattg. Caulacanthus Rützing (C. okamurai),
Ö3Ö019/058
ORIGINAL INSPECTED
- Vf-
S 291 Ou H
Gattg. rhacelocarpus Endlicher et Diesing
(P. japonicus) und Gattg. Sphaerococcus Stackhouse.
B-4-7. Familie - Stictosporaceae
Gattg. Stictosporum Harrey.
B-4-8. Familie Sarcodiaceae
Gattg. Sarcodia J. Agardh (S. ceylanica) und
11 Trematocarpus Kiitzing (T. pygmaeus).
B-4-9. Familie Furcellariaceae Gattg. Furcellaria De Toni und
" Halarachnion Kützing (H. lattissimum),
B-4-10. Familie 'Solieriaceae
Gattg. Eucheuma J. Agardh (E. muricatum),
" · Heristotheca J. Agardh (11. papulosa), 11 Solieria J. Agardh (S. robusta) und
11 Turaerella Schmitz (T. martensiana).
B-4-11. Familie Rissoellaceae
Gattg. Rissoella J. Agardh. B-4-12. Familie Rhabdoniaceae
Gattg. Catenella Greville (C. opuntia) und
11 Rhabdonia Harvey. B-4-13. Familie Rhodophyllidaceae
Gattg. · Rhodophyllis Kützing. B-4-14-. Familie Hypneaceae
Gattg. Hypnea Kützing (H. charoides). B-4-15. Familie Mychodeaceae
Gattg. ^ riychodea Harvey.
Β-.Λ-16. Familie JJicranemataceae
0300 19/058
ORIGINAL INSPECTED
Gattg. Dicranema Sonder. B-4-17. Familie Acrotylaceae
Gattg. Acrotylus J. Aßardh.
B-4-18. Familie Phyllophoraceae
Gattg. Ahnfeltia Fries (A. concinna),
11 Gynnogongrus Martius (G. fTabelliformis),
" . Phyllophora Greville und 11 Stenogramma Harvey (S. interrupta).
B-4-19- Familie Gigartinaceae
Gattg. Chondrus Stackhouse (C ocellatum), " Gigartina Stackhouse (G. tenella) und
11 Iridaea Bory (I. cornucopiae).
B-5. Ordng. Rhodymeniales B-5-1. Familie Champiaceae
Gattg. Champia Desvaux (C. parvula), 11 Coeloseira Hollenherg (C. pacifica) und
" Lomentaira Lyngbye (L. catenata)«
B-5-2. Familie Rhodymeniaceae
Gattg. Botryocladia Kylin (B. leptopoda)» 11 Chrysymenia J. Agardh (C. wrightii),
" CoelarthruDi BörgesRn (C. muelleri),
M Cryptarachne Kylin (C. polyglandulosa)»
n Erythrocolon J. Agardh (E. podagricum),
11 Fauche a FIontagne et Bory (F. spinulosa)»
11 Gloioderma J. Agardh (G. japonica)»
n Halossaccion Ktltzing (H. saccatum),
n Rhodymenia Greville (R. palmata) und
n Weberella Schmitz (W. micäns).
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
2910ÜU
B-6. Ordng. Ceramiales
B-6-1. Familie " Ceramiaceae
B-6-1. Familie " Ceramiaceae
Gattg. · Acrothamnion J. Agardh (A. pulchellum) ,
11 Antithamrtion Nägeli (A. nipponicum),
" Callithamnion Lyngbye
(C. callophyllidicola)»
Gattg. Campylaephora J. Agardh (C. hypnaeoides),
Ir Centroceras Kützing (C. clavulatum),
11 Ceramium (Roth) Lyngbye (C. kondoi),
11 Crouania J. Agardh (C. attenuate),
n Dasyphila Sonder (D. plumarioides)»
Ir Dellesseriopsis Okamura (D. elegans),
11 = Eup-tilo-ta Kützing (E. artieulata)»
"" Griffithsia Agardh (G. japonica),
" Herpochondria Falkenberg (H. corallinae)»
" " Hicrocladia Greville- (M. elegans)»
·· · Monospora Solier (Me tenuis),
M Platythamnion J. Agardh (P. yezoense)»
w Plenosporrum Nägeli (Ρ« kobayashii),
« Plumaria (Stackh.·) Schmitz (P. ramosa)»
"" . Plumariella Okamura (P. yoshikawai),
n Psilothallia Schmitz (P. dentata)»
", - Ptilota Agardh (P. pectinada)*
11" Reinboldiella De Toni (R. schmitziana)»
Ir Rhodocallis Kützing (R. elegans),
" Spermothamnion Areschoug (S. endophytica),
11 Spyridia Harvey (S. filamentosa),
" Trailliella Batters (T. intricata) und
€300 19/0583
ORIGINAL
29TOl)
Gattg. Wrangelia Agardh (W. argüs), B-6-2. Familie Delesseriaceae
B-6-2-(l) Unterfamilie Delesserioldeae
Gattg. Brachxoglossum Kylin (B. ciliatum),
" . Caloglossa.(Harv.) <T. Agardh
(C. leprieurii),
Gattg. Delesseria (Lamour.) Kylin (Do violacea),
« Hemineura Harvey (H. schmitziana),
« Holmesia J. Agardh (H. japonica),
π Hyploglossuiii Kiitzing (H. geminatum),
" Laingia Kylin (L. pacificä). und
11 Membranoptera Stackhouse (M. robbeniensis),
B-6-2-(2) Unterfamilie Nitophylloideae
Gattg. Acrosorium (Zan.) Kylin {A. yendoi),
11 Erythroglossum (J. Ag.) Kylin (E. repens),
11 Hypophyllum Kylin (H. midendorfii),
11 I-lartensia Hering (TT. denticuilata),
" Myriogranme Kylin (M. polyneura),
M Nienburgia Kylin (N. japonica)»
η Nitophyllum Greville (N. stellatocorticatum),
Gattg. Phycodrys (Kütz.) Kylin (P. fimbriata),
11 Polycoryne Skottsberg (P. denticulata)
vmd
Gattg. Pseudophycodrys Skottsberg (P. rainoskei). B-6-2(3) Unterfamilie Sarcomenioideae
Gattg. Sarcomenia Sond.
w Taenioma J. Agardh (T. perpusillum) und
w Taenioma J. Agardh (T. perpusillum) und
0300 1-9/0583"
ORIGINAL INSPECTED
Gattg. Vanvoorstia Harvey (V. coccinea). B-6-3. Familie Rhodomelaceae
B-6-3-(l) Unterfamilie Polyslphonioideae
Gattg. Digenia Agardh (D. simplex)» " Polysiphonia Greville (P. morrowii) und
" Tolypioeladia Schmitz (T. gloinerulata) .
B-6-3-(2) Unterfamilie Lophothalioideae
Gattg. Isoptera Okamüra (I. regularis)»
" Lophothalia Kützing und " WrightLella Schmitz (¥. loochooensis).
B-6-3-(3) . " Unterfamilie Bostrychioideae
Gattg. Bostrychia Montague (B. tenella, B.
flagellifera» B. tenuis f. simpliciuscula).
6-6-3-(^) . Unterfamilie Rhodomeloideae
Gattg. Odonthalia Lyngbye (O. corymbifera)-TJnd
" Rhodomela Agardh (R. larix). B-6-3-(5) Unterfamilie Chondrioideae
Gattg. Acanthophora Lamouroxrx: (A. orientalis)j
" Acrocystis Zanardini (A. nana) und " Chondria Agardh (C. dasyphylla).
B-6-3-(6) Unterfamilie Laurencieae
Gattg. Laurencia Lamouroux (L. intermedia). B_6-3-(7) -Unterfamilie Pterosiphonioideae
Gattg. · Pterosiphonia Falkeixberg (P. pennata) und
" Symphiocladia Falkenberg (S. latiuscula). B-6-3-(8) ' Unterfamilie Herposiphonioideae
Gattg. Herpopteros Falkenberg (H. zonaricola) und
" Herposiphonia Nägeli (H. fissidentoides).
0^0019/0583
291 OÖH
B-6-3-C9) Unterfamilie Lophosiphonioideae
Gattg. Lophosiphonia Falkenberg. B-6-3-(lO) Unterfamilie Polyzonioideae
Gattg. Euzoniella Falkenberg (E. ocellata)»
" Leveillea Decaisne (L» jungermannioides)»
und
Gattg. · Polyzonia Suhr.
B_6-3-(ll) Unterfamilie Amansioideae
Gattg. Amansia Lamouroux (A. japonica),
« Aneura (J. Ag.) V. von Bcsse (A« lorenzii)»
" Enantiocladia Falkenberg (E. okamurai),
" Neiirymenia J. Agardh (R» fraxinifolia)-und
n Vidalia Lamouroiax (V» obtusiloba) *
B-6-4. Familie Dasyaceae
Gattg. Benzaitenia Yendo (B. yenostiimaensis),
" Dasya Agardh. (D. sessilis)»
n Dasyopsis Zanardini (D. pliimosa) und
" Heterostiphonia Kontagne (H. ptilchra).
In der Klasse Rhodophyta werden Algen der Gattungen Porphyridixam, Porphyra, Helminthocladia, Gelidium, Corallina,
Mastophora, Grateloupia, Gloiosiphonia, Gloepeltis, Nemastoma, Ceratodictyon, Sarcodia, Gymnogongrus, Laingia und
Nitophyllum bevorzugt. Solche der Gattungen Porphyridium,
Porphyra xmd Gelidium werden besonders bevorzugt.
Klasse Chrysophyta A. Unterklasse CHRYSOPHYCEAE
A-I. Ordng. . Chrysomonadales
0300 19/0583
ORlGiNALINSPECTED
A-l-1. Familie Chronulinaceae
Gattg. Amphichrysis Korshxkov,
" Chromulin Cienkowski.. (C. rosanoffii),
" Chrysapsis Pascher,
" Chrysocaccus Kle"bs und 11 Kephyrion Pascher.
A-l-2» Familie Mallomonadaoeae
" Chrysocaccus Kle"bs und 11 Kephyrion Pascher.
A-l-2» Familie Mallomonadaoeae
Gattg. Chrysosphaerella Lauterborn (C. longispina), und
Gattg. Ma-llomonas Perty (M. caudata).
A-l-3. Familie Crytophoraeeae
Gattg. Crytophora Pascher» A-1-4-. Familie Isochrysidaceae
Gattg. Derepyxis Stokes (D. dispar) und
n Syncrypta Ehrenberg.
A-l-5« Familie Coceolithophoridaceae Gattg. Coccolithus Schwarz und
" Hymenomonas Stein.
A-l-6. Familie " Synuraceae
Gattg. Synura Ehrenberg ^S. uvella).
A-l-7» Familie" Ochromonadaceae)
Gattg. Chrysobotrys Pascher y
" Ochromonas Wystozi und
" Uroglena Ehrenberg (TJ. volvox). A-l-8. Familie · rionadaceae
Gattg. Monas Müller. A-I-Ci · Familie. Lepochromonadaceae
Gattg. Dinobryon Ehrenberg (B. sertularia),
0 30019/0583
ORIGINAL INSPECTED
Gattg. Hyalobryon Lauterbon (H. niucicola) und
" Epipyxis Ehrenberg (E. tabellariae).
A-I-10. Familie Prymnesiaceae
Gattg. Prymnesium Massart.
A-2. Ordng, Rhizochrysidales A-2-1. Familie Rhizochrysidaceae
Gattg. Rhizochrysis Pascher.
A-2-2. Familie· Laginiaceae Gattg. Chrysopyxis Stein (C. bipes) und
11 Lagynion Pascher (L. scherff elii)
A-3- Ordng. Silicoflagellales (Silicoflagellata)
A-3-1. Familie Dictyochaceae Gattg. Dictyocha Ehrenberg und
" Mesocena Ehrenberg. A-^-. Ordng. Chrysocapsales
A-4--1. Familie Ghrysocapsaceae Gattg. Chrysocapsa Pascher (C. planctonica) und
" Phaeosphaera V/. et G.S. Vest (P. perforata).
A-M- 2. Familie Naegeliellaceae ■
Gattg. ITaegeliella Correns A-4-J. Familie Hydruraceae
Gattg. Hydrurus Agardh (H. foetidus). A-5· Ordng. Chrysosphaerales
A-5-1» Familie Chrysosphaeraceae
Gattg. Chrysosphaera Pascher und
B - Epichrysis Pascher. A-6. Ordng. Chrysotrichales
A-6-1. Familie ITematochrysidaceae
Ö3ÖÖ19/0583
ORIGINAL INSPECTED
- 25 - ■ ■
Gattg. Fematochrysis Paschr.
A-6-2. Familie Phaeothamniaceae
Gattg. Phaeothamnion Lagerheim (P. confervicola).
A-6-3. Familie Thallochrysidaceae
Gattg. Thallochrysis Conrad.
B. Unterklasse XANTHOPHYCEAE (HETEROKONTAE)
B-I. Ordng. Heterochloridales
B-l-1. Familie Heterochloridaceae Gattg. Heterochloris Pascher,
" Iihizochlöris Pascher.
B-2. Ordng. Heterocapsales .. B-2-1.- Familie Heterocapsaceae
Gattg. Botryococcus Kützing- (B. Tsraunii) und
" Gloeochloris Pascher. B-2-2. Familie Ilischococcaceae
Gattg. Mischocoecus Nägel! (M. confervicola).
B-3- Ordng. Heterococcales
B-3-1. Familie Stipitococcaceae
B-3-1. Familie Stipitococcaceae
Gattg. Stipitococcus W. et G.S. West
(S. urceolatus). B-3-2. Familie Halosphaeraceae
Gattg. Botrydiopsis Borzi (B. arhiza).und
" Halosphaera Schmitz. B-3-3. Familie Myxochloridaceae
Gattg. Myxochloris Pascher. B-3-M-. Familie Chlorolaotrydaceae
Gattg. Centritractus Lemmermann (C, belonophorus)»
11 Chlorobotrys Bohlin (C. regularis)»
030019/0583
- 36Γ - ■
Gattg. Gloeobotrys Pascher und
11 Tetraödriella Pascher.
B-3-5. Familie Chlorotheciaceae
Gattg. Characiopsis Borzi (C. minima)» n Chlorothecium Borzi und
n Peroniella Gobi (P. planctonica).
B-3-6. Familie Cphiocytiaceae
Gattg. Ophiocytium Mgeli (0, majus).
B-4-. Ordng. Heterotrichales
B-4-1. Familie Toribonemataceae Gattg. Bumilleria Borzi und
M Tribonema Derbes et Solier (T. aequale).
B-/}~2. Familie Heteroclonxaceae
Gattg. Heterodendron Steinecke (H. viridis). B-5. Ordng. Hetero sxphonales
B-5-1. Familie Botrydiaceae
Gattg. BotrydiiuB Wallroth (B-. granulatum).
B-5-2. Familie Vaucheriaceae
Gattg. Vsucheria De Candoile (V. sessilis).
C. Unterklasse BACILLARIOPHYCEAE (DIATOMS)
C-I. Ordng. · Centrales C-I-(I) Unterordnung .Discoidineae
C-I-(I)-I. Farn. Discaceae Gattg. Arachnodiscus Bailey»
n Coscinodiseus Ehrenberg (C. asteromphalus),
" Cyclotella Kützing,
"■ Planktoniella Shütt (P. sol), 11 Melosira Agardh (M. varians),
030019/0583
-■ίί- 2 Β1 ϋ ΰ U
Gattg. Skeletonena Greville» n Stephanodiscus Ehrenberg (S. astaea),
" Stephanopyxis Ehrenberg und " Thallasiosira Cleveο
C-I-(2) Unterordnung Solenoidineae
C-l-(2)-1. Farn. Soleniaceae
C-l-(2)-1. Farn. Soleniaceae
Gattg. Rhizosolenia Ehrenberg (R. eriensis).
C-I-O) Unterordnung Biddulphioidineae C-I-C3)-l· Fa"l·· Biddulphiaceae
Gattg. Attheya T. West, " Bacteriostrum Shadbolt,
" Biddulphia Gray (B. pulchella),
" Ghaetacerus Ehrenberg (C. densus) und"
" Trie era -turn Ehrenberg.
C-I-(4) Unterordnung Rutilarioineae C-I-(4).-!t Fam. · Rutilariaceae
Gattg. Rutilaria Greville (R. edentata).
C-2. Ordrtg. Fennales
C-2-(l) Unterordnung: Araphidineae C-2-(l)-l* Farn. Fragilariaceae Gattg. Asterionella Hassall (A. formosa), 11 · Ceratoneis Ehrenberg, 11 Diatoma De Candolle, " -.' Fragxlaria Lyngbye C^. capucina), n Rhabdonema Kützing,.
C-2-(l) Unterordnung: Araphidineae C-2-(l)-l* Farn. Fragilariaceae Gattg. Asterionella Hassall (A. formosa), 11 · Ceratoneis Ehrenberg, 11 Diatoma De Candolle, " -.' Fragxlaria Lyngbye C^. capucina), n Rhabdonema Kützing,.
11 Synedra Ehrenberg (S. gracilis) und
" ■ Tabellaria Ehrenberg (T. fenestrata).
C-2-(2) Unterordnung Raphidineae
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ORIGINAL INSPECTED
- 2» - ■■;■-■-
- 59- . . ' 291GöT4
C-2-(2)-l. Farn. Eunotiaceae
Gattg. Eunotia Ehrenberg (E. chasei), C-2-C3) Unterordnung Monoraphidineae
C-2-(3)-l. Farn. ' Achnantheaceae
Gattg. Achnanthes Bory (A. inflata). und
" Cocconeis Ehrenberg (C plaeentula).
C-2-(4) Unterordnung Biraphidineae C-2-(4-)-l. Farn. Naviculaceae
Gattg. Aciphipleura Kützing (A. pellucid), - - ,
11 Amphiprora Ehrenberg (A. al ata):,
11 Amphora Ehrenberg (A. ovalis),
n Cymbella Agardh (C tiimida)»
B Frustulia Rabenhorst (Fo rhomboides)»
11 Gomphonema Agardh (G. acuminatum),
" Navicuta Bory (N. radiosa), " Pinnularia Ehrenberg (P. viridis),
M Pleurosigma V. Smith und
w Stauroneis Ehrenberg.
C-2-(4)-2. Farn. Epithemiaceae Gattg.Epithemia Brebisson (E. turgida) und
". ■ Ehopalodia O. Müller (R. gibba).
3. Farn. ' ITitzschiaceae .
Gattg. Bacillaria Gmelin und
n Nitzschia Hassall (If". vitrea).
4-. Farn. Surirellacease
Gattg. Campylodiscus Ehrenberg, Cymatopleura W. Smith und
Surirella Turpin (S* biserrata).
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
29100H
In der Klasse Chrysophyta werden Algen der Gattungen Chromulin, Botryococcus, Mischococcus, Coscinodiscus, Skeletonema, Chaetoeerus, Fragilaria und Navicula bevorzugt.
Solche der Gattungen Coscinodiscus, Skeletonema, Chaetocerus und Navicula werden besonders bevorzugt.
Klasse Pyrrhophyta
A. Unterklasse CRYPTOPBYCEAE
A-I. Ordng. <Jryptoinonadales
A-l-1. Familie Crypfromonadaceae
Gattg. , Chroomonas Hansgirg,
" Crjrptochrisis Pascher, " - Cryptomonas Ehrenberg (.-C>
erosa), " ' Cyatomonas Fornent-el und
n Rhodomonas- Karsten.
A-l-2. Familie Nepliroselmidaceae - ·'
Gattg. Nephroselmis Stein und :
" Protochrysis Pascher. . ..-. A-2. Ordng. ■ Cryptocapsales■
A-2-1. Familie Phaeococcaceae
Gattg. Phaeococcus Borzi. A-3- Ordng. Cryptococcales
A-3-1. Familie Cryptococcaceae Gattg. Tetragonidium Pascher.
B. Unterklasse DINOPHYCEAE B-(A) Subklasse
B-(A)-I. Ordng. Desmomonadales
B-(A)-I-I. Farn. Desinocarpaceae
30019/0583
ORIGINAL INSPECTEC
-3f- . 23100:4
Gattg. Desmocarpa Crouan und
11 Desmomastix Pascher.
B-(A)-2. Ordng. Thecatales B-(A)-2-l. Fam. Prorocentraceae
Gattg. Exuviaella Cienkowski und
" Prorocentrum Ehrenberg.
Β-(Α)-3· Ordng. Dinophysiales Β-(Α)-3-1· Fam. Dinophysiaceae
Gattg. Dinophysis Ehrenberg und
n Pharaeroma Stein. B-(A)-3-2. Fam. Amphisoleniaceae
Gattg. Araphisolenia Stein.
B-(B) Subklasse
B-(B)-I. Ordng. Peridiniales B-(B)-I-I. Fam. Pronoctilucaceae
B-(B)-I. Ordng. Peridiniales B-(B)-I-I. Fam. Pronoctilucaceae
Gattg. Pronoctiluca Fabre-Domerque.
B-(B)-l-2. Fam. " Gyranodiniaceae Gattg." Amphidinium Claparede et Lackmann und
n . GyDmodinium Stein (G« neglectum).
B-(B)-l-3. Fam. Polykrikaceae
Gattg. Polykrikos Bütschli. B-(B)-l-4. Fam. Boetiliieaceae
Gattg. Noctiluca Suriray (IT. scintillans).
B-(B)-l-5- Fam. ■ ¥arnawiaceae
Gattg. Erythropsis Hertwig und
11 Wsrnowia Lindemann.
B-(B)-l-6. Fam. Blastodiniaceae Gattg. Blastodinium Chatton und
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ORIGINAL INSPECTED
Gattg. Oodinium Ohatton. B-(B)-l-7. Farn. Glenodiniaceae
Gattg. Glenodinium Stein (G. cinctum).
B-(B)-l-8. Farn. Protcceratiaceae
Gattg. Protoceratium Bergh).
B-(B)-l-9- Farn. Gonyaulaxaceae
Gattg. Gonyaulax Diesing«,
B-(B)-I-IO. Farn. Peridiniaceae
Gattg. Peridinium Shrenberg (P. v/isconsinensis)
B-(B)-I-Il. Farn. Ceratiaceae
Gattg. Ceratium Schrank (C. hirundinella).
B-(B)-1-12. Farn. Goniodomaceae
Gattg. Goniodoma Stein. B-(B)-1-13. Farn. Ceratocoryaceae
Gattg. Ceratocorys Stein. B-(B)-I-I^. Farn. Podolampaceae
Gattg. Podolampas S^ein.
B-(B)-2. Ordng. Dinocapssles B-(B)-2-l. Farn. Dinocapsaceae
Gattg. Glenodinium Klebs (G0 montanum) und
11 Urococcus Kützing (U. insignis).
B-(B)-J. Ordng, Rhizodinales B-(B)-J-I. Farn. Rhizodiniaceae
Gattg. Dinamoebidiiom Pascher.
B-(B)-4. Ordng. Dinococcales B-(B)-^-I. Farn. Dinococcaceae
Gattg. Cystodinium Klebs (C. iners).
Klebs,
3 Ü 0 1 9 / 0 b Π Ί
BAD
-33- ; 2diL.
Gattg. Styloclinium Klebs und
11 Tetradinium Klebs (T. javanicum).
Β-(Β)-5. Ordng. Binotrichales
B-(B)-5-l. Farn. Dinotrichaceae
Gattg. Dinothrix Pascher (D, paradoxa). B-(B)-1?-;?. Fam. Dinocloniaceae
Gattg. Dinoclonium Pascher (D. coriradi).
C. Unterklasse CHLOROMONADOPHYCEAE
C-I. Ordng. Chloromonadales
C-l-1. Familie Chloromonadaceae
Gattg. Gonyostmun Liesing (G0 senen),
11 Merotrichia MerescbJcowski (ΓΙ. ca itata),
11 Trentonia Stokes und
" Vacuolaria Cienkowski,
In der Klasse Pyrrhophyta werden Algen der Gattungen Exuviaella
und Amphidinium bevorzugt.
Klasse Phaeophyta A. Unterklasse ISOGENERATE
A-I. Ordng. Ectocarpales
A-I-1. Familie Ectocarpaceae
Gattg. Bodanella W. Zimmermann (B. lauterbornii), " Ectocarpus Lyngbye (E. breviarticulatus)»
" Feldmannia Hamel,
" Pleurocladia Gran,
" Pylaiella Bory (P. littoralis) und " Sorocarpus Pringsheim (S. uvaeformis). A-I-2. Familie Ralfsiaceae
" Pleurocladia Gran,
" Pylaiella Bory (P. littoralis) und " Sorocarpus Pringsheim (S. uvaeformis). A-I-2. Familie Ralfsiaceae
Gattg. Heribaudiella Gomont (H. fluviatilis)»
0 30 0 19/0583
BAD ORIGINAL
Gattg. Lithoderma Areschoug und.
11 Ralfsia Berk (R. .fu^iformis).
A-2. Ordng. Sphacelariales Λ-2-1. Familie Sphacelariaceae
Gattg. Chaetopteris Kützing,
" Sphacelaria Lyngbye (S. furcigera) und
" Sphacello Reinke.
A-2-2. Familie Stypocauloceae
A-2-2. Familie Stypocauloceae
Gattg. Halopteris Kützing (H. filicina) und
" Stypocaulon Kützing.
A-2-3- Familie Cladostephaceae
Gattg. Cladostephus J. Agardh.
A-2-4. Familie Choristocarpaceae
Gattg. Choristocarpus Zanardini).
Λ-3. Ordng. Cutleriales A-3-1. Familie Cutleriaceae
Gattg. Cutleria Greville (C. cylindrica) und
11 Zanardina Wardo.
A-4-. Ordng. Tilopteridales A-4-1. Familie Tilopteridaceae
Gattg. Haplospora Kjellman und
" Tilopteris Kützingo Α-5· Ordng. Dictyotales
A-5-1- Familie Dictyotaceae
Gattg. Dictyopteris Lamouroux (D. latiuscula),
" Dictyota Lamouroux (D. dichotoma), " Dilophus J. Agardh (D, okamurai),
" Distromium Levring (D. repens),
0 300 19/058 3
. BAD ORiGINAi,
. BAD ORiGINAi,
-3S- 29 1:.: C ;
Gattg. Iionoestrichus «J. Agnrdh (H. flabellatus)»
11 Fachydictyon J. Agardh (F. coriaceiiiri) >
11 Fadina Ad an son (P. arborescens),
" Pocockiella Papenfuse (P. variegata),
11 Spathoglossum KtIt?,inc (S. pacificum) ,
11 Stypopodiuni Kützinp; (S. zonale) und
" Zonaria J. Agardh (Z. diesinfiana).
B. Unterklasse HETEROGENERATE
B-I. Ordng. Cliord ari ales
B-l-1. Familie Hyrioneiriataceae
Gattg. Conpsonena Kuckuck und
11 Lyrionema Gre\rille.
B-l-2. Familie Elachistaceae
Gattg. Elachista Duby (E. tainiaeformis) und
" Halothrix Reinke (H. auibifrua).
B-l-3. Familie Leathesiaceae (Corynophloeaceae) Gattg. Corynophloea Kützing,
" Leathesia S.F. Gray (L, difformis) und
" Pterospongiiim Nägeli (P. ru^osum).
B-I-4. Familie Chordariaceae (IIesogloiaceae)
Gattg. Chordaria Apardh (C. flagelliforinis),
" Cl ado siphon KtIt zing (C„ okamuranus) j
n Eiadesme J. Agardh (E. riescens),
" Heterochordaria Setchell et Gardner
(H. abietina),
Gattg. Kesogloia Agardh,
" Papenfussiella Kylin (P. kuromo),
Gattg. Kesogloia Agardh,
" Papenfussiella Kylin (P. kuromo),
11 Saiindersella Kylin (G. simplex),
0 3 0 Π 1 9 / 0 b B Ί
BAD ORIGINAL
- 16 -
.36- 29100'h
Gattg. Sphaerotrichia KyIin (S. divaricata) und
n Tinocladia KyIin (T. crassa).
B-l-5. Familie Spermatoclinaceae
Gattg. Ishige Yendo (I. okamurai)»
n Myelophycus Kjellman (M. simplex) und
11 Nemacystus Derbes et Solier (N. decipiens).
B-l-6. Familie Acrothricaceae
Gattg. Acrothrix Kylin (A. pacifica).
B-l-7» Familie Chordariopsidaceae Gattg. Chordariopsis Kylin.
B-l-8. Familie Splachnidiaceae
Gattg. Splachnidium Greville. B-2, Ordng. Sporochnales
B-2-1. Familie Sporochnaceae
Gattg. Carpomitra Kützing (C. cabrerae)»
" Nereia Zanardini (N0 intricata) und
" Sporochnus Agardh (S. scoparius). B-3» Ordng. Desmarestiales
B-3-lo Familie Arthrocladiaceae
Gattg. Arthrocladia Duby. B-3-2. Familie Desmarestiaceae
Gattg. - Desmarestia Lamouroux (D. ligutat).
B-4» Ordng. Dictyosiphonales
B-4-1. Familie Striariaceae
Gattg. Kjellmania Reinke (E. arasakii),
" Stictyo siphon Ktitzing und
11 Striaria Greville (S. attenuate). B-4--2. Familie Giraudiaceae
030Ö19/0583
ORIGINAL INSPECTED
~ 36 -
-3>- 29100.U
Gattg. Giraudia Derbes et Solier.
B-4-3. Familie Fiyriotrichiaceae
Gattg. Myriotrichia Harvey. B-4-4. Familie Punctariaceae (Asperococcaceae)
Gattg. Asperococcus Lamouroux (A. bullosus),
" Colpomenia Derbes "at"Solier (C. sinuosa),
" Endarachne J. Agardh (E. binghamiae),
" Hydroclathrus Bory (H. clathratus),
» Melanosiphon Wynne (M* intestinales)»
" Petalonia Derbes et Solier (P. fasia),
" Punctaria Greville (P. latifolia)*
" Scytosiphon Agardh (S. lomentaria) und
« Soranthera Posteis et Ruprecht
(S. ulvoidea). B-4-5. Familie Chnoosporaceae
Gattg. Akkesiphycus Yamada et Tanaka
(A. lubricum) und
M Chnoospora J. Agardh (C. implexa).
B-4-6. Familie Dictyosiphonaceae
Gattg. Coilodesme Stroemfelt (C. japonica) und
11 Dictyosiphon Greville (D. foeniculaceus).
B-5· Ordng. Laminariales
B-5-1· Familie Chordaceae
Gattg. Chorda Stackhouse (C. filum). B-5-2. Familie Laminariaceae
Gattg. Agarum Bory (A. criburosum),
n Arthrothamnus Ruprecht (A. bifidus)t
" Costaria Greville (C. costata),
OSÖÖiÖ/0583'.
ORIGINAL INSPECTED
291Ü0U
Gattg. Cymathere J. Agardh (C. triplicata),
" Hedophyllum Setchell (H. Κιάτοshioense)»
11 · Kjellmaniella riiyabe (K. gyrata),
11 Laminaria Lamouroux (L. japonica)»
11 Strep topliyllum Kiyabe et Nagai
(S. spirae) und
Gattg. Thallassiophyllum Pöstels et Ruprecht
Gattg. Thallassiophyllum Pöstels et Ruprecht
(T. clathrus).
B-5-3· Familie Lessoniaceae Gattg. Lessonia Bory,
" . Macro cystis Agardh (Γ!. pyrifera) und
w IIereocystis Posteis et Ruprecht. B-5-4-. Familie Alariaceae
Gattg. Alaria Greville (A«, crassifolia)»
" (Ecklonia Hornemann (E. cava),
" Eckloniopsis Okamura (E. radicosa), " Eisenia Areschoug (E. bicyclis),
" Pleuropterum Iliyabe et iTagai
(P. paradiseum) und
Gattg. . Undaria Suringar (U. pinnatifida).
C. Unterklasse CYCLOSPOREAE
C-I. Ordng. Fucales
C-1-1. Familie Ascoseiraceae
C-1-1. Familie Ascoseiraceae
Gattg. Ascoseira Skottsberg. C-l-2. Familie Durvilleaceae
Gattg. Durvillea Bory. C-l-3. Familie llotheiaceae (Hormosiraceae)
Gattg. Hormosira (Endl.) Meneghini und
G3ÖÖ19/0583
ORIGINAL INSPECTED
29100H
Gattg. IIotheia Harvey.
C-l-4. Familie Fucaceae
Gattg. Fucus L. (F. evanscens),
n Pelvetia Decne (P. wrightii),
" Phyllospora Agardh und
n Scytothalia Greville.
C-l-5» Familie Hiinanthaliaceae
Gattg. Himanthalia Lyngbye.
C-l-6. Familie Cystoseiraceae
Gattg. Cystophyllim J«, Agardh (C. sisymbrioides),
n Cystoseira Agardh (Co prolifera) und
" Halidrys Lyngbye.
C-l-7. Familie Sargassaceae
Gattg. Acystis Schiffner,
" Coccophora Greville (C. langsdorfii),
" Hizikia Okamura (H. fusiforme)»
" Sargassum Agardh (S. fulvellixm) und
" Turvinaria Lamouroux (T. ornata).
In der Klasse Phaeophyta werden Algen der Gattungen Sphacelaria,
Papenfussiella, Nemacystus, Colpomenia, Kjellmaniella, Laminaria, Macrocystis, Eisenia und Undaria bevorzugt. Solche der
Gattungen Nemacystus, Laminaria und Undaria werden besonders bevorzugt.
C VI3 Klasse Euglenophyta
A. Unterklasse EUGLENOPHYCEAE A-I. Ordng. Euglenales
A-I-1. Familie Euglenaceae Gattg. Ascoglena Stein,
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
Gattg. Cryptoglena Ehrenberg, " Euglena Ehrenberg (E. gracilis),
11 Eutreptia Perty (E. viridis)»
" Lepocinclis Perty (L. fusiformis)» " Phacus Dujardin (P. acuminatus) und
" Trachelomonas Ehrenberg C einschließlich Strobomonas Deflandre) (T. volvocina).
A-l-2. Familie Astasiaceae
Gattg. Astasia Ehrenberg (A. lagenula) und
" Distigma Ehrenberg (D. proteus). A-l-3. Familie Rhynchopodaceae
Gattg. Ehynchopus Skuja.
A-I-^. Familie Peranemaceae
Gattg. Anisonema Dujardin (Λ. acinus),
11 Entosiphon Stein (E0 sulcatum),
" Euglenopsis Klebs?
" Peranema Dujardin (P. trichophorum),
" Petalomonas Stein und " Uroceolus Tiereschkowsky«.
A-l-5. Familie Ehizaspidaceae
Gattg. Ehizaspis Skuja.
A-2. Ordng. Colaciales A-2-1. Familie Colaciaceae
Gattg. Ehizaspis Skuja.
A-2. Ordng. Colaciales A-2-1. Familie Colaciaceae
Gattg. Colacium Ehrenberg (C- arbuscula).
In der Klasse Euglenophyta werden Algen der Gattung Euglena
bevorzugt.
Klasse Chlorophyta
Unterklasse CHLOROPHYCEAE
Unterklasse CHLOROPHYCEAE
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
-M-
A-I. Ordng. Volvocales
A-l-1. Familie Chlamydomonadaceae
A-l-1. Familie Chlamydomonadaceae
Gattg. Carteria Die sing (C-
n Chlamydomonas Ehrenberg (C-
" Eudorina Ehrenberg (E. unicocca),
" Gonium Müller (G- pectorale),
n Pandorina Bory (P. morum),
" Pascheriella Korshikov»
" Platidorina Kofoid (P.. caudata),
" Platymonas G.S. West,
" Pleodorina Shaw (P. californica),
n Po Iy to ma Ehrenberg und . "
" Volvox (L.) Ehrenberg (V. aureus).
A-l-2. Familie Haematococcaceae
Gattg. Haematococc/us Agardh (H. lacustris).
A-l-3. Familie Polyblepharidaceae
Gattg. Polyblepharides Dangeard und
n Pyraminonas Schmarda-A-l-4.
Familie Phacotaceae
Gattg. Coccomonas Stein,
n Dysmorphococcus Takeda»
w Phacotus Perty (P. lenticularis) und
" Pleromonas Seligo (P. aculeata).
A-2. Ordng. Tetrasporales
A-2-1· Familie Tetrasporaceae
Gattg. Apiocystis Nägeli (A. brauniana),
11 Collinsiella Setchell et Gardner
(C. tuberculata)»
03ÖÖ19/O583
ORIGINAL INSPECTED
" if* " ■ 2&100U
Gattg. Schizochiamys Λ. Braun und
11 Tetraspora Link (E. lubrica).
Λ-2-2. Familie Palmellaceae
Gattg. Askenasyella Schmidle (A. chlamydopus),
11 Asterococcus Scherffel (A. superbus),
" Coccomyxa Schmidle»
·· Elakatothrix Wille (Eo gelatinosa),
" Gloeocystis Nägeli (G. ampla),
" Palmella Lyngbye (P. miniata)j
" Palmodictyon Kützing (P. viride) und
" Sphaerocystis Chodat {S. schroeteri). A-2-3· Familie Chlorangiaceae
Gattg. Chlorangium Stein, n Hormotila Borzi,
M Prasinocladus Kuckuck (P. lubricus) und
" Stylosphaeridium Geitler.
A-3. Ordng. Chlorococcales
A-3-1. Familie Chlorococcaceae
A-3-1. Familie Chlorococcaceae
Gattg. Characium A. Braun (C. ambiguum),
" Chlorochytrium Cohn,
n ChIorococcum Fries (C. echinozygotum),
" Kentrosphaera Borzi,
11 Eho do c hy tr ium Lagerheim, " - Schroederia Lemmermann (S. setigera) und " Trebouxia De Puymaly (symbiotic algae on lichens).
A-3-2. Familie Eremosphaeraceae
11 Eho do c hy tr ium Lagerheim, " - Schroederia Lemmermann (S. setigera) und " Trebouxia De Puymaly (symbiotic algae on lichens).
A-3-2. Familie Eremosphaeraceae
Gattg. Eremosphaera De Bary.
€30019/0583
ORIGINAL INSPECTED
Α-3-3· Familie Chlorellaceae
Gattg. Acanthosphaera Lemmermann,
" Chlorella Beijerinck (C. vulgaris)»
" Goleiikinia Chodat (G. radiata),
11 Plier actinium Fresenius (M. pusillum),
" Polyedriopsis Schmidle (P. spinulosa),
" Radiococcus Schmidler»
" Tetraödron Kützing (T. reguläre) und
w Trochiscia Kutzing (T. aspera).
A-3-4-. Familie Oocystaceae
Gattg. Bohlinia Lemmermann,
" Chodatella Lemmerman,
11 Desmatractum V/. et G.S. West
(D. bipyramidätum),
" Franceia Lemmermann (F. tuberculata),
w Gloeotaenium Hansgirg,
w Lagerheimia Chodat,
n Makinoella Okada (M. tosaensis)»
" Nephrocytium Nägeli (N. lunatus)»
n Oocystis Nägeli (O. borgei) tind
" Scotiella Fritsch (S. nivalis). A-3-5. Familie Selenastraceae
Gattg. Actinastrum Lagerheim (A. hantzii)»
n Ankxstrodesmus Corda (A. falcatus)»
" Closteriopsis Lemmermann (C. longissima),
n Dactylococcus Nägeli»
" Kirchneriella Schmidle (K. lunaris),
w Quadrigula Printz (Q. chodatii)
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
Gattg. Selenastrum Reinsch (S. gracile).
A-3-6. Familie Dictyosphaeraceae Gattg. Dictyosphaerium Nägeli
(D. ehrenbergianum),
" Dimorphococcus A. Braun (D. lunatus) und
" Uestella De Wildemann. A-3-7. Familie Hydrodictiaceae
Gattg. Euastropsis Lagerhelm (E. richteri)> w Hydrodictyon Roth (H. reticulatum),
" Pediastrum Meyen (P. simplex) und
w Sorastrum Kützing (S. spinulosum).
A-3-8. Familie Coelastraceae
Gattg. Coelastrum Nägeli (C. reliculatum),
11 Crucigeiiia Morren (C. tetrapedia)»
n Pseudotetradesmus Hirose et Akiyamaj
" Scenedesmus Meyen (S. quadricauda)t
" Tetradesmus G.h. Smith
(T. wisconsinensis) und w Tetrastrum Ohodat (T. elegans).
A-3-9· Familie . Protosiphonaceae
Gattg. Protosiphon Klebs (P. botryoides).
A-4·. Ordng. Ulotrichales
Unterordnung Ulotrichineae
-I. Fam. Ulotrichaceae
Gattg. Binuclearia Wittrock (B. tectorum), " Geminella Turpin (G. mutabilis),
" Hormidium Kützing (H, klebsii), w Radiophilum Schmidle (R» conjunctirum),
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291Ü0I4
Gattg. Rhaphidonema Lagerheim (R. nivale),
» Stichococcus Nägeli (S. bacilaris)» " Ulothrix Kützing (Uc fiacca, U„ Zortata) ,
und
Gattg. Uronema Lagerheim. A-4-(l)-2. Farn. Microsporaceae
Gattg. Microspora Thuret (H. willeana).
A-4-(l)-3· Fam. Schizomeridaceae
Gattg. Schizomeris Kützing (S. leibleinii).
A-^-(I)-4I-. Fam. Cylindrocapsaceae
Gattg. Cylindrocapsa Reinsch (C. geminella).
A 4-(2) Unterordnung Ulvineae A-4-(2)-l. Fam. Ulvaceae
Gattg. Enteromorpha Link (E. prolifera, Eo
intestinalis)»
Gattg. Letterstedtia Areschoug (L. japonica)»
η Monostroma Thuret (M. nitidiim) und.
« Ulva L. (U. pertusa). A-4-(5) Unterordnung Prasiolineae
A-4— (3)-l. Fam. - Prasiolaceae'
Gattg. Prasiola (Ag.) Meneghini (P. japonica),
und
Gattg. Schizogonium Kützing (S. muraleX.
A-4-(4) Unterordnung Sphaeropleineae
A-4-(4)-l. Fam. . Sphaeropleaceae
Gattg. Sphaeroplea Agardh (S. annulina).
A-5- Ordng. Cladophorales
A-5-1· Familie Cladophoraceae
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ORIGINAL INSPECTED
Gattg. Basicladia Hoffmann et Tilden, ■" Chaetomorpha Kiitzing (C. okamuraii
C. crassa))
11 Cladogonium Hirose et Akiyama (parasitic
11 Cladogonium Hirose et Akiyama (parasitic
algae),
" Cladophora Kützing (C. glomerata,
" Cladophora Kützing (C. glomerata,
C. (Aegaglopila) sauteri C. wrightiana),
" Microdictyon Decne (M. japonicum),
n Pithophora Wittrock (P. zelleri),
n Ehizocloniiom Kützing (R. tortuosum),
" Spongomorpha KÜtzing (S. heterocladia),
11 Urospora Areschoug (U. penicilliformis),
und
Gattg. Willeell'a Börgesen (W. japonica).
A-6. Ordng. Chaetophorales
A-6-1. Familie - Chaetophoraceae
A-6-1. Familie - Chaetophoraceae
Gattg. Aphanochaeta A. Braun (A. repens),
11 Chaetonema Nawakowski (C. irreguläre),
" Chaetopeltis Berthold, n Chaetophora Schrank (C. elegans),
11 . Cloniphora Tiffany (C. plumosa), " Draparnaldia Bory (D. glomerata),
n Draparnaldxopsxs Smith et Klyver
(D. alpina),
11 Endoderma Lagerheim, n Fritschiella Lyengar (F. tuberosa),
Microthamnion Iiägeli (M. kuetzingianum),
Protoderma Ktltzing,
030019/05 8 3
ORIGINAL INSPECTEI
'29"TuGU
Gat"tg. Pseudoulvella Wille,
" Saprochaete Coner et Shanor ( saprophytische
Algen ),
n Stigeoclonium Kiitzing (S, lubricum) und
M Tharaniochaete Gay (T. huberi).
A-6-2. Familie Trentepohliaceae
Gattg. Cephaleuros Kunze (C virescens)5
11 Chlorotylium Kützing;»
11 Ctenocladus Borzi,
n Fridaea Schmidle·»
n · Gomontia Bomet et Flahault,
" Gongrosira Kützing (G. debaryana)»
" Leptosira Borzi (L. terricola),
« Fhycopeltis Millardet (P. irregularis),
" Physolium Printz (P. monilia) und
n Trentepohlia Martens (T. aurea).
A-6-3- Familie Coleochaetaceae
Gat'tg. Coleochaete Brebisson (C. pulvinata).
A-6-4. Familie Cliaetosphaeridiaceae
Gattg. ' Chaetosphaeridium Klebahn (C. globosum),
n Conochaete Klebahn (C0 comosa),
n Dicranochaete Hieronymus (D. reniformis),
und
Gattg. ; Oligochaetophora G.S. West (O. simplex).
A-6-5. Familie . Protococcaceae
Gattg. Protococcus Agardh fPlexirococcus
Meneghini] (p. viridis , haftend an Steinmauern.
oder Baumwurzeln)
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ORIGINAL INSPECTED
291Ö0U
Α-7· Ordng. Oedogoniales A-7-1. Familie Oedogoniaceae
Gattg. Bulbochaete Agardh (B. brebissonii)»
" Oedocladium Stahl (0. operculatum) und " Oedogonium Link (O. varians).
A-8. Ordng. Zygnematales
A-8-1. Familie Mesotaeniaceae
A-8-1. Familie Mesotaeniaceae
Gattg. Cylindrocystis Meneghini (C. crassa)» 11 Me so taenium ITägeli (M. greyii) ,
11 Netrium Nägel! (N. digitus),
" Roya W. et G.S. Vest (R. obtusa), etc. " Spirotaenia Brebisson (S. condensate).
A-8-2. Familie Gonatozygaceae
Gattg. Genicularia De Bary und
" Gonatoaygon De Bary (G. aculeatum). A-8-3. Familie Zygnemataceae
Gattg. Debarya Wittrock, M Mougeotia Agardh (M. scalaris),
" Mougeotiopsis Palla,
11 Mougeotiella Yamagishi (M. drouetii), 11 Neozygnema Yamagishi (N. laevisporum),
" Sirocladium Randhawa» n Sirogonium Kützing (S. sticticum),
n Spirogyra Link (S. crassa), " Temnogameturn W. et G.S. West (T. boreale),
11 Temnogyra Lewis (T. collinsii), " Zygnema Agardh (Z. cruciatum),
"' Zygnemopsis Transeau (Z. quadrata) und
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ORIGINAL INSPECTED
291&01
* - ■
Gattg. Zy go go nium Kilt ζ ing (Z. ericetorum).
A-8-4-. Familie Desmidiaceae
Gattg. Arthrodesmus Ehrenberg (A. triangularis) -,
" Closterium Nitzsch (C. moniliforme)»
11 Cosraarium Corda (C. cymatopleurum)>
M Cosmocladium Brebisson (C. constrictvim),
" Desmidium Agardh (D. aptogonuni)^
" Docidium Brebisson (D. undulatum),
w Euastrtua Ehrenberg (E. oblongum),
11 Gymnozyga Ehrenberg (G. moniliformis),
" Hyalotheca Ehrenberg (Ή. dissiliens),
" Piicrasterias Agardh (Π. radiata),
" Onychonema Wallich (O. laeve)»
n Oöcardium Nägeli (θ. stratiJm),
n Penium Brebisson (P0 margaritaceuni),
11 Pleiirotaenium Nägeli (P. ehrenbergii),
11 Sphaerozosma Corda (S. aubertianum),
" Spnondylosium Brebisson (S. planum),
n Staurastrum Meyen (S. punctulatum),
11 Tetmemorus EaIf s (T0 laevis) und
11 Xanthidixim Ehrenberg (X. antilopaeum).
A-9. Ordng. Siphonales
A-O-I. Familie Caulerpaceae
Gattg. Bryopsis Lamouroux (B. plumosa)>
Caulerpa Lamotiroux (C. okamurai),
11 Pseudobryopsis Berthold (P„ hainanensis).
A-9-2. Familie Derbesiaceae
Gattg. Derbesia Solier (D. lamourouxii).
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ORIGINAL INSPECTED
- 291Q0U
-so-
A-9-3. Familie Dasycladaceae
Gattg. Acetabularia Lamouroux (A. ryukyuensis), 11 Bornetella Munier-Chalmer (B. ovalis)»
" Cymopolia Lamouroux (C. vanbossei)» " Dasycladus Agardh,
" Halicoryne Harvery (H. wrighti) und
" Neomeris Lamouroux (Ii. annulata) ·
A-9-4-· Familie Codiaceae
Gattg. Avrainvilla Börgesen (A. ryukyuensis),
" Chlorodesmis Bailey et Harvey (C, comosa)»
" Codium Stackhouse (C. fragile)» " Halimeda Lamouroux (H. opuntia),
11 Tydemania W. van Bosse (T. expeditionis),
und
Gattg. Udotea Lamouroux (Ue javensis).
A-9-5- Familie Valoniaceae
Gattg. Anadyomena Lamouroux (A. wrightii), 11 Boodlea Murray et De Toni (B. coacta) >
n Ohamaedoris Montagne (C. orientalis)j
11 Cladophoropsis Bd/rgesen (C. zollingeri),
" Dictyosphaeria Decaisne (D. cavernosa),
" Siphonocladus Schnitz (S. tropicus), " Struvea Sonder (S. delicatula) und
" Valonia Ginnani (V. utricularis). A-9-6. Familie Chaetosxphonaceae
Gattg. Chaetosiphon Huber. A-9-7« Familie Phillosiphonaceae
Gattg. Phyllosiphon Kühn (P, arisari)«.
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• 5 A -
Α-9-8. Familie Dichotomosxphonaceae
Gattg. Dichotomosiphon Ernst (D. tuberosus) und
n Pseudodichotomosiphon Yamada (P. constricta)
n Pseudodichotomosiphon Yamada (P. constricta)
In der Klasse Chlorophyta werden Algen der Gattungen ChIamydomonas, Chlorella, Secenedesmus, Protosiphon, Ulothrix,
Microspora, Enteromorpha, Prasiola, Cladophora, Spongomorpha, Chaetophora, Trentepohlia, Protococcus, Spirogyra,
Desmidium, Bryopsis und Acetabularia bevorzugt. Solche der
Gattungen Chlamydomonas, Chlorella, Scenedesmus und Cladophora werden besonders bevorzugt.
£VIII3 Klasse Charophyta
A-I. Ordng. Sycidiales A-2. Ordng. Trochiliscales
A-3· Ordng. Charales
A-3-1. Familie Characeae
Gattg. Chara I. (C.'braunii,. C. globularis),
" Lamprothamnium Groves (L. papillosum),
n Lychnothamnus (Rupr.) Leonhardi,
" Nitella Agardh (N. flexilis),
" Mittellopsis Hy (W. obtusa) und
» Tolypella Leonhardi (T. gracilis).
A-3-2. Familie Paleo characeae
A-3-3- Familie Clavatoraceae
A-3-4-· Familie Lagynopho race ae
In der Klasse Charophyta werden Algen der Gattung
Lamprothamnium bevorzugt.
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ORIGINAL INSPECTED
291ÜUU - 53-
Besonders bevorzugte Algen, auf die das erfindungsgemäße
Verfahren anwendbar sind, schließen solche der Gattungen Anacystis, Microcystis, Spirulina, Anabaena und Nastoc
(Klasse Cyanophyta), solche der Gattungen Porphydridium,
Porphyra und Gelidium (Klasse Rhodophyta), solche der Gattungen Coscinodiscus, Skeletonema, Chaetocerus und Navicula
(Klasse Chrysophyta), solche der Gattungen Exuviael-Ia,
Amphidinium und Gymnodinium (Klasse Pyrrhophyta), solche
der Gattungen Nemacystus, Laminaria und Undaria (Klasse Phaeophyta) und solche der Gattungen ChIamydomonus Chlorella,
Scenedesmus und Cladophora (Klasse Chlorophyta) ein.
Die Kultivierung der Algen gemäß der Erfindung wird in einem Lichtfeld durchgeführt, das im wesentlichen von Licht
mit Wellenlängen von nicht mehr als 34-0 mn, vorzugsweise
nich mehr als 360 nm, mehr bevorzugt nicht mehr als 380 nm,
frei ist.
• *
Die hierin verwendete Bezeichnung "optisches Feld bzw. Lichtfeld, das im wesentlichen von Licht mit Wellenlängen
von nicht mehr als χ nm frei ist" soll vorzugsweise ein Lichtfeld bezeichnen, das von Licht mit Wellenlängen von
nicht mehr als χ nm im wesentlichen frei ist, schließt jedoch nicht das Vorhandensein von geringen Lichtmengen von
Wellenlängen von nicht mehr als χ nm aus, die die erfindungsgemäße Kultivierung der Algen nicht nachteilig beeinflussen.
Bei der Kultivierung unter Sonnenlicht ist das Lichtfeld daher zweckmäßigerweise ein solches, das den
Durchtritt von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als χ nm um mindestens 70%, vorzugsweise mindestens 80%, mehr
bevorzugt 90 bis 100%, hemmt. Bei der Kultivierung unter künstlichem Licht wird die Kultivierung zweckmäßigerweise
unter Bestrahlung mit künstlichem Licht durchgeführt, wo-
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ORIGINAL INSPECTED
291OU:4
bei die Menge des Lichts des obengenannten Wellenlängenbereichs nicht mehr als 500 uW/cm , vorzugsweise nicht mehr
als 250 uW/cm , mehr bevorzugt 50 bis 0 uW/cm , beträgt.
Das Wachstum von Algen durch Photosynthese erfordert die
Bestrahlung mit bestimmten Lichtmengen im sichtbaren Bereich. Im allgemeinen ist es zweckmäßig, die Kultivierung
in einem Lichtfeld durchzuführen, in dem Licht mit Wellenlängen von mindestens 550 nm, vorzugsweise mindestens 450
nm, vorhanden sein kann. Die Intensität des Lichts mit Wellenlängen
von mindestens 550 nm variiert stark entsprechend dem Typ der Algen, der Tiefe des Wassers etc. und
kann nicht definitiv festgelegt werden. Geeignete Mengen
und Intensitäten des angewendeten Lichts können jedoch leicht vom Fachmann durch orientierende Vorversuche festgestellt werden.
Licht mit Wellenlängen von 340 bis 550 nm, d.h. Licht im
nahenUltraviolett bis Grünlicht, kann in dem Lichtfeld vorhanden sein oder nicht. Es besteht die allgemeine Tendenz,
daß die Menge von Violett- bis Grünlicht mit einem Wellenlängenbereich von 400 bis 550 nm zum Wachstum der Algen
vorzugsweise minimalisiert wird.
Ausgenommen die Anwendung eines speziellen Lichtfeldes erfordert
die erfindungsgemäße Kultivierung von Algen keinerlei spezielle Kultivierungsbedingungen. Sie kann gemäß
herkömmlichen Kultivierungsverfahren für Chlorella, Spirulina,
Scenedesmus oder gemäß herkömmlichen Verfahrensweisen und -bedingungen, die bei der Kultivierung von Tang, Laminaria
japonica und Underia pinnatifida angewendet werden, durchgeführt werden.
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ORIGINAL INSPECTED
. 5^- 291Uu 7 4
M
Mögliche ethoden zum Erhalt des speziellen Lichtfeldes sind beispielsweise ein Verfahren, bei dem man mit künstlichen Lichtstrahlen, die von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 340 nm, vorzugsweise nicht mehr als 360 nm und mehr bevorzugt von nicht mehr als 380 nm, frei sind und die zweckmäßigerweise Licht mit Wellenlängen von mindestens 550 nm enthalten (in diesem Falle kann eine Quelle von künstlichen Lichtstrahlen Licht mit solchen optischen Eigenschaften emittieren oder das von einer solchen künstlichen Lichtquelle ausgestrahlte Licht wird durch ein geeignetes Filter geleitet), bestrahlt, ein Verfahren, bei dem man mit Sonnenlicht durch ein transparentes farbloses oder gefärbtes Deckmaterial, welches den Durchtritt von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 340 nm, vorzugsweise nicht mehr als 360 nm, mehr bevorzugt nicht mehr als 380 nm, im wesentlichen hemmt, bestrahlt, oder eine Kombination dieser zwei Methoden.
Mögliche ethoden zum Erhalt des speziellen Lichtfeldes sind beispielsweise ein Verfahren, bei dem man mit künstlichen Lichtstrahlen, die von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 340 nm, vorzugsweise nicht mehr als 360 nm und mehr bevorzugt von nicht mehr als 380 nm, frei sind und die zweckmäßigerweise Licht mit Wellenlängen von mindestens 550 nm enthalten (in diesem Falle kann eine Quelle von künstlichen Lichtstrahlen Licht mit solchen optischen Eigenschaften emittieren oder das von einer solchen künstlichen Lichtquelle ausgestrahlte Licht wird durch ein geeignetes Filter geleitet), bestrahlt, ein Verfahren, bei dem man mit Sonnenlicht durch ein transparentes farbloses oder gefärbtes Deckmaterial, welches den Durchtritt von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 340 nm, vorzugsweise nicht mehr als 360 nm, mehr bevorzugt nicht mehr als 380 nm, im wesentlichen hemmt, bestrahlt, oder eine Kombination dieser zwei Methoden.
So wird beispielsweise bei der erfindungsgemäßen Kultivierung von Algen der Gattung Spirulina das obengenannte Lichtfeld
auf der Wasseroberfläche eines Pools oder eines Teiches unter Sonnenlicht gebildet, indem man die gesamte
Wasseroberfläche mit einem speziellen Deckmaterial, wie nachstehend beschrieben, bedeckt und indem man die Kultivierung
in einem solchen Pool oder Teich durchführt. In herkömmlicher Weise werden verschiedene Düngemittel, wie
Stickstoff, Kalium (z.B. Kaliumnitrat), Phosphorsäure, saures Kaliumphosphat, Natriumchlorid, Spuren von Eisen
und Magnesium, zu dem Pool oder dem Teich gegeben und das
Wasser wird durch Einblasen von Luft oder Kohlendioxid durchbewegt. Die Temperatur des Wassers wird im allgemeinen
bei etwa 20 bis 30°C gehalten. Die Belichtung mit Licht wird vorzugsweise bei mindestens 5000 Lux gehalten.
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Bei diesen Bedingungen kann die Kultivierung bzw. Züchtung 4 bis 10 Tage lang durchgeführt werden. Die kultivierten
Spirulina-Algen können von dem Wasser in dem Pool oder
Teich durch herkömmliche Methoden, beispielsweise Filtration, abgetrennt werden. Somit können Spirulina-Algen mit
guter Qualität, einem hohen Proteingehalt und hohem Nährwert in hohen Ausbeuten erhalten werden.
Bei der Kultivierung der Algen der Gattung Chlorella in einem Tank unter Bestrahlung mit künstlichen Lichtstrahlen
wird der Tank mit einer Kulturlösung gefüllt, die Stickstoff, Phosphorsäure und Kaliumdüngemittel und als Spurenbestandteile
Natriumnitrat, Kaliumdihydrogenphosphat, Magnesiumsulfat, Calciumchlorid, Natriumchlorid und Eisenchlorid
enthält. Dann werden die Chlorella-Algen zugesetzt. Als Lichtquelle wird eine solche verwendet, die im wesentlichen
kein Licht des obengenannten kurzen Wellenlängenbereiches enthält. Es können auch solche Lichtquellen, wie
eine Xenonlampe, angewendet werden, wobei das Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 340 nm mittels eines Spektrographen,
eines optischen Filters etc. abgeschnitten wird. Vorzugsweise wird die Kultivierung durchgeführt, während
die Belichtung bei 4000 bis 8000 Lux aufrechterhalten wird. Es wird mit Licht über einen Zeitraum von 15 bis 18 h pro
Tag bestrahlt. Die Temperatur der Kultivierungsflüssigkeit ist vorzugsweise 25°C - 2°C und die Kultivierungsflüssigkeit
wird durch Einblasen von Kohlendioxid unter einem Druck von 2 bis 3 Atmosphären durchbewegt. Als Ergebnis können
Chlorella-Algen mit sehr guter Qualität in hohen Ausbeuten wirksam erhalten werden.
Das erfindungsgemäße Verfahren wird nachstehend anhand der Kultivierung von Purpurtang (Gattung Porphyr a, z.B. P.
tenera) als typisches Beispiel näher beschrieben.
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_^_ 291ÜÜU
-se-
Bei der herkömmlichen Kultivierung von Tang tritt häufig ein sogenanntes Härtungsphänomen auf, bei dem der Blattteil
des Tangs unter allmählicher Verringerung der Elastizität wächst, bis schließlich das Wachstum gehemmt wird
und der gesamte Körper des Tangs altert. Dieses Phänomen wird insbesondere in den mittleren und späteren Stufen der
Züchtung beobachtet. Dieses Härtungsphänomen bewirkt eine ausgeprägte Verminderung der Marktqualität des Tangs und
stört die Tanghersteller in erheblichem Maße.
Für dieses Härtungsphänomen ist bislang noch kein klarer Grund erkannt worden. Daher sind noch keine wirksamen Maßnahmen
zu seiner Verhinderung verfügbar. Das einzige Vorgehen, das man derzeit durchführt, besteht darin, die Tangkultur
mit einem Victoria-Batist zu bedecken. Diese Kultivierungsmethode unter einer Abdeckung mit Victoria-Batist
ist jedoch nicht ausreichend, um die Härtung zu verhindern, und es wird die Entwicklung eines wirksameren Verfahrens
zum Verhindern eines solchen Härtungsphänomens gewünscht.
Es wurde nun gefunden, daß - wenn Tang erfindungsgemäß in dem speziellen Lichtfeld kultiviert wird - die Härtung in
der geernteten Schicht selten festgestellt wird. Es kann Tang mit hoher Qualität erhalten werden und die geerntete
Schicht hat eine hohe Qualität mit überlegenen Eigenschaften hinsichtlich der Farbe, des Aromas und des Glanzes.
Auch die Ausbeute steigt an.
Gemäß einer bevorzugten Ausführungsform der Erfindung wird
daher ein Verfahren zur Kultivierung von Tang zur Verfügung gestellt, das dadurch gekennzeichnet ist, daß man den
Tang unter den speziellen optischen Bedingungen mindestens nach der Initiierung seiner Kultivierung nach der Sporen-
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
- 57" 291Ü0U
Wachstumsperiode, vorzugsweise von der Sporenwachstumsperiode
an, züchtet.
Tang ist eine niedere Pflanze, die zur Klasse Rhodophyta des
Pflanzenreiches gehört. Die Praxis der Kultivierung von Tang variiert etwas von Ort zu Ort. In Japan werden die
Sporen gewöhnlich vom Beginn bis Mitte Oktober gesammelt. HUllensporen, die von den Austernschalen freigegeben worden
sind, werden auf Kultivierungsnetzen inkubiert und die Sporen werden in einem Sporenwachstumsbereich bis etwa Mitte
November gezüchtet. Hierauf wird die Kultivierung von Mitte
November bis etwa März des nächsten Jahres durchgeführt. Während der Kultivierungsperiode wird der Tang etwa 3- bis 5-mal
pro Netz geerntet.
Die Verfahrensweise der Tangkultivierung wird nachfolgend
kurz dargestellt:
(1) Sammeln der Sporen:
Dies erfolgt von Beginn bis Mitte Oktober. Tahgsporen in
den Hüllen bzw. Schuppen von Schellfisch werden auf Kultivierungsnetzen im Meer in einem Kunststoffbeutel inkubiert.
Die Anzahl der Netze ist 60 pro Partie.
(2) Wachstum der Sporen:
Dies erfolgt von Anfang bis etwa 10. November über 30 bis
40 Tage. Die Netze, in die die Sporen übertragen worden
sind, werden in einen Sporenwachstumsbereich des Meeres übertragen und die Tangsporen werden zu einer Hohe von 1
bis 3 cm wachsen gelassen. Zu diesem Zeitpunkt des Jahres ist das Meer im allgemeinen ruhig mit schwachen Winden»
0300 19/058 3
ORIGINAL INSPECTED
-37-
(3) Lagerung (Kühlung):
Dies beginnt Ende Oktober, um die gezüchteten Tangsporen zu lagern, und die Netze werden sterilisiert. Die Netze mit
den Sporen werden in Kühleinrichtungen gebracht und bei -200C gelagert. Wie erforderlich, werden die Netze aus den
Kühleinrichtungen herausgenommen und bei der Kultivierung verwendet.
(4) Kultivierung:
Dies erfolgt von Anfang November bis März des nächsten Jahres. Die gewachsenen Tangsporen werden in einem Kultivierungsbereich
durch ein Trägerverfahren oder ein Schwimmverfahren kultiviert.
(5) Ernten:
Dies erfolgt von Anfang November bis März des nächsten Jahres.
Eine Verminderung der Qualität wird bei der zweiten bis dritten Ernte ausgeprägt. Der Tank härtet, hat keinen
Glanz und wird matt, wobei sich seine Farbe von schwarz nach hellbraun verändert.
Wenn das erfindungsgemäße Verfahren zur Kultivierung von Tang angewendet wird, dann wird das erfindungsgemäße Deckmaterial über Tangkultivierungsnetze ausgebreitet, die
in einer Bay oder einem ähnlichen Teil des Meeres mit relativ mäßigen Wellen ausgesetzt sind, so daß das Sonnenlicht,
das nicht durch das Deckmaterial hindurchgeht, nicht auf die Tangkultivierungsnetze auftreffen kann.
Als weiteres spezielles Beispiel für das erfindungsgemäße
Verfahren wird nachstehend die Kultivierung von Rugelalgen
oder Cladophora sauteri beschrieben.
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29100 H
Da Kugelalgen gegenüber direktem Sonnenlicht schwach sind, werden sie gewöhnlich im Schatten kultiviert. Unter direktem
Sonnenlicht verändern die Kugelalgen ihre Farbe an der Oberfläche in etwa 1 bis 4 h nach weiß. Sodann verändern
sie sich weiterhin zu gelb, braun und schwarz und sie sterben schließlich ab. Wenn jedoch die Kugelalgen im Schatten
kultiviert werden, dann ist ihr Wachstum wegen des Mangels der Lichtqualität sehr schlecht und das Ausmaß des Wachstums
beträgt nur 0,5 bis 1,0 cm im Durchmesser. Die Züchter wünschen daher die Entwicklung einer Kultivierungstechnik, mit
der Kugelalgen mit höheren Geschwindigkeiten unter einer großen Lichtmenge gezüchtet werden können, wobei ihr Absterben
verhindert wird.
Es wurde nun gefunden, daß - wenn Kugelalgen in dem speziellen Lichtfeld kultiviert werden - die Kugelalgen selbst im
Sonnenlicht nicht absterben, sondern daß vielmehr die Ehotosynthese heftig wird und das Wachstum der Kugelalgen gefördert
wird. Auf diese Weise werden Kugelalgen mit einer" dunkelgrünen Farbe und sehr stark verbesserter Qualität
erhalten. Ihr Handelswert wird daher erhöht.
Gemäß einer weiteren bevorzugten Ausführungsform der Erfindung wird daher ein Verfahren zur Kultivierung von Cladophora
sauteri zur Verfügung gestellt, das dadurch gekennzeichnet
ist, daß man Cladophora sauteri in dem obengenannten Lichtfeld mindestens, nachdem die Alge kugelförmig
geworden ist, vorzugsweise von einem Zeitpunkt,, bevor sie
kugelförmig geworden ist, und während sich die einzelnen Algenzellen im Zustand von kurzen Fasern befinden, züchtet»
Cladophora sauteri ist eine niedere Pflanze, die zur Klasse Chlorophyta gehört. Die Pflanze wird das ganze Jahr hin-
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291ÜÜU
durch in frischem Wasser mit einem Zyklus gezüchtet, der
aus der Kultivierung der Ausgangsalgen, der Überführung der Ausgangsalgen in kugelförmige Gestalt (mit der Handfläche,
einem Wasserwirbelstrom oder einer automatischen Maschine) und der Kultivierung der kugelförmigen Algen besteht.
Die Kultivierung von Cladophora sauteri wird gewöhnlich in einem Wassertank durchgeführt. Wenn das erfindungsgemäße
Verfahren auf die Kultivierung von Cladophora sauteri angewendet werden soll, dann ist es zweckmäßig, das erfindungsgemäße
Deckmaterial über dem Wassertank auszubreiten, so daß dieser fast vollständig bedeckt wird.
Eine geeignete Verfahrensweise der Durchführung des erfindungsgemäßen
Verfahrens besteht darin, die Algen unter einem Deckmaterial zu kultivieren, das den Durchtritt von
Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 340 nm, vorzugsweise
nicht mehr als 360 nm, besonders bevorzugt von 380 nm,
im wesentlichen hemmt und das zweckmäßigerweise den Durchtritt von Licht mit Wellenlängen von mindestens 550 nm,
vorzugsweise mindestens 450 nm, gestattet.
Die hierin verwendete Bezeichnung "Deckmaterial, das im
wesentlichen den Durchtritt von Licht in dem obengenannten Wellenlängenbereich hemmt" soll nicht nur ein Deckmaterial
bezeichnen, das den Durchtritt des Lichts im genannten Wellenlängenbereich vollständig inhibiert,, sondern auch ein
Deckmaterial, das den Durchtritt von bis zu 30%, vorzugsweise
bis zu 20%, mehr bevorzugt bis zu 10% des Lichts mit
der angegebenen Wellenlänge gestattet.
Die Bezeichnung "Deckmaterial, das den Durchtritt von Licht der speziellen Wellenlänge gestattet" soll nicht nur ein
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29TÜ0
Deckmaterial bezeichnen, das den 100?6igen Durchtritt des
Lichts mit der angegebenen Wellenlänge gestattet, sondern auch ein Deckmaterial, das etwas den Durchtritt des Lichts
der angegebenen Wellenlänge mit hierdurch bedingter Verminderung der Lichtdurchlässigkeit auf 50%, vorzugsweise
70%, mehr bevorzugt 90%, etwas hemmt.
Der Durchtritt von Licht mit Wellenlängen von 340 bis 550 nm kann im wesentlichen gestattet oder im wesentlichen gehemmt
v/erden. Im allgemeinen ist es vorteilhaft, daß der durchschnittliche Durchtritt des Lichts des obengenannten
Wellenlängenbereiches 10 bis 95%, vorzugsweise 30 bis 90%,
beträgt.
Gemäß einem weiteren Gesichtspunkt der Erfindung wird ein
Deckmaterial mit den obengenannten Lichtdurchlässigkeitseigenschaften
zur Verwendung bei der Kultivierung von Algen zur Verfügung gestellt.
Das Material für das Deckmaterial gemäß der Erfindung ist
keinen besonderen Beschränkungen unterworfen, solange es die obengenannten Lichtdurchlässigkeitseigenschaften hat.
Gewöhnlich kann das erfindungsgemäße Deckmaterial aus einem
anorganischen oder organischen Film, einer Platte oder einem anderen geformten Gegenstand bestehen. Typische Beispiele
für anorganische Filme oder Platten sind eine Glasplatte, die einen Farbstoff oder ein Pigment (Smaragdgrün)
enthält, und eine Glasplatte, die aufgeschichtet oder damit laminiert einen Kunststoffilm aufweist, der einen
Ultraviolettabsorber des unten beispielhaft genannten Typs enthält. Eunststoffilme oder -platten mit einem eingearbeiteten
oder aufgeschichteten Ultraviolettabsorber werden besonders bevorzugt.
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- 63- 291UOU
-(Ti-
Kastenartige, hohle oder geschäumte Gegenstände aus Kunstharzen,
die Ultraviolettabsorber enthalten, können gleichfalls als erfindungsgemäßes Deckmaterial, das,auf der Wasseroberfläche
schwimmt, verwendet werden. Zusätzlich zu den nachstehend beschriebenen thermoplastischen Harzen können
auch wärmehärtende Harze, wie Melaminharz, Phenolharze, Epoxyharze, Siliconharze, Harnstoffharze, Alkydharze und Allylphthalatharze,
verwendet werden.
Kunststoffilme oder -platten, die Ultraviolettabsorber enthalten, sind besonders gut als erfindungsgemäße Deckmaterialien
geeignet. Diese Kunststoffilme und -platten werden nachstehend näher beschrieben.
!Transparente Filme oder Platten, die erfindungsgemäß verwendet
werden können, können beispielsweise dadurch hergestellt werden, daß man ein übliches filmbildendes thermoplastisches
Harz mit einem geeigneten Ultraviolettabsorber vermischt und das Gemisch zu einem Film oder einer Platte
verformt.
Beispiele für filmbildende thermoplastische Kunstharze sind Polyvinylchlorid, Polyvinylidenchlorid, Polyäthylen, Polypropylen,
Polystyrol, Polyester, Polyamide, Polycarbonat, Polymethylmethacrylat, Acrylatharze, Polyvinylacetat, Polyvinylalkohol,
Fluor enthaltende Harze, Celluloseharze, ABS-Harze, Copolymere, bestehend hauptsächlich (vorzugsweise
zu mindestens 50 Gew.-%) aus Monomereinheiten dieser Polymeren,
und Gemische aus diesen Polymeren oder Copolymeren. Im Hinblick auf die Lichtbeständigkeit, die Festigkeit und
die Lichtdurchlässigkeitseigenschaften werden Polyvinylchlorid, Polyäthylen, Polypropylen, Fluor enthaltende Harze,
Celluloseharze und Polystyrol bevorzugt.
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29100· 4
Ultraviolettabsorber mit der Fähigkeit, den Durchtritt von
Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 340 mn beim Einarbeiten in die genannten Kunstharze zu hemmen, können aus
einem weiten Bereich entsprechend ihrer Ultraviolettabsorptionsfähigkeit, ihrer Verträglichkeit mit den Kunstharzen
etc. ausgewählt werden.
Beispiele für solche Ultraviolettabsorber werden nachstehend angegeben:
Hydrochinon und Hydrochinondisalicylat.
Rienylsalicylat und p-Octylphenylsalicylat.
2-Hydroxy-4-me thoxybenz ophenon, 2-Hydroxy-4-n-octoxybenzophenon,
2-Hydroxy-4-methoxy-2-carboxybenzophenon, 2,4-Dihydroxybenzophenon,
2,2 *-Dihydroxy-4,4'-dimethoxybenzophenon,
2-Hydroxy-4-benzoyloxybenzophenon, 2,2*-Hydroxy-4-methoxybenzophenon,
2-Hydroxy-4-methoxy-5-sulfonbenzophenon, 2,2f,4,4*-Tetrahydroxybenzophenon,
2,2f -Hydroxy-4,4' -dimethoxy-5-natriumsulfobenzophenon,
4-Dodecyloxy-2-hydroxybenzophenon und
2-Hydroxy-5-chlorbenzophenon.
2-(2'-Hydroxy-5'-methylphenyl)-benzotriazol,
2-(2 *-Hydroxy-5'-methylphenyl)-5-butylcarbonatbenzotriazol,
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β /ι 29100H
2-(2 f-Hydroxy-5'-methylphenyl)-5,6-dichlorbenzo-
triazol,
2- (2 · -Hydroxy-5' -methylphenyl) -5-äthylsulf onbenzo-
triazol,
2-(2'-Hydroxy-5'-tert.-butylphenyl)-5-chlorbenzo-
triazol,
2-(2'-Hydroxy-5'-tert.-butylphenyl)-benzotriazol,
2-(2·-Hydroxy-5'-aminophenyl)-benzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-3',5'-dimethylphenyl)-benzotriazol,
2- (2' -Hydroxy-3', 5' -dime thy lphenyl)-5-niethoxybenzo-
triazol,
2- (2' -Me thyl-4' -hydroxyphenyl) -benzotriazol,
2-(2'-Stearyloxy-3',5'-dimethylphenyl)-5-methylben-
zotriazol,
2-(2'-Hydroxy-5'-phenylcarbonat)-benzotriazol-äthyl-
ester,
2-(2·-Hydroxy-3'-methyl-5'-tert.-butylphenyl)-benzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-3·,5'-di-tert.-butylphenyl)-5-chlorbenzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-5'-methoxyphenyl)-benzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-5'-phenylphenyl)-5-chlorbenzotriazol,
2-(2·-hydroxy-5'-dichlorhexylphenyl)-benzotriazol,
2-(2f-Hydroxy-4',5'-dimethylphenyl)-5-carbonsäurebenzotriazol-butylester,
2-(2·-Hydroxy-3',5'-dichlorphenyl)-benzotriazol,
2- (2' -Hydroxy-4', 5' -dichlor )t>enzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-3',5'-dimethylphenyl)-5-äthylsulfonbenzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-5'-phenylphenyl)-benzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-4'-octoxyphenyl)-benzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-5'-methoxyphenyl)-5-methylbenzotriazol,
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•65- 2910ü:i
2-(2'-Hydroxy-5'-methylphenyl)-5-carbonsäureester-
benzotriazol, 2-(2'-Acetoxy-5·-methylphenyl)-benzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-3',5'-di-tert.-butylphenyl)-5-chlor-
benzotriazol, 2-(2·-Hydroxy-3'-tert.-butyl-5'-methylphenyl) -5-chlorbenzotriazol,
2- (2'-Hydroxy-3 *-tert.-butyl-5'-methylphenyl)-5,6-
dichlorbenzotriazol und i
2-(2·-Hydroxy-3',5'-di-tert.-butylphenyl)-4,4-di-
chlorbenzotriazol.
Unter diesen Ultraviolettabsorbern werden die Benzophenonverbindungen
und Benzotriazolverbindungen bevorzugt. Unter den Benzophenonverbindungen werden 2,3'-Dihydroxy-4,4f-dimethoxybenzophenon,
2,2·-Dihydroxy-4-methoxybenzophenon und
2,2',4,4'--Tetrahydroxybenzophenon besonders bevorzugt. Andererseits sind besonders bevorzugte Benzotriazolverbindungen
2-(2'-Hydroxy-5'-methylphenyl)-benzotriazol, 2-(2'-Hydroxy-5T-methylphenyl)-5,6-dichlorbenzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-5'-tert.-butylphenyl)-benzotriazol, 2-(2'-Hydroxy-3'-methyl-5t-tert.-butylphenyl)-benzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-31,5*-di-tert.-butylphenyl)-5-chlorbenzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-5'-phenylphenyl)-5-chlorbenzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-3 *,5f-di-tert.-butylphenyl)-5-chlorbenzotriazol, 2-(2'-Hydroxy-5'-octoxyphenyl)-benzotriazol,
2-(2'-Hydroxy-3'-tert.-butyl-5'-methylphenyl)-5-chlorbenzotriazol
und 2-(2'-Hydroxy-3'-tert.-butyl-5'-methylphenyl)-5,6-dichlorbenzotriazol.
Besonders bevorzugte Ultraviolettabsorber sind Benzotriazolderivate
der folgenden Formeln:
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29100:4
oder
worin FL und Rp, die gleich oder verschieden sein können,
jeweils für eine Niedrigalkylgruppe oder eine Arylgruppe,
insbesondere eine Phenylgruppe, stehen, R,, vorzugsweise für
verzweigtes Niedrigalkyl mit nicht mehr als 5 Kohlenstoffatomen oder eine Phenylgruppe steht, R, eine Alkylgruppe
mit mindestens 6 Kohlenstoffatomen, insbesondere 8 bis 10 Kohlenstoffatomen, bedeutet und X für ein Wasserstoffatom
oder ein Halogenatom, insbesondere ein Chloratom, steht.
Die Menge des Ultraviolettabsorbers kann innerhalb eines weiten Bereichs je nach dem Typ des Ultraviolettabsorbers,
dem Typ des verwendeten Kunstharzes, der Dicke des Films oder der Platte etc. variieren. Es hat sich gezeigt, daß
zum Erhalt einer erheblichen Hemmung des Durchtritts von Ultraviolettstrahlen mit einer Wellenlänge von nicht mehr
als 3^0 nm, vorzugsweise nicht mehr als 360 nm, insbesondere
vorzugsweise nicht mehr als 380 nm, vorzugsweise der
folgenden Beziehung zwischen der Menge des Ultraviolettabsorbers und der Dicke des resultierenden Films oder der
Platte genügt werden sollte.
15=AB=6OO,
vorzugsweise 20=AB^40O,
vorzugsweise 20=AB^40O,
030019/058 3-
BAD ORIGINAL
-615-
-&Ϊ- 291ÜLU.
Darin bedeutet A die Menge (PHR) des Ultraviolettabsorbers und B die Dicke (um) des Films oder der Platte.
PHR bedeutet die Anzahl der Gewichtsteile pro 100 Gewichtsteile Kunstharz.
Die geeignete Menge (A) des Ultraviolettabsorbers beträgt im allgemeinen 0,001 bis 5 PHR und im Falle eines Films vorzugsweise
0,1 bis 5,0 PHR.
Zusätzlich zu dem Ultraviolettabsorber kann das erfindungsgemäß verwendete Kunstharz kleine Mengen von anderen herkömmlichen
Additiven, beispielsweise Weichmachern,Schmiermitteln, Antioxidantien, Lichtstabilisatoren, Antistatika,
Mitteln zur Erzielung einer Feuchtigkeitsbeständigkeit, Hitzestabilisatoren, Farbstoffen, Pigmenten und Mitteln zur
Verhinderung einer Anhaftung von unerwünschten Algen, Schellfischen und anderen Verschmutzungsmaterialien enthalten.
Der Runststoffilm, die Platte oder die anderen Formkörper
können nach verschiedenen bekannten Methoden hergestellt werden, beispielsweise durch Kalandrieren, Schmelzextrudieren,
z.B. durch Aufblasen, Pressen, Lösungsgießen oder Spritzgießen. Um die Verschlechterung der physikalischen
Eigenschaften des Films zu verhindern, kann ein anderes Harz aufgeschichtet werden oder ein anderer Film kann damit
laminiert werden.
Die Dicke des Films, der Platte oder des anderen geformten Gegenstandes kann weit variiert werden. Im allgemeinen ist
für die Zwecke der Erfindung eine geeignete Dicke 15 bis 5000, insbesondere 20 bis 3000 um. Erforderlichenfalls
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291QÜH
kann der Film oder die Platte auf einen anderen Kunststofffilm oder eine Platte oder eine Glasplatte zur Verstärkung
auflaminiert werden. Der Kunststoffilm oder die Platte, insbesondere
ersterer, kann mit Verstärkungsfasern, z.B. Glasfasern, Drahtnetzen oder ähnlichen faserartigen Strukturen,
verstärkt werden.
Wie erforderlich, können zur Verhinderung der Anhaftung von Schellfischen, Algen und Verschmutzungsmaterialien an die
erfindungsgemäßen Deckmaterialien, wodurch die Durchlässigkeit vermindert würde, die erfindungsgemäßen Deckmaterialien
mit Chemikalien oberflächenbehandelt werden, um die Anhaftung von Schellfischen und Algen zu verhindern. Es kann
auch ein Kunstharz, das eine derartige chemische Substanz enthält, daraufgeschichtet oder damit laminiert werden.
Bei der Ausbildung des speziellen optischen Felds unter Verwendung
des erfindungsgemäßen Deckmaterials ist es nicht erforderlich, das gesamte Kultivierungssystem der Algen
von Ultraviolettstrahlen des speziellen Wellenlängenbereiches abzuschirmen. Gewöhnlich reicht es aus, das Kultivierungssystem
derart zu bedecken, daß der Durchtritt von Licht im genannten Wellenlängenbereich, das in dem einstrahlenden
Licht ,(z.B. direktem Sonnenlicht) enthalten sein kann, welches mindestens auf die Algenkörper in dem
Kultivierungssystem auffällt, gehemmt wird.
Gewöhnlich liegt direktes Sonnenlicht und indirektes Streulicht als Licht, mit dem die Algen bei der Kultivierung
unter Sonnenlicht bestrahlt werden, vor. Beim erfindungsgemäßen Verfahren ist es zumindest notwendig, die Algen
vor direktem Sonnenlicht zu schützen.
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Verschiedene Methoden zur Bedeckung der Algen mit dem erfindungsgemäßen
Deckmaterial, beispielsweise in der Kultivierungsumgebung und dem Wachsturnsstadium, sind verfügbar.
So kann beispielsweise über der Wasseroberfläche des Kultivierungsbereiches für die Algen (z.B. dem Pool, dem Teich,
dem See, der Bucht, der Bay etc.) ein Rahmen errichtet werden und das Deckmaterial wird über den Rahmen gezogen. Man
kann aber auch so vorgehen, daß man das Deckmaterial auf der Wasseroberfläche in schwimmartiger Weise ausbreitet.
Man kann auch Stützpfeiler unter dem Wasser vorsehen und das Deckmaterial über diese Pfeiler ziehen. Auch Kombinationen
dieser Methoden können angewendet werden.
Aus den nachfolgenden Beispielen wird ersichtlich, daß das erfindungsgemäße Verfahren das Algenwachstum fördert und
erhöhte Ausbeuten liefern kann. Es hat den Vorteil, daß in einfacher Weise Algen mit überlegener Qualität, beispielsweise
des Proteingehalts, des Aromas, der Weichheit und des Aussehens, erhalten werden können.
Die Erfindung wird in den Beispielen erläutert. Beispiel A
Herstellung von Filmen:
(1) Polyvinylchlorid (100 Gewichtsteile), 45 Gewichtsteile Dioctylphthalat (Weichmacher), 1,5 Gewichtsteile Dibutylzinnmaleat
(Hitzestabilisator), 1,0 Gewichtsteil Zinkstearat (Hitzestabilisator), 0,1 Gewichtsteil Sorbitmonolaurat
(Antitrübungsmittel) und 1,5 Gewichtsteile 2-(2'-Hydroxy-3f»5'-di-tert.-butylphenyl)-5-chlorbenzotriazol
(Ultraviolettabsorber) wurden gründlich gemischt. Das Gemisch
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-ίο-
29100U
wurde bei 2000C in einem Extruder zu einem transparenten
Film mit einer Dicke von 0,1 mm schmelzextrudiert. Dieser Film wurde als Film Nr. 1 bezeichnet und als Deckmaterial
in den folgenden Beispielen verwendet.
(2) Ein transparenter Film mit einer Dicke von 0,1 mm
wurde hergestellt, indem die Verfahrensweise gemäß (!) mit der Ausnahme wiederholt wurde, daß als Ultraviolettabsorber
1,4 Gewichtsteile 2-(2l-Hydroxy-5l-methylphenyl)-benzotriazol
verwendet wurden. Der Film wurde als Film Nr. 2 bezeichnet.
(3) Ein gelber Film mit einer Dicke von 0,1 mm wurde nach der gleichen Verfahrensweise wie (1) hergestellt, mit
der Ausnahme, daß die Menge von 2-(2·-Hydroxy-3',5'-ditert.-butylphenyl)-5-chlorbenzotriazol
auf 0,6 Gewichtsteil verändert wurde und daß 0,5 Gewichtsteil 2,2'-Dihydroxy-3-methoxybenzophenon
als zusätzlicher Ultraviolettabsorber und 1,2 Gewichtsteile Symuler Fast Yellow 8GTF (hergestellt
von Dainippon Ink & Chemicals Co., Ltd.) als gelbes Pigment zugesetzt wurden. Der Film wurde als Film Nr. 3 bezeichnet.
(4) Ein violetter Film mit einer Dicke von 0,1 mm wurde nach der gleichen Verfahrensweise wie (1) hergestellt, mit
der Ausnahme, daß 0,03 Gewichtsteil MX-460 (hergestellt von Dainichi Seika Co., Ltd.) als blaues Pigment und 0,3
Gewichtsteil MX-4155 (hergestellt von Dainichi Seika Ca,
Ltd.) als rotes Pigment zugesetzt wurden.
(5) Zum Vergleich wurde ein Polyvinylchloridfilm ("Nobi
Ace", hergestellt von Mitsubishi Monsanto Chemical Co., Ltd.; Dicke 0,1 mm), der als landwirtschaftliches Deckmate-
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rial vertrieben wird, verwendet. Dieser Film wurde als Film Nr. 5 bezeichnet.
Die Lichtdurchlässigkeitskurven bei verschiedenen Wellenlängen dieser Filme Nr. 1 bis 5 sind in Figur 1 der beigefügten
Zeichnungen dargestellt.
Es wurden zwei Tanks, von denen die eine Seite eine Glas^
platte war, mit Wasser mit konstanter Temperatur verwendet. Die Glasoberflächen der Tanks waren vollständig mit den
Filmen Nr. 1 bzw. 5 bedeckt.
300 ml einer Kultivierungsflussigkeit, hergestellt durch
Zugabe von 0,1 % Kaliumnitrat und 0,01?έ Natriumeitrat zu
einer wäßrigen Lösung mit der Zusammensetzung des Allen-Arnon-Kulturmediums,
wurden in jede von zwei 500-ml-Kultivierungsflaschen
gebracht. Anacystis nidulance (Klasse Cyanophyta, Unterklasse Cyanophyceae, Ordnung Chroococcales, Familie
Chroococcaceae, Gattung Analystis) wurde in die Flaschen in den Konzentrationen eingegeben, die in Tabelle I als
Absorption in der Reihe des verstrichenen Zeitraums von "0" angegeben sind.
Die Flaschen wurden in die Tanks mit Wasser von konstanter Temperatur eingetaucht und die Temperatur des Wassers in
den Wassertanks mit konstanter Temperatur wurde auf 30° - 1°C eingestellt. Luft wurde in die einzelnen Kultivierungsflaschen
mit einer Geschwindigkeit von 100 ml/min eingeblasen. Die Glasoberfläche jedes Wassertanks wurde unter Verwendung
einer "Toshiba Yoko Lamp11 (hergestellt von Toshiba Denzai
Co., Ltd.) als Lichtquelle mit Licht bestrahlt. Die Lampe
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CWfGINAL
_7/f-
2310UH
wurde 16 h lang in Betrieb genommen und sodann 8 h lang
abgeschaltet. Dieser Zyklus wurde 4 Tage lang wiederholt. Die Lichtstärke an der Oberfläche jedes Flasche betrug etwa
3000 Lux. Die Menge von licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 380 nm an der Oberfläche der Kultivierungsflasche
in dem mit dem Film Nr. 1 bedeckten Wassertank war 0. Die Menge von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 380 nm
an der Oberfläche der KuItivierungsflasche in dem mit dem
Film Nr. 5 bedeckten Wassertank war 200 uW/cm .
Alle 24 h wurden 5-ml-Proben der Kultivierungsflüssigkeit
von jeder Flasche abgenommen und die Wachstumsrate von Anacystis nidulance wurde durch die folgende Methode bestimmt.
Die zur Probe abgenommene Flüssigkeit wurde bei 2500 Upm 10 min lang zentrifugiert und die überstehende Flüssigkeit
wurde entfernt. 5 bis 10 ml wasserfreies Methanol wurden zu der resultierenden festen Schicht gegeben, um das Chlorophyll
aufzulösen, damit die Konzentration von Chlorophyll für die Absorptionsmessung mittels eines Spektrophotometers
optisch wurde. Die Absorption dieser Lösung bei 665 nm (maximale Absorption λ von Chlorophyll-a) wurde mit
einem Spektrophotometer gemessen.
Die Wachstumsrate (%) wurde nach folgender Gleichung errechnet:
Wachstumsrate
Absorption der mit Film Nr. 1 bedeckten Kultivierungsflüssigkeit
Absorption der mit dem Film Nr. 5 bedeckten Kultivierungsflüssigkeit
- 1
χ 100
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-7/2- | I | 0,004 | 291üO?4 | |
-73· | Absorption bei 665 Beispiel 1 Vergleichs- (FiIm Nr. 1) beispiel 1 (Film Nr. 5) |
0,008 | ||
Tabelle | 0,004 | 0,018 | mn Wachstumsrate (*) |
|
verstrichener Zeitraum (Tage) |
0,009 | 0,039 | 0 | |
O | I | 0,022 | 0,099 | 13 |
1 | 0,052 | 22 | ||
2 | 0,120 | 33 | ||
3 | 21 | |||
4 |
Aus Tabelle I wird ersichtlich, daß das Beispiel 1 eine
erheblich hohe Wachstumsrate im Vergleich zum Vergleichsbeispiel 1 zeigte. Die visuelle Beobachtung mit dem unbewaffneten Auge ergab eine Farbdifferenz, die der Differenz der Wachstumsrate der Algen zuzuschreiben war, zwischen
dem Produkt des Beispiels 1 und des Vergleichsbeispiels 1 nach dem Verstreichen von einem Tag. Diese Differenz nahm mit der Zeit zu.
erheblich hohe Wachstumsrate im Vergleich zum Vergleichsbeispiel 1 zeigte. Die visuelle Beobachtung mit dem unbewaffneten Auge ergab eine Farbdifferenz, die der Differenz der Wachstumsrate der Algen zuzuschreiben war, zwischen
dem Produkt des Beispiels 1 und des Vergleichsbeispiels 1 nach dem Verstreichen von einem Tag. Diese Differenz nahm mit der Zeit zu.
Während durch herkömmliche Techniken erhebliche Anstrengungen erforderlich sind, um das Wachstum von Algen der Gattung
Anacystis um Λ0% zu erhöhen, ist es als überraschend
anzusehen, daß das erfindungsgemäße Verfahren eine Erhöhung
des Wachstums um etwa 10 bis 3O?6 bewirkt.
Eine Kultivierungsflüssigkeit wurde hergestellt, indem
1000 ml reines Wasser zu 5 g Kaliumnitrat, 0,1 g Kaliumhydrogenphosphat, 0,05 g Magnesiumsulfat-heptahydrat und
10 Tropfen einer 0,1#igen wäßrigen Lösung von Ammoniumeisencitrat (Medium der Cambridge Culture Collection) ge-
1000 ml reines Wasser zu 5 g Kaliumnitrat, 0,1 g Kaliumhydrogenphosphat, 0,05 g Magnesiumsulfat-heptahydrat und
10 Tropfen einer 0,1#igen wäßrigen Lösung von Ammoniumeisencitrat (Medium der Cambridge Culture Collection) ge-
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-H-
2910ÜH
geben wurden. Zwei 500-ml-Bechergläaser wurden jeweils mit
250 ml der resultierenden Kultivierungsflüssigkeit beschickt. Microcystis aeruginosa (Klasse Cyanophyta, Unterklasse Cyanophyceae,
Ordnung Chroococcales, Familie Chroococcaceae, Gattung Microcystis) wurde in die Bechergläser mit einer Konzentration
entsprechend einer Absorption bei 500 nm von 0,5850 eingegeben. Die Temperatur der Flüssigkeit in den Bechergläsern
wurde auf 15 bis 250C unter Anwendung eines Tanks
mit Wasser mit konstanter Temperatur eingestellt. Die Kultivierung wurde in der Weise durchgeführt, daß Licht einer
handelsüblichen Glimmfluoreszenzlampe, die mit dem Film Nr. 1 bedeckt war, auf eines der Bechergläser aufgestrahlt wurde
und daß Licht einer handelsüblichen Glimmfluoreszenzlampe, die mit dem Film Nr. 5 bedeckt war, auf das andere Becherglas
aufgestrahlt wurde. Die Lichtstärke an der Oberfläche der Kultivierungsflüssigkeit in jedem Becherglas betrug
1600 Lux. Die Bestrahlung wurde kontinuierlich durchgeführt.
Von der Kultivierungsflüssigkeit wurden periodisch Proben abgenommen und die Absorption bei 500 nm wurde gemessen. Die
Wachstumsrate und der Wachsturnsindex für jede Bestrahlungszeit wurden nach folgenden Gleichungen errechnet. Die Ergebnisse
sind in Tabelle II zusammengestellt.
Absorption der Kultivierungs-Wachstumsrate
(%) = flüssigkeit nach der Bestrah-
xung _ ι -ν- mn
0,5850 - 1 χ 100
Wachstumsrate bei Bedeckung
mit dem Film Nr. 1 ν 100
Wachstumsindex = Wachstumsrate bei Bedeckung
mit dem Film Nr. 5
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-TS- | 29 1 | "OU U | - | |
Tabelle II | 100 | |||
Beispiel 2 Film Nr. 1 Wachstums- Wachstums rate (%) index |
Vergleichsbeispiel 2 Film Nr. 5 Wachstums- Wachstums- rate (%) index |
100 | ||
Be s trahlungs- zeit (h) |
O | 0 | ||
O | 101 110 | 92 | ||
24 | 221 110 | 201 | ||
72 | Vergleichsbeispiel 3 | |||
Beispiel 3 und | ||||
Zwei 5-1-Bechergläser wurden jeweils mit 3 1 einer Kulturflüssigkeit
mit der Zusammensetzung des Mediums der Cambridge Culture Collection (gleich wie im Beispiel 2) beschickt.
Microcystis aeruginosa wurde in jedes Becherglas in einer Konzentration gegeben, die einer Absorption bei 500 nm von
0,5850 entsprach. Die Bechergläser waren nahezu vollständig mit dem Film Nr. 1 bzw. dem Film Nr. 5 bedeckt. Luft wurde
in die einzelnen Bechergläser mit einer Geschwindigkeit von 3 l/min eingeblasen. Die Bechergläser waren Seite an Seite
an einem Ort im Freien, der von der Sonne gut beschienen war, an einem klaren Tag zu Beginn von August angeordnet.
Die Kultivierung von Microcystis aeruginosa wurde unter Sonnenlicht von 11 Uhr morgens bis 5 Uhr nachmittags durchgeführt.
Die Bechergläser wurden mit Wasser gekühlt, so daß die Temperatur der Kulturflüssigkeit in jedem Becher bei
25°C gehalten wurde.
Nach der Kultivierung wurde der Wachstumsindex in der gleichen Weise wie im Beispiel 2 errechnet. Die Ergebnisse sind
in Tabelle III zusammengestellt.
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Tabelle III
Beispiel 3 Vergleichsbeispiel 3
Beispiel 3 Vergleichsbeispiel 3
Deckfilm Nr. 1 Nr. 5
Lichtmenge (*)
380 nm - 650 nm 70000-20000 Lux 70000-20000 Lux
290 nm - 380 nm Ou W/cm2 2500-700 u W/c n2
Wachsturnsindex 155 100
(*) Die Lichtmenge war der Wert, der an der Oberfläche der Kulturflüssigkeit in den Bechergläsern gemessen worden
war.
2 1 Meerwasser der Toyama Bay, Japan, wurden jeweils in zwei 3-1-Bechergläser gegeben. Spirulina platensis (Klasse Cyanophyceae,
Unterklasse Cyanophyceae, Ordnung Nostocales, Familie Oscillatoriaceae, Gattung Spirulina) wurde in jedes
Becherglas in einer Konzentration eingegeben, die einer Absorption bei 500 nm von 0,2040 entsprach. Die Bechergläser
waren vollständig mit den Filmen Nr. 1 bzw. 2 bedeckt. Luft wurde in die einzelnen Bechergläser mit einer Geschwindigkeit
von 2 l/min eingeblasen. An schönen Tagen im Beginn von August wurden die Bechergläser Seite an Seite 48 h
lang an einem Platz im Freien mit guter Sonnenbestrahlung angeordnet und die Kultivierung wurde im Sonnenlicht
durchgeführt. Die Bechergläser wurden mit Wasser gekühlt, so daß die Temperatur der Flüssigkeit in den Bechergläsern
bei 21 bis 23°C gehalten wurde.
Nach der Kultivierung wurden die Wachstumsindices in der gleichen Weise wie im Beispiel 2 errechnet. Die Ergebnisse
sind in Tabelle IV zusammengestellt.
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ORIGINAL INSPECTED
29 1CC 7
Beispiel 4 Vergleichsbeispiel 4
Deckfilm Nr. 1 5
Wachstumsindex 158 100
Kultivierungsnetze (jeweils mit den Abmessungen von etwa 120 cm χ 18 m), an die Sporen von Tang (Gattung Porphyra
Agardh, z.B. P. teners) angeheftet worden waren, wurden Mitte Oktober horizontal im Sporenwachstumsbereich im Meer
mit mäßigen Wellen fixiert. Die Fixierung erfolgte durch Stützpfeiler, die gewöhnlich aus Bambus hergestellt sind.
Auf diese Weise wurden die Sporen des Tangs gezüchtet. Während der Wachstumsperiode der Tangsporen (etwa 30 bis
40 Tage) wurden der Film Nr. 1 oder Nr. 2 in einer Stellung von etwa 10 bis 50 cm oberhalb des Meerwasserspiegels bei
voller Flut gestreckt, so daß die gesamten Kultivierungsnetze
vollständig bedeckt waren. Das Sonnenlicht traf daher auf die Netze nach Durchtritt durch den Deckfilm auf.
Nach dem Sporenwachstum wurden die Netze in einen Kultivierungsbereich
im Meer überführt und in der gleichen Weise wie oben befestigt, um die Kultivierung von Tang vorzunehmen.
Die Kultivierungsmethode schloß eine Trägerpfeilermethode und eine Schwimmethode ein. Ungeachtet der Anwendung
der Methode ist die Art und Weise des Ausstreckens des Films die gleiche wie in der Sporenwachstumsperiode.
In diesem Beispiel wird hauptsächlich die Pfeilerträgermethode
gezeigt. Im Falle der Pfeilerträgermethode betrug der Unterschied des Meerwasserspiegels zwischen voller
Flut und Ebbe etwa 2 m. Die Kultivierungsnetze wurden da-
0300 19/0583 ORIGINAL
-rr- . 23JQuH
her in einer Position von mehr als 30 bis 40 cm unterhalb des Zwischenspiegels zwischen vollständiger Flut und niedriger
Ebbe angesetzt. Die Netze wurden entsprechend dem Wachsturnszustand des Tangs und den Wetterbedingungen nach
oben und unten bewegt.
Der Film Nr. 1 und Nr. 2 wurde an einer Position von etwa 10 bis etwa 50 cm oberhalb des Meeresspiegels bei vollständiger
Flut gezogen und die Position wurde entsprechend den Wetter- und anderen Bedingungen verändert.
Der Film Nr. 1 oder Nr. 2 kann auch auf der Meerwasseroberfläche oder unter dieser ausgezogen werden. In diesem Falle
wird es bevorzugt, den Film in einer Position von etwa 10 bis 100 cm oberhalb des Kultivierungsnetzes auszuziehen.
Bei Anwendung der Schwimmethode wurden die Kultivierungsnetze
durch Bojen getragen, so daß sie in einem vorbestimmten Raum (20 bis 50 cm) unterhalb der Meeroberfläche angeordnet
waren. In diesem Falle kann der Film auf der Meerwasseroberfläche
oder unter der Wasseroberfläche ausgestreckt werden.
Während der Kultivierung über lange Zeiträume haften Kieselalgen und andere Algen, die im Meer leben, Salze, Staub,
Sand und andere Verschmutzungsmaterialien an den Netzen. Es war erforderlich, diese Verunreinigungen gelegentlich
zu entfernen. Kleine Löcher wurden in dem Film vorgesehen, um Regenwasser und Meerwasser auf dem Film zu entfernen.
Die Kultivierung wurde nach dem herkömmlichen Verfahren durchgeführt, mit der Ausnahme, daß der Film über das Netz,
wie oben beschrieben, ausgebreitet wurde. Die Ergebnisse sind in Tabelle V zusammengestellt.
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
29-10ÖU
Ernten wurden dreimal von jedem Netz bis zum Ende von Dezember
durchgeführt.
Versuch untersuch- Ernte Weichheit Aussehen des Tangs
ter Be- (Anzahl beim Essen Schwärze Glanz reich pro (b) (c) (d) Netz)
(a)
Bei- mit dem Film
spiel Nr. 1 be-
spiel Nr. 1 be-
5 deckter Bereich 3000 7 58
Bei- mit dem Film
spiel Nr. 2 be-
spiel Nr. 2 be-
6 deckter Bereich 2700 3 4 ' . 2
Vergl.- nicht be-
Bei- deckt 2050 0 0 0 spiel
5
5
Die Angaben der Tabelle V werden wie folgt erläutert:
(a) Anzahl bzw. Menge der Ernten.
Es handelt sich um die Anzahl der Tangblätter mit den Abmessungen 19,1 cm χ 17,6 cm, die bis zum Ende
von Dezember geernten wurden.
(b) Bewertung der Weichheit des Tangs beim Genuß.
Die organoleptischen Eigenschaften wurden von einem Gremium mit 10 Spezialisten bestimmt. Die Ergebnisse
werden durch die Anzahl von Mitgliedern des Gremiums
angegeben, die dem getesteten Tang die beste Bewertung gaben.
030019/0583
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-w-
23100-4
(c) Bewertung der Schwärze des Tangs.
Die Bewertung erfolgte organoleptisch durch ein Gremium
mit 10 Spezialisten. Die Ergebnisse sind als diejenige Anzahl von Mitgliedern des Gremiums angegeben,
die dem getesteten Tang die beste Bewertung gaben.
(d) Bewertung des Glanzes.
Die Bewertung erfolgte organoleptisch durch ein Gremium mit 10 Spezialisten. Die Ergebnisse sind als
diejenige Anzahl von Mitgliedern des Gremiums angegeben, die dem getesteten Tang die beste Bewertung
gaben.
Aus Tabelle V wird ersichtlich, daß die geerntete Menge in den mit den Filmen Nr. 1 und 2 bedeckten Bereichen erheblich
größer war als in dem unbedeckten Bereich. Weiterhin wird ersichtlich, daß die Qualität des aus diesen bedeckten
Bereichen geernteten Tangs erheblich verbessert worden war, wie sich aus der Weichheit, der Farbe und dem Glanz des
Produkts ergibt. Dieser Effekt war besonders in dem mit dem Film Nr. 1 bedeckten Bereich hervorragend. Der in diesem
Bereich geerntete Tang konnte mit höherem Preis verkauft werden.
Ähnliche Ergebnisse wurden erhalten, als die Kultivierung von Dezember bis März unter Verwendung von gekühlten Netzen
durchgeführt wurde. Überraschenderweise konnte die Kultivierungsperiode des Tangs um etwa 2 Wochen im Vergleich
zu dem unbedeckten Bereich erhöht werden.
Ähnliche Ergebnisse wurden erhalten, als die Position des Ausstreckens des Films Nr. 1 immer unterhalb der Meerwasseroberfläche
war (Schwimmethode) oder als sie oberhalb
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-8S-
,29100 4
oder unterhalb der Meerwasseroberfläche durch den Effekt der Gezeiten war (Stützpfeilermethode).
Das erfindungsgemäße Verfahren konnte daher die Härtung von Tang, gegen die bislang keine Verhinderungsinaßnahme
wirksam war, im wesentlichen vollständig verhindern.
Durch Verwendung der Filme Nr. 1 und Nr. 2 gemäß der Erfindung wurde die Anzahl der geernteten Tangblätter erheblich
erhöht. Ein ausgeprägter Effekt hinsichtlich der Verbesserung der Tangqualität, beispielsweise der Genußweichheit,
der Farbe, des Aromas und des Glanzes, wurde erzielt.
Das erfindungsgemäße Verfahren stellt daher einen erheblichen Fortschritt für Tanghersteller dar.
Die Filme Nr. 1 bzw. 5 wurden jeweils über zwei Rohrgehäuse
jeweils mit einer Breite von 4,5 m, einer Länge von 20 m und einer Höhe von 2,2 m gestreckt. In jedem Gehäuse
wurden zwei 50-1-Wassertanks angeordnet.
Am 20. Oktober wurde jeder der Wassertanks mit 2 ppm Natriumhypochlorit
sterilisiert. Sodann wurden 30 1 neutralisiertes Meerwasser (spezifisches Gewicht 1,014) und als
Düngemittel "Organic Nr. 280" (Warenzeichen für ein Produkt
von Nitto Chemical Industry Co., Ltd.) in einer Konzentration von 100 g/t Meerwasser und "Clewat 32" (Warenzeichen
für ein Produkt von Teikoku Chemical Industry Co., Ltd.) in einer Konzentration von 20 g/t Meerwasser in
jeden Tank eingegeben, um ein Kulturmedium herzustellen.
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29 10G '4
Am 22. Oktober wurde Chlorella vulgaris (Klasse Chlorophyta,
Unterklasse Chlorophyceae, Ordnung Chlorococcales,
Familie Chlorellaceae, Gattung Chlorealla) so zugesetzt, daß die Konzentration in jedem Wassertank 559 Zellen/cm
Kulturmedium wurde. Luft wurde in die Wassertanks mit einer Geschwindigkeit von 10 l/min eingeblasen und die Wassertemperatur
wurde bei 25 bis 200C gehalten. Auf diese Weise
wurden die Chlorella-Algen 6 Tage lang gezüchtet. Das Ergebnis des Wachstums ist in Tabelle VI und Figur 2 dargestellt.
Die Anzahl der Chlorella-Zellen wurde nach der von Hiroshi
Tamiya und Atsushi Watanabe beschriebenen Methode "Methods of Experiments on Algae" (4. Auflage, veröffentlicht am
20. Juni 1975, Nankodo Press, Tokyo, Japan) unter Anwendung der Thoma-Zählkammer gemessen.
verstri- Anzahl der Chlorella-Zellen (x 10 /cnr ) chener Beispiel 7 (Film Nr. 1) Vergleichsbei- Wachs-Zeitraum
1. Be- 2.Be- Mittel- spiel 6 (Film Nr. 5) tums-(Tage) reich reich wert 1.Be- 2.Be- Mittel- rate
reich reich wert (%)
0 | 559 | 559 | 559 | 559 | 559 | 559 | 100 |
1 | 849 | 837 | 843 | 741 | 793 | 767 | 110 |
2 | 1888 | 1792 | 1840 | 1288 | 1600 | 1444 | 127 |
3 | 2196 | 2267 | 2232 | 1920 | 1808 | 1864 | 120 |
4 | 3216 | 3072 | 3144 | 2104 | 2384 | 2244 | 140 |
5 3688 3168 3428 1048 2080 1564 220 (*) Die Wachstumsrate wird wie folgt errechnet:
Mittelwert bei Beispiel 7 inn
Wachstumsrate = Mittelwert beim Ver-
gleichsbeispiel 6
0 300 19/0583 ORIGINAL INSPECTED
-?3- 2SM OC
Die Wachstumsrate erhöhte sich nach einem Tag, was auch
durch visuelle Beobachtung klar ersichtlich war. Nach dem
Verstreichen von 4 Tagen war das Wachstum bei Beispiel 7 heftig, während das Wachstum im Vergleichsbeispiel 6 abgebrochen
war und das Absterben der Chlorella-Zellen erheblich war. Nach der Verstreichen von 5 Tagen war diese
Neigung stark und die Anzahl der Zellen im Vergleichsbeispiel 6 war weniger als die Hälfte derjenigen im Beispiel
3 1 einer KuItürflüssigkeit mit der Zusammensetzung des
Bristol-Kulturmediums (hergestellt durch Zugabe von 0,5 g Natriumnitrat, 0,5 g Kaliumdihydrogenphosphat, 0,15 g Magnesiumsulfat-heptahydrat,
0,05 g Calciumchlorid, 0,05 g Natriumchlorid und 0,01 g Eisen(III)-chlorid-hexahydrat
zu 1000 ml reinem Wasser) wurden jeweils in zwei 5-1-Bechergläser gegeben. Wie im Beispiel 7 wurde Chlorella pyrenoidosa
(300 Millionen Zellen/cnr ) in jedes der Bechergläser
gegeben. Die Bechergläser waren fast vollständig mit den Filmen Nr. 1 bzw. Nr. 5 bedeckt. Luft wurde in jedes
der Bechergläser mit einer Geschwindigkeit von 3 l/min eingeblasen.
An schönen Tagen im Beginn von August wurden die zwei Bechergläser
Seite an Seite an einem Außenort, der von der Sonne gut beschienen war, 48 h lang angeordnet und die
Chlorella-Zellen wurden im Sonnenlicht kultiviert. Die Bechergläser
wurden mit Wasser gekühlt, um die Temperatur der Flüssigkeit bei etwa 23°C zu halten.
Die Anzahl der Zellen nach der Kultivierung wurde wie im Beispiel 7 gemessen. Die Wachstumsrate und der Wachsturns-
030019/0583
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291 Car-
index wurden nach folgenden Gleichungen bestimmt. Die Ergebnisse sind in Tabelle VII zusammengestellt.
Wachstumsrate {%) =
Anzahl der Chlorella-Zellen
vor dem Versuch
Anzahl der Chlorella-Zellen nach dem Versuch
χ 100
Wachs turns index =
Wachstumsrate im Beispiel 8 Wachstumsrate beim Vergleichsbeispiel
7
100
Vergleichsbeispiel 7 Beispiel 8
verwendete Filme
Anzahl der Chlorella-Zellen
vor dem Versuch (Millionen/ cm3)
Anzahl der Chlorella-Zellen nach dem Versuch (Millionen/cm3)
Wachstumsrate (%)
Wachstumsindex
Wachstumsindex
Nr. 5
300
300
Nr. 300
900 300 163
Die Menge des Sonnenlichts an der Wasseroberfläche während des obigen Versuchs ist in Tabelle VIII angegeben.
Meßzeit (Uhrzeit) 14
Menge des sichtbaren Lichts (cal/cm2.min) (400-700 nm) 0,35
Menge von Ultraviolettlicht
' n2) (300-400 ran) 2800
16
0,33 0,13
1000
0,33 0,13
1000
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ORIGINAL INSPEQiED
-%fr-
40 1 reines Wasser, stromaufwärts von einem Fluß entnommen, wurden jeweils in sechs 50-1-Tanks eingegeben. 1,0 g Cladophora
sauteri (Klasse Chlorphyta, Unterklasse Chlorophyceae, Ordnung Cladophorales, Familie Cladophoraceae, Gattung CIadophora)
(nach 5-minütiger Zentrifugenabtrennung bei 1500 Upm abgewogen) wurde in jeden der Wassertanks gegeben. Vier
Tanks waren vollständig mit den Filmen Nr. 1, 3, 4 bzw. 5 bedeckt und die restlichen zwei Tanks waren unbedeckt. Diese
Tanks wurden an einem Ort im Freien, der von der Sonne gut beschienen war, angeordnet. Die Wassertemperatur wurde
mit einem Thermostat bei 25 - 1°C gehalten. Luft wurde in die einzelnen Wassertanks mit einer Rate von 4 l/min eingeblasen.
Die Kultivierung von Cladophora sauteris wurde 3 Tage lang im Sonnenlicht durchgeführt. Ein nicht-bedeckter
Tank wurde unter einem Baum angeordnet, um eine direkte Bestrahlung mit Sonnenlicht zu vermeiden.
Die Ergebnisse sind in Tabelle IX zusammengestellt.
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Beispiel 9 Beispiel 10 Beispiel 11 Vergleichs- Vergleichsbeispiel 8 beispiel 9
Vergleichsbeispiel 10
Film Nr. 1 Film Nr. 3 Film Nr. 4 Film Nr. 9 unbedeckt
Gewicht (g) von | 1,0 | 1,0 | 1,0 | |
Cladophora sau- | 1,6 | 1,8 | 1,3 | |
teri | das Wachs | das Wachs-. | die Farbe | |
am Beginn des | tum war | turn war | der Algen | |
Versuchs | rasch und | sehr rasch | war sehr | |
nach 3 Tagen | die Farbe | tief und | ||
O | Beobachtungen | war tief | wurde dun | |
u> | kelgrün | |||
O | ||||
O | ||||
to | ||||
Sh ' | ||||
O | ||||
cn | ||||
00 | ||||
CO | ||||
unbedeckt (unter einem Baum)
1,0
1,0
1,0 1,1
nach 1 bis 2 Tagen wurden ein Wachstum die Algen weißlich und wurde kaum
veränderten ihre Farbe festgestellt sodann nach gelb, braun und schließlich schwarz.
Dann starben sie ab.
-85-
2910 0 ;
' ΟΓ"
Algen A bis F gemäß Tabelle X wurden jeweils 7 Tage lang im Sonnenlicht kultiviert, wobei die Kultivierungsbereiche
mit dem Film Nr. 1, Nr. 2 oder Nr. 5 bedeckt waren.
Nach der Kultivierung wurden von der Kulturflüssigkeit
Proben in einer Menge von 1 bis 3 ml entsprechend den Konzentrationen
der Algen abgenommen.'Sie wurden 20 bis 40 min lang bei 4000 Upm zentrifugiert. Das erhaltene Volumen oder Gewicht des Feststoffs wurde gemessen. Das Volumen
oder Gewicht des Feststoffs aus dem mit dem Film Nr. 1 bedeckten Bereich wurde als 100 genommen. Das Volumen
oder Gewicht des Feststoffs von dem mit dem Film Nr. 2
oder Nr. 5 bedeckten ereich wurde auf dieser Basis errechnet
und als Wachsturnsindex verwendet. Die erhaltenen
Ergebnisse sind in Tabelle XI zusammengestellt.
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Bezeich- Klasse des Unterklasse Ordnung
nung Pflanzenreiches
nung Pflanzenreiches
Familie Gattung
Art
Wachsturnskulturmedium
A | Cyanophy ta |
|
B | Rhodophy ta |
|
C | Chrysoph ta |
|
D | π | |
0300 | E | Chloroph ta |
CD ^__ |
F | Il |
cn QO ω |
Cyanophy- Nostocales Nostocaceae ceae
Protoflori- Porphyri- Porphyrideophyceae diales diaceae
Chrysophy- Bacillario- Centrales Discaceae phyceae
11 Pennales Navicu-
laceae Anabaena
A. spiroides Allen-Arnon
ceae
Volvocales Chlamydomonadaceae
Chlorococ- Coelastracales ceae
Porphyri- dium |
P. | cruentum | radiosa | Eyster- Brown Hood |
Coscino- discus |
C. asterom- phalus |
nivalis | Sudo | |
Navicula | N. | S. quardi- cauda |
Fogg | |
Chlamydo- monas |
C. | Sagger- Granick |
||
Scenedesmus | Pascher |
-erg-
Tabelle XI | Deckfilm Nr. |
Wachstumsindex | |
Gattung | Versuch | 1 | 100 |
Anabaena | Beispiel 12 | 2 | 96 |
Beispiel 13 | 5 | 77 | |
Vergleichs- beispiel 11 |
1 | 100 | |
Porphyridium | Beispiel 14 | 5 | 84 |
Vergleichs beispiel 12 |
1 | 100 | |
Coscinodiscus | Beispiel 15 | 5 | 69 |
Vergleichs beispiel 13 |
1 | 100 | |
Navicula | Beispiel 16 | 5 | 78 |
Vergleichs beispiel 14 |
1 | 100 | |
Chlamydomonas | Beispiel 17 | 5 | 82 |
Vergleichs- beispiel 15 |
1 | 100 | |
Scenedesmus | Beispiel 18 | 5 | 76 |
Vergleichs- beispiel 16 |
|||
Die Kultivierung unter Bedeckung mit dem Film Nr. 1 oder in gleicher Weise wie in den obigen Beispielen wurde auch
mit Algen der Gattung Nostoc, Familie Nostocaceae, der Ordnung Nostocales, der Unterklasse Cynaophyceae, der
Klasse Cyanophyta, der Gattung Skeletonema, der Familie
Discaceae, der Ordnung Centrales, der Unterklasse Bacillariophyceae, der Klasse Chrysophyta, der Gattung Chaetocerus,
der Familie Biddulphiaceae, der Ordnung Centrales, der Unterklasse Bacillariophyceae, der Klasse Chrysophyta,
der Gattung Exuviaella, der Familie Prorocentraceae, der
Ordnung Thecatales, der Unterklasse Dinophyceae, der Klasse
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ORIGINAL INSPECTED
291ÜÜ
Pyrrhophyta, der Gattung Amphidinium, der Familie Gymnodiniaceae,
der Ordnung Peridiniales, der Unterklasse Dlnophyceae, der Klasse Pyrrhophyta, und der Gattung Laminaria,
der Familie Laminariaceae, der Ordnung Laminariales, der
Unterklasse Heterogeneratae und der Gattung Undaria, der Familie, der Ordnung Laminariales, der Unterklasse Heterogeneratae,
beide zur Klasse Phaeophyta gehörend, durchgeführt.
Es wurden ähnliche wachstumsfördernde Effekte wie in den obigen Beispielen erhalten.
Die "Verfahrensweise des Beispiels 1 wurde wiederholt, mit
der Ausnahme, daß eine Schwarzfluoreszenzlampe FL2OS-BLB (Produkt von Tokyo Shibaura Denki K.K.) als Lichtquelle zusätzlich
zu der Toshiba-Yoko-Lampe verwendet wurde, so daß
das Bestrahlungslicht im nahen Ultraviolettbereich (etwa
300 bis 400 mn) so nahe wie möglich an Sonnenlicht war.
Die Toshiba-Yoko-Lampe wurde mit einem Zyklus, bestehend aus 16 h Belichtung und 8 h Abschalten, betrieben. Die
Schwarzfluoreszenzlampe wurde kontinuierlich 24 Tage lang in Betrieb genommen.
Die Belichtung an der Oberfläche Jeder Kultivierungsflasche
betrug 6000 Lux, wenn beide Lampen eingeschaltet waren. Zu diesem Zeitpunkt war die Lichtmenge im Wellenlängenbereich
von nicht mehr als 380 nm 0 an der Oberfläche
der Kultivierungsflasche in dem mit dem Film Nr. 1 bedeckten Wassertank und etwa 2500 liW/cm an der Oberfläche
der Kultivierungsflasche in dem mit dem Film Nr. 5 bedeckten
Wassertank.
0300 19/0583
-5ΚΓ-
!M-
29100
Die Temperatur der Innenseite der Wassertanks wurde bei
27 - 1°C gehalten.
Die Wachstumsgeschwindigkeit von Anacystis nidulance wurde in der gleichen Weise wie im Beispiel 1 bestimmt. Die Ergebnisse
sind in Tabelle XII zusammengestellt.
verstriche- Absorption bei 665 nm (log Io/Io) Wachstums-
ner Zeit- Beispiel 19 Vergleichsbeispiel 17 geschwin-
raum digkeit (Tage)
O | 0,004 |
1 | 0,010 |
2 | 0,030 |
3 | 0,124 |
4 | 0,254 |
5 | 0,355 |
0,004 | 100 |
0,008 | 125 |
0,009 | 333 |
0,012 | 1033 |
0,020 | 1270 |
0,031 | 1145 |
Aus Tabelle XII wird ersichtlich, daß das Wachstum bei Beispiel 19 im Vergleich zum Vergleichsbeispiel 17 um mehr
als das 10-fache erhöht worden war.
Das Zellvolumen von Anacystis nidulance wurde auf folgende Weise gemessen. Proben mit 2,5 cm der KuItürflüssigkeit wurden abgenommen und 20 min bei 2800 Upm zentrifugiert.
Das Packvolumen der sedimentierten Zellen wurde nach der Methode, beschrieben in "Method of Experiments on Algae",
herausgegeben von Hiroshi Tamiya, Seiten 186 bis 187 (4. Auflage, veröffentlicht von Nankodo am 30. Juni 1975), bestimmt.
Als Ergebnis wurde am 5. Kultivierungstag das Packvolumen der Zellen von Anacystis nidulance pro ml Kulturflüssigkeit
zu 1,24 ill im Beispiel 19 und zu 0,20 ill
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
■ η-
im Vergleichsbeispiel 17 bestimmt. Die gewachsenen Zellen
von Anacystis nidulance im Beispiel 19 und Vergleichsbeispiel 17 wurden im Mikroskop untersucht. Es wurde festgestellt,
daß die Zellen beim Beispiel 19 normal und von hoher Qualität waren. Jedoch waren die Zellen beim Vergleichsbeispiel
17 im allgemeinen klein und sie zeigten einen unregelmäßigen mißgebildeten Zustand, wobei sich
mehrere kleine Zellen versammelt hatten, ohne daß sie dazu imstande waren, sich voneinander abzutrennen.
Zwei 5-1-Glasflaschen wurden mit den Filmen Nr. 1 bzw. 5
bedeckt. Eine Glimmfluoreszenzlampe wurde so angesetzt, daß das Licht auf der Oberfläche jeder Glasflasche eine
Lichtstärke von 3000 Lux hatte. Die einzelnen Glasflaschen wurden mit 3,5 1 eines Provasoli-Pinter-Kulturmediums beschicht
und 200 Zellen/cnr Gymnodinium breve (Klasse Pyrrhophyta,
Unterklasse Dinophycidae, Ordnung Peridiniales, Familie Gymnodiniaceae, Gattung Gymnodinium) wurden zugesetzt.
Das Kulturmedium wurde unter Einblasen von Luft mit einer Geschwindigkeit von 300 ml/min durchbewegt. Die Temperatur
des Kulturmediums wurde bei 20 bis 25°C gehalten und ein Kultivierungstest wurde durchgeführt. Die Anzahl
der Zellen der Breve-Art wurde wie im Beispiel 7 nach kontinuierlicher Bestrahlung über einen Zeitraum von 12 Tagen
mit Licht der Glimmfluoreszenzlampe bestimmt. Die Ergebnisse sind in Tabelle XIII zusammengestellt.
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ORIGINAL INSPECTED
- 53-
2;) IC
Beispiel Vergleichs- Wachs tu: r,-20 beispiel 18* f örderur. -,z-(I)
(II) grad
(I/II)
Deckfilm | Zellen pro cm | Nr. 1 | Nr. 5 | 1 |
Anzahl der | Bestrahlen | 1400 | ||
vor dem | Bestrahlen | 200 | 200 | |
nach dem | 35000 | 25 | ||
* Beim Vergleichsbeispiel 18 erhöhte sich die Anzahl der Zellen
nicht. Im Verlauf der Bestrahlung neigte die Anzahl der Zellen jedoch zur Verminderung und die Zellen starben ab.
Aus Tabelle XIII wird klar ersichtlich, daß beim Beispiel 20 das Wachstum der Breve-Arten erheblich war. Dagegen
starben im Vergleichsbeispiel 18 die Zellen der Breve-Art allmählich ab.
Ende der Beschreibung.
030019/05
OFUGINM. INSPECTED
Claims (19)
1. Verfahren zur Kultivierung von Algen, dadurch gekennzeichnet , daß man die Algen in einem Lichtfeld
wachsen läßt, welches im wesentlichen von Licht mit
Wellenlängen von nicht mehr als 340 nm frei ist.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet , daß das Lichtfeld im wesentlichen von
Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 360 nm frei ist.
3. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet , daß das Lichtfeld im wesentlichen von
Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 380 nm frei ist.
4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3» dadurch
gekennzeichnet, daß man die Alge in einem Lichtfeld kultiviert, in dem Licht mit Wellenlängen von
mindestens 550 nm vorhanden sein kann.
5. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß man die Kultivierung in der Weise
durchführt, daß man mit einem Deckmaterial bedeckt, das
den Durchtritt von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als 380 nm im wesentlichen hemmt und das den Durchtritt
von Licht mit Wellenlängen von mindestens 550 nm im wesentlichen gestattet.
030019/0583
6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5» dadurch
gekennzeichnet, daß die Algen zu der Klasse
Cyanophyta, Klasse Rhodophyta, Klasse Chrysophyta, Klasse Phaeophyta oder Klasse Chlorophyta gehören»
7. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 5, dadurch
gekennzeichnet , daß die Algen zu den Gattungen Anacystis, Microcystis. Spirulina, Anabaena, Nostoc,
Porphyridium, Porphyra, Gelidium, Coscinodiscus, Skeletonema, Chaetocerus, Navicula, Exuviaella, Amphidinium, Gymnodinium,
Nemocystus, Laminaria. Undaria, Chlamydomonas, Chlorella.
Scenedesmus oder Cladophora gehören.
8. Deckmaterial zur Anwendung bei der Kultivierung von
Algen, dadurch gekennzeichnet , daß es den Durchtritt von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als
340 nm im wesentlichen hemmt.
9. Deckmaterial nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet , daß es den Durchtritt von Licht mit Wellenlängen
von nicht mehr als 360 nm im wesentlichen hemmt.
10. Deckmaterial nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet , daß es den Durchtritt von Licht mit Wellenlängen
von nicht mehr als 380 nm im wesentlichen hemmt.
11. Deckmaterial nach einem der Ansprüche 8 bis 10, dadurch
gekennzeichnet , daß es den Durchtritt von Licht mit Wellenlängen von mindestens 550 nm im wesentlichen
gestattet.
12. Deckmaterial nach Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet, daß es aus einem anorganischen oder organischen
Film oder Platte besteht, welcher bzw. welche den Durchtritt von Licht mit Wellenlängen von nicht mehr als
030019/0583
380 nm im wesentlichen hemmt und den Durchtritt von Licht mit Wellenlängen von mindestens 550 nm gestattet.
13. Deckmaterial nach Anspruch 12, dadurch g e k e η η zeichnet , daß der organische Film oder die Platte
ein Kunststoffilm oder eine Platte, der bzw. die einen Ultraviolettabsorber enthält, ist.
14. Deckmaterial nach Anspruch 13» dadurch g e k e η η
zeichnet , daß der Kunststoffilm oder die Platte
ein Polyvinylchloridfilm oder -platte ist.
ein Polyvinylchloridfilm oder -platte ist.
15· Deckmaterial nach Anspruch 13» dadurch g e k e η η
zeichnet , daß der Ultraviolettabsorber ein Benzotriazolderivat der allgemeinen Formel
oder
in der R.. und Rp» die gleich oder verschieden sein können,
jeweils für eine Niedrigalkyl- oder -arylgruppe stehen und R, für eine Alkylgruppe mit mindestens 6 Kohlenstoffatomen
steht und X für ein Wasserstoff atom oder ein Halogenatom
steht, ist.
steht, ist.
16. Deckmaterial nach Anspruch 15, dadurch g e k e η η
zeichnet f daß die durch R^ und Rp angegebene Arylgruppe
eine Phenylgruppe ist.
17. Deckmaterial nach Anspruch 15, dadurch g e k e η η
zeichnet , daß R1 für eine verzweigte Niedrigalkyl oder
eine Phenylgruppe steht.
030019/0583
ORIGINAL INSPECTED
_4- 291QO H
18. Deckmaterial nach einem der Ansprüche 15, 16 oder
17, dadurch gekennzeichnet , daß die durch R-2 angegebene Alkylgruppe 8 bis 10 Kohlenstoff atome enthält.
19. Deckmaterial nach einem der Ansprüche 15 bis 18,
dadurch gekennzeichnet , daß X für ein Chloratom steht.
0 3 0 0 19/0583
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