CN202024997U - 一种检测马秋波抗体的蛋白悬浮芯片*** - Google Patents
一种检测马秋波抗体的蛋白悬浮芯片*** Download PDFInfo
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Abstract
本实用新型公开了一种检测马秋波抗体的蛋白悬浮芯片***,包括:芯片基体、加液***、悬浮芯片检测仪和计算机,芯片基体内装有相关缓冲溶液和待测抗体,相关缓冲液中设置有编码微球,编码微球上包被捕获抗原,加液***依次向芯片基体中加入生物素标记的二抗、荧光信号检测物,悬浮芯片检测仪包括微细管检测通道和检测激光,编码微球依次通过微细管检测通道,检测激光激发并识别编码微球的颜色及其上待测物的颜色,计算机与悬浮芯片检测仪相连,并记录、分析悬浮芯片检测仪的测量结果。悬浮芯片技术利用微球在溶液中反应,利用激光检测技术,提高了样品检测的准确性和重复性,具有优于片膜芯片的操作简便、重复性好等特点。
Description
技术领域
本实用新型涉及一种检测马秋波抗体的蛋白悬浮芯片***。
背景技术
马秋波病毒是一种沙粒病毒,染病初期表现为发烧,然后鼻子和牙龈开始出血,胃肠内出血,30%的感染者会死亡,病毒体积小但威力大。病程第1周,逐渐出现不适、厌食和头痛,中度发热,肌痛和腰痛。头3~4日期间病人亦可诉有眼眶后头痛、关节痛、上腹部痛、恶心和呕吐及头晕,初期几乎没有咳嗽、咳痰、咽喉痛和鼻部充血,体检可见脸、颈和上胸部潮红,结膜充血和眶周水肿,口咽部粘膜充血、瘀斑,软腭部可见大小一致的小水疱,牙龈充血或自发性或轻压后出血,腋窝、上胸和上臂部位皮肤可见瘀斑,***中度肿大,肝、脾多不肿大,黄疸少见,第1周末出现少尿和脱水,神经***症状和体征较轻,但病人可有定向障碍、手和伸舌震颤、共济失调,深部腱反射和肌张力减退,皮肤感觉过敏,病程第2周,多数病人症状迅速改善,经1~3个月恢复期,不留后遗症,20%~30%病人在起病后8~12日表现严重出血或神经***损害、休克和/或合并细菌感染,大出血或严重神经损害或两者同时并存,均可导致死亡,急性肾功能衰竭不常见,但可以发生于休克未及时纠正和急性肾小管坏死的病人,合并感染常因白细胞增高不明显,而导致诊断延误。
免疫学方法酶联免疫实验(ELISA)中利用抗原与抗体特异性反应来检测抗原或抗体主要有由双抗原夹心测抗体、双抗体夹心测抗原、竞争法、间接法等。间接法测抗体的原理是特异性抗原结合到固相载体上,然后和待检血清中的相应抗体结合形成免疫复合物,洗涤后再加酶标记二抗与免疫复合物中的抗体结合形成酶标记二抗-抗体-固相抗原复合物,加底物显色,判断抗体含量。
悬浮芯片(suspension array)也称液相芯片,是20世纪70年代美国Luminex公司研制出的新一代生物芯片技术,利用带编码的微球体作为载体,流式细胞仪作为检测平台,对核酸、蛋白质等生物分子进行大规模测定。目前,该技术已广泛应用于免疫分析、核酸研究、酶学分析、抗体筛选及受体与配体的识别分析等领域。
目前发展的悬浮芯片主要是基于实验室检测方法的建立和方法评价及优化,以缩短检测时间,降低方法的检测成本。但是蛋白悬浮芯片方法是否能够检测人血清中的马秋波抗体,其定量检测能力如何,尚缺乏模型和评价。
实用新型内容
本实用新型的目的在于提供一种检测马秋波抗体的蛋白悬浮芯片***,该芯片***包括:芯片基体、加液***、悬浮芯片检测仪和计算机,其中,芯片基体内装有相关缓冲溶液和待测抗体,相关缓冲液中设置有包被捕获抗原的061号编码微球,加液***与芯片基体连通,以向芯片基体中加入生物素标记的二抗、荧光信号检测物,悬浮芯片检测仪包括微细管检测通道和检测激光,微细管检测通道与芯片基体连通,该微细管检测通道吸入反应后的溶液、以使得每个编码微球依次通过微细管检测通道,检测激光激发并识别编码微球的颜色及其上待测物的荧光信号,计算机与悬浮芯片检测仪相连,并记录、分析悬浮芯片检测仪的测量结果。
进一步,所述相关缓冲溶液包括用于所述待测抗体稀释的样品稀释液、稀释所述编码微球所用的微球稀释液、稀释所述生物素标记的二抗所用的抗体稀释液、每个反应之后洗涤编码微球所用的微球清洗液、SA-PE稀释液、检测缓冲液。
进一步,所述捕获抗原优选为马秋波GP2蛋白。
进一步,所述待测抗体为血清样品。
进一步,所述生物素标记的二抗优选为Biotin-羊抗兔和/或Biotin-羊抗人IgG。
进一步,所述荧光信号检测物为链亲和素-藻红蛋白。
进一步,所述芯片基体为96孔滤板或者微量离心管。
进一步,所述检测激光包括用激发所述编码微球基质中的颜色、识别编码微球分类编码以确定检测项目的红色激光,用于激发并识别待测分子的颜色信号、记录信号强弱以检测所述待测抗体的含量的绿色激光。
经过大量试验和深入的研究,对马秋波抗体的蛋白悬浮芯片制备及其检测条件作了实质性的改进和创新,其具有下列优点:
1、抗原包被量的改进
马秋波GP2蛋白抗原的包被量是成功检测的关键,本实用新型对包被微球的抗原包被量进行实质性优化使血清样本的检测效果非常良好,并且包被悬浮芯片所需的抗原包被量很低,本实用新型的抗原包被量为0.01~125μg/1.25×106个编码微球,即0.002~500ng/2500~5000个微球/测试,而传统免疫学ELISA方法的包被量为4μg/测试。
2、生物素标记的改进
通常,标记抗体需要使用过量的生物素。理论上讲,在检测过程中,过量的生物素因未标记上抗体而不被微球上结合捕获抗体的抗体连接,清洗时被抽滤掉,不会与随后加入的SA-PE反应,不影响检测。但在实际检测过程中,偶尔遇到过检测信号可能过高的现象,出现假阳性,因此建议生物素标记抗体后,尽量去除多余的生物素。以标记2mg/mL的IgG(分子量150,000)1mL溶液为例,需加入10mM生物素溶液约27μL。
3、方法的特异性
本实用新型通过选用马秋波GP2蛋白为包被抗原,以兔抗马秋波抗体为待测抗体,以生物素化的羊抗兔为检测抗体。本研究试验证明,在存在兔抗圣路易斯脑炎NS1血清、兔抗普氏立克次体血清、鼠抗西尼罗E血清、兔抗委内瑞拉马脑炎血清、兔抗蜱传脑炎抗体、兔抗土拉抗体、兔抗登革热血清、兔抗西方马脑炎抗体、兔血清、大鼠血清、小鼠血清、BSA、酪蛋白、胰蛋白胨干扰抗体或蛋白存在条件下,本方法具有良好的特异性。
4、样品的检测能力
本实用新型评价了悬浮芯片方法对人血清的检测能力。通过对人血清的检测,初步证实了该方法在检测人血清中马秋波抗体的实用性。
附图说明
图1为本实用新型结构示意图;
图2为包被马秋波GP2蛋白的061号微球检测马秋波抗体示意图1;
图3为包被马秋波GP2蛋白的061号微球检测马秋波抗体示意图2;
图4为蛋白悬浮芯片方法检测兔抗马秋波抗体剂量-反应标准曲线图。
具体实施方式
如图1至图4所示,本实用新型一种检测马秋波抗体的蛋白悬浮芯片***,包括芯片基体1、加液***2、悬浮芯片检测仪3和计算机4,其中,芯片基体1为96孔滤板或者微量离心管,其内装有相关缓冲溶液和待测抗体,相关缓冲液中设置有061号编码微球,编码微球上包被有马秋波GP2蛋白,用于捕获待检测血清样品中的待测抗体,如果样品中有马秋波抗体,马秋波抗体与编码微球上的马秋波GP2蛋白结合,再加入带有生物素标记的二抗,形成编码微球-马秋波GP2蛋白-马秋波抗体-二抗-生物素复合物,最后加入链亲和素-藻红蛋白,链亲和素与生物素结合,形成编码微球-马秋波GP2蛋白-马秋波抗体-二抗-生物素-链亲和素-藻红蛋白复合物,通过悬浮芯片检测仪对藻红蛋白荧光信号的检 测来达到对血清样品中马秋波抗体的检测,如果血清样品中没有马秋波抗体,包被有马秋波GP2蛋白的编码微球不会与后面加入的生物素标记的二抗、链亲和素-藻红蛋白结合,最后通过悬浮芯片检测仪器进行检测时无荧光信号或应该信号非常弱。
上述芯片***中,编码微球在微球稀释液,待测抗体在样品稀释液中,生物素标记的二抗在抗体稀释液中,荧光信号检测物在SA-PE稀释液中,悬浮芯片检测仪检测时编码微球复合物在检测缓冲液中,每步结合之后均用微球清洗液洗涤微球,使得没有结合的物质清除体系。
悬浮芯片的基本原理是利用聚苯乙烯(polystyrene)所制作的微球,包覆不同比例的红光及红外光发色剂,而产生100种不同比例颜色,作为100种独特的色彩编号,每颗微球大小约5.6μm,可依不同研究目的如免疫分析、核酸研究、酶分析、受体和配体识别分析等,并根据不同研究目的而标定特定抗体、核酸探针及各种受体探针。标记探针的微球与待测物在96孔板中进行反应。反应后,利用机器自动将反应液吸起并通过一微细管检测通道,每次仅允许一个微球通过检测通道。检测通道中设有两道激光,一道为红色,激发微球基质中的颜色,识别微球分类编码以确定检测项目;一道为绿色,激发报告分子的颜色,记录信号强弱以检测待测物的含量。当待测样本与特定微球的探针吸附在一起时,两道激光所激发的光都可被检测到。而若样本中不含该标的物,则仅有微球中的激发光可被检测到。再通过机器与计算机自动统计分析两道激光所激发的微球种类与数量,从而判定待测样本中有几种测试目标物在其中,得知测试样本中有无待测病原存在,或同时存在有几种至数十种病原。悬浮芯片技术由于利用微球在溶液中反应,克服了片膜芯片在大分子检测时受表面张力、空间效应等对反应动力学的影响,同时利用激光检测技术,大大提高了样品检测的准确性和重复性,具有优于片膜芯片的操作简便、重复性好等特点。
本实用新型一种检测马秋波抗体的蛋白悬浮芯片***,通过下面的具体实施方式作进一步说明,但本实用新型不以任何方式受该实施例的限定。
一、材料
1.蛋白悬浮芯片的相关缓冲液:
(1)PBS缓冲液(pH7.4):NaCl 137mmol/L;KCl 2.7mmol/L;Na2HPO410mmol/L;KH2PO4 2mmol/L。用800mL蒸馏水溶解8gNaCl,0.2gKCl,1.44gNa2HPO4和0.24g KH2PO4。用HCl调节溶液的pH值至7.4,加水至1L。分装后在121℃高压灭菌20分钟,或过滤除菌,保存于室温。
(2)微球清洗液:PBS(pH7.4),0.05%Tween-20。
(3)微球活化缓冲液100mM NaH2PO4:3g NaH2PO4,5N NaOH 1.5mL,定容于250mL,pH6.2。
(4)微球包被缓冲液0.05M MES,pH5.0:2.44g MES,5N NaOH 0.15mL,定容于250mL。
(5)微球保存液PBS-TBN:PBS,0.1%BSA,0.02%Tween-20,0.05%叠氮化物,pH7.4。
(6)微球封闭液PBS-BN:PBS,1%BSA,0.05%叠氮化物,pH7.4。
(7)检测缓冲液:PBS,1%BSA,pH7.4。
(8)抗体稀释液:PBS,pH7.4。
(9)微球稀释液:PBS,1%BSA,pH7.4。
(10)样品稀释液PVX:PBS,0.5%PVA,0.8%PVP;
(11)SA-PE稀释液:PBS(pH7.4),1%BSA。
2.抗原与抗体
本实用新型所使用的抗原为马秋波GP2蛋白,可购自中国检验检疫科学研究院。
本实用新型所使用检测抗体为兔抗马秋波GP2 IgG,可购自现代高达公司,检测抗体为生物素化羊抗兔IgG和生物素化羊抗人IgG,所述的羊抗兔IgG和羊抗人IgG可购自北京鼎国生物技术公司。
二、待测样品的制备
1、目标分析物样品的制备
目标分析物为兔抗马秋波IgG,干扰样品或作为方法特异性测试的样品是目标检测物外的其它抗体或其它蛋白质,包括兔抗圣路易斯脑炎NS1血清、兔抗普氏立克次体血清、鼠抗西尼罗E血清、兔抗委内瑞拉马脑炎血清、兔抗蜱传脑炎抗体、兔抗土拉抗体、兔抗登革热血清、兔抗西方马脑炎抗体、兔血清、大鼠血清、小鼠血清、BSA、酪蛋白、胰蛋白胨干扰抗体或蛋白等。将上述待分析样品均溶于样品稀释液中,-4℃保存。兔抗马秋波IgG的储备液浓度为0.12mg/mL。
将待分析的兔抗马秋波IgG用样品稀释液以4倍倍比系列稀释为不同浓度样品,以绘制样品检测剂量-反应的标准曲线,其中几个样品浓度低于检测的敏感度,高浓度样品应使编码微球的结合位点处于饱和状态。
2、人血清样本的处理
将人血清样本用样品稀释1∶10稀释,例如人血清样本5μL加样品稀释液50μL混匀后,作为待检样品进行悬浮芯片方法的检测。
实施例1、检测马秋波抗体的蛋白悬浮芯片的制备
1、捕获抗原包被编码微球
本实用新型采用的061号编码微球购自美国Bio-Rad公司,编码微球用于标记可以捕获马秋波抗体的马秋波GP2蛋白抗原,即利用马秋波GP2蛋白包被微球。
A、编码微球的活化
取100μL(1.25×106个)编码微球到1.5mL离心管中,14000×g离心,小心吸出并弃去上清液。加入100μL的微球清洗缓冲液悬浮,震荡并超声后14000×g离心,小心吸出并弃去上清液。加入100μL的微球活化缓冲液,接着先加入10μL新鲜配置的EDC(50mg/mL),再加入10μL新鲜配置的50mg/mL的Sulfo-NHS,高速震荡30秒后用铝箔包裹,在室温震摇20分钟。加入150μL的PBS(pH7.4),震荡后,14000×g离心,小心吸出并弃去上清液。加入100μL的PBS(pH7.4)悬浮编码微球。
B、用抗原包被编码微球
取捕获抗原即马秋波GP2蛋白抗原1~50μg加入到活化后的编码微球中,用PBS缓冲液定容至500μL,室温震摇2小时。14000×g离心,小心吸出并弃去上清液。用500μL的PBS缓冲液洗一次,14000×g离心,小心吸出并弃去上清液。加入250μL的封闭缓冲液悬浮编码微球,在室温震摇30分钟,14000×g离心,小心吸出并弃去上清液。加入500μL的微球保存液洗涤编码微球,16000×g离心,小心吸出并弃去上清液。最后用150μL的微球保存液悬浮编码微球,于4℃避光保存备用。
C、包被微球的计数
吸取适量微球,稀释后,用血球计数板(0.10mm;1/400mm2)在普通显微镜下计数。根据公式(每个大格数×104×稀释倍数×体积(mL))计算微球数量。
2、检测物标记生物素
A、生物素的标记
分别配制好浓度为10mM生物素溶液和2mg/mL的待标记抗体溶液,将计算好体积的生物素加入到待标记物溶液中,在室温震摇30分钟(或冰上2小时),过柱脱盐后分装,-20℃冻存备用。
B、抗体的用量
以标记2mg/mL的IgG(分子量150,000)1mL溶液为例,需加入10mM生物素溶液约27μl。
实施例2、悬浮芯片制备法条件的优化
1、微球包被抗原包被量的选择
分别以1μg、2.5μg、5μg、7.5μg、10μg、12.5μg、15μg、20μg、25μg、30μg、60μg的量包被100μL编码为061号的微球。经检测效果比较,以1~60μg/1.25×106个编码微球即0.2~240ng/2500~5000个微球/测试包被效果最好,显微镜下计数后避光冷藏保存待用。如图2所示,包被马秋波GP2蛋白抗原的061号微球均落在其正确检测区域内,并且获得高信噪比结果(MFI值远大于2000),说明优化的悬浮芯片检测***可成功用于马秋波抗体的检测。
2、生物素化检测物的优化
本实用新型分别用氨基活性的生物素,例如LC-酰肼(hydrazide)-生物素和羧基活性的生物素,例如Sulfo-NHS-生物素和SH-活性的生物素标记检测抗体,经质控过程检测效果比较,本实验中Sulfo-NHS-生物素标记检测物检测效果较好,检测效果的方法采用本领域的常规方法或安装制造商的产品说明书所述的方法。
本实用新型发明中经过试验验证,发现2mg/mL生物素化的抗体羊抗兔以1∶500稀释作为检测物进行检测兔血清中的马秋波抗体,检测结果显示生物素化检测物Bio-羊抗兔抗体可获得高检测值和低背景值的检测效果;2mg/mL生物素化的检测物Biotin-羊抗人IgG以1∶2500稀释作为检测人血清中马秋波抗体的检测物,检测结果显示生物素化检测物Biotin-羊抗人IgG可获得高检测值和低背景值的检测效果。
实施例3、悬浮芯片样品制备、检测及结果判定
1、待测样品制备
用样品稀释液将待测样本配置为不同浓度样本进行蛋白悬浮芯片检测。
2、样品的检测及结果判定
检测过程全部反应均在96孔滤板上进行,检测过程如下:
1)每孔加入50μL含相应编码微球的工作溶液,用清洗液洗涤并用真空泵抽滤;
2)加入50μL检测样品,混匀后室温避光震摇30分钟,用清洗液洗涤并抽滤;
3)加入50μL适当浓度的用抗体稀释液稀释后的生物素化检测物,混匀后室温避光震摇30分钟,洗液洗涤并真空泵抽滤;
4)加入50μL的SA-PE,混匀后室温避光震摇10分钟。洗液洗涤并真空泵抽滤;
5)加入125μL的检测缓冲液,经蜗旋重悬混匀;
6)用悬浮芯片***读取MFI数值并分析数据。
3、检测结果判定
根据试验研究结果与相关研究报道,本实用新型定义蛋白质悬浮芯片方法检测马秋波抗体的最低检出限(LOD值)为检测荧光强度临界值(Cutoff)对应的检测物浓度。其中,Cutoff的定义是采用空白对照样品(Blank)荧光检测信号MFI均值加3倍标准差(SD),即Cutoff值为=MFI(空白对照)+3倍标准差。若检测结果高于LOD对应荧光强度值则判定为马秋波抗体检测结果阳性;若检测结果低于LOD对应荧光强度值则判定为马秋波抗体检测结果阴性。
实施例4、悬浮芯片对马秋波蛋白抗原特异性检测
应用悬浮芯片检测方法分别对兔抗马秋波IgG、兔抗圣路易斯脑炎NS1血清、兔抗普氏立克次体血清、鼠抗西尼罗E血清、兔抗委内瑞拉马脑炎血清、兔抗蜱传脑炎抗体、兔抗土拉抗体、兔抗登革热血清、兔抗西方马脑炎抗体、兔血清、大鼠血清、小鼠血清、BSA、酪蛋白、胰蛋白胨等进行检测,根据实施例3中检测结果判定标准,仅兔抗马秋波IgG为阳性,其余干扰抗体或蛋白均为阴性。说明本发明所建立的马秋波抗体的悬浮芯片检测方法与其它测试抗体均不发生交叉反应或非特异反应。
实施例5、悬浮芯片定量检测模型的建立
1、兔抗马秋波IgG标准曲线样品制备
用样品稀释液将兔抗马秋波IgG标准品由12μg/mL以4倍倍比梯度稀释至2.93ng/mL成系列浓度样品。
2、剂量-反应标准曲线的绘制
按照实施例3中的检测方法检测上述系列浓度样品,并根据悬浮芯片***检测结果绘制剂量-反应标准曲线(如图3所示)。其中,。其中,X轴代表抗体的浓度(ng/mL),Y轴代表悬浮芯片仪检测的荧光值(MFI)。每个数据代表3次的检测结果平均值,坐标轴以对数-对数关系设定,图2中兔抗马秋波IgG 的浓度(ng/mL)分别为:S1:2.93,S2:11.72,S3:46.875,S4:187.5,S5:750,S6:3000,S7:12000。
悬浮芯片***根据检测结果拟合兔抗马秋波IgG剂量-反应标准曲线方程:
FI=7.91872+(11545.1-7.91872)/[1+(Conc/5773.47)-0.632651]2.9716
3、悬浮芯片检测兔抗马秋波IgG的灵敏度和动态范围
根据最低检出限定义和剂量-反应标准曲线方程,本实用新型即蛋白悬浮芯片方法检测兔抗马秋波IgG的灵敏度为:63pg/mL(Cutoff=9.914,MFI(空白对照)=8.5,标准差=1.414)。
本实用新型发明定义最高检出限为使编码微球的结合位点处于饱和状态的检测物浓度。根据标准曲线随着兔抗马秋波IgG浓度的升高,其对应的MFI值也随之递增,当兔抗马秋波IgG浓度超过12000ng/mL时,抗原抗体的免疫反应达到饱和状态,MFI值开始进入平台期,说明样品中的待检物浓度过高,需要将样品稀释后再检测。
因此,根据最低检出限与最高检出限可以判定本发明即悬浮芯片定量检测兔抗马秋波IgG的动态范围为46.875~12000ng/mL。
实施例6、人血清样品的检测
1、人血清样品的准备
将人血清用样品稀释液1∶10稀释(人血清样本5μL加样品稀释液50μL混匀)后用于蛋白悬浮芯片检测。
2、人血清样品的检测
1)每孔加入50μL含相应编码微球的工作溶液,用清洗液洗涤并用真空泵抽滤;
2)加入50μL待检测人血清样品,混匀后室温避光震摇30分钟,用清洗液洗涤并抽滤;
3)加入50μL适当浓度的用抗体稀释液稀释后的生物素化SPA,混匀后室温避光震摇30分钟,洗液洗涤并真空泵抽滤;
4)加入50μL的SA-PE,混匀后室温避光震摇10分钟。洗液洗涤并真空泵抽滤;
5)加入125μL的检测缓冲液,经蜗旋重悬混匀;
6)用悬浮芯片***读取MFI数值,根据标准曲线,确定待检测人血清中马秋波抗体的浓度。
经过多次重复试验,生物素化羊抗人IgG稀释比例选用1∶2500稀释,SA-PE 稀释比例选用1∶300稀释,经过对正常人血清的检测,所得的MFI值的均值与其标准差的3倍之和为作为判断阴阳性的界值,即C utoff值为722.5,检测得到的MFI值如果大于722.5,可视为马秋波抗体阳性可能被马秋波病毒感染,如果MFI值小于722.5,即可判断为马秋波抗体阴性,未感染马秋波病毒或隐性携带者。
Claims (5)
1.一种检测马秋波抗体的蛋白悬浮芯片***,其特征在于,该芯片***包括:芯片基体、加液***、悬浮芯片检测仪和计算机,其中,芯片基体内装有061号编码微球,加液***与芯片基体连通,以向芯片基体中加入生物素标记的二抗、荧光信号检测物,悬浮芯片检测仪包括微细管检测通道和检测激光,微细管检测通道与芯片基体连通,该微细管检测通道吸入反应后的溶液、以使得每个编码微球依次通过微细管检测通道,检测激光激发并识别编码微球的颜色及其上待测物的荧光信号,计算机与悬浮芯片检测仪相连,并记录、分析悬浮芯片检测仪的测量结果。
2.如权利要求1所述的蛋白悬浮芯片***,其特征在于,所述捕获抗原优选为马秋波GP2蛋白。
3.如权利要求1所述的蛋白悬浮芯片,其特征在于,所述荧光信号检测物为链亲和素-藻红蛋白。
4.如权利要求1所述的蛋白悬浮芯片***,其特征在于,所述芯片基体为96孔滤板或者微量离心管。
5.如权利要求1所述的蛋白悬浮芯片***,其特征在于,所述检测激光包括用激发所述编码微球基质中的颜色、识别编码微球分类编码以确定检测项目的红色激光,用于激发并识别待测分子的颜色信号、记录信号强弱以检测所述待测抗体的含量的绿色激光。
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CN104360059A (zh) * | 2014-11-13 | 2015-02-18 | 中国检验检疫科学研究院 | 一种马秋波病毒非诊断性的免疫学检测方法 |
CN105929170A (zh) * | 2015-12-28 | 2016-09-07 | 中华人民共和国上海出入境检验检疫局 | 一种马秋波病毒IgG抗体的间接免疫荧光检测方法 |
CN112321707A (zh) * | 2020-10-13 | 2021-02-05 | 武汉珈创生物技术股份有限公司 | 一种马秋波病毒的特异性识别抗体及检测试剂盒 |
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2010
- 2010-12-28 CN CN2010206842424U patent/CN202024997U/zh not_active Expired - Fee Related
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CN104360059A (zh) * | 2014-11-13 | 2015-02-18 | 中国检验检疫科学研究院 | 一种马秋波病毒非诊断性的免疫学检测方法 |
CN105929170A (zh) * | 2015-12-28 | 2016-09-07 | 中华人民共和国上海出入境检验检疫局 | 一种马秋波病毒IgG抗体的间接免疫荧光检测方法 |
CN105929170B (zh) * | 2015-12-28 | 2018-03-09 | 中华人民共和国上海出入境检验检疫局 | 一种马秋波病毒IgG抗体的间接免疫荧光检测方法 |
CN112321707A (zh) * | 2020-10-13 | 2021-02-05 | 武汉珈创生物技术股份有限公司 | 一种马秋波病毒的特异性识别抗体及检测试剂盒 |
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