CN1587400A - 凝血酶分离纯化方法 - Google Patents

凝血酶分离纯化方法 Download PDF

Info

Publication number
CN1587400A
CN1587400A CN 200410073056 CN200410073056A CN1587400A CN 1587400 A CN1587400 A CN 1587400A CN 200410073056 CN200410073056 CN 200410073056 CN 200410073056 A CN200410073056 A CN 200410073056A CN 1587400 A CN1587400 A CN 1587400A
Authority
CN
China
Prior art keywords
centrifugal
rev
minutes
mins
centrifugal force
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN 200410073056
Other languages
English (en)
Inventor
马永征
李敏康
宋宏新
王旭
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Shaanxi University of Science and Technology
Original Assignee
Shaanxi University of Science and Technology
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Shaanxi University of Science and Technology filed Critical Shaanxi University of Science and Technology
Priority to CN 200410073056 priority Critical patent/CN1587400A/zh
Publication of CN1587400A publication Critical patent/CN1587400A/zh
Pending legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

一种凝血酶分离纯化方法,首先取动物血液为原材料,将此血液加入柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;离心分离获得血浆;经冷冻、解冻,再次离心获得上清液;在上清液中加入BaCl2离心收集沉淀物;在此沉淀物中加入EDTA溶液解吸附,再次离心弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。本发明通过将血浆冷冻,低温解冻先有效地去除了部分纤维蛋白原,提高了凝血酶的得率,通过优化离子交换层析获得高纯度的凝血酶,其比活力为1500U/mg蛋白,得率为0.4‰。

Description

凝血酶分离纯化方法
技术领域
本发明属于生物工程技术领域的凝血酶分离纯化的方法。
背景技术
现有凝血酶分离纯化的工艺较复杂:一种是在400ml新鲜原料猪血浆中滴加32ml浓度为1mol/L的BaCl2溶液,搅拌,离心分离取沉淀。沉淀用0.02mol/L,pH7.4Tris-HCl缓冲液,洗涤2次后,用0.02mol/L,Tris-HCl缓冲液,pH7.4(含0.2mol/l的EDTANa2,0.1mol/LNaCl)解吸附,离心取上清,透析过夜。透析后样品中加入固体(NH4)2SO4达到35%的饱和度,去沉淀。然后样品加入固体(NH4)2SO4达到65%~70%的饱和度,离心收集沉淀。沉淀溶于0.02mol/L,Tris-HCl pH8.0,再透析过夜。透析后的样品溶液加入CaCl2使Ca2+终浓度达到0.1mol/L,再加入活化剂,室温下激活凝血酶原,直到活性达到最大。经Amberllte CG-50柱层析,收集活性峰,透析3h后,再进行SP-SephadexC-50柱层析,收集活性峰,透析除盐,得到凝血酶纯品。比活力达到1954.5NIH U/mg。(林缨、刘彦信等.高纯度人凝血酶的制备.中国医学院科学院学报.1995.17(1):36~39)。这种工艺流程较复杂,生产周期较长,至少需要3天。另一种是取猪血浆400ml,缓慢加入1.0mol/LBaCl2溶液24ml,在磁力搅拌器上搅拌1h后,3000转/分钟离心15min,收集柠檬酸钡沉淀,将沉淀溶于pH8.0,0.2mol/LEDTA溶液中,搅拌1h后,300转/分钟离心15min,弃不溶物,将上清液对0.05mol/L,pH7.5的Tris-HCl缓冲液透析,不断更换透液,至无Ba2+为止。得到猪凝血酶原的粗样品液。凝血酶原的粗样品液加入0.1mol/L,CaCl2,25℃下激活2h,得到凝血酶粗品。凝血酶粗品经免疫亲和层析(Sepharose4B为载体,肝素为配基)获得凝血酶纯品。比活力达到1111U/mg。(肖丽霞、史永昶等猪凝血酶的分离纯化及部分性质研究.江苏农业研究.1999.20(3):63~66)。这种工艺较简单,但是使用了亲和层析,成本较高。另外按上述两种方法获得的凝血酶原粗品中纤维蛋白原含量过高,激活后凝血酶损失,导致凝血酶的得率下降。
发明内容
本发明的目的在于提供一种分离纯化工艺简单,而且能够提高凝血酶纯度的凝血酶分离纯化的方法。
为达到上述目的本发明采用的分离纯化方法为:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2500~3000转/分钟的离心力下离心5~10分钟分离获得血浆;将此血浆在-20~-30℃冷冻1~3天后,2~4℃解冻,在4℃以2500~3000转/分钟的离心力下离心5~10分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入80~120ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3500~4000转/分钟的离心力离心5~10分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3500~4000转/分钟的离心力离心5~10分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
本发明通过将血浆冷冻,低温解冻先有效地去除了部分纤维蛋白原,提高了凝血酶的得率,通过优化离子交换层析获得高纯度的凝血酶,其比活力为1500U/mg蛋白,得率为0.4‰。
具体实施方式
实施例1:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2500转/分钟的离心力下离心10分钟分离获得血浆;将此血浆在-30℃冷冻1天后,2℃解冻,在4℃以2600转/分钟的离心力下离心7分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入80ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以4000转/分钟的离心力离心10分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3800转/分钟的离心力离心5分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
实施例2:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2800转/分钟的离心力下离心7分钟分离获得血浆;将此血浆在-25℃冷冻3天后,4℃解冻,在4℃以2800转/分钟的离心力下离心8分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入90ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3500转/分钟的离心力离心6分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以4000转/分钟的离心力离心9分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
实施例3:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2600转/分钟的离心力下离心5分钟分离获得血浆;将此血浆在-29℃冷冻3天后,3℃解冻,在4℃以3000转/分钟的离心力下离心6分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入110ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3800转/分钟的离心力离心5分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3600转/分钟的离心力离心7分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
实施例4:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2750转/分钟的离心力下离心8分钟分离获得血浆;将此血浆在-26℃冷冻2天后,2℃解冻,在4℃以2750转/分钟的离心力下离心5分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入120ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3600转/分钟的离心力离心7分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3500转/分钟的离心力离心10分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
实施例5:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以3000转/分钟的离心力下离心6分钟分离获得血浆;将此血浆在-28℃冷冻1天后,3℃解冻,在4℃以2500转/分钟的离心力下离心10分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入100ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3900转/分钟的离心力离心8分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3700转/分钟的离心力离心8分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
实施例6:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2900转/分钟的离心力下离心9分钟分离获得血浆;将此血浆在-27℃冷冻2天后,4℃解冻,在4℃以2900转/分钟的离心力下离心9分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入105ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3700转/分钟的离心力离心9分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3900转/分钟的离心力离心6分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。

Claims (7)

  1. 一种凝血酶分离纯化方法,其特征在于:
    1)首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;
    2)在4℃以2500~3000转/分钟的离心力下离心5~10分钟分离获得血浆;
    3)将此血浆在-20~-30℃冷冻1~3天后,2~4℃解冻,在4℃以2500~3000转/分钟的离心力下离心5~10分钟分离获得上清液;
    4)在每升上清液中加入80~120ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3500~4000转/分钟的离心力离心5~10分钟收集沉淀物;
    5)在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3500~4000转/分钟的离心力离心5~10分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;
    6)室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
  2. 2、根据权利要求1所述的凝血酶分离纯化方法,其特征在于:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2500转/分钟的离心力下离心10分钟分离获得血浆;将此血浆在-30℃冷冻1天后,2℃解冻,在4℃以2600转/分钟的离心力下离心7分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入80ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以4000转/分钟的离心力离心10分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3800转/分钟的离心力离心5分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
  3. 3、根据权利要求1所述的凝血酶分离纯化方法,其特征在于:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2800转/分钟的离心力下离心7分钟分离获得血浆;将此血浆在-25℃冷冻3天后,4℃解冻,在4℃以2800转/分钟的离心力下离心8分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入90ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3500转/分钟的离心力离心6分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以4000转/分钟的离心力离心9分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
  4. 4、根据权利要求1所述的凝血酶分离纯化方法,其特征在于:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2600转/分钟的离心力下离心5分钟分离获得血浆;将此血浆在-29℃冷冻3天后,3℃解冻,在4℃以3000转/分钟的离心力下离心6分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入110ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3800转/分钟的离心力离心5分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3600转/分钟的离心力离心7分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
  5. 5、根据权利要求1所述的凝血酶分离纯化方法,其特征在于:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2750转/分钟的离心力下离心8分钟分离获得血浆;将此血浆在-26℃冷冻2天后,2℃解冻,在4℃以2750转/分钟的离心力下离心5分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入120ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3600转/分钟的离心力离心7分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3500转/分钟的离心力离心10分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
  6. 6、根据权利要求1所述的凝血酶分离纯化方法,其特征在于:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以3000转/分钟的离心力下离心6分钟分离获得血浆;将此血浆在-28℃冷冻1天后,3℃解冻,在4℃以2500转/分钟的离心力下离心10分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入100ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3900转/分钟的离心力离心8分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3700转/分钟的离心力离心8分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
  7. 7、根据权利要求1所述的凝血酶分离纯化方法,其特征在于:首先取动物血液为原材料,在此血液中按9∶1的体积比加入质量百分比浓度为3.8%的柠檬酸钠溶液作为抗凝剂;在4℃以2900转/分钟的离心力下离心9分钟分离获得血浆;将此血浆在-27℃冷冻2天后,4℃解冻,在4℃以2900转/分钟的离心力下离心9分钟分离获得上清液;在每升上清液中加入105ml的浓度为1mol/l的BaCl2溶液,在4℃以3700转/分钟的离心力离心9分钟收集沉淀物;在此沉淀物中加入pH值为7.4的0.2mol/l的EDTA溶液解吸附,在4℃下以3900转/分钟的离心力离心6分钟弃去沉淀,获得凝血酶原粗液;室温下向凝血酶原粗液中加入CaCl2溶液使凝血酶原粗液浓度达到0.1mol/l,再经DEAE——纤维素阴离子交换柱层析获得凝血酶纯品,冷冻干燥得到凝血酶成品。
CN 200410073056 2004-09-08 2004-09-08 凝血酶分离纯化方法 Pending CN1587400A (zh)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN 200410073056 CN1587400A (zh) 2004-09-08 2004-09-08 凝血酶分离纯化方法

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN 200410073056 CN1587400A (zh) 2004-09-08 2004-09-08 凝血酶分离纯化方法

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN1587400A true CN1587400A (zh) 2005-03-02

Family

ID=34604700

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN 200410073056 Pending CN1587400A (zh) 2004-09-08 2004-09-08 凝血酶分离纯化方法

Country Status (1)

Country Link
CN (1) CN1587400A (zh)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103163307A (zh) * 2013-03-20 2013-06-19 上海太阳生物技术有限公司 凝血质控品及其制备方法
CN105440127A (zh) * 2015-12-30 2016-03-30 上海莱士血液制品股份有限公司 一种以人血浆Cohn组分III为原料的FEIBA的制备方法
CN107406840A (zh) * 2015-02-25 2017-11-28 奥姆里克斯生物药品有限公司 用于纯化和定量凝血酶及其降解多肽的方法
CN107485728A (zh) * 2016-06-12 2017-12-19 胡庆柳 一种胶原纤维蛋白复合止血贴及其制备方法

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103163307A (zh) * 2013-03-20 2013-06-19 上海太阳生物技术有限公司 凝血质控品及其制备方法
CN103163307B (zh) * 2013-03-20 2015-06-03 上海太阳生物技术有限公司 凝血质控品及其制备方法
CN107406840A (zh) * 2015-02-25 2017-11-28 奥姆里克斯生物药品有限公司 用于纯化和定量凝血酶及其降解多肽的方法
US11008560B2 (en) 2015-02-25 2021-05-18 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Method for purifying and quantifying thrombin and its degradation polypeptides
CN107406840B (zh) * 2015-02-25 2021-05-28 奥姆里克斯生物药品有限公司 用于纯化和定量凝血酶及其降解多肽的方法
US11149263B2 (en) 2015-02-25 2021-10-19 Omrix Biopharmaceuticals Ltd. Method for purifying and quantifying thrombin and its degradation polypeptides
CN105440127A (zh) * 2015-12-30 2016-03-30 上海莱士血液制品股份有限公司 一种以人血浆Cohn组分III为原料的FEIBA的制备方法
CN105440127B (zh) * 2015-12-30 2018-10-16 上海莱士血液制品股份有限公司 一种以人血浆Cohn组分III为原料的FEIBA的制备方法
CN107485728A (zh) * 2016-06-12 2017-12-19 胡庆柳 一种胶原纤维蛋白复合止血贴及其制备方法

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101182495B (zh) 以猪小肠为原料联产生产碱性磷酸酶和肝素钠的联产工艺
CN102219865B (zh) 具有抗肿瘤活性的金樱子多糖衍生物的制备方法
CN1587400A (zh) 凝血酶分离纯化方法
CN109295131B (zh) 一种石斛活性寡糖的受体定位固相酶解制备方法
CN102851265B (zh) 一种牛睾丸制备玻璃酸酶的方法
CN116497009A (zh) 一种从蛇毒粉中提取降纤酶的方法
CN100513561C (zh) 一种凝血酶的提取分离方法
CN1250718C (zh) 蝰蛇蛇毒血凝酶的层析纯化方法
CN108998427B (zh) 一种酚氧化酶活性蛋白的制备方法
CN107033236B (zh) 一种从酵母发酵液中分离人血白蛋白的混合模式层析方法
CN102242104A (zh) 一种白眉蝮蛇蛇毒类凝血酶的提取方法
CN104560774A (zh) 一种利用浒苔多糖制备富含鼠李糖硫酸酯嵌段寡糖的方法
CN111057115B (zh) 一种从贵妃蚌中提取的抗血栓类肝素及其制备方法和应用
CN110628845B (zh) 蛤蟆油中硫酸乙酰肝素/肝素的提取与结构分析
CN1297896A (zh) 一种高效提取活化的凝血因子X(FXa)的方法
CN102146134B (zh) 一种高效提取纯化凝血因子ix和凝血因子x的方法
CN101215553B (zh) 一种阿魏酸酯酶的提取方法
CN108743924B (zh) 一种固定化蛇毒凝血因子激活剂及活化凝血因子的制备方法
CN1548534A (zh) 一种蛇毒凝血酶及其生产方法与应用
CN115624959B (zh) 一种尿激酶吸附材料及其制备方法和应用
CN110669152B (zh) 一种从蛤蟆油中提取硫酸软骨素/硫酸皮肤素/透明质酸的方法
CN115386564B (zh) 一种尿激酶的纯化方法
FI62103B (fi) Foerfarande foer framstaellning av heparin med hoeg specifik aktivitet
CN107674868B (zh) 一种从猪血中提取凝血酶的方法
JPH08176199A (ja) アフィニティークロマトグラフィーを用いたヒルジンの精製法

Legal Events

Date Code Title Description
C06 Publication
PB01 Publication
C10 Entry into substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination
C02 Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001)
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication