CN117025721A - 一种微生物污染程度的检测方法 - Google Patents
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Abstract
本申请提供一种微生物污染程度的检测方法,通过检测样品中ATP的含量来判断微生物的污染程度。该检测方法的结果准确,精密度高,灵敏度高。
Description
技术领域
本申请涉及一种微生物污染程度的检测方法,属于生物化学检测领域。
背景技术
传统的微生物污染程度的检测方法主要为微生物培养法和pH方法,其中微生物方法操作复杂,劳动强度大,对操作人员的技术水平要求高,检测速度慢、通常需要7-19天,需要无菌操作环境;pH方法主要通过检测样品中pH的变化来判断微生物污染程度,通常需要5-14天,需要无菌操作环境,另外并非所有微生物的生长繁殖都会改变pH,因此pH方法易出现假阴性结果。由于这些检测方法检测速度较慢,可适用于保质期较长的罐头类食品的检测,而乳制品等自动化程度较高且保质期较短的食品则不适用这样的检测方法。
ATP是一种能量分子,普遍存在于有机体中,ATP含量与微生物活细胞数量成一定正比关系。因此,通过检测样品中ATP的含量判断微生物的污染程度是一种非常有市场前景的、快速检测样品中微生物污染的方法。这种方法的步骤大体包括:首先通过ATP降解剂去除微生物细胞外的游离ATP(若是植物源性食品,要先提取植物体细胞ATP);再酶解游离ATP和/或植物体细胞ATP;然后裂解微生物活细胞以释放出微生物活细胞内的ATP;再后在荧光素酶的存在下,ATP可与荧光素快速反应并发光;最后通过检测仪捕获ATP发光反应的发光信号并报告结果。这种方法存在的问题是:ATP降解酶在反应中活力不足,游离ATP去除不完全,微生物细胞裂解不充分,缺乏优质的反应体系,同一套检测方法对不同的样品难以均获得准确度、精密度、灵敏度俱佳的检测结果等。
尽管ATP生物发光法检测微生物污染程度的原理是人们已知的,但根据该原理的改良和创新仍然非常有价值,这是因为一套完整高效的方法是由若干不同的步骤有机的、策略地组合在一起而实现的,而不是单独割裂地改进某个步骤。比如裂解细胞的方法有很多,加热裂解、机械裂解、化学裂解等,其中,采用表面活性性剂是化学裂解中的一种方式。表面活性剂按类别分为离子型表面活性剂(包括阳离子表面活性剂与阴离子表面活性剂)、非离子型表面活性剂、两性表面活性剂、复配表面活性剂、其他表面活性剂等,且人们可以不断地合成各种新的表面活性剂,因此,属于表面活性剂的化合物可能不计其数。然而,并不是所有的表面活性剂一概适于在任何条件下裂解细胞,在ATP生物发光法检测微生物污染程度的方法中,适用的表面活性剂需要考虑具备以下特点:(1)可快速杀死活细胞并破碎细胞膜以获得最大ATP的量;(2)使ATP水解酶失活并且还不能影响ATP的性质;(3)不影响或轻微影响后续检测步骤中的荧光素酶的活性。所有这些特点既可以通过实验直接检测,也可通过最终对ATP的检测效果来间接验证。可见,能否筛选出适于该方法的优良表面活性剂化合物是无法预料的,因而并不能被认为是常规的。
对于植物源性样品中的微生物污染进行检测时,还需要进一步保证采用某个表面活性剂裂解植物细胞并提取植物细胞ATP时,该表面活性剂不会同时裂解微生物细胞,造成微生物细胞ATP被过早释放影响检测结果的准确性。因此,该表面活性剂的选择就需要更加慎重,而不能任意采用其他表面活性剂替代。
发明内容
为了解决上述技术问题,发明人联合多家科研单位共同研发,将整套ATP检测方法流程中的每个环节拆分开来,逐一进行改良,分工协作,再组合起来实验并调整,最终摸索出了一套高效的微生物污染程度检测方法,构建了完整的检测***,包括试剂盒、检测方法及设备。
就检测方法而言,按检测对象不同分为两类:一类是非植物源性的样品,另一类是植物源性样品。
对于非植物源性的样品而言,检测方法包括如下步骤:样品制备;加入ATP降解剂降解样品中的游离ATP;用微生物细胞裂解剂裂解微生物活细胞以释放出微生物活细胞内的ATP;在荧光素酶的存在下,使ATP可与荧光素快速反应并发光;检测发光信号并反馈结果。
在该方法中,主要的改进点为①使用三甲基甘氨酸作为微生物细胞裂解剂中的主要成分,且形成了包括十八烷基三甲基氯化铵、三甲基甘氨酸和EDTA的改良的微生物细胞裂解剂。②改良了ATP降解剂中的ATP降解缓冲液,加入了Zn2+离子,最终形成了包括ZnSO4、琥珀酸和氢氧化钠的改良的ATP降解缓冲液。
对于植物源性的样品而言,检测方法包括如下步骤:样品制备;用植物细胞提取剂提取植物细胞ATP;加入ATP降解剂降解样品中游离ATP和植物体细胞ATP;用微生物细胞裂解剂裂解微生物活细胞以释放出微生物活细胞内的ATP;在荧光素酶的存在下,使ATP可与荧光素快速反应并发光;检测发光信号并反馈结果。
在该方法中,主要的改进点除了包括上述①和②之外,还进一步包括③采用脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚作为植物细胞提取剂的主要成分。
为了完整优化全套检测***,对于上述两类方法,本申请进一步的改进点还包括④确定了脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚的最佳浓度、微生物细胞裂解剂的最佳反应时间、ATP降解缓冲液中Zn2+离子的最佳浓度、Mg2+、海藻糖、二硫苏糖醇和BSA的最佳含量,样品最佳孵育时间等,使该***真正成为一套可规模化操作的***。具体而言:
本申请首先提供一种植物体细胞ATP提取剂,包括脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚。
在一种实施方式中,脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚的浓度为0.2%。
在一种实施方式中,脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚的氧乙烯基的数量为3-9。
本申请进一步提供一种试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括上述的ATP提取剂。
在一种实施方式中,试剂盒还包括ATP降解酶、ATP降解缓冲液和/或微生物细胞裂解剂。
在一种实施方式中,试剂盒还包括发光反应试剂和/或发光反应缓冲液。
本申请还提供上述ATP提取剂或试剂盒在提取植物细胞ATP中的用途。
本申请还提供上述ATP提取剂或试剂盒在检测微生物污染中的应用。
本申请还提供了一种鉴定样品中微生物污染程度的方法,其特征在于,使用上述的ATP提取剂或试剂盒进行鉴定。本申请首先提供一种微生物细胞裂解剂,包括三甲基甘氨酸。
在一些实施方式中,裂解剂进一步包括十八烷基三甲基氯化铵和EDTA。
在一些实施方式中,裂解剂的制备方法为:称量495-505mg十八烷基三甲基氯化铵、3.5-4.5g三甲基甘氨酸、0.142-0.150mg EDTA,加入800mL无ATP水中,溶解后定容至1L。
本申请还提供一种试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括上述的微生物细胞裂解剂。
在一些实施方式中,试剂盒还包括ATP降解酶、ATP降解缓冲液和/或植物细胞ATP提取剂。
在一些实施方式中,试剂盒还包括发光反应试剂和/或发光反应缓冲液。
上述的裂解剂、或上述的试剂盒在裂解微生物细胞中的用途。
上述的裂解剂、或上述的试剂盒在检测微生物污染中的应用。
本申请还提供一种鉴定样品中微生物污染程度的方法,使用上述的裂解剂或上述的试剂盒。
本申请还提供一种检测样品中ATP含量的方法,其特征在于,使用上述的裂解剂或上述的试剂盒。
本申请首先提供一种ATP降解缓冲液,包括Zn2+离子。
在一种实施方式中,ATP降解缓冲液包括ZnSO4、琥珀酸和氢氧化钠。
本申请还提供一种ATP降解剂,包括上述的缓冲液以及ATP降解酶。
在一种实施方式中,ATP降解酶包括三磷酸腺苷双磷酸酶和/或腺苷磷酸脱氨酶。
本申请还提供一种试剂盒,包括上述的ATP降解缓冲液。
在一种实施方式中,试剂盒进一步包括ATP降解酶、植物细胞ATP提取剂和/或微生物细胞裂解剂。
在一种实施方式中,试剂盒还包括发光反应试剂和/或发光反应缓冲液。
上述的ATP降解缓冲液、或上述的ATP降解剂、或上述的试剂盒在降解ATP中的用途。
上述的ATP降解缓冲液、或上述的ATP降解剂、或上述的试剂盒在检测微生物污染中的应用。
本申请还提供一种鉴定样品中微生物污染程度的方法,其特征在于,使用上述的ATP降解缓冲液、或上述的ATP降解剂、或上述的试剂盒。
本申请提供一种检测仪,包括流体***、光电***、微孔板承载***和软件***;所述流体***由分液***和注射***组成;所述光电***由高灵敏的光电倍增管和信号收集器组成。
在一些实施方式中,流体***中采用反向泵将使用后残留在管线中的试剂泵回试剂瓶中。
在一些实施方式中,光电倍增管采用百叶窗设计。
本申请还提供一种试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括ATP降解酶、ATP降解缓冲液和/或微生物细胞裂解剂;可选的,所述试剂盒还包括植物细胞ATP提取剂;可选的,所述试剂盒还包括发光反应试剂和发光反应缓冲液;其中:所述ATP降解缓冲液中包括Zn2+离子;或者所述微生物细胞裂解剂包括三甲基甘氨酸;或者所述植物细胞ATP提取剂包括脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚。
本申请还提供一种用于检测样品微生物污染程度的***,其特征在于,包括上述的检测仪和/或上述的试剂盒。
本申请还提供一种检测ATP含量的方法或鉴定微生物污染程度的方法,其特征在于,包括使用上述的检测仪,或使用上述的试剂盒,和/或使用上述的***。
在一些实施方式中,所述方法包括:样品制备;通过ATP降解剂降解游离ATP和/或植物体细胞ATP;用微生物细胞裂解剂裂解微生物活细胞以释放出微生物活细胞内的ATP;使ATP与荧光素反应并发光;通过检测仪捕获发光信号并反馈结果。
在一些实施方式中,ATP与荧光素反应的发光反应缓冲液中包括Mg2+、海藻糖、BSA和二硫苏糖醇。
在一些实施方式中,样品制备包括使样品在适于微生物生长的温度下(例如36℃)中保温(如24-72小时,优选为48小时)的步骤。
在一些实施方式中,所述方法进一步包括通过检测发光强度判断微生物的污染程度,当RLU值小于150时,结果为阴性;当RLU值为151-300时,结果为疑似阳性;当RLU值大于300,结果为阳性,表明存在微生物污染。
附图说明
图1检测仪主要结构。
图2流体***外观。
图3光电倍增管外观。
图4三甲基甘氨酸的含量与发光强度的关系。
具体实施方式
下面参考附图来说明本申请的实施例。在本申请的一个附图或一种实施方式中描述的元素和特征可以与一个或更多个其他附图或实施方式中示出的元素和特征相结合。应当注意,为了清楚的目的,附图和说明中省略了与本申请无关的、本领域普通技术人员已知的部件或处理的表示和描述。
本申请中的“样品”包括食品、燃油、水体等任何适宜的样品。
本申请中的“食品”包括乳制品、超高温灭菌食品、植物蛋白饮料、婴幼儿灌装辅助食品及罐头类食品、饮料、牛奶、纯奶、巧克力奶、乳饮料、豆奶、炼乳、果泥和肉泥等。
本申请的试剂盒包括ATP降解酶、ATP降解缓冲液和/或微生物细胞裂解剂;可选的,所述试剂盒还包括植物体细胞ATP提取剂;可选的,所述试剂盒还包括发光反应试剂和发光反应缓冲液。
本申请中的ATP降解剂包括ATP降解酶和ATP降解缓冲液。其中,ATP降解酶包括三磷酸腺苷双磷酸酶和/或腺苷磷酸脱氨酶。ATP降解缓冲液包括Zn2+离子,例如包括ZnSO4、琥珀酸和氢氧化钠。
本申请中的细胞裂解剂包括三甲基甘氨酸,例如包括十八烷基三甲基氯化铵、三甲基甘氨酸和EDTA。
本申请的脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚可由如下步骤制成:
在四口烧瓶中加入脂肪醇聚氧乙烯醚(AEO7)和三氟化硼***络合物(占AEO摩尔量的1%),升温至58℃后,缓慢滴加一定量的环氧氯丙烷(AEO7与环氧氯丙烷的摩尔比例为1:1.2),滴加完成后继续反应3h。减压除去过量的环氧氯丙烷,然后加入质量分数为40%的氢氧化钠溶液(AEO7与NaOH的摩尔比例为1:1.2),然后恒温闭环反应4.5h,反应结束后减压除水,过滤即得脂肪醇聚氧乙烯缩水甘油醚中间体。
在四口烧瓶中加入甘油、脂肪醇聚氧乙烯缩水甘油醚和质量分数10%的氢氧化钠乙醇溶液,升温至58℃,减压除去乙醇和水,然后充入氮气,并升温至150℃反应3.5h,然后用乙醇洗涤、过滤、干燥,即得脂肪醇聚氧乙烯系列聚二甘油醚。其中,脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚氧乙烯基的数量可为3-9(如7)。
本申请得植物体细胞ATP提取剂可由如下步骤制备而成:
称量1.8-2.2g脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚(n=7),加入800mL无ATP水中,溶解后定容至1L。每瓶4.5mL。
本申请的ATP降解剂可由如下步骤制备而成:
ATP降解酶制备:称量三磷酸腺苷双磷酸酶(即腺苷三磷酸双磷酸酶)和腺苷磷酸脱氨酶(即腺苷酸脱氨酶)水解脱氨生成次黄嘌呤核苷-5′-磷酸(次黄核苷酸)反应的酶粉末,使每瓶中三磷酸腺苷双磷酸酶和腺苷磷酸脱氨酶活性分别为58-62U和28-32U。
ATP降解缓冲液制备:称量1.1-1.2mg ZnSO4·7H2O、8.500-8.742g琥珀酸、0.120-0.134g氢氧化钠,用800mL无ATP水溶解,混匀后定容至1L,每瓶15mL。
使用时将1瓶ATP降解缓冲液与1瓶ATP降解酶混匀,称为ATP降解剂。
本申请的微生物细胞裂解剂可由如下步骤制备而成:
称量495-505mg十八烷基三甲基氯化铵、3.50-4.50g三甲基甘氨酸、0.142-0.150mg EDTA,加入800mL无ATP水中,溶解后定容至1L。每瓶23.75mL。
本申请的发光反应试剂可由如下步骤制备而成:
称量248-252μg荧光素酶、1.810-1.818μg D-荧光素钠装入瓶中。
本申请的发光反应缓冲液可由如下步骤制备而成:
称量610-620μg七水硫酸镁、97.69-107.69mg海藻糖、120-130mg二硫苏糖醇和140-160mg牛血清白蛋白,加入800mL无ATP水中,混匀,用10%的氢氧化钠将pH调至7.8,并定容至1L。每瓶23.75mL。
使用时将1瓶发光反应缓冲液与1瓶发光反应试剂混匀,称为发光反应溶液。
本申请方法的主要步骤包括:样品制备(可选的,如保温培养或孵育);用植物细胞提取剂提取植物细胞ATP(若为植物源性食品,否则无需该步骤);通过ATP降解剂降解游离ATP和/或植物体细胞ATP;用微生物细胞裂解剂裂解微生物活细胞以释放出微生物活细胞内的ATP;在荧光素酶的存在下,使ATP可与荧光素快速反应并发光;通过检测仪捕获ATP发光反应的发光信号并反馈结果。
具体而言,本申请的微生物污染(程度)的检测方法或ATP含量测定方法,例如包括如下步骤:
1)样品制备
植物蛋白饮料
a)将样品在36℃保温48小时。
b)吸取30μL植物体细胞ATP提取剂到试管中。
c)取出培养箱中的样品,充分摇晃使样品混合均匀。
d)小心打开包装,吸取1mL样品到对应的含植物体细胞ATP提取剂的试管中,盖紧离心管帽。
e)涡旋10次,使试剂与样品充分混匀。
f)将试管置于室温下静置15分钟,取50μl用于检测。
乳制品、饮料等
将样品在36℃保温48小时,取50μl用于检测。
婴幼儿灌装辅助食品及罐头类食品
a)在无菌环境下,取样品25g(mL)至225mL TSB液体培养基中,混匀,培养24h;
b)取培养后的培养液25mL,转移到225mL TSB液体培养基中,混匀,培养48h;
c)取50μl培养后样品,上机检测。
2)测定步骤
a)移取50μL样品至微孔板微孔中,将微孔板置于板架上。
b)在仪器软件页面,输入第一个样品孔的位置和样品数量,然后点击“Start”。
c)检测仪自动进行以下操作:
i.在每个微孔中添加50μL ATP降解剂,孵育10分钟。
ii.在第一个待测微孔中添加95μL微生物细胞裂解剂,反应7秒钟。
iii.再向第一个待测微孔中添加95μL发光反应溶液。1秒后用检测仪检测光信号,单位为RLU(相对发光单位)。
3)结果判定
RLU值小于150时,结果为阴性,表明无微生物污染。
RLU值为151-300时,结果为疑似阳性,表明可能存在微生物污染,需重新取5个样品进行检测,若5个样品中有3个或3个以上样品的检测结果仍为150-300,或者1个及1个以上样品的结果大于300,则报告为无微生物污染。
RLU值大于300,结果为阳性,表明存在微生物污染。
本申请用于检测微生物污染的检测仪包括流体***、光电***、微孔板承载***和软件***等。流体***由分液***和注射***组成,并采用了反向泵,可将使用后管线中的试剂泵回试剂瓶中,节约试剂;光电***由高灵敏的光电倍增管和信号收集器组成,与光电二极管相比,灵敏度更高,同时采用百叶窗设计,便于用户自行维护。
本申请另外提供一种植物体细胞ATP提取剂,包括脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚。
在一种实施方式中,脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚的浓度为0.2%。
在一种实施方式中,脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚的氧乙烯基的数量为3-9。
本申请进一步提供一种试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括上述的ATP提取剂。
在一种实施方式中,试剂盒还包括ATP降解酶、ATP降解缓冲液和/或微生物细胞裂解剂。
在一种实施方式中,试剂盒还包括发光反应试剂和/或发光反应缓冲液。
本申请还提供上述ATP提取剂或试剂盒在提取植物细胞ATP中的用途。
本申请还提供上述ATP提取剂或试剂盒在检测微生物污染中的应用。
本申请还提供了一种鉴定样品中微生物污染程度的方法,其特征在于,使用上述的ATP提取剂或试剂盒进行鉴定。
本申请另外提供一种微生物细胞裂解剂,包括三甲基甘氨酸。
在一些实施方式中,裂解剂进一步包括十八烷基三甲基氯化铵和EDTA。
在一些实施方式中,裂解剂的制备方法为:称量495-505mg十八烷基三甲基氯化铵、3.5-4.5g三甲基甘氨酸、0.142-0.150mg EDTA,加入800mL无ATP水中,溶解后定容至1L。
本申请还提供一种试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括上述的微生物细胞裂解剂。
在一些实施方式中,试剂盒还包括ATP降解酶、ATP降解缓冲液和/或植物细胞ATP提取剂。
在一些实施方式中,试剂盒还包括发光反应试剂和/或发光反应缓冲液。
上述的裂解剂、或上述的试剂盒在裂解微生物细胞中的用途。
上述的裂解剂、或上述的试剂盒在检测微生物污染中的应用。
本申请还提供一种鉴定样品中微生物污染程度的方法,使用上述的裂解剂或上述的试剂盒。
本申请还提供一种检测样品中ATP含量的方法,其特征在于,使用上述的裂解剂或上述的试剂盒。
本申请另外提供一种ATP降解缓冲液,包括Zn2+离子。
在一种实施方式中,ATP降解缓冲液包括ZnSO4、琥珀酸和氢氧化钠。
本申请还提供一种ATP降解剂,包括上述的缓冲液以及ATP降解酶。
在一种实施方式中,ATP降解酶包括三磷酸腺苷双磷酸酶和/或腺苷磷酸脱氨酶。
本申请还提供一种试剂盒,包括上述的ATP降解缓冲液。
在一种实施方式中,试剂盒进一步包括ATP降解酶、植物细胞ATP提取剂和/或微生物细胞裂解剂。
在一种实施方式中,试剂盒还包括发光反应试剂和/或发光反应缓冲液。
上述的ATP降解缓冲液、或上述的ATP降解剂、或上述的试剂盒在降解ATP中的用途。
上述的ATP降解缓冲液、或上述的ATP降解剂、或上述的试剂盒在检测微生物污染中的应用。
本申请还提供一种鉴定样品中微生物污染程度的方法,其特征在于,使用上述的ATP降解缓冲液、或上述的ATP降解剂、或上述的试剂盒。
实施例1发光反应缓冲液中Mg2+、海藻糖、BSA和二硫苏糖醇的含量。
制备Mg2+、海藻糖、BSA和二硫苏糖醇的水溶液,pH为7.8,作为发光反应缓冲液。采用正交试验确定各成分的最佳含量。将1瓶发光反应缓冲液与1瓶发光反应试剂混合,获得发光反应溶液。用无ATP水配置10-3M的ATP溶液,用UHT纯奶稀释至10-7M。取50μl10-7M的UHT奶溶液,加入95μl发光反应溶液,用检测仪测定发光强度(相对发光单位RLU),每次测定做3个平行,结果取平均值。
表1正交实验结果L93,4
由表1可见,极差结果显示,4种试剂的含量对检测结果的影响为Mg2+>海藻糖>二硫苏糖醇>BSA,Mg2+、海藻糖、二硫苏糖醇和BSA的最佳含量分别为2.5μmo l(615.92μgMgSO4·7H2O)、0.3mmo l(102.69mg)、125mg和150mg。
实施例2样品的孵育时间
选择UHT纯奶、UHT巧克力奶、乳饮料、豆奶、炼乳、果泥和肉泥,将蜡样芽孢杆菌ATCC#11778、枯草芽孢杆菌ATCC#6051、荧光假单胞菌ATCC#13525、大肠埃希氏菌ATCC#25922、李斯特菌ATCC#33090、鼠伤寒沙门氏菌ATCC#14028,金黄色葡萄球菌ATCC#6538、米曲霉ATCC#1010,酿酒酵母ATCC#4098分别加入不同类型样品中,获得浓度为1CFU/包的样品。分别孵育24h、36h、48h、60h和72h后,采用本申请方法进行检测,每个样品做10平行。检测结果见表2-表8。
表2UHT纯奶检测结果
表3UHT巧克力奶检测结果
表4乳饮料检测结果
表5豆奶检测结果
表6炼乳检测结果
表7果泥检测结果
表8肉泥检测结果
由表2-表8可见,孵育时间为24h时,所有检测结果均为阴性,当孵育时间为36h时,部分检测结果为阳性,当孵育时间为48h、60h和72h时,所有检测结果均为阳性。因此,选择48h为最佳孵育时间。
实施例3光电倍增管与二极管灵敏度对比。
分别采用本申请检测仪和普通光电二极管制成的检测仪来检测UHT纯奶、乳饮料、豆奶、炼乳、果泥和肉泥的加标样品,加标菌种为鼠伤寒沙门氏菌、大肠杆菌、蜡样芽孢杆菌、枯草芽孢杆菌、米曲霉和酿酒酵母,加标浓度为1CFU/包,每个样品做10个平行,检测结果见表9。
表9光电倍增管与二极管灵敏度对比
/>
由表9可见,采用本方法检测UHT纯奶、乳饮料、豆奶、炼乳、果泥和肉泥的1CFU加标样品,阳性率均为100%,而光电二极管的阳性率为0-8.33%,因此采用光电倍增管的检测仪的灵敏度明显高于采用二极管的检测仪。
实施例4本申请检测方法或检测仪的灵敏度评价
选择UHT纯奶、UHT巧克力奶、乳饮料、豆奶、炼乳、果泥和肉泥,将蜡样芽孢杆菌ATCC#11778、枯草芽孢杆菌ATCC#6051、荧光假单胞菌ATCC#13525、大肠埃希氏菌ATCC#25922、李斯特菌ATCC#33090、鼠伤寒沙门氏菌ATCC#14028,金黄色葡萄球菌ATCC#6538、米曲霉ATCC#1010,酿酒酵母ATCC#4098分别加入不同类型样品中,获得浓度为1CFU/包的样品。采用本申请所述方法进行检测,每个样品做3平行。检测结果见表10-表18。
表10蜡样芽孢杆菌ATCC#11778
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表11枯草芽孢杆菌ATCC#6051
样品 | 初始CFU/包 | 48小时RLU平均值 | 结果 |
UHT纯奶 | 1 | 9383 | 阳性 |
UHT巧克力奶 | 1 | 2102 | 阳性 |
乳饮料 | 1 | 9379 | 阳性 |
豆奶 | 1 | 32442 | 阳性 |
炼乳 | 1 | 4686 | 阳性 |
果泥 | 1 | 4532 | 阳性 |
表12荧光假单胞菌ATCC#13525
样品 | 初始CFU/包 | 48hr RLU平均值 | 结果 |
UHT纯奶 | 1 | 2863 | 阳性 |
UHT巧克力奶 | 1 | 2968 | 阳性 |
乳饮料 | 1 | 7073 | 阳性 |
豆奶 | 1 | 1557 | 阳性 |
炼乳 | 1 | 1659 | 阳性 |
果泥 | 1 | 576 | 阳性 |
表13大肠杆菌ATCC#11775
表14李斯特菌ATCC#33090
样品 | 初始CFU/包 | 48小时RLU平均值 | 结果 |
UHT纯奶 | 1 | 3111 | 阳性 |
UHT巧克力奶 | 1 | 3410 | 阳性 |
乳饮料 | 1 | 21925 | 阳性 |
豆奶 | 1 | 4565 | 阳性 |
炼乳 | 1 | 5654 | 阳性 |
果泥 | 1 | 1422 | 阳性 |
表15鼠伤寒沙门氏菌ATCC#14028
样品 | 初始CFU/包 | 48小时RLU平均值 | 结果 |
UHT纯奶 | 1 | 1630 | 阳性 |
UHT巧克力奶 | 1 | 1871 | 阳性 |
乳饮料 | 1 | 2098 | 阳性 |
豆奶 | 1 | 664 | 阳性 |
炼乳 | 1 | 1386 | 阳性 |
果泥 | 1 | 651 | 阳性 |
表16金黄色葡萄球菌ATCC#6538
样品 | 初始CFU/包 | 48小时RLU平均值 | 结果 |
UHT纯奶 | 1 | 3699 | 阳性 |
UHT巧克力奶 | 1 | 601 | 阳性 |
乳饮料 | 1 | 1675 | 阳性 |
豆奶 | 1 | 664 | 阳性 |
炼乳 | 1 | 1386 | 阳性 |
果泥 | 1 | 1008 | 阳性 |
表17米曲霉ATCC#1010
样品 | 初始CFU/包 | 48小时RLU平均值 | 结果 |
UHT纯奶 | 1 | 567 | 阳性 |
UHT巧克力奶 | 1 | 1381 | 阳性 |
乳饮料 | 1 | 1533 | 阳性 |
豆奶 | 1 | 547 | 阳性 |
炼乳 | 1 | 1786 | 阳性 |
果泥 | 1 | 318 | 阳性 |
表18酿酒酵母ATCC#4098
由表10-表18可以看出,对于蜡样芽孢杆菌ATCC#11778、枯草芽孢杆菌ATCC#6051、荧光假单胞菌ATCC#13525、大肠埃希氏菌ATCC#25922、李斯特菌ATCC#33090、鼠伤寒沙门氏菌ATCC#14028,金黄色葡萄球菌ATCC#6538、米曲霉ATCC#1010,酿酒酵母ATCC#4098加标浓度均为1CFU/包的UHT纯奶、UHT谷物早餐奶、UHT巧克力奶、乳饮料、豆奶和炼乳,检测结果均为阳性,由此看出本申请所述方法对上述样品的检测灵敏度均为1CFU/包。
实施例5本申请检测方法或检测仪的准确度评价
选择UHT纯奶、UHT巧克力奶、乳饮料、豆奶、炼乳、果泥和肉泥,将蜡样芽孢杆菌ATCC#11778、枯草芽孢杆菌ATCC#6051、荧光假单胞菌ATCC#13525、大肠埃希氏菌ATCC#25922、李斯特菌ATCC#33090、鼠伤寒沙门氏菌ATCC#14028、金黄色葡萄球菌ATCC#6538、米曲霉ATCC#1010,酿酒酵母ATCC#4098,铜绿假单胞菌ATCC#27853分别加入每种样品中,获得浓度为5CFU/包的样品。
分别采用本申请所述方法和微生物培养法检测所有加标样品以及每种产品的阴性对照(未加标),每个样品做3个平行,检测结果见表19-表26。
表19阴性产品(未加标)
表20UHT纯奶
表21UHT巧克力奶
/>
表22豆奶
表23乳饮料
表24炼乳
/>
表25果泥
表26肉泥
由表19可以看出,采用本申请所述方法检测所有阴性样品,结果均为阴性。
由表20-表26可以看出,所有加标样品经本申请所述方法检测检测结果均显著大于300,为确定阳性;所有样品培养后检测结果也均为阳性。由此可见,本申请所述方法的检测结果与微生物培养法一致。
实施例6本申请检测方法或检测仪的精密度评价。
将UHT灭菌乳用蜡样芽孢杆菌ATCC#11778加标,获得浓度为1CFU/包的样品,采用本申请所述方法进行检测,做96次重复。结果见表27。
表27浓度为1CFU/包的灭菌乳检测结果
/>
由表27可以看出,96个测试间的变异系数为3.3%,小于10%。
分别准备经标准方法确认无菌的灭菌乳、谷物早餐奶、豆奶、乳饮料、炼乳各50份样品,其中25份样品作为阴性对照,另外25份样品加入大肠埃希氏菌ATCC#25922,使其浓度为1CFU/包。
分别在3家实验室按照本方法进行验证,对于每类样品,各实验室均选择同一品牌和同一规格,各实验室测定结果见表28。
表28不同实验室间独立验证的结果
由表28可以看出,3家实验室的检测结果相同,不存在显著差异。
综上,本申请通过改良的方案检测样品中ATP的含量,判断其被微生物的污染程度,对各类样品均普遍适用,且结果准确、精密度高、灵敏度高。
实施例7植物体细胞ATP对RLU的影响。
选择10份超高温灭菌豆奶微生物阴性样品,每份样品取50μl,向其中加入50μlATP降解剂孵育10分钟,然后加入95μl细胞裂解剂,等待7秒,最后加入95μl发光反应溶液进行测定,每份样品重复测定5次,结果见表29。
表29豆奶阴性样品检测结果
/>
由表29可见,微生物阴性豆奶样品仍能检测出发光强度,表明植物体细胞ATP能够影响检测结果,导致假阳性,因此,检测植物性样品时需要去除植物体细胞ATP。
实施例8对比脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚和Triton X-100对植物体细胞ATP提取效果。
取1mL阴性豆奶样品分别加入30μl 0.2%Triton X-100(非离子型表面活性剂)和脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚(n=7),涡旋使其充分混匀,室温静置15分钟,取50μl反应后的溶液,加入95μl发光反应溶液,并测定其发光强度,每个检测做5个平行,检测结果见表30。
表30脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚和Triton X-100的提取效果
由表30可见,采用脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚获得的相对发光单位为24,而Triton X-100的相对发光单位为15.6,相比而言,脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚提取植物体细胞ATP的效果更好,本申请之前也没有任何启示采用脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚提取植物细胞ATP,也无法预料脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚提取植物细胞ATP的效果非常好。
实施例9脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚的最佳浓度。
取1mL阴性豆奶样品加入浓度分别为0.05%、0.1%、0.15%、0.2%、0.25%、0.3%、0.35%脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚(n=7)30μl、涡旋使其充分混匀,室温静置15分钟,取50μl反应后的溶液,加入95μl发光反应溶液,用检测仪测定其发光强度,每个检测做5个平行,检测结果见表31。
表31不同浓度脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚的提取效果
/>
由表31可见,当脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚(n=7)的浓度低于0.2%时,吸光度值随脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚(n=7)浓度的增加而逐渐升高,当浓度大于等于0.2%时,吸光度趋于平稳,表明当脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚(n=7)的浓度为0.2%时,足以将植物体细胞中的ATP完全提取出来,但不能确定该浓度下是否也将微生物细胞裂解。
为了验证脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚(n=7)的浓度为0.2%时微生物细胞是否被裂解,取浓度为1×106的大肠杆菌菌悬液1mL,加入30μl浓度为0.2%的脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚,涡旋使其充分混匀,室温静置15分钟,取50μl反应后的溶液,加入95μl荧光反应试剂,并测定其荧光强度,做5个平行,检测结果见表32。
表32脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚对微生物细胞的裂解效果
由表32可见,当脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚的浓度为0.2%时,测得的相对发光单位平均值为0.6,表明浓度为0.2%时不会裂解微生物细胞。
由表31和表32可见,当检测1mL样品时,加入30μl浓度为0.2%的脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚效果最佳。即浓度为0.2%的脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚不仅能够完全提取植物细胞中的ATP,而且不会裂解微生物细胞,达到了宝贵的平衡,这是规模化实验最希望看到的结果。
实施例10三甲基甘氨酸作为细胞裂解剂的成分能获得预料不到的效果
称量500mg十八烷基三甲基氯化铵和0.146mg EDTA,分别加入0g、2g、4g、6g、8g、10g,加入800mL无ATP水中,溶解后定容至1L,制备成细胞裂解剂。
用超高温灭菌牛奶制备1mL大肠杆菌浓度为109cfu/ml的样品,加入95μl细胞裂解剂进行反应,然后加入95μl荧光反应溶液,用检测仪测定发光强度(相对发光单位RLU),每次测定做3个平行,结果取平均值,见图4。
由图4可见,是否含有三甲基甘氨酸对细胞裂解效果的影响很大,且具有量效关系,如发光强度随三甲基甘氨酸的增加先增加后降低,当三甲基甘氨酸的量为4g时,发光强度最大,此后发光强度逐渐降低。因此取1mL样品时,选择4g作为三甲基甘氨酸的最佳添加量。
另外,微生物细胞裂解剂常用苯扎溴铵(BAB)或苯扎氯铵(BAC)。为了体现三甲基甘氨酸的优势,取1mL样品,4g三甲基甘氨酸或BAB或BAC,保持其他条件相同,7秒反应时间,进行3组平行对比试验。结果见表33。可见,三甲基甘氨酸作为细胞裂解剂,在ATP发光法检测微生物污染程度的实验中明显优于现有技术,这是无法预料的技术效果。
表33不同裂解剂对检测结果的影响
三甲基甘氨酸(RLU) | 560528 | 559231 | 567056 |
BAB(RLU) | 463205 | 462863 | 470328 |
BAC(RLU) | 387586 | 389179 | 393781 |
实施例11细胞裂解剂的最佳反应时间
用超高温灭菌牛奶制备1mL大肠杆菌浓度为109cfu/ml的样品,加入细胞裂解剂并进行反应,然后加入95μl荧光反应溶液,用检测仪测定发光强度(相对发光单位RLU),每次测定做3个平行,结果取平均值,见表34。
表34细胞裂解剂的最佳体积及最佳反应时间
由表34可见,当细胞裂解剂的体积为85-95μl时,发光强度随浓度的增高而增加,大于95μl时发光强度无显著差异,且反应7秒后发光强度基本不再变化,因此取1mL样品时,选择95μl作为细胞裂解剂最佳体积,7秒作为最佳反应时间。
实验例12ATP降解酶中三磷酸腺苷双磷酸酶和腺苷磷酸脱氨酶的最佳活力。
取ATP二钠盐,用无ATP水溶解,使ATP浓度为10-7M。取50μl制备的ATP溶液,向其中加入50μl由三磷酸腺苷双磷酸酶(A)和腺苷磷酸脱氨酶(B)制备的ATP降解剂,孵育10分钟,然后加入95μl发光反应溶液,用检测仪测定发光强度(相对发光单位RLU),每个检测做5个平行,结果取平均值,结果见表35。
表35不同酶活的检测结果
由表35可以看出,当三磷酸腺苷双磷酸酶的活力为60-70U,腺苷磷酸脱氨酶的活力为30-40U时,测得的荧光强度为0,表明酶的水解能力非常强,因此选择将60U和30U分别作为三磷酸腺苷双磷酸酶和腺苷磷酸脱氨酶的最佳活力。
实施例13ATP降解缓冲液中金属离子的种类。
分别称量0.004mM MgSO4·7H2O、CaSO4、ZnSO4·7H2O,然后加入8.621g琥珀酸、0.127g氢氧化钠,用800mL无ATP水溶解,混匀后定容至1L。使用由不同金属离子制备的ATP降解缓冲液制备ATP降解剂。
取ATP二钠盐,用无ATP水溶解,使ATP浓度为10-7M。取50μl制备的ATP溶液,向其中加入50μl ATP降解剂,孵育10分钟,然后加入95μl发光反应溶液,用检测仪测定发光强度(相对发光单位RLU),每个检测做5个平行,结果取平均值,结果见表36。
表36离子种类对发光强度的影响
由表36可见,当ATP降解缓冲液中含Zn2+时,获得的发光强度最低,表明Zn2+对于ATP降解剂的促进能力强于Ca2+和Mg2+。因此,选择Zn2+作为ATP降解剂中的重要成分。
实验例14ATP降解缓冲液中Zn2+的最佳浓度及最佳反应时间。
取ATP二钠盐,用无ATP水溶解,使ATP浓度为10-7M。取50μl制备的ATP溶液,向其中加入50μl ATP降解剂,降解剂中Zn2+的浓度分别为0.002mM、0.003mM、0.004mM、0.005mM、0.006mM,孵育时间分别为6分钟、8分钟、10分钟、12分钟和14分钟,然后加入95μl发光反应溶液,用检测仪测定发光强度(相对发光单位RLU),每次测定做3个平行,结果取平均值。
表37离子浓度和孵育时间对发光强度的影响
由表37可见,当Zn2+浓度为0.002-0.004mM时,发光强度随离子浓度的升高而降低,当Zn2+浓度为0.004-0.006mM时,发光强度的变化不明显;当Zn2+浓度为0.002-0.003mM时,发光强度随孵育时间的延长而逐渐降低,当Zn2+浓度为0.004mM,孵育时间为10分钟时,发光强度为0,表明ATP已经被充分降解,因此选择0.004mM为Zn2+的最佳浓度(1.15mg ZnSO4·7H2O),10分钟为最佳反应时间。
最后应说明的是:以上各实施例仅用以说明本申请的技术方案,而非对其限制;尽管参照前述各实施例对本申请进行了详细的说明,本领域的普通技术人员应当理解:其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改,或者对其中部分或者全部技术特征进行等同替换;而这些修改或者替换,并不使相应技术方案的本质脱离本申请各实施例技术方案的范围,其均应涵盖在本申请的权利要求和说明书的范围当中。本申请并不局限于文中公开的特定实施例,而是包括落入权利要求的范围内的所有技术方案。
Claims (10)
1.一种微生物污染程度的检测方法,其特征在于,包括如下步骤:(1)样品制备;(2)加入ATP降解剂降解样品中的游离ATP;(3)用微生物细胞裂解剂裂解微生物活细胞以释放出微生物活细胞内的ATP;(4)在荧光素酶的存在下,使ATP与荧光素反应并发光;(5)检测发光信号并反馈结果;其中,所述微生物细胞裂解剂包括三甲基甘氨酸。
2.如权利要求1所述的方法,其特征在于,所述微生物细胞裂解剂包括十八烷基三甲基氯化铵、三甲基甘氨酸和EDTA。
3.如权利要求1或2所述的方法,其特征在于,所述ATP降解剂包括ATP降解酶和ATP降解缓冲液;所述ATP降解缓冲液包括Zn2+离子。
4.如权利要求3所述的方法,其特征在于,所述ATP降解缓冲液包括ZnSO4、琥珀酸和氢氧化钠。
5.如权利要求1或2所述的方法,其特征在于,所述ATP与荧光素反应的发光反应缓冲液中包括Mg2+、海藻糖、BSA和二硫苏糖醇。
6.如权利要求3所述的方法,其特征在于,所述ATP与荧光素反应的发光反应缓冲液中包括Mg2+、海藻糖、BSA和二硫苏糖醇。
7.如权利要求1或2所述的方法,其特征在于,当样品为植物源性时,在所述步骤(2)之前还包括用植物细胞提取剂提取植物细胞ATP的步骤;所述植物细胞提取剂包括脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚。
8.如权利要求7所述的方法,其特征在于,脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚的用量为:1mL样品制备液,加入30μl浓度为0.2%的脂肪醇聚氧乙烯聚二甘油醚。
9.如权利要求1或2所述的方法,其特征在于,所述检测发光信号并反馈结果包括通过检测发光强度判断微生物的污染程度,当RLU值小于150时,结果为阴性;当RLU值为151-300时,结果为疑似阳性;当RLU值大于300,结果为阳性,表明存在微生物污染。
10.如权利要求7所述的方法,其特征在于,所述检测发光信号并反馈结果包括通过检测发光强度判断微生物的污染程度,当RLU值小于150时,结果为阴性;当RLU值为151-300时,结果为疑似阳性;当RLU值大于300,结果为阳性,表明存在微生物污染。
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Legal Events
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PB01 | Publication | ||
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SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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