CN115976178A - 基于纳米孔宏基因组测序的sftsv检测方法 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法。本发明提出了一种融合序列非依赖的单引物扩增和纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,研发了一套自动化、实时的生物信息数据分析流程,可应用于宏基因组测序数据的物种鉴定、SFTSV全基因组组装、SFTSV基因型和重排特征解析等方面。
Description
技术领域
本发明属于微生物检测方法技术领域,具体涉及一种基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法。
背景技术
公开该背景技术部分的信息仅仅旨在增加对本发明的总体背景的理解,而不必然被视为承认或以任何形式暗示该信息构成已经成为本领域一般技术人员所公知的现有技术。
发热伴血小板减少综合征(SFTS)是一种由新型布尼亚病毒感染引起的蜱传人畜共患病。SFTS的主要症状是发热、血小板减少、白细胞减少和胃肠道异常等,重症病例常因多器官功能衰竭而死亡。我国SFTS的报告病例数呈现逐年增加的趋势,且其病死率维持在较高水平,流行区的发病率不断上升,非流行区也陆续出现病例报道,严重威胁人民生命健康。基于SFTS对公共卫生的挑战,WHO于2017年将其列为“十大需要优先关注的传染病”之一。SFTS尚无特异性治疗手段,主要采用对症支持治疗,因此及早发现患者是救治的关键。然而,SFTS患者的临床症状特异性不强,需要与肾综合征出血热、人粒细胞无形体病等立克次体病、登革热、败血症、伤寒、血小板减少性紫癜等疾病相鉴别。
目前发热伴血小板减少综合征病毒(SFTSV)检测主要采用核酸和抗体检测方法。基于PCR技术的核酸检测方法虽然具备灵敏和简便等特点,但是严重依赖预先假设,只能检测单一或部分病原体,不能检测靶标之外的病原体。抗体检测方法快速且简易,但病毒进入机体需经过一定的潜伏期才会产生IgM与IgG抗体,不适用于快速检测。此外,常规的核酸和抗体检测方法均不能获得病原体的完整基因组信息,无法进行SFTSV的全基因组特性解析和溯源。因此,构建一种针对SFTSV的快速且信息全面的检测新方法尤为重要。
发明内容
为了解决以上问题,本发明提供一种融合序列非依赖的单引物扩增和纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,该检测方法具有快速、信息全面的特点。
为了解决上述技术问题,本发明提供如下技术方案。
本发明的第一方面:提供一种基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV实时检测方法,包括如下步骤:
(1)构建血清样本;
(2)使用定量反转录-聚合酶链反应定量Hazara病毒液的病毒载量,向血清样本中加入Hazara病毒作为测序阳性内对照;
(3)对血清样品提取RNA,并去除DNA和纯化RNA;
使用序列非依赖的单引物扩增(SISPA)方法扩增cDNA;
(4)对血清样品进行测序,构建多重测序文库;将测序文库装载到纳米孔R9.4.1测序芯片上,使用纳米孔MinlON测序仪进行测序;
(5)进行生物信息数据分析。
进一步的,步骤(1)中,血清样本第一组包括使用10个SFTSV RNA阳性的患者血清、10个SFTSV RNA阴性患者血清构建的不同血清背景和不同SFTSV浓度的血清样本;第二组包括40个SFTSV RNA阳性的患者血清;第三组包括40个SFTSV RNA阴性的患者血清,分为两部分,第一部分包括10个汉坦病毒或登革热病毒RNA检测阳性的样本,第二部分包括30个SFTSV、汉坦病毒、登革热病毒RNA检测均阴性的样本。
进一步的,步骤(2)中向血清样本中加入浓度为104copies/ml的Hazara病毒。
进一步的,步骤(3)中使用QIAamp viral RNA试剂盒(Qiagen)提取RNA,使用TurboDNase(Thermo Fisher Scientific)和RNA Clean&Concentrator-5kit(Zymo Research)去除DNA和纯化RNA。
进一步的,步骤(3)中反转录过程中,将4μl RNA和1μl浓度为40pmol/μl的引物A混合,并在65℃孵育5min,冷却至室温;第一链合成过程中,添加5μl的SuperScriptIV(ThermoFisher Scientific)反应混合液并在42℃孵育10min;第二链合成过程中,添加5μl的Sequenase(Affymetrix)反应混合液并在37℃孵育8min,然后再添加0.45μl Sequenasedilution buffer和0.15μl Sequenase并在37℃孵育8min;cDNA扩增过程中,将5μl上述反转录产物和50μl AccuTaq LA(Sigma)反应混合液及1μl的引物B混合;PCR的反应条件是:98℃30s、94℃15s、50℃20s、68℃2min重复30个循环,68℃10min;最后使用1:1的AMPure XPBeads(Beckman Coulter)纯化cDNA扩增产物,Qubit定量产物核酸浓度。
所述引物A为5’-GTTTCCCACTGGAGGATA-N9-3’,如SEQNO.1所示。
所述引物B为5’-GTTTCCCACTGGAGGATA-3’,如SEQ NO.2所示。
进一步的,步骤(4)中取6个样本,单个样本200fmol cDNA,使用EXP-NBD104扩展试剂盒和SQK-LSK110连接试剂盒构建多重测序文库。
进一步的,步骤(5)中,生物信息分析包括如下流程:
(a)使用Guppy软件将纳米孔测序原始数据转化为Fastq格式的序列文件;
(b)用Porechop去除测序序列reads两端的编码Barcode,Nanoplot监测数据质量;
(c)使用Centrifuge比对参考数据库(p_compressed+h+v数据库,包含>2万条细菌和病毒等物种的基因组序列)对测序reads进行物种注释,获得初步的分类结果;其次,依据Centrifuge分类结果从其参考数据库中为每一个物种选取一条临时的参考序列;再次,使用Minimap2将测序reads mapping到临时的参考序列,依据多数投票方法(即基因组每个位置选取mapping最多的碱基),组装一条该物种的临时共有序列;从次,使用Blast将此临时的共有序列和自建的参考数据库比对,以选取最佳参考序列;最后,使用Minimap2将测序reads mapping到最佳参考序列,过滤mapping质量低于50和mapping比例低于50%的测序片段,使用Samtools软件分析统计mapping reads数量、参考序列每个碱基位置的mapping深度等信息。
判断某病毒检测阳性的标准是:≥2条测序reads覆盖病原基因组的不同位置。
(d)采用Medaka分析突变位点并组装病毒的共有序列。
(e)融合上述生物信息分析软件,采用Nextflow流程,构建全自动、并行的生物信息数据分析流程。该数据分析流程依照预设的时间间隔对测序数据存储文件夹进行扫描,实时提取分析测序数据,可同时并行处理多个样本的测序数据,可在个人计算机、高性能服务器和云计算等多种平台运行。
进一步的,所述的自建参考数据库包括NCBI和ViPR病毒数据库中全部SFTSV基因组序列。
本发明的有益效果是:
本发明在SFTSV宏基因组测序中添加了内对照,提升了检测结果的可靠性;本发明对纳米孔宏基因组测序数据的生物信息分析流程中的参数进行了优化选择,可过滤SFTSV假阳性测序片段,提升了检测的灵敏度和特异性;本发明通过纳米孔宏基因组测序及生物信息数据分析不仅能够检测SFTSV病毒,同时能获得SFTSV的基因组序列,序列信息可进一步用于SFTSV的基因组特性解析和溯源。
附图说明
构成本申请的一部分的说明书附图用来提供对本申请的进一步理解,本申请的示意性实施例及其说明用于解释本申请,并不构成对本申请的不当限定。
图1是SFTSV纳米孔宏基因组测序数据分析的流程图。
具体实施方式
应该指出,以下详细说明都是示例性的,旨在对本发明提供进一步的说明。除非另有指明,本发明使用的所有技术和科学术语具有与本发明所属技术领域的普通技术人员通常理解的相同含义。
本发明中的血清样本,来源于山东大学公共卫生学院,为SFTSV RNA检测阳性或阴性的样本。
本发明中的试剂来源,如下表:
表1试剂信息
试剂 | 生产厂家 |
QIAamp viral RNA试剂盒 | Qiagen |
Turbo DNase | Thermo Fisher Scientific |
RNA Clean&Concentrator-5 kit | Zymo Research |
SuperScript IV | Thermo Fisher Scientific |
Sequenase | Affymetrix |
AccuTaq LA | Sigma |
为了进一步说明本发明的检测方法的应用效果,特给出如下实施例。所述实施例仅是本发明方法的一种示例,并不会对本发明保护主题及保护范围造成约束,在本发明思路范围内的其他等同技术也属于本发明的范畴。
实施例1,建立基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测技术方法,方法如下:
(1)建立样本并进行分组,包括如下步骤:
第一组包括构建的不同血清背景和不同SFTSV浓度的血清样本。
进一步地,具体方法是:混合10个SFTSV RNA检测阳性的血清样本,构成1个阳性混合样本池。分3次分别混合10个SFTSV RNA检测阴性的患者血清样本,构成3个不同血清背景的阴性混合样本池。将3个阴性混合样本池分别分装到6个EP管(1ml血清/管),向EP管内加入不等量的阳性混合样本池,使用定量反转录-聚合酶链反应定量病毒载量,使每管SFTSV的浓度分别达到0、102、103、104、105、106copies/ml。
第二组包括40个SFTSV RNA检测阳性的血清样本。
第三组包括40个SFTSV RNA检测阴性的血清样本。分为两部分,第一部分包括10个样本,汉坦病毒或登革热病毒RNA检测呈阳性;第二部分包括30个样本,SFTSV、汉坦病毒、登革热病毒RNA检测均呈阴性。
(2)建立纳米孔宏基因组测序方法,包括如下步骤:
使用定量反转录-聚合酶链反应定量Hazara病毒液的病毒载量,向每个样本中加入浓度为104copies/ml的Hazara病毒作为测序阳性内对照。
所述定量反转录-聚合酶链反应,是将RNA逆转录为DNA并使用聚合酶链式反应扩增特定的DNA靶标。
使用QIAamp viral RNA试剂盒(Qiagen)提取RNA,使用Turbo DNase(ThermoFisher Scientific)和RNA Clean&Concentrator-5kit(Zymo Research)去除DNA和纯化RNA。
使用序列非依赖的单引物扩增(SISPA)方法扩增cDNA。所述的序列非依赖的单引物扩增(SISPA)方法,是一种不依赖病毒分离培养、缩短检测未知病毒的时间的扩增方法。基本技术路线是:用DNase处理样品中游离的核酸后,用含有已知片段的随机引物进行逆转录,分别合成cDNA第一链和cDNA第二链,然后对双链cDNA进行PCR扩增反应,将该已知片段作为引物,使未知病毒核酸片段被准确地扩增。最近几年来,该方法又有了改进,即首先用0.22um的过滤器对样品进行过滤,再用DNase处理去除游离核酸,减少背景核酸的干扰。SISPA的优点在于它既可以不依赖组织培养,也不依赖于核酸序列,大大缩短了检测时间,同时适用于不同类型的临床标本,双链RNA、单链RNA、DNA病毒都可以检测。
具体步骤是:
反转录过程中,将4μl RNA和1μl引物A(5’
-GTTTCCCACTGGAGGATA-N9-3’,40pmol/μl)混合,并在65℃孵育5min,冷却至室温。第一链合成过程中,添加5μl的SuperScriptIV(Thermo Fisher Scientific)反应混合液并在42℃孵育10min。第二链合成过程中,添加5μl的Sequenase(Affymetrix)反应混合液并在37℃孵育8min,然后再添加0.45μl Sequenase dilution buffer和0.15μl Sequenase并在37℃孵育8min。cDNA扩增过程中,将5μl上述反转录产物和50μl AccuTaq LA(Sigma)反应混合液及1μl的引物B(5’-GTTTCCCACTGGAGGATA-3’)混合。PCR的反应条件是:98℃30s、94℃15s、50℃20s、68℃2min重复30个循环,68℃10min。最后使用1:1的AMPure XP Beads(Beckman Coulter)纯化cDNA扩增产物,Qubit定量产物核酸浓度。
每次测序选取6个样本,取单个样本200fmol cDNA,使用EXP-NBD104扩展试剂盒和SQK-LSK110连接试剂盒构建多重测序文库。
将测序文库装载到纳米孔R9.4.1测序芯片上,使用纳米孔MinlON测序仪进行测序。
所述纳米孔MinlON测序仪,是现在最便携的测序仪,其核心是一个有2,048个纳米孔、分成512组、由专用集成电路控制的flow cell。
实施例2,建立纳米孔宏基因组测序数据的生物信息分析流程,流程如下:
(1)使用Guppy软件将纳米孔测序原始数据转化为Fastq格式的序列文件。
(2)用Porechop去除测序序列reads两端的编码Barcode,Nanoplot监测数据质量。
(3)为了能够准确检测病原体,本发明采用一种综合测序reads的物种注释、mapping、过滤的分析方法。方法如下:
首先,使用Centrifuge比对参考数据库(p_compressed+h+v数据库,包含>2万条细菌和病毒等物种的基因组序列)对测序reads进行物种注释,获得初步的分类结果。其次,依据Centrifuge分类结果从其参考数据库中为每一个物种选取一条临时的参考序列。再次,使用Minimap2将测序reads mapping到临时的参考序列,依据多数投票方法(即基因组每个位置选取mapping最多的碱基),组装一条该物种的临时共有序列。从次,使用Blast将此临时的共有序列和自建的参考数据库(包含公共数据库中全部SFTSV基因组序列)比对,以选取最佳参考序列。最后,使用Minimap2将测序reads mapping到最佳参考序列,过滤mapping质量低于50和mapping比例低于50%的测序片段,使用Samtools软件分析统计mappingreads数量、参考序列每个碱基位置的mapping深度等信息。
判断某病毒检测阳性的标准是:≥2条测序reads覆盖病原基因组的不同位置。
(4)采用Medaka分析突变位点并组装病毒的共有序列。
(5)融合上述生物信息分析软件,采用Nextflow流程,构建全自动、并行的生物信息数据分析流程。该数据分析流程依照预设的时间间隔对测序数据存储文件夹进行扫描,实时提取分析测序数据,可同时并行处理多个样本的测序数据,可在个人计算机、高性能服务器和云计算等多种平台运行。
实施例3,评估纳米孔宏基因组测序对不同病毒载量和血清背景SFTSV样本的检测效果。步骤如下:
(1)依照本发明实施例1和例2,对第一组样本进行纳米孔宏基因组测序和生物信息数据分析。
(2)分析从不同背景血清和不同SFTSV载量样本中检测到的内对照Hazara reads数目及其在测序数据中的比例,分析不同背景血清样本中检测到的Hazara reads比例的一致性,评估不同背景的血清对测序方法检测病原的影响。
(3)分析从不同SFTSV载量样本中检测到的SFTSV reads数目及其在测序数据中的比例,分析SFTSV reads比例和SFTSV载量的关系,分析测序方法检测SFTSV的检测限。
(4)重建样本中SFTSV的全基因组序列,分析基因组覆盖率和病毒载量之间的关系,分析测序方法重建SFTSV全基因组的检测限。
实施例4,研究纳米孔宏基因组测序检测SFTSV的灵敏度和特异性,步骤如下:
(1)依照本发明实施例2和例3,对第二和第三组样本进行纳米孔宏基因组测序和生物信息数据分析。
(2)分析从各样本中检测到的内对照Hazara reads数目及其在测序数据中的比例,评估测序方法从不同CT值的SFTSV阳性样本以及阴性样本中检测内对照的稳定性。
(3)分析从各样本中检测到的SFTSV reads数目及其在测序数据中的比例。比较测序结果与SFTSV核酸检测试剂盒结果,分析SFTSV reads比例和CT值之间的关系,分析测序方法检测SFTSV的灵敏度和特异性。
(4)依据核酸检测CT值选取10个阳性样本的cDNA产物进行Illumina测序,分析、比较两种测序平台所获的SFTSV reads比例、基因组覆盖率、基因组的准确性。
所述Illumina测序和数据分析方法是:使用1.5ng SISPA扩增的cDNA产物制备文库,Illumina MiSeq测序仪测序。使用Bwa将测序数据reads比对到参考SFTSV序列上,生成共有序列。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。
Claims (10)
1.一种基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,其特征在于,包括如下步骤:
(1)构建血清样本;
(2)使用定量反转录-聚合酶链反应定量Hazara病毒液的病毒载量,向血清样本中加入Hazara病毒作为测序阳性内对照;
(3)对血清样品提取RNA,并去除DNA和纯化RNA;
使用序列非依赖的单引物扩增(SISPA)方法扩增cDNA;
(4)对血清样品进行测序,构建多重测序文库;将测序文库装载到纳米孔R9.4.1测序芯片上,使用纳米孔MinlON测序仪进行测序;
(5)进行生物信息数据分析。
2.根据权利要求1所述基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,其特征在于,步骤(1)中,血清样本第一组包括使用10个SFTSV RNA阳性的患者血清、10个SFTSV RNA阴性患者血清构建的不同血清背景和不同SFTSV浓度的血清样本;第二组包括40个SFTSV RNA阳性的患者血清;第三组包括40个SFTSV RNA阴性的患者血清,分为两部分,第一部分包括10个汉坦病毒或登革热病毒RNA检测阳性的样本,第二部分包括30个SFTSV、汉坦病毒、登革热病毒RNA检测均阴性的样本。
3.根据权利要求1所述基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,其特征在于,步骤(2)中向血清样本中加入浓度为104copies/ml的Hazara病毒。
4.根据权利要求1所述基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,其特征在于,步骤(3)中使用QIAamp viral RNA试剂盒提取RNA,使用Turbo DNase和RNA Clean&Concentrator-5kit去除DNA和纯化RNA。
5.根据权利要求1所述基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,其特征在于,步骤(3)中,反转录过程中,将4μl RNA和1μl浓度为40pmol/μl的引物A混合,并在65℃孵育5min,冷却至室温;第一链合成过程中,添加5μl的SuperScriptIV反应混合液并在42℃孵育10min;第二链合成过程中,添加5μl的Sequenase反应混合液并在37℃孵育8min,然后再添加0.45μl Sequenase dilution buffer和0.15μl Sequenase并在37℃孵育8min;cDNA扩增过程中,将5μl上述反转录产物和50μl AccuTaq LA(Sigma)反应混合液及1μl的引物B混合;PCR的反应条件是:98℃30s、94℃15s、50℃20s、68℃2min重复30个循环,68℃10min;最后使用1:1的AMPure XP Beads(Beckman Coulter)纯化cDNA扩增产物,Qubit定量产物核酸浓度。
6.根据权利要求5所述基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,其特征在于,所述引物A为5’-GTTTCCCACTGGAGGATA-N9-3’;
所述引物B为5’-GTTTCCCACTGGAGGATA-3’。
7.根据权利要求1所述基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,其特征在于,步骤(4)中使用EXP-NBD104扩展试剂盒和SQK-LSK110连接试剂盒构建多重测序文库。
8.根据权利要求1所述基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,其特征在于,步骤(5)中,生物信息分析包括如下流程:
(a)使用Guppy软件将纳米孔测序原始数据转化为Fastq格式的序列文件;
(b)用Porechop去除测序序列reads两端的编码Barcode,Nanoplot监测数据质量;
(c)使用Centrifuge比对参考数据库(p_compressed+h+v数据库,包含>2万条细菌和病毒等物种的基因组序列)对测序reads进行物种注释,获得初步的分类结果;其次,依据Centrifuge分类结果从其参考数据库中为每一个物种选取一条临时的参考序列;再次,使用Minimap2将测序reads mapping到临时的参考序列,依据多数投票方法,组装一条该物种的临时共有序列;从次,使用Blast将此临时的共有序列和自建的参考数据库比对,以选取最佳参考序列;最后,使用Minimap2将测序reads mapping到最佳参考序列,过滤mapping质量低于50和mapping比例低于50%的测序片段,使用Samtools软件分析统计mapping reads数量、参考序列每个碱基位置的mapping深度等信息;
(d)采用Medaka分析突变位点并组装病毒的共有序列;
(e)融合上述生物信息分析软件,采用Nextflow流程,构建全自动、并行的生物信息数据分析流程;
所述自建的参考数据库为根据NCBI或者ViPR数据库中所有SFTSV序列建的数据库,其包含公共数据库中全部SFTSV基因组序列。
9.根据权利要求8所述基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,其特征在于,判断某病毒检测阳性的标准是:≥2条测序reads覆盖病原基因组的不同位置。
10.根据权利要求8所述基于纳米孔宏基因组测序的SFTSV检测方法,其特征在于,所述多数投票方法即基因组每个位置选取mapping最多的碱基。
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CN117746980A (zh) * | 2023-12-18 | 2024-03-22 | 广州凯普医学检验所有限公司 | 一种流感病毒自动化快速分型方法、装置、设备及介质 |
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