CN114437041B - 一类具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物及其制备方法和应用 - Google Patents

一类具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物及其制备方法和应用 Download PDF

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Abstract

本发明涉及一类具有抗肿瘤活性的4‑四唑基取代‑3,4‑二氢喹唑啉衍生物及其制备方法和应用。本发明通过一锅法合成出一类结构新颖的多取代氮杂环化合物,即4‑四唑基取代‑3,4‑二氢喹唑啉衍生物,其对乳腺癌细胞及胶质瘤细胞具有较强的抗肿瘤活性,具体结构式如下:

Description

一类具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生 物及其制备方法和应用
技术领域
本发明属于医药技术领域,具体涉及一类具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物及其制备方法和应用。
背景技术
四唑衍生物作为一类广泛存在的氮杂环化合物,具备良好的药用价值和优越的生物活性。被广泛应用于抗癌药物、PDE3抑制剂、抗炎药以及抗高血压药物。值得注意的是,近年来,各种四唑类药物受到了极大的关注,例如缬沙坦、氯沙坦和吡米罗司特已被广泛用于临床治疗。3,4-二氢喹唑啉环是天然产物、合成药物、农药和药物中常见的关键结构,具有良好的生物活性,包括TryR抑制剂、抗过敏、抗真菌和抗癌活性。例如,Vasicine是一种广为人知的天然生物碱,表现出优异的生物活性,4-羧基取代的3,4-二氢喹唑啉类化合物由于其抑制乙型肝炎病毒(HBV)的活性最近受到了极大的关注。因此,在过去的二十年里,已经建立了多种构建3,4-二氢喹唑啉骨架的策略。尽管这些方法有很多优点,但仍然存在一些缺点,如产率低、操作步骤多、反应条件苛刻等等。因此,在温和条件下合成3,4-二氢喹唑啉衍生物的新方法具有重要科学意义。此外,3,4-二氢喹唑啉在C4碳上与四唑基连接的杂环目前还没有被报道,由于四唑类化合物和3,4-二氢喹唑啉结构都属于高生物活性骨架,这种活性拼接骨架可能具有潜在的优异的药物活性。
乳腺癌已成为当前女性癌症死亡的主因,占所有癌症死亡的 14.3%,传统化疗药物的副作用显著,因此,开发分子靶向药物更有利于提高患者的生存质量。胶质瘤是最常见的颅内原发肿瘤,占恶性肿瘤的81%。虽然相对罕见,但它们会造成严重的死亡率和发病率。胶质瘤是起源于神经胶质祖细胞的固有脑肿瘤。传统治疗,包括手术、化疗和放射治疗,在胶质瘤患者的预后方面取得了有效的改善。免疫疗法是癌症治疗的一次革命,自从中枢神经******被发现以来,免疫疗法已经成为一种具有穿透血脑屏障能力的有希望的策略。当前的临床试验对胶质瘤的疗效有效。因此,有必要对胶质瘤治疗的新方法进行新的研究。
发明内容
本发明针对现有技术中存在的技术问题,提供一类具有抗肿瘤活性的4- 四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物及其制备方法和应用,利用简单易得的原料,通过一锅法合成出一类结构新颖的多取代氮杂环化合物,即4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物,并对其进行了体外肿瘤细胞抑制活性测试,结果显示其对乳腺癌细胞及胶质瘤细胞具有较强的抗肿瘤活性。
本发明解决上述技术问题的技术方案如下:
一类具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物,其结构式如下:
其中,R1为H、4-Cl和5-CH3中的任意一种;
R2为C6H4、4-ClC6H4、4-BrC6H4、4-CH3C6H4、4-CH3OC6H4、2-ClC6H4、2,4-dimethyl-C6H、n-Bu、i-Pr和t-Bu中的任意一种;
R3为t-Bu、n-Bu、c-C6H11和1-adamantyl中的任意一种;
R4为t-Bu、c-C6H11、4-CH3OC6H4和4-ClC6H4中的任意一种。
在上述技术方案的基础上,本发明还可以做如下改进。
本发明的另一目的是提供上述4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物制备方法。
具体的技术方案如下:
一类具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的制备方法,所述4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的合成路线如下:
进一步,所述4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的制备方法,包括以下步骤:
1)将2mmol邻叠氮基苯甲醛1溶解于10ml甲醇中,搅拌溶解后依次加入2mmol胺2、2mmol三甲基叠氮硅烷和2mmol异腈3,常温发生Ugi 反应,TCL监测直至原料反应完全脱去溶剂得到中间体4;
2)将中间体4溶于5ml四氢呋喃中,再加入0.2mmolPd(PPh3)4、3mmol 异腈5,升温至60℃反应完全,将反应液减压浓缩除去溶剂,将残余物经柱层析分离得到目标产物6,即4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物。
优选的,步骤2)中,柱层析分离采用体积比为1:10-1:6的乙酸乙酯/石油醚洗脱溶剂。
进一步,步骤2)中,合成的目标产物6如下:
进一步,化合物6c[3-(4-溴苯基)-N-(叔丁基)-4-(1-环己基-1H-四唑-5- 基)-3,4-二氢喹唑啉-2-胺]的结构式如下:
本发明的最后目的是提供上述4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的应用。
具体的技术方案如下:
一类具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物在制备乳腺癌和胶质瘤防治药物中的应用。
本发明的有益效果是:
1)本发明利用简单易得的原料,通过一锅法合成出一类结构新颖的多取代氮杂环化合物,即4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物,其在本领域和现有文献中尚未被报道。
2)本发明通过1H-NMR和13C-NMR等表征手段确定了上述4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的结构,并证实了所陈述的方法能成功制备目标产物,即4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物。
3)本发明提供了一种制备4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的方法,通过一锅煮的方式,将Ugi反应应用到合成杂环化合物的合成中,合成路线简单、条件温和、产率高,较现有合成3,4-二氢喹唑啉衍生物的方法具有显著的进步。
4)本发明通过体外肿瘤细胞抑制活性测试,结果显示4-四唑基取代-3, 4-二氢喹唑啉衍生物6c对乳腺癌细胞及胶质瘤细胞具有较强的抗肿瘤活性。
附图说明
图1为本发明实施例1中化合物6c的1H-NMR图谱;
图2为本发明实施例1中化合物6c的13C-NMR图谱;
图3为本发明实施例2中大鼠乳腺癌细胞的活性检测各组细胞平均OD 值统计图,数据表示为平均值±标准差(n=3);
图4为本发明实施例2中化合物6c对乳腺癌细胞平板克隆能力的影响: (A)各组细胞结晶紫染色图,(B)各组平板克隆细胞数目统计图,数据表示为平均值±标准差(n=3),与对照组(Control)相比,*p<0.05;
图5为本发明实施例2中免疫荧光法观察化合物6c对EdU阳性细胞率的影响:(A)EdU和Hoechest的荧光染色图,(B)EdU阳性细胞率统计图,数据表示为平均值±标准差(n=3),与对照组(Control)相比,*p<0.05;
图6为本发明实施例2中免疫印迹检测化合物6c对凋亡因子activated caspase-3蛋白表达的影响:(A)各组细胞Activated caspase-3蛋白免疫印迹条带图,(B)各组细胞Activated caspase-3蛋白水平统计图,免疫印迹灰度值使用imageJ软件进行统计,数据表示为平均值±标准差(n=3),与对照组(Control)相比,*p<0.05;
图7为本发明实施例3中大鼠胶质瘤细胞的活性检测各组细胞平均OD 值统计图,数据表示为平均值±标准差(n=3);
图8为本发明实施例3中化合物6c对胶质瘤细胞平板克隆能力的影响: (A)各组细胞结晶紫染色图;(B)各组平板克隆细胞数目统计图,数据表示为平均值±标准差(n=3),与对照组(Control)相比,*p<0.05;
图9为本发明实施例3中免疫荧光法观察化合物6c对EdU阳性细胞率的影响:(A)EdU和Hoechest的荧光染色图,(B)Edu阳性细胞率统计图,数据表示为平均值±标准差(n=3),与对照组(Control)相比,*p<0.05;
图10为本发明实施例3中化合物6c对胶质瘤细胞迁移能力的影响:(A) 光学显微镜下各组划痕的细胞单层愈合0、24h的图像,(B)各组迁移细胞总数统计图,数据表示为平均值±标准差(n=3),与对照组(Control)相比, *p<0.05;
图11为本发明实施例3中免疫印迹检测化合物6c对凋亡因子BAX蛋白表达的影响:(A)各组细胞BAX蛋白免疫印迹条带图,(B)各组细胞 BAX蛋白水平统计图,免疫印迹灰度值使用imageJ软件进行统计,数据表示为平均值±标准差(n=3),与对照组(Control)相比,*p<0.05。
具体实施方式
以下对本发明的原理和特征进行描述,所举实例只用于解释本发明,并非用于限定本发明的范围。
除非另有说明,本发明采用的原料及设备为本技术领域常规原料及设备 (常规市售品),皆可于市场购得。
实施例1
具有如下结构式的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的制备:
其中,R1为H、4-Cl和5-CH3中的任意一种;
R2为C6H4、4-ClC6H4、4-BrC6H4、4-CH3C6H4、4-CH3OC6H4、2-ClC6H4、 2,4-dimethyl-C6H、n-Bu、i-Pr和t-Bu中的任意一种;
R3为t-Bu、n-Bu、c-C6H11和1-adamantyl中的任意一种;
R4为t-Bu、c-C6H11、4-CH3OC6H4和4-ClC6H4中的任意一种。
所述4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的合成路线如下:
具体而言,包括以下步骤:
1)在50mL的圆底烧瓶中加入2mmol邻叠氮基苯甲醛1溶解于10ml 甲醇中,搅拌溶解后依次加入2mmol胺2、2mmol三甲基叠氮硅烷和2mmol 异腈3,常温发生Ugi反应,TCL监测直至原料反应完全脱去溶剂得到中间体4。
2)将中间体4溶于5ml四氢呋喃中,再加入0.2mmolPd(PPh3)4、3mmol 异腈5,升温至60℃反应完全,将反应液减压浓缩除去溶剂,将残余物经柱层析分离得到目标产物6,即4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物。
所合成的目标产物6如下:
其中,化合物6c[3-(4-溴苯基)-N-(叔丁基)-4-(1-环己基-1H-四唑-5- 基)-3,4-二氢喹唑啉-2-胺]的结构式如下:
如图1和图2所示,化合物6c表征:
3-(4-溴苯基)-N-(叔丁基)-4-(1-环己基-1H-四唑-5-基)-3,4-二氢喹唑啉-2-胺(6c).Yellow solid(yield 0.895g,88%),purified by column chromatography withpetroleum ether/EtOAc(6:1)as the eluent.Mp 175-177℃;1H NMR (CDCl3,400MHz)δ(ppm)7.48-7.46(m,2H),7.24-7.14(m,2H),6.99-6.97(m, 2H),6.88-6.79(m,2H),6.40(s,1H),4.45-4.37(m,1H),2.14-1.86(m,3H), 1.65-1.48(m,3H),1.41(s,9H),1.19-0.86(m,4H);13C{1H}NMR(CDCl3,100 MHz)δ(ppm)154.8,148.0,143.5,141.2,133.2,129.8,128.3,125.8,123.8, 122.2,121.1,117.8,58.3,56.6,52.0,33.2,32.8,29.4,25.3,25.2,24.8.LCMS (ESI)m/z[M+H]+:508.Anal.Calcd for C25H30BrN7:C,59.05;H,5.95;N,19.28;Found:C,59.31;H,6.28;N,19.55。
实施例2
对实施例1制得的化合物6c[3-(4-溴苯基)-N-(叔丁基)-4-(1-环己基-1H- 四唑-5-基)-3,4-二氢喹唑啉-2-胺]进行抑制乳腺癌细胞测试。
1.方法
1.1细胞培养
大鼠乳腺癌细胞MRMT-1使用含有10%胎牛血清和1%青霉素-链霉素的 RPMI-1640(Gibco,NewYork,NY,USA)培养基进行传代培养,置于恒温 37℃,5%CO2培养箱中培养,隔天更换培养基,并保持一定的湿度,取生长状态良好的细胞进行细胞实验。
1.2细胞活力检测
用CCK8法检测化合物6c对乳腺癌细胞的杀伤作用,取对数生长期的乳腺癌细胞接种于96孔板,每孔接种100μL细胞悬液并将细胞密度调整为 1×104个细胞/孔,放置培养箱中过夜培养观察细胞贴壁状况。第二天用化合物6c处理细胞,药物浓度设置为0、1、3、10、30、100、300μmol/L,每个滴度设6个复孔,不加药的细胞孔作为对照孔,放置培养箱中继续培养48h。取出培养板,每孔加入100μL检测液(按CCK8溶液:DMEM培养基=1:9 配制),37℃避光孵育2h后使用酶标仪在450nm处测定其吸光度值(OD)值,并根据OD值绘制细胞生长曲线。OD值越小,细胞毒性越大。细胞增殖率=实验孔OD值/对照孔OD值×100%,实验重复3次。CCK-8(C0037)试剂盒购于上海碧云天生物技术有限公司。
1.3平板克隆形成实验
取对数生长期的乳腺癌细胞接种于6孔板,每孔接种1mL细胞悬液并将细胞密度调整至500个/mL,充分摇匀后过夜培养,24h后给药,浓度设为0、0.3、1μmol/L,培养14天后用4%多聚甲醛溶液固定30min,PBS清洗3遍,再用1%结晶紫染色,拍照计数。克隆率=克隆形成数目/接种细胞数目×100%,每次实验重复3次。
1.4 EdU细胞增殖实验
在24孔板中铺设14mm细胞爬片,将对数期生长的MRMT-1以每孔 1×104个细胞的密度接种于盖玻片上中,调整细胞至适宜密度后计数,待细胞贴壁后加化合物6c,浓度设为0、0.3、1μmol/L,培养24h后每孔加入100μL 50μmo/LEdU的培养基37℃孵育2h,之后在4%多聚甲醛中室温固定细胞30min,PBS洗3遍,加入通透液室温孵育20分钟,PBS洗两遍,加入配置好的Click反应液室温避光孵育30分钟,PBS洗一遍,用Hoechest33342 进行核染色,荧光显微镜(奥林巴斯IX73,奥林巴斯,东京,日本)观察细胞发光情况,红色荧光为增殖细胞,蓝色荧光为细胞核染色。EdU-488细胞增殖检测试剂盒(C0071S)购于上海碧云天生物技术有限公司。
1.5 Westernblot检测蛋白表达
分别加入0、0.3、1μmol/L浓度的6c处理24h后用含有PMSF的RIPA 蛋白裂解液裂解各组乳腺癌细胞,待细胞充***解后,放入4℃预冷的离心机12000×r/min离心15min提取上清液,获得总蛋白,将蛋白和蛋白上样缓冲液混匀后加热100℃变性10min,用BCA分析试剂盒(Beyotime Bio-tech,中国上海)进行定量,蛋白定量后配平蛋白浓度,随后进行SDS-PAGE凝胶电泳后转膜,使用5%BSA对0.22μmPVDF膜进行封闭,一抗4℃孵育过夜, TBST洗10min/3次,加二抗孵育2h,TBST洗10min/3次,随即使用iBright 1500成像***(美国纽约州Invitrogen)用于检测免疫反应带,设定对照组蛋白表达水平为1,β-actin为已知浓度标准蛋白对照。蛋白酶抑制剂、加强型RIPAbuffer、SDS-PAGE凝胶快速配制试剂盒、BCA蛋白浓度测定试剂盒均购于上海碧云天生物技术有限公司,主要抗体来自ABclonal Technology(中国),一抗:anti-caspase-3(A19654)和anti-β-actin(AC026)。二抗如下: HRP标记山羊抗兔IgG购自于ABclonal,用ImageJ软件分析条带的灰度值。
1.6统计分析
所有统计分析均使用SPSS 21.0软件包进行,所有数据均采用one-way ANOVA(单因素方差分析)进行评估,并以平均值±标准差表示,显著性描述为p<0.05。
2.结果
2.1化合物6c对乳腺癌细胞的杀伤作用
为确定6c对乳腺癌细胞是否有杀伤作用,采用CCK8法进行细胞毒性试验,如图3所示,6c浓度为0、1、3、10、30、100和300μM时,其细胞活力值分别为100±4.5、99.35±6.3、96.5±5.2、99.32±6.8、85.66±7.6、75.23±7.3 和36.8±9.2。该结果表示6c浓度在30μM以下,没有细胞毒性(p>0.05)。从而为后期的细胞实验提供了药物浓度依据。
2.2化合物6c处理明显降低乳腺癌细胞平板克隆形成能力
为检测化合物6c对乳腺癌细胞增殖能力的影响,用不同浓度的6c(0、 0.3和1μM)处理乳腺癌细胞,采用平板克隆形成法检测各组细胞增殖情况。实验结果显示(图4):对照组克隆细胞数目为127±5;0.3μMA药处理组克隆细胞数目为85±7(p<0.05);1μM A药处理组克隆细胞数目57±3 (p<0.05)。即化合物6c处理后显著降低了乳腺癌细胞的增殖水平,呈浓度依赖性下降。
2.3 6c处理明显抑制乳腺癌细胞增殖
采用EdU法检测6c处理后的乳腺癌细胞增殖,用不同浓度的6c(0、 0.3和1μM)处理乳腺癌细胞,结果显示(图5):对照组EdU阳性细胞率为0.83±0.09;0.3μMA药处理细胞EdU阳性细胞率为0.29±0.04(p<0.05); 1μM 6c处理组细胞EdU阳性细胞率为0.12±0.01(p<0.05)。该结果可看出,随着6c浓度的增加,乳腺癌EdU阳性细胞数逐渐减少,即表示6c可明显抑制乳腺癌细胞增殖。
2.4 6c处理明显促进乳腺癌细胞凋亡
为探讨6c在乳腺癌细胞凋亡中的作用,用不同浓度的6c(0、0.3和1μM) 处理乳腺癌细胞24h,使用免疫印迹分析凋亡因子activated caspase-3表达量的变化。结果如图6所示,与对照组相比,0.3和1μM 6c处理组的activated caspase-3/β-actin比值分别为1.46±0.04(p<0.05)和1.81±0.06(p<0.05)。该结果表示经6c处理后,乳腺癌细胞凋亡因子表达量呈剂量依赖性上调。
以上结果表明化合物6c浓度在30μM以下,没有细胞毒性,且对乳腺癌细胞具有一定抑制活性。
实施例3
对实施例1制得的化合物6c[3-(4-溴苯基)-N-(叔丁基)-4-(1-环己基-1H- 四唑-5-基)-3,4-二氢喹唑啉-2-胺]进行抑制胶质瘤细胞测试。
1.方法
1.1细胞培养
大鼠神经胶质瘤细胞C6使用含有10%胎牛血清和1%青霉素-链霉素的 DMEM(Gibco,NewYork,NY,USA)培养基进行传代培养,置于恒温37℃, 5%CO2培养箱中培养,隔天更换培养基,并保持一定的湿度,取生长状态良好的细胞进行细胞实验。
1.2细胞活力检测
用CCK8法检测6c对胶质瘤细胞的杀伤作用,取对数生长期的胶质瘤细胞接种于96孔板,每孔接种100μL细胞悬液并将细胞密度调整为1×104个细胞/孔,放置培养箱中过夜培养观察细胞贴壁状况。第二天用6c处理细胞,药物浓度设置为0、1、3、10、30、100、300μmol/L,每个滴度设6个复孔,不加药的细胞孔作为对照孔,放置培养箱中继续培养48h。取出培养板,每孔加入100μL检测液(按CCK8溶液:DMEM培养基=1:9配制), 37℃避光孵育2h后使用酶标仪在450nm处测定其吸光度值(OD)值,并根据 OD值绘制细胞生长曲线。OD值越小,细胞毒性越大。细胞增殖率=实验孔 OD值/对照孔OD值×100%,实验重复3次。CCK-8(C0037)试剂盒购于上海碧云天生物技术有限公司。
1.3平板克隆形成实验
取对数生长期的胶质瘤细胞接种于6孔板,每孔接种1mL细胞悬液并将细胞密度调整至500个/mL,充分摇匀后过夜培养,24h后给药,浓度设为0、0.3、1μmol/L,培养14天后用4%多聚甲醛溶液固定30min,PBS清洗3遍,再用1%结晶紫染色,拍照计数。克隆率=克隆形成数目/接种细胞数目×100%,每次实验重复3次。
1.4 EDU细胞增殖实验
在24孔板中铺设14mm细胞爬片,将对数期生长的胶质瘤细胞C6以每孔1×104个细胞的密度接种于细胞爬片上中,调整细胞至适宜密度后计数,待细胞贴壁后加6c,浓度设为0、0.3、1μmol/L,培养24h后每孔加入100μL 50μmo/LEdU的培养基37℃孵育2h,之后在4%多聚甲醛中室温固定细胞 30min,PBS洗3遍,加入通透液室温孵育20分钟,PBS洗两遍,加入配置好的Click反应液,室温避光孵育30分钟,PBS洗一遍,用Hoechest33342 进行核染色,荧光显微镜(奥林巴斯IX73,奥林巴斯,东京,日本)观察细胞发光情况,红色荧光为增殖细胞,蓝色荧光为细胞核染色。EdU-488细胞增殖检测试剂盒(C0071S)购于上海碧云天生物技术有限公司。
1.5划痕实验检测各组细胞迁移能力
用划痕法测定6c处理后胶质瘤细胞的迁移能力的变化。将胶质瘤细胞接种在6孔板上,细胞达到90%融合度时,通过无菌塑料移液管尖端轻轻刮擦附着的细胞产生单个划痕。然后用无血清培养基洗涤细胞,使划痕的细胞单层愈合24h。光学显微镜下获取愈合0、24h的图像。实验重复3次。
1.6 Westernblot检测蛋白表达
分别加入0、0.3、1μmol/L浓度的6c处理24h后用含有PMSF的RIPA 蛋白裂解液裂解各组胶质瘤细胞,待细胞充***解后,放入4℃预冷的离心机12000×r/min离心15min提取上清液,获得总蛋白,将蛋白和蛋白上样缓冲液混匀后加热100℃变性10min,用BCA分析试剂盒进行定量,蛋白定量后配平蛋白浓度,随后进行SDS-PAGE凝胶电泳后转膜,使用5%BSA对 0.22μmPVDF膜进行封闭,一抗4℃孵育过夜,TBST洗10min/3次,加二抗孵育2h,TBST洗10min/3次,随即使用iBright 1500成像***(Invitrogen,美国)用于检测免疫反应带,设定对照组蛋白表达水平为1,β-actin为已知浓度标准蛋白对照。蛋白酶抑制剂、加强型RIPA(Radio ImmunoprecipitationAssay)buffer、SDS-PAGE凝胶快速配制试剂盒、 BCA蛋白浓度测定试剂盒均购于上海碧云天生物技术有限公司,主要抗体来自ABclonal Technology(中国),一抗:anti-BAX(A19684)和anti-β-actin (AC026)。二抗:HRP标记山羊抗兔IgG购自于ABclonal,用ImageJ软件分析条带的灰度值。
1.7统计分析
所有统计分析均使用SPSS 21.0软件包进行,所有数据均采用one-way ANOVA(单因素方差分析)进行评估,并以平均值±标准差表示,显著性描述为p<0.05。
2.结果
2.1化合物6c对胶质瘤细胞的杀伤作用
为确定6c对胶质瘤细胞是否有杀伤作用,采用CCK8法进行细胞毒性试验,如图7所示,6c浓度为0、1、3、10、30、100和300μM时,其细胞活力值分别为100±3.5、108.62±8.9、105.48±13.3、103.76±6.9、98.05±5.2、 82.01±8.9和42.87±10.6。该结果表示6c浓度在30μM以下,没有细胞毒性 (p>0.05)。从而为后期的细胞实验提供了药物浓度依据。
2.2 A药处理明显降低胶质瘤细胞平板克隆形成能力
为检测6c对胶质瘤细胞增殖能力的影响,用不同浓度的6c(0、0.3和 1μM)处理胶质瘤细胞,采用平板克隆形成法检测各组细胞增殖情况。实验结果显示(图8):对照组克隆细胞数目为108.3±3.5;0.3μM 6c处理组克隆细胞数目为77.3±3.1(p<0.05);1μM 6c处理组克隆细胞数目55.7±4.5 (p<0.05)。即6c处理后显著降低了胶质瘤细胞的增殖水平,呈浓度依赖性下降。
2.3 6c处理明显抑制胶质瘤细胞增殖
采用EdU法检测6c处理后的胶质瘤细胞增殖,用不同浓度的6c(0、 0.3和1μM)处理胶质瘤细胞,结果显示(图9):对照组EdU阳性细胞率为0.53±0.04;0.3μM 6c处理细胞EdU阳性细胞率为0.32±0.03(p<0.05); 1μM 6c处理组细胞EdU阳性细胞率为0.18±0.01(p<0.05)。该结果可看出,随着6c浓度的增加,胶质瘤EdU阳性细胞数逐渐减少,表示6c可明显抑制胶质瘤细胞增殖。
2.4 6c显著抑制胶质瘤细胞迁移
细胞划痕实验分析6c对胶质瘤细胞迁移能力的影响,如图10所示,0.3 和1μM 6c处理组迁移细胞总数分别为0.68±0.11和0.38±0.13。与对照组相比,实验组中迁移的细胞总数减少,划痕处细胞闭合时间延长(p<0.05),表示6c可显著抑制胶质瘤细胞迁移。
2.5 6c处理明显促进胶质瘤细胞凋亡
为探讨6c在胶质瘤细胞凋亡中的作用,用不同浓度的6c(0、0.3和1μM) 处理胶质瘤细胞24h,使用免疫印迹分析凋亡因子BAX表达量的变化。结果如图11所示,与对照组相比,0.3和1μMA药处理组的BAX/β-actin比值分别为3.87±0.18(p<0.05)和5.07±0.17(p<0.05)。该结果表示经6c处理后,胶质瘤细胞凋亡因子表达量呈剂量依赖性上调。
以上结果表明化合物6c浓度在30μM以下,没有细胞毒性,且对胶质瘤细胞具有一定抑制活性。
以上所述仅为本发明的较佳实施例,并不用以限制本发明,凡在本发明的精神和原则之内,所作的任何修改、等同替换、改进等,均应包含在本发明的保护范围之内。

Claims (7)

1.一类具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物,其特征在于,其结构式如下:
其中,R1为H、4-Cl和5-CH3中的任意一种;
R2为4-ClC6H4、4-BrC6H4、4-CH3C6H4、4-CH3OC6H4和2-ClC6H4中的任意一种;
R3为c-C6H11
R4为t-Bu。
2.权利要求1所述的具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的制备方法,其特征在于,所述4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的合成路线如下:
3.根据权利要求2所述的具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:
1)将2mmol邻叠氮基苯甲醛1溶解于10ml甲醇中,搅拌溶解后依次加入2mmol胺2、2mmol三甲基叠氮硅烷和2mmol异腈3,常温发生Ugi反应,TCL监测直至原料反应完全脱去溶剂得到中间体4;
2)将中间体4溶于5ml四氢呋喃中,再加入0.2mmolPd(PPh3)4、3mmol异腈5,升温至60℃反应完全,将反应液减压浓缩除去溶剂,将残余物经柱层析分离得到目标产物6,即4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物。
4.根据权利要求3所述的具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的制备方法,其特征在于,步骤2)中,柱层析分离采用体积比为1:10-1:6的乙酸乙酯/石油醚洗脱溶剂。
5.根据权利要求2或3所述的具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的制备方法,其特征在于,步骤2)中,合成的目标产物6如下:
Compound R1 R2 R3 R4 Yield[a](%) 6c H 4-BrC6H4 c-C6H11 t-Bu 88 6i H 4-CH3C6H4 c-C6H11 t-Bu 73
6.根据权利要求5所述的具有抗肿瘤活性的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物的制备方法,其特征在于,化合物6c[3-(4-溴苯基)-N-(叔丁基)-4-(1-环己基-1H-四唑-5-基)-3,4-二氢喹唑啉-2-胺]的结构式如下:
7.权利要求1所述的4-四唑基取代-3,4-二氢喹唑啉衍生物在制备乳腺癌和胶质瘤防治药物中的应用。
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