CN114287428A - 提高木薯抗盐胁迫的组合物、制剂及方法 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种提高木薯抗盐胁迫的组合物、制剂及方法，所述组合物包括：0.05mM～0.3mMβ‑氨基丁酸和0.05mM～0.3mMγ‑氨基丁酸。本发明的组合物和制剂可以显著提高木薯的抗盐胁迫，且相比起单独使用β‑氨基丁酸或γ‑氨基丁酸，复配使用对木薯幼苗的抗盐胁迫产生了累加的有益效果，可以广泛应用于改良木薯对盐的耐受性的育种中。
Description
技术领域
本发明属于农业制剂技术领域，更具体地，本发明涉及一种提高木薯抗盐胁迫的组合物、制剂、以及提高木薯抗盐胁迫的方法。
背景技术
环境污染、全球变暖和气候变化等加剧了生物和非生物胁迫对植物生长和产量的影响。非生物胁迫作为自然生态***的一部分，严重影响作物生产力，威胁全球粮食安全。植物在生长发育过程中持续不断地面临着一系列非生物胁迫因子的影响，极大程度上阻碍其生长发育，最终导致其产量和品质下降(Mantri et al.,2014)。非生物胁迫因子，如热、冷、干旱和高盐等对世界农业有着巨大的影响，它们使大多数主要作物的平均产量降低了50％以上(Wang et al.,2003)。在这些胁迫中，盐胁迫逐渐影响着世界近7％的土地面积的作物生长和产量(Aliniaeifard et al.,2016a；Aliniaeifard et al.,2016b；Li et al.,2016)。
目前，为了研究植物对盐胁迫的抗性，通常采用常规育种或基因改造的方法，通过筛选或控制与应激反应有关的各种代谢产物、蛋白质和酶的产生的基因，而这些方法特别耗时，很难同时操纵多个基因或途径来满足可变的非生物或生物胁迫条件。因此，需要探索在不操纵基因组信息的情况下应对这些压力的另一种方法。
各种补充化学物质已被证明可以改善植物的加工过程，以提高其在各种环境胁迫下的存活率和恢复能力。根据化学特性，可以分为不同的类型，例如氧-氮-硫物种，激素，氨基酸和合成化合物(Nguyen，Lin et al.2018)。但是两种或多种功能相关的化合物组合使用，却并不一定具有加强的功效。例如，脱落酸(ABA)和β-氨基丁酸(β-aminobutyric acid,BABA)单独使用可以为苹果幼树提供脱水保护，但将其结合在一起并没有显示出优越的功效(Tworkoski,Wisniewski et al,2001)。
此外，对植物使用不同化学试剂进行处理，可能会激活多种信号传导途径或调节不同的转录和转录后事件，而不同信号分子之间的串扰可能导致协同或拮抗相互作用，从而影响植物对非生物胁迫的响应，这对植物能量分配至关重要，因此，筛选出一种对植物不会产生不利影响、且能提高植物抗非生物胁迫的制剂非常重要。
发明内容
基于此，本发明的目的之一在于提供一种提高木薯抗盐胁迫的组合物，该组合物使得木薯可以抵抗高盐胁迫。
实现上述发明目的的具体技术方案包括如下：
一种提高木薯抗盐胁迫的组合物，所述组合物包括：0.05mM～0.3mMβ-氨基丁酸和0.05mM～0.3mMγ-氨基丁酸。
在其中一些实施例中，所述组合物包括：0.05mM～0.15mMβ-氨基丁酸和0.05mM～0.15mMγ-氨基丁酸。
在其中一些实施例中，所述组合物包括：0.08mM～0.12mMβ-氨基丁酸和0.08mM～0.12mMγ-氨基丁酸。
本发明还提供了一种提高木薯抗盐胁迫的制剂，所述制剂的活性成分包括上述组合物。
本发明还提供了上述提高木薯抗盐胁迫的制剂的制备方法。
实现上述发明目的的具体技术方案包括如下：
一种提高木薯抗盐胁迫的制剂的制备方法，包括以下步骤：将β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸溶于水中，使β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸的终浓度均为0.05mM～0.3mM。
在其中一些实施例中，所述β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸的终浓度均为0.05mM～0.15mM。
在其中一些实施例中，所述β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸的终浓度均为0.08mM～0.12mM。
本发明还提供了上述提高木薯抗盐胁迫的制剂在改良木薯对盐的耐受性的育种中的应用。
本发明还提供了一种提高木薯抗盐胁迫的方法。
一种提高木薯抗盐胁迫的方法，包括以下步骤：对木薯幼苗浇灌上述制剂。
在其中一些实施例中，所述木薯幼苗为在土壤中生长3天～8天的幼苗。
在其中一些实施例中，对木薯幼苗浇灌4次～5次所述制剂，每4天～6天浇灌一次，每次的浇灌量为15mL/株～25mL/株。
与现有技术相比，本发明具有以下有益效果：
在本发明中，发明人发现，对盐胁迫的木薯幼苗浇灌以一定的浓度复配的外源化学试剂β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸，其存活率得到了显著提升，进一步研究发现，木薯幼苗中H2O2积累减少，所有抗氧化酶的活性(包括APX，SOD和POD)、抗氧化酶相关基因的表达量、盐胁迫相关的信号传导基因的转录水平等都得到了显著提高，因此，本发明的制剂可以显著提高木薯的抗盐胁迫，且相比起单独使用β-氨基丁酸或γ-氨基丁酸，复配使用对木薯幼苗的抗盐胁迫产生了累加的有益效果，可以广泛应用于改良木薯对盐的耐受性的育种中。
附图说明
图1为本发明试验例1中不同处理下木薯幼苗的生长图。
图2为本发明试验例1中不同处理下木薯幼苗的存活率。
图3为本发明试验例2中不同处理下木薯幼苗叶片样品的Na+/K+。
图4为本发明试验例2中不同处理下木薯幼苗叶片样品中的脯氨酸含量。
图5为本发明试验例3中不同处理下木薯幼苗叶片的DAB染色图。
图6为本发明试验例3中不同处理下木薯幼苗叶片的H2O2含量。
图7为本发明试验例3中不同处理下木薯幼苗叶片的APX酶活性测定结果。
图8为本发明试验例3中不同处理下木薯幼苗叶片的SOD酶活性测定结果。
图9为本发明试验例3中不同处理下木薯幼苗叶片的POD酶活性测定结果。
图10为本发明试验例3中不同处理下木薯幼苗叶片的MeAPX1基因的表达结果。
图11为本发明试验例3中不同处理下木薯幼苗叶片的MeSOD1基因的表达结果。
图12为本发明试验例4中不同处理下木薯幼苗叶片的MeDREB2A基因的转录水平结果。
图13为本发明试验例4中不同处理下木薯幼苗叶片的MeSOS2基因的转录水平结果。
图14为本发明试验例4中不同处理下木薯幼苗叶片的MeRD17基因的转录水平结果。
具体实施方式
为了便于理解本发明，下面将对本发明进行更全面的描述。本发明可以以许多不同的形式来实现，并不限于本文所描述的实施例。相反地，提供这些实施例的目的是使对本发明公开内容的理解更加透彻全面。
除非另有定义，本发明所使用的所有的技术和科学术语与属于本发明的技术领域的技术人员通常理解的含义相同。本发明的说明书中所使用的术语只是为了描述具体的实施例的目的，不用于限制本发明。本发明所使用的术语“和/或”包括一个或多个相关的所列项目的任意的和所有的组合。
在本发明的其中一个方面，提供了一种提高木薯抗盐胁迫的组合物，所述组合物包括：β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸，且所述组合物中，β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸的浓度均为0.05mM～0.3mM。优选地，所述β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸的浓度均为0.05mM～0.15mM。更进一步地，所述β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸的浓度均为0.08mM～0.12mM。当所述β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸的浓度均为0.1mM时，所述制剂提高木薯抗盐胁迫的效果最优。
在本发明中，β-氨基丁酸(β-aminobutyric acid,BABA)属于衍生氨基酸，是一种由氨基和羧基以及四个碳原子组成的非蛋白氨基酸，其结构简单，羧基在第一个碳原子上，氨基在第三个碳原子上。β-氨基丁酸的化学式为C4H9NO2，分子量为103.12，又名为3-氨基丁酸。γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)是BABA的其中一个同分异构体，GABA的氨基在第四个碳原子上，也不与蛋白质结合，广泛存在于原核生物和真核生物中。主要以两性离子的形式存在，带有正电荷和负电荷。β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸都属于易获得的、廉价的化学试剂。
在本发明的另一方面，提供了一种提高木薯抗盐胁迫的方法，所述方法为：使用上述制剂，对在土壤中恢复生长3天～8天的木薯幼苗进行浇灌，浇灌频率为4天～6天浇灌一次，共浇灌4次～5次，每次的浇灌量为15mL/株～25mL/株。
本发明的发明人在对木薯抗盐胁迫制剂进行研究时，发现β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸以合适浓度进行复配制得的制剂，浇灌于盐胁迫的木薯幼苗时，可以显著减少H2O2的积累，且木薯幼苗中所有抗氧化酶的活性(包括APX，SOD和POD)、抗氧化酶相关基因的表达量、盐胁迫相关的信号传导基因的转录水平等都得到了显著提高，这些结果表明，本发明的β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸复配制得的制剂作用于木薯幼苗，触发木薯对盐胁迫的应激信号后，可能通过增加细胞K+/Na+平衡和有机渗透压脯氨酸含量来实现生存优势，从而使得木薯幼苗的生存率得到了大幅提升，对木薯幼苗的抗盐胁迫产生了累加的有益效果。
下列实施例中未注明具体条件的实验方法，通常按照常规条件，例如Sambrook等人，分子克隆：实验室手册(NewYork:Cold Spring Harbor Laboratory Press,1989)中所述的条件，或按照制造厂商所建议的条件。实施例中所用到的各种常用化学试剂，均为市售产品。
以下结合具体实施例和附图来详细说明本发明。
实施例1提高木薯抗盐胁迫的制剂
在本实施例中，提高木薯抗盐胁迫的制剂，包括：0.1mMβ-氨基丁酸和0.1mMγ-氨基丁酸。
本实施例的制剂的制备方法，包括以下步骤：
将β-氨基丁酸0.1031g和γ-氨基丁酸0.1031g溶于10L水中，使β-氨基丁酸的终浓度为0.1mM，γ-氨基丁酸的终浓度为0.1mM。
本实施例的制剂的使用方法为：将5cm高的木薯组培苗移栽至土壤中恢复生长4天的木薯幼苗，浇灌本实施例的制剂，共浇灌4次，每5天浇灌一次，每次的浇灌量为20mL/株。
实施例2提高木薯抗盐胁迫的制剂
在本实施例中，提高木薯抗盐胁迫的制剂，包括：0.25mMβ-氨基丁酸和0.05mMγ-氨基丁酸。
本实施例的制剂的制备方法，包括以下步骤：
将β-氨基丁酸0.258g和γ-氨基丁酸0.052g溶于10L水中，使β-氨基丁酸的终浓度为0.25mM，γ-氨基丁酸的终浓度为0.05mM。
本实施例的制剂的使用方法同实施例1。
实施例3提高木薯抗盐胁迫的制剂
在本实施例中，提高木薯抗盐胁迫的制剂，包括：0.05mMβ-氨基丁酸和0.3mMγ-氨基丁酸。
本实施例的制剂的制备方法，包括以下步骤：
将β-氨基丁酸0.052g和γ-氨基丁酸0.3093g溶于10L水中，使β-氨基丁酸的终浓度为0.05mM，γ-氨基丁酸的终浓度为0.3mM。
本实施例的制剂的使用方法同实施例1。
实施例4提高木薯抗盐胁迫的制剂
在本实施例中，提高木薯抗盐胁迫的制剂，包括：0.15mMβ-氨基丁酸和0.10mMγ-氨基丁酸。
本实施例的制剂的制备方法，包括以下步骤：
将β-氨基丁酸0.1547g和γ-氨基丁酸0.1031g溶于10L水中，使β-氨基丁酸的终浓度为0.15mM，γ-氨基丁酸的终浓度为0.10mM。
本实施例的制剂的使用方法同实施例1。
试验例1 BABA和/或GABA对木薯幼苗耐盐性的影响试验
本试验例研究在盐胁迫(300mM NaCl)下，外源BABA和/或GABA对木薯幼苗可能的保护功能。
1、试验方法
将木薯品种“华南8号”(SC8)幼苗在CBM培养基上进行培养，放置在培养箱中(16h/8h)，温度为26±1℃，相对湿度为70％。生长三周后挑选长势一致且优良的幼苗移植到带有底孔的灰色塑料盆中(每个盆盛有土壤，种植有四株秧苗)，使用气泵维持正常通风。在长日(LD)条件下，27℃的生长室中生长。
在土壤中生长4天后，往每个盆中分别加入70mL 300mM NaCl(Mock)、300mM NaCl+0.1mM BABA、300mM NaCl+0.1mM GABA、300mM NaCl+0.1mM BABA+0.1mM GABA溶液，每5天浇一次，共浇4次。
试验设置3次重复，使用Microsoft Excel和t检验进行统计分析，以测量显著性。P<0.05被认为是统计学上的显著差异。
2、试验结果
22天后，统计不同条件下，木薯幼苗的存活率，结果如图1和图2所示。
结果表明，盐胁迫对木薯幼苗的生长和存活具有重要的抑制作用(图1中Mock组)。然而，在盐胁迫下，用0.1mM BABA、0.1mM GABA、以及0.1mM BABA+0.1mM GABA都可以大大提高木薯幼苗的存活率，且BABA和GABA的联合使用对木薯幼苗的存活和生长性能具有附加的有益作用(图1)。
在第22天，相比于对照(Mock)的木薯幼苗在盐胁迫下的25％的存活率，0.1mMBABA组的木薯幼苗在盐胁迫下的存活率为91％，0.1mM GABA组的木薯幼苗在盐胁迫下的存活率为83％，0.1mM BABA+0.1mM GABA处理的木薯幼苗的存活率达到了100％(图2)。
试验例2 BABA和/或GABA处理木薯幼苗Na+/K+比测定及脯氨酸含量
本试验例测定了BABA和/或GABA处理下，木薯幼苗Na+/K+比及脯氨酸含量。分组及处理方法，同试验例1。
1、Na+和K+含量比测量
盐胁迫会导致植物体内Na+的过度积累和K+的缺乏。测定Na+/K+比可以知道，不同处理是否有助于缓解木薯幼苗的盐胁迫。
Na+和K+含量的测量参考Cuin等的方法(Cuin,Bose等,2011)。将不同处理后的木薯幼苗叶片放置到65℃烘箱烘5天，待样品完全粉碎干燥，加入5mLHNO3放入沸水浴中。使用火焰光度计测定。
每种处理评估三份重复。分别配置K、Na标准液，浓度依次为0μg/mL、1μg/mL、2μg/mL、4μg/mL、8μg/mL、12μg/mL、16μg/mL、20μg/mL，用火焰分光光度计测量。然后根据标准曲线，获得不同处理的木薯幼苗叶片样品的Na+和K+的浓度，最后计算Na+/K+。结果如图3所示。
从图3可知，盐胁迫下不同处理的木薯幼苗的Na+/K+比值增加，并且随着胁迫时间的延长，这两个离子的不平衡更加明显。在盐胁迫下，0.1mM BABA、0.1mM GABA、以及0.1mMBABA+0.1mM GABA处理下，均可以显著降低木薯幼苗中的Na+/K+比。与存活率的规律一致，在相同的盐胁迫条件下，0.1mM BABA+0.1mM GABA处理的木薯幼苗Na+/K+比最低。与对照(Mock)处理相比，0.1mM BABA+0.1mM GABA处理使Na+/K+比率降低了32％～52％，而与0.1mMBABA、0.1mM GABA处理组相比，Na+/K+比率也分别降低了15％和29％。
2、脯氨酸含量的测定
脯氨酸作为一种渗透压调节物质，在盐胁迫下能显著增加其含量保护植物免受非生物胁迫的侵害。因此本试验例也检测了木薯幼苗的脯氨酸含量。
脯氨酸含量的测定参考Bates等的方法(BatesWaldren等,1973)。
将不同处理后的木薯幼苗叶片在液氮下研磨成粉，加入10mL的3％磺基水杨酸溶液，10000g离心12min，然后在新的15mL试管中吸入2ml上清，并加入2mL茚三酮和2mL冰醋酸，99℃孵育45分钟。取出后待到室温，加入5mL甲苯萃取，混匀后放置20～25s。从水相中吸出含有甲苯的发色团，并在520nm处读取吸光值，并通过标准曲线获得脯氨酸含量。结果如图4所示。
从图4可知，在盐胁迫下，Mock、0.1mM BABA、0.1mM GABA、以及0.1mM BABA+0.1mMGABA处理下的木薯幼苗的脯氨酸含量都增加了。但与对照(Mock)组相比，0.1mM BABA、0.1mM GABA、以及0.1mM BABA+0.1mM GABA处理下的木薯幼苗的脯氨酸的含量显著高于对照组。且BABA+GABA合用比单用效果更好，与0.1mM BABA、0.1mM GABA处理组相比，脯氨酸含量分别提高了1％和25％。
试验例3 BABA和/或GABA处理木薯幼苗的生理指标
本试验例测定了BABA和/或GABA处理下，木薯幼苗的各生理指标。分组及处理方法，同试验例1。
1、DAB染色
暴露于盐分的植物由于形成活性氧(ROS)，如超氧化物(O2 -)，过氧化氢(H2O2)和羟基(.OH)而易于产生氧化胁迫。因此检测了木薯幼苗的ROS，将木薯叶用3,3'-二氨基联苯胺(DAB)染色24h，然后用乙醇脱色(Romero-Puertas，Rodríguez-Serranoet al,2004)。结果如图5所示。
从图5可以观察到，与对照(Mock)组相比，BABA、GABA、BABA+GABA处理下的木薯幼苗的棕色沉淀物不那么明显，尤其是BABA+GABA合用效果更好。说明外源BABA和GABA能够减轻盐胁迫下木薯幼苗的氧化损伤。
2、H2O2含量的测定
H2O2含量的测定参考Velikova等的方法(Velikova et al.)。
将不同处理后的木薯幼苗叶片在液氮下研磨成粉，加入5mL 0.1％TCA匀浆并10000g离心12min。取1mL上清液加入1ml 10mM磷酸钾和2ml 1M碘化钾(KI)，在390nm读取反应的吸收值，并通过标准曲线获得H2O2含量。结果如图6所示。
从图6可知，在盐胁迫下叶片中H2O2高度积累，通过外源BABA和GABA，H2O2的浓度保持在相对较低的水平。
3、抗氧化酶的活性
a、APX酶活性测定
APX酶活性测定参考Noctor等方法测定(Noctor,Mhamdi et al.2016)。
3mL反应体系包括：50mM PPB(pH7.0)，1mM抗坏血酸(AsA)，2.5mM H2O2和100μL各处理下的木薯幼苗的酶提取物，在290nm处检测OD值降低的速率，每30s检测一次，连续3min。酶活性通过每分钟吸光度值的变化来计算。结果如图7所示。
b、SOD酶活性测定
SOD酶活性测定参考硝基蓝四唑(NBT)法测定(Giannopolitis and Ries 1977)。
3mL反应体系包括：50mM PBS(pH 7.8)，13mM甲硫氨酸methionine，1.125mM氯化硝基四氮唑蓝(NBT)，60uM核黄素和0.1mM乙二胺四乙酸(EDTA)混合，以及100μL各处理下的木薯幼苗的酶提取物。将反应混合物放在25℃、光强为5000lux的培养箱里放置10min。在560nm处读取反应的吸光度。结果如图8所示。
c、过氧化物酶(POD)活性测定
POD活性通过愈创木酚法测定(Shao-xi,Yi-rou et al,1997)。
3mL反应体系包括：0.75％H2O2、0.25％愈创木酚、50mM PBS(pH 6.5)和100μL各处理下的木薯幼苗的酶提取物。在460nm处检测OD值降低的速率，每30s检测一次，连续3min。酶活性通过180秒钟内H2O2的减少来确定。结果如图9所示。
从图7～9可知，在盐胁迫期间，所有抗氧化酶的活性(包括APX，SOD和POD)都显示出逐步上升的趋势。且与对照(Mock)组、BABA处理组和GABA处理组相比，外源BABA和GABA合用显著改善了这些抗氧化酶的活性。
4、抗氧化酶相关基因MeAPX1和MeSOD1的表达
首先选取长势一致的木薯幼苗，分别用70mL H2O(Mock)、BABA(0.1mM)、GABA(0.1mM)和BABA+GABA(各1mM)溶液处理12h，再用150mM NaCl处理6h后，取样，提取RNA，反转录后进行RT-qPCR验证抗氧化酶相关基因MeAPX1和MeSOD1的表达，结果如图10和图11所示。
结果表明，在盐胁迫下，MeAPX1的表达增加了约200倍。BABA或GABA单独处理后，MeAPX1的表达量增加了400倍，而BABA和GABA合用，MeAPX1表达量增加了约800倍。相似地，在盐胁迫下，MeSOD1的基因表达也上调了20倍以上，外源BABA和GABA合用处理的诱导下MeSOD1表达更高，比单独使用BABA和GABA分别提高了12％和17％。这些结果表明外源BABA和GABA诱导抗氧化酶相关基因的上调，表明它们在提高盐胁迫条件下植物的ROS清除能力具有正向调节的作用。
试验例4 BABA和/或GABA处理木薯幼苗的盐相关基因的表达
DREB2A、SOS2和RD17是已知的参与非生物胁迫相关基因。本试验例通过RT-qPCR验证了在BABA和/或GABA不同处理下，与盐胁迫相关的信号传导基因MeRD17、MeSOS2和MeDREB2A的相对表达量。
首先选取长势一致的木薯幼苗，分别用70mL H2O(Mock)、BABA(0.1mM)、GABA(0.1mM)和BABA+GABA(各1mM)溶液处理12h，再用150mM NaCl处理6h后，取样，提取RNA，反转录后进行RT-qPCR验证，结果如图12～图14所示。
结果表明，在盐胁迫下，外源施用BABA和/或GABA分别显著上调了MeDREB2A，MeSOS2和MeRD17的转录水平，BABA和GABA合用更加提高了这些基因的表达。此外，在盐胁迫处理之前，通过联合使用BABA和GABA，可以增强MeRD17的表达，表明其表达可以由这两种与盐胁迫无关的化合物触发(图12)。
以上所述实施例的各技术特征可以进行任意的组合，为使描述简洁，未对上述实施例中的各个技术特征所有可能的组合都进行描述，然而，只要这些技术特征的组合不存在矛盾，都应当认为是本说明书记载的范围。
以上所述实施例仅表达了本发明的几种实施方式，其描述较为具体和详细，但并不能因此而理解为对发明专利范围的限制。应当指出的是，对于本领域的普通技术人员来说，在不脱离本发明构思的前提下，还可以做出若干变形和改进，这些都属于本发明的保护范围。因此，本发明专利的保护范围应以所附权利要求为准。
Claims (10)
1.一种提高木薯抗盐胁迫的组合物，其特征在于，所述组合物包括：0.05mM～0.3mMβ-氨基丁酸和0.05mM～0.3mMγ-氨基丁酸。
2.根据权利要求1所述的提高木薯抗盐胁迫的组合物，其特征在于，所述组合物包括：0.05mM～0.15mMβ-氨基丁酸和0.05mM～0.15mMγ-氨基丁酸。
3.根据权利要求2所述的提高木薯抗盐胁迫的组合物，其特征在于，所述组合物包括：0.08mM～0.12mMβ-氨基丁酸和0.08mM～0.12mMγ-氨基丁酸。
4.权利要求1～3任一项所述的组合物在提高木薯抗盐胁迫中的应用。
5.一种提高木薯抗盐胁迫的制剂，其特征在于，所述制剂的活性成分包括权利要求1～3任一项所述的组合物。
6.一种提高木薯抗盐胁迫的制剂的制备方法，其特征在于，包括以下步骤：将β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸溶于水中，使β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸的终浓度均为0.05mM～0.3mM。
7.根据权利要求6所述的提高木薯抗盐胁迫的制剂的制备方法，其特征在于，所述β-氨基丁酸和γ-氨基丁酸的终浓度均为0.08mM～0.12mM。
8.一种提高木薯抗盐胁迫的方法，其特征在于，包括以下步骤：对木薯幼苗浇灌如权利要求5所述的提高木薯抗盐胁迫的制剂。
9.根据权利要求8所述的提高木薯抗盐胁迫的方法，其特征在于，所述木薯幼苗为在土壤中生长3天～8天的幼苗。
10.根据权利要求8所述的提高木薯抗盐胁迫的方法，其特征在于，对木薯幼苗浇灌4次～5次所述制剂，每4天～6天浇灌一次，每次的浇灌量为15mL/株～25mL/株。
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Citations (3)
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| CN106386354A (zh) * | 2016-09-18 | 2017-02-15 | 中国热带农业科学院环境与植物保护研究所 | 一种芒果果实抗病保鲜的采前处理方法 |
| CN110959617A (zh) * | 2019-12-13 | 2020-04-07 | 四川省农业科学院生物技术核技术研究所 | 植物生长逆境保护剂及使用方法 |
| US20210161133A1 (en) * | 2018-05-07 | 2021-06-03 | Plant Sensory Systems Llc | Combinations of organic compounds to increase crop production |
-
2022
- 2022-01-06 CN CN202210011169.1A patent/CN114287428B/zh active Active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN106386354A (zh) * | 2016-09-18 | 2017-02-15 | 中国热带农业科学院环境与植物保护研究所 | 一种芒果果实抗病保鲜的采前处理方法 |
| US20210161133A1 (en) * | 2018-05-07 | 2021-06-03 | Plant Sensory Systems Llc | Combinations of organic compounds to increase crop production |
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Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| 何永明;谢建春;李春晓;: "β-氨基丁酸增强水稻幼苗耐盐性的初步研究" * |
| 马晓寒;龚治翔;王林;杨立均;黄海棠;许自成;: "β-氨基丁酸诱导烟草抵御胁迫的研究进展" * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| CN114287428B (zh) | 2023-04-18 |
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