CN114149944A - 末端高效吸附恶臭气体的微生物组合、强化定殖及应用 - Google Patents

末端高效吸附恶臭气体的微生物组合、强化定殖及应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了末端高效吸附恶臭气体的微生物组合、强化定殖及应用,涉及气体净化技术领域。本发明所述臭气吸附微生物包括毕赤酵母、枯草芽孢杆菌以及脱氮副球菌,来源于天然生物质发酵,可保障其生物安全性,响应环保减排的理念,应用范围广泛。本发明提供了上述微生物组合的生物炭强化定殖及臭气吸附方法,从而达到促进微生物繁殖和抑制臭气产生的目的。在复合菌群中各微生物的功能具有互补性,微生物在吸附装置中能够自我繁殖,从而减少了吸附组件更换的频率,保证了臭气吸附高效性和经济性。

Description

末端高效吸附恶臭气体的微生物组合、强化定殖及应用
技术领域
本发明属于气体净化技术领域,具体是指一种末端高效吸附恶臭气体的微生物组合、强化定殖及应用。
背景技术
恶臭气体的大量产生严重影响居民的生活环境和危害人类的身体健康。畜禽粪便和厨余垃圾是易于腐解产臭的两类生物质,目前我国畜禽粪便的日排放量达700万吨,年产生总量约为24亿吨,其中粪尿产生量分别约为16亿吨和8亿吨;在我国城市生活垃圾结构中,厨余垃圾所占的比例为30%~50%,全国城市餐厨垃圾的产生量每年不低于6000万吨,且产生量还呈现不断递增的趋势。禽畜粪便和厨余垃圾的主要成分是蛋白质、糖类以及脂肪等有机物质,其中的蛋白质、氨基酸等有机物会因微生物的活动而进行脱羧和脱氨作用,从而产生大量的恶臭气体,严重影响空气质量和周围居民的身体健康;因而生物质腐解产生臭气的处置刻不容缓。
当前,国外在微生物除臭剂产品开发方面处于领先地位,而我国具有自主知识产权的高效除臭剂产品却很少,且在实际应用中存在适应性差、效果不佳等缺点,因而亟需从吸附载体、强化定殖以及高效除臭菌株筛选等方面开展研发工作,从而满足工农业生产、生活排放等多种污染气体类型治理的针对性需求,实现恶臭气体的有效处理。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的不足,提供一组功能互补的微生物组合,以及固定化臭气吸附菌剂的制备方法。
本发明的技术方法如下:
本发明提供了一种末端高效吸附恶臭气体的微生物组合,所述微生物组合包括毕赤酵母、枯草芽孢杆菌或脱氮副球菌中的一种或几种;当为三者组合时,所述毕赤酵母、枯草芽孢杆菌和脱氮副球菌的菌体质量比为(1~3):(1~3):(1~3)。
本发明所述的菌株均来源于腐解的天然生物质,安全性高,其中毕赤酵母为Pichia kudriavzevii NAU-OR2,分类命名为Pichia kudriavzevii,于2021年8月31日保藏于广东省微生物菌种保藏中心,地址:广州市先烈中路100号大院59号楼5楼,保藏编号为GDMCC NO:61876,枯草芽孢杆菌为Bacillus subtilis NAU-OR4,分类命名为Bacillussubtilis,于2021年8月18日保藏于广东省微生物菌种保藏中心,地址:广州市先烈中路100号大院59号楼5楼,保藏编号为GDMCC NO:61878,脱氮副球菌为Paracoccus denitrificansNAU-OR1,分类命名为Paracoccus denitrificans,于2021年10月28日保藏于广东省微生物菌种保藏中心,地址:广州市先烈中路100号大院59号楼5楼,保藏编号为GDMCC No:61875。
在一些实施例中,所述毕赤酵母、枯草芽孢杆菌和脱氮副球菌的菌体质量比为(1~2):(2~3):(1~3)。
本发明还提供了所述抑臭微生物组合的制备方法,将配比量的各菌株进行混合即可;各菌株的制备方法可以按照本领域的常规方法,在一种具体的实例中包括以下步骤:分别将-80℃保存的各菌株分别在平板培养基上活化后,挑取单菌落至液体培养基中培养至对数期,然后转入种子培养基,并逐级扩大培养;离心收集菌体和孢子。扩大培养过程中可以加入利于菌体产孢的成分。
本发明还提供一种除臭菌剂,所述菌剂为将本发明所述的微生物组合、生物炭和定殖液混合均匀,28~32℃孵育20~25小时。
在一种实施例中,生物炭、微生物组合和定殖液的用量比为1g:(2~3)g:(0.5~1.5)ml;在一些具体的实例中,生物炭、微生物组合和定殖液的用量比为1g:2g:1ml。
在一种实施例中,本发明所述的定殖液的配比为:磷酸二氢钾0.5~1.5g/L、磷酸氢二钠0.5~1.5g/L、氯化钙0.05~0.15g/L、氯化铵0.5~1.5g/L、可溶性淀粉0.5~1.5g/L、硫酸锌0.005~0.015g/L、硫酸铜0.005~0.015g/L、七水硫酸镁0.05~0.07g/L,pH为6~8。
本发明还提供本发明所述的除臭微生物组合或者本发明所述的除臭菌剂在处理生物质发酵产的恶臭气体的中的应用。
本发明所述的生物质可以为任何可以产生氨气、硫化氢、硫醇、硫醚、挥发性有机物及综合恶臭等气体的物质,在一种具体的实例中,所述的发酵产恶臭的生物质为畜禽粪便或厨余垃圾。所述的恶臭气体可以为常见的具有恶臭气味的气体,例如氨气、硫化氢、硫醇、硫醚、挥发性有机物或综合恶臭气体中的一种或几种。
优选的,对于氨气、硫化氢产量高的畜禽粪便的臭气吸附,所述毕赤酵母、枯草芽孢杆菌以及脱氮副球菌的菌体质量比为2:2:1;
优选的,对于氨气、硫化氢产量低,而恶臭浓度相对高的厨余垃圾的臭气吸附,所述毕赤酵母、枯草芽孢杆菌以及脱氮副球菌的菌体质量比为3:1:1。
在一些具体的应用实例中,所述应用是将恶臭气体通过含有微生物组合或除臭菌剂的载体中,这种载体可以为含有微生物组合的液体,也可以为装有抑臭菌剂的管状容器等。
本发明相对于现有技术的优势:菌株间功能互补,复配除臭效果明显;复配菌剂负载到生物炭上,除臭效率高,各菌株生存时间长,可以重复长期高效使用。
本发明提供的一种高效臭气吸附微生物组合,其有效成分毕赤酵母、枯草芽孢杆菌以及脱氮副球菌来源于厨余垃圾或畜禽粪便,微生物菌株经发酵、复配而制成的一种新型生物臭气吸附剂。由于所筛选的微生物来自于生活生物质废弃物,可保障其生物安全性;且所述臭气吸附菌剂可以吸附转化臭气中的成分,从而降低恶臭气体的排放,很好的响应了环保减排的理念。本发明所述臭气吸附微生物组合可广泛适用于畜禽养殖场、垃圾中转站、垃圾处理场、动物园、污水处理厂、污水池(沟)、卫生间、饭店等产生臭味的场所。使用时通过含有所述微生物组合物的管道或者液体即可,简单便捷。
本发明提供的一种臭气吸附微生物组合的制备及使用方法,既可以大幅度提升作用效果,又能最大限度的降低处理成本,有利于大面积的推广应用。
在本发明中,所述微生物组合在臭气吸附时,涉及生物炭和微生物“过滤”工艺,基于臭气的吸收和微生物的固定转化,通过微生物的代谢活动使臭气相关物质转化或降解,具体过程为:(1)通过吸附作用生物炭将臭气分子固定在孔隙中;(2)固定的臭气分子溶入定殖液中,并进入微生物组合的细胞中;(3)臭气进入细胞后,在体内作为营养物质为微生物所分解、利用、使臭气得以去除。恶臭物质的生物降解是该过程的限速阶段,微生物消化吸收恶臭物质后产生的代谢物再作为其他微生物的养料,继续吸收消化,如此循环使恶臭物质逐步降解。
附图说明
图1为畜禽粪便臭气释放随时间的变化特征;
图2为厨余垃圾臭气释放随时间的变化特征;
图3为三株微生物对臭气各组分的吸附去除情况;
图4为不同配比对畜禽粪便发酵产生臭气吸附去除的影响;
图5为强化定殖液对臭气吸附微生物组合繁殖的影响;
图6为生物炭微生物组合不同比例对臭气吸附的影响。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明提供的源头高效抑制生物质发酵产臭的微生物组合及使用方法进行详细的说明,但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。下述实施例中的实验方法,如无特殊说明,均为常规方法。下述实施例中所用的试验材料,如无特殊说明,均为自常规生化试剂商店购买得到的。
本发明研究发现畜禽粪便发酵后综合恶臭浓度在初期会快速提升,仅在48h内,综合臭气浓度就达到424.98(无量纲,按照每克干粪计,下同);在72h时,达到峰值493.01;至240h时,综合臭气浓度虽然降低至267.85,虽然与48~168h各测量点的浓度有差别,但还是维持的较高水平,具有持续释放的特征;氨气在前期释放较少,后期又大幅度提升,且从96~168h持续在峰值附近;硫化氢、甲硫醇和挥发性有机物等的释放具有前期较低、达到峰值后会下降的趋势,持续性不强(图1)。厨余垃圾发酵后的臭气产量较畜禽粪便少约1个数量级,其中综合恶臭在初期释放较少,在120h时,达到峰值44.37(按照每克干厨余垃圾计,下同),后下降至4.40,厨余垃圾前期产臭较低,达到最大峰值后下降,持续性不强;氨气在前期释放较高,后期又有小幅度提升;甲硫醇和挥发性有机物等的释放具有前期较低、达到峰值后会下降的趋势,持续性不强;硫化氢的释放量非常少(图2)。
若无特别说明,以下实施例中用到的培养基如下:
毕赤酵母的液体培养基或者种子培养基的配比为:酵母提取物10g/L、细菌用蛋白胨20g/L、琼脂20g/L、马铃薯200g/L和葡萄糖20g/L;
枯草芽孢杆菌的液体培养基或者种子培养基的配比为:胰蛋白胨10g/L、酵母提取物5g/L、氯化钠5g/L和1N氢氧化钠1mL/L;
脱氮副球菌的液体培养基或者种子培养基的配比为:硫酸铵5g/L、硫酸镁0.5g/L、磷酸二氢钾0.7g/L和氯化钙0.5g/L。
实施例1三种菌株的分离鉴定和保藏
本发明所述毕赤酵母、枯草芽孢杆菌和脱氮副球菌均分离自初发酵的畜禽粪便,将畜禽粪便10.0g(湿重)加入到20mL水中,搅匀;稍沉淀后,取上清液100μL分别涂布到YPD、LB和脱氮副球菌培养基平板上,待长出后,挑取菌落进行纯化培养,经功能验证,将具有功能的菌株送样测序鉴定,其中毕赤酵母(Pichia kudriavzevii)NAU-OR2的ITS序列如SEQID NO.1所示,经比对后确定该菌株为毕赤酵母(Pichia kudriavzevii),分类命名为Pichia kudriavzevii,于2021年8月31日保藏在广东省微生物菌种保藏中心,编号为:GDMCC NO:61876。枯草芽孢杆菌为Bacillus subtilis NAU-OR4,16sRNA如SEQ ID NO.2所示,分类命名为Bacillus subtilis,于2021年8月18日保藏于广东省微生物菌种保藏中心,地址:广州市先烈中路100号大院59号楼5楼,保藏编号为GDMCC NO:61878。脱氮副球菌为Paracoccus denitrificans NAU-OR1,16sRNA如SEQ ID NO.3所示,分类命名为Paracoccusdenitrificans,于2021年10月28日保藏于广东省微生物菌种保藏中心,地址:广州市先烈中路100号大院59号楼5楼,保藏编号为GDMCC No:61875。
实施例2臭气吸附微生物组合的制备
各菌株的制备方法,包括以下步骤:将-80℃保存的菌株在固体培养基上活化后,挑取单菌落至液体培养基中培养至对数期,然后转入种子培养基,并逐级扩大培养;离心收集菌体和孢子;扩大培养加入利于菌体产孢的成分。
参照以上方法,分别将毕赤酵母、脱氮副球菌、枯草芽孢杆菌的菌种在固体培养基上活化后,挑取单菌落接种至2mL相应的液体培养基中,培养至对数期后,然后转入种子培养基(配比:1:1000),并逐级扩大培养;离心收集菌体和孢子。本发明所述毕赤酵母菌的活化的固体培养基为:酵母提取物10g/L、细菌用蛋白胨20g/L、琼脂20g/L、马铃薯200g/L、葡萄糖20g/L和琼脂18g/L;所述脱氮副球菌的活化的固体培养基为:硫酸铵5g/L、硫酸镁0.5g/L、磷酸二氢钾0.7g/L、氯化钙0.5g/L和琼脂18g/L;所述枯草芽孢杆菌的活化的固体培养基为:胰蛋白胨10g/L、酵母提取物5g/L、氯化钠5g/L、1N氢氧化钠1mL/L、琼脂15g/L;上述菌剂大罐生产时,需将碳源、氮源调整为淀粉、黄豆粉、淀粉酶等(可按照本领域常规方法进行调整),并加入消泡剂;为了促进菌体产生孢子,加入一定量的糖蜜(可按照本领域常规方法进行调整加入量)。所述菌株的培养温度为30~35℃。离心收集菌体和孢子即可获得相应菌株。
按照比例将各菌株进行混合即形成本发明所述的臭气吸附微生物的组合,例如所述高效吸附臭气微生物组合的毕赤酵母、枯草芽孢杆菌及脱氮副球菌的菌体质量比为(1~3):(1~3):(1~3)。。
本实施案例中臭气吸附微生物的组合可以在生物炭上强化定殖,并填充到钢管中,与生物炭的混合比例及强化定殖方法为:每克生物炭与微生物组合2g(湿基)及定殖液1mL混合均匀,并在30℃培养箱孵育24小时。
本发明所述的微生物组合,需要加入一定的定殖液才能在生物炭上定殖,所述定殖液的成分为每100mL水中加入磷酸二氢钾0.1g、磷酸氢二钠0.1g、氯化钙0.01g、氯化铵0.1g、可溶性淀粉0.1g、硫酸锌0.001g、硫酸铜0.001g、七水硫酸镁0.006g,将pH调试为7,加热充分溶解,并冷却至30℃。
实施例3:微生物组合的臭气吸附效果
1、材料与方法
所用仪器设备如表1所示。
表1仪器与设备
Figure BDA0003384552640000061
化学试剂:磷酸氢二钠、磷酸二氢钾、硫酸镁、氯化钙、可溶性淀粉购自国药集团化学试剂有限公司,均为分析纯;硝酸钾、硫酸铵为分析纯,购自上海凌峰化学试剂有限公司。猪粪取自如皋华日现代农场、厨余垃圾取自南京农业大学浦口校区食堂。
2、试验方法
2.1菌体细胞收集
按照实施例2所述方法进行活化,将活化后的毕赤酵母、脱氮副球菌和枯草芽孢杆菌挑取单菌落,接种至2mL相应的液体培养基中,置于30℃的培养箱中,摇鼓120r/min过夜培养;取培养液300μL接种至300mL液体培养基中,160r/min培养至对数期,毕赤酵母和枯草芽孢杆菌需6小时,脱氮副球菌需24小时。10000r/min条件下离心10min收集菌体。
2.2臭气吸附效果测定
将畜禽粪便或厨余垃圾在一定的容器中发酵产生臭气,并用2L的集气袋分别进行收集;后将不同集气袋中的混合均匀至一个大的集气袋中,并测定记录各臭气参数(A);处理前猪粪的氨气、硫化氢、甲硫醇、挥发性以及综合恶臭气体产量分别为19.05ppm/克干粪、3.17ppm/克干粪、3.75ppm/克干粪、2.31ppm/克干粪和659.78/克干粪;未经处理的厨余垃圾氨气、硫化氢、甲硫醇、挥发性以及综合恶臭气体产量分别为3.66ppm/克干粪、0.03ppm/克干粪、1.98ppm/克干粪、1.72ppm/克干粪和97.10/克干垃圾。将2.1收集的菌体与水按照1:100配成菌液,以水为对照,测定臭气通过菌液后的各参数(B),从而得到各菌株对臭气指标的削减率和削减能力;削减率(Y)的计算公式:Y=(A-B)/A×100%;削减能力(N)的计算公式:N=Y/Y
2.3微生物组合效果实验
将毕赤酵母、脱氮副球菌和枯草芽孢杆菌按照菌体质量(湿基)比1:1:1、2:1:1、3:1:1、2:2:1、1:3:1、1:3:2、1:3:3进行组合,并与水按照1:100配成菌液,将集气袋中的臭气(浓度同前)1L通过500mL菌液,测量通过前后的臭气指标,并计算各组合的削减率和削减能力。
2.4生物炭与微生物菌剂的不同配比的效果实验
生物炭(干基质量)、微生物(湿基质量)、定殖液(mL)之间按照3:1:3、2:1:2、1:1:1、1:2:1、1:3:1按照实施例2的方法配成联合臭气吸附剂,并填充到内径为5cm的钢管中,两端用3层纱布包裹;将集气袋中的臭气(浓度同前)1L通入填入吸附剂的钢管中,记录臭气通入前后数量的变化,并计算臭气削减率。
2.5数据处理与分析
所得数据使用IBM SPSS Statistics 25、Excel 2016、Origin 2018软件进行统计分析;使用Duncan检验不同处理间的显著性差异,α=0.05。
3、实验结果
3.1三种微生物的臭气吸附效果
研究选取了植物乳酸菌、毕赤酵母(GDMCC NO:61876)、枯草芽孢杆菌(GDMCC NO:61878)、脱氮副球菌(GDMCC NO:61875)、酿酒酵母、地衣芽孢杆菌等6株菌,并以水为对照,结果发现选择的毕赤酵母、脱氮副球菌、枯草芽孢杆菌对氨气、硫化氢和综合恶臭均具有较高的削减率(图3),其中氨气的削减率分别为85.91%、68.03%和69.69%,削减能力分别为2.35、1.88、1.91。选择的枯草芽孢杆菌硫化氢去除能力最强,硫化氢削减率达到90.80%,削减能力为1.83;毕赤酵母和脱氮副球菌的硫化氢削减率也分别达到了89.8%和81.48%,削减能力为1.81和1.65。选择的毕赤酵母、枯草芽孢杆菌和脱氮副球菌对综合恶臭去削减率分别达到了90.01%、72.9%和72.2%,削减能力分别为3.42、2.77和2.73;可见本发明所述的硝化细菌、酵母菌和腐熟菌具有良好的去除恶臭的效果。
3.2微生物配比对臭气吸附效果的影响
将毕赤酵母、脱氮副球菌和枯草芽孢杆菌按照菌体质量(湿基)比1:1:1、2:1:1、3:1:1、2:2:1、1:3:1、1:3:2、1:3:3进行组合,并与水按照1:100配成菌液,将集气袋中的臭气通过菌液,结果发现本发明所述的三株菌对臭气具有很高的吸附去除能力,且削减具有互补性,效率很高。对于畜禽粪便发酵产生的恶臭气体,本发明所述的范围均具有良好的臭气吸附效果,特别是毕赤酵母、枯草芽孢杆菌以及脱氮副球菌的菌体质量比为2:2:1的臭气吸附效果明显好于其他配比(图4,P<0.05);而对于吸附厨余垃圾发酵产生的臭气时,当三者的质量调整为3:1:1具有最好的效果。
3.3定殖液对臭气吸附微生物组合的影响
通过图5可见,臭气吸附微生物在生物炭的固定时,每克生物炭加入1mL定殖液后或者不加定殖液,30℃孵育30小时的微生物群落的变化情况,结果发现定殖液加入后6小时内增加了4.2倍,而未加入定殖液的仅增加了0.2倍,且在整个观察期内,未加定殖液处理菌落数增加不明显(图5),可见本发明所述的定殖液可以促进微生物的增加。
3.4生物炭微生物菌剂配比对臭气吸附效果的影响
生物炭(干基质量)、微生物(湿基质量)、定殖液(mL)之间按照3:1:3、2:1:2、1:1:1、1:2:1、1:3:1配成联合臭气吸附剂,并填充到内径为5cm的钢管中,结果如图6所示,发现三者的比例为1:2:1时,氨气、硫化氢及综合恶臭的去除率显著高于3:1:3、2:1:2和1:1:1;而1:2:1与1:3:1之间无显著性差异,从经济性考虑,1:2:1为最佳配比。
实施例4:猪粪臭味的吸附
将毕赤酵母、枯草芽孢杆菌以及脱氮副球菌按照菌体质量2:2:1进行配比,并按照每克生物炭与微生物组合2g(湿基)及定殖液1mL混合均匀,并在30℃培养箱孵育24小时后,作为填料填入钢管,接入华日现代农场臭气抽排***,用于生猪养殖场已有臭味的吸附,结果发现粪便臭味未处理前,猪粪氨气、硫化氢及综合恶臭气体产量分别为19.05ppm/克干粪、3.17ppm/克干粪和659.78/克干粪。经抽排吸附后,氨气、硫化氢及综合恶臭均降低了90%以上,极大地净化了养殖环境,并降低了对周围居民的不良影响。
实施例5:食堂剩菜臭味的吸附
在本次测试中,分别在三个体积相同的塑料瓶(编号分别为#1、#2、#3)中放入了2kg等量的混匀食堂剩余饭菜,封闭瓶口,使瓶子在35℃下进行发酵,积累臭味。
在半个月后打开#1、#2两瓶,两瓶内均有恶臭气味。将#1瓶连接填充有联合臭气吸附剂的钢管;填充的吸附剂组成为生物炭(干基质量)、微生物(湿基质量)、定殖液(mL)之间按照1:2:1配比,微生物组合中毕赤酵母、枯草芽孢杆菌以及脱氮副球菌的菌体质量比为3:1:1。在随后的24小时时,#1瓶的瓶内臭味明显变淡,且外排气体也没有明显臭味;2号瓶内恶臭未见明显变化。将#1继续连结填充臭气吸附剂的钢管,每天定时抽排10分钟;#2瓶封口,继续放置。
在一个月后,打开三个瓶子,将#1、#2、#3臭味作对比。#1瓶内的氨气、硫化氢及综合恶臭等各臭味指标较#2、#3两瓶均低95%以上,而#2、#3两瓶臭味指标间无明显差异。通过本次实验,说明了本微生物组合与生物炭联合吸附剂对臭味有明显的吸附作用,且效果比较持久。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
序列表
<110> 南京农业大学
<120> 末端高效吸附恶臭气体的微生物组合、强化定殖及应用
<160> 3
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 448
<212> DNA
<213> 毕赤酵母(Pichia kudriavzevii)
<400> 1
gtgagcggaa cgaaaacaac aacacctaaa atgtggaata tagcatatag tcgacaagag 60
aaatctacga aaaacaaaca aaactttcaa caacggatct cttggttctc gcatcgatga 120
agagcgcagc gaaatgcgat acctagtgtg aattgcagcc atcgtgaatc atcgagttct 180
tgaacgcaca ttgcgcccct cggcattccg gggggcatgc ctgtttgagc gtcgtttcca 240
tcttgcgcgt gcgcagagtt gggggagcgg agcggacgac gtgtaaagag cgtcggagct 300
gcgactcgcc tgaaagggag cgaagctggc cgagcgaact agactttttt tcagggacgc 360
ttggcggccg agagcgagtg ttgcgagaca acaaaaagct cgacctcaaa tcaggtagga 420
atacccgctg aacttaagca tatcaaaa 448
<210> 2
<211> 1381
<212> DNA
<213> 枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)
<400> 2
ggacagatgg gagcttgctc cctgatgtta gcggcggacg ggtgagtaac acgtgggtaa 60
cctgcctgta agactgggat aactccggga aaccggggct aataccggat ggttgtctga 120
accgcatggt tcagacataa aaggtggctt cggctaccac ttacagatgg acccgcggcg 180
cattagctag ttggtgaggt aacggctcac caaggcgacg atgcgtagcc gacctgagag 240
ggtgatcggc cacactggga ctgagacacg gcccagactc ctacgggagg cagcagtagg 300
gaatcttccg caatggacga aagtctgacg gagcaacgcc gcgtgagtga tgaaggtttt 360
cggatcgtaa agctctgttg ttagggaaga acaagtgccg ttcaaatagg gcggcacctt 420
gacggtacct aaccagaaag ccacggctaa ctacgtgcca gcagccgcgg taatacgtag 480
gtggcaagcg ttgtccggaa ttattgggcg taaagggctc gcaggcggtt tcttaagtct 540
gatgtgaaag cccccggctc aaccggggag ggtcattgga aactggggaa cttgagtgca 600
gaagaggaga gtggaattcc acgtgtagcg gtgaaatgcg tagagatgtg gaggaacacc 660
agtggcgaag gcgactctct ggtctgtaac tgacgctgag gagcgaaagc gtggggagcg 720
aacaggatta gataccctgg tagtccacgc cgtaaacgat gagtgctaag tgttaggggg 780
tttccgcccc ttagtgctgc agctaacgca ttaagcactc cgcctgggga gtacggtcgc 840
aagactgaaa ctcaaaggaa ttgacggggg cccgcacaag cggtggagca tgtggtttaa 900
ttcgaagcaa cgcgaagaac cttaccaggt cttgacatcc tctgacaatc ctagagatag 960
gacgtcccct tcgggggcag agtgacaggt ggtgcatggt tgtcgtcagc tcgtgtcgtg 1020
agatgttggg ttaagtcccg caacgagcgc aacccttgat cttagttgcc agcattcagt 1080
tgggcactct aaggtgactg ccggtgacaa accggaggaa ggtggggatg acgtcaaatc 1140
atcatgcccc ttatgacctg ggctacacac gtgctacaat ggacagaaca aagggcagcg 1200
aaaccgcgag gttaagccaa tcccacaaat ctgttctcag ttcggatcgc agtctgcaac 1260
tcgactgcgt gaagctggaa tcgctagtaa tcgcggatca gcatgccgcg gtgaatacgt 1320
tcccgggcct tgtacacacc gcccgtcaca ccacgagagt ttgtaacacc cgaagtcggt 1380
g 1381
<210> 3
<211> 1285
<212> DNA
<213> 脱氮副球菌(Paracoccus denitrificans)
<400> 3
aacccttggg ggttagcggc ggacgggtga gtaacgcgtg ggaatatgcc ctttgctacg 60
gaatagcccc gggagactgg gattaatacc gtatacgccc tttgggggag agatttatcg 120
gcaaaggatt agcccgcgtt ggattaggta gttggcgggg taatggccta ccaagccgac 180
gatccatagc tggtttgaga ggatgatcac ccacactggg actgagacac ggcccagact 240
cctacgggag gcagtggggg ggaatcttag acaatggggg caaccctgat ctagccatgc 300
cgcgtgagtg atgaaggccc tagggttgta aagctctttc agctgggaag ataatgacgg 360
taccagcaaa agaagccccg gctaactccg tgccagcagc cgcggtaata cggagggggc 420
tagcgttgtt cggaattact gggcgtaaag cgcacgtagg cggaccggaa agttgggggt 480
gaaatcccgg ggctcaacct cggaactgcc ttcaaaacta tcggtctgga gttcgagaga 540
ggtgagtgga attccgagtg tagaggtgaa attcgtagat attcggagga acaccagtgg 600
cgaaggcggc tcactggctc gatactgacg ctgaggtgcg aaagcgtggg gagcaaacag 660
gattagatac cctggtagtc cacgccgtaa acgatgaatg ccagtcgtcg ggcagcatgc 720
cgttcggtga cacacctaac ggattaagca ttccgcctgg ggagtacggt cgcaagatta 780
aaactcaaag gaattggcgg ggggccgcac aagcggtgga gcatgtggtt taattcgaag 840
ctacgcgcag aaccttacca tcccttgaca tcgcaggccc gctccagaga tggagttttg 900
ttgtaagagg cctgtggtca ggtggtgcat ggctgtcgtc agctcgtgtc gtgagatgtt 960
cggttaagtc ctgcaacgag cgcacccccc actgttagtt gccagcattt ggttgggcac 1020
tataagagaa ctgccgatga taagtcggag gaaggtgtgg atgacgtcaa gtcctcatgg 1080
cccttacggg ttgggctaca cacgtgctac aatggtggtg acagtgggtt aatccccaaa 1140
agccatctca gttcggattg gggtctgcaa ctcgacccca tgaagttgga atcgctagta 1200
atcgcggaac agcatgccgc ggtgaatacg ttcccgggcc ctgtacacac cccccgtcac 1260
accacgggag ttgggtctac cccac 1285

Claims (10)

1.一种末端高效吸附恶臭气体的微生物组合,其特征在于,所述微生物组合包括毕赤酵母、枯草芽孢杆菌或脱氮副球菌中的一种或几种;当为三者组合时,所述毕赤酵母、枯草芽孢杆菌和脱氮副球菌的菌体质量比为(1~3):(1~3):(1~3);所述毕赤酵母为Pichiakudriavzevii NAU-OR2,保藏编号GDMCC NO:61876,枯草芽孢杆菌为Bacillus subtilisNAU-OR4,保藏编号GDMCC NO:61878,脱氮副球菌为Paracoccus denitrificans NAU-OR1,保藏编号GDMCC No:61875。
2.根据权利要求1所述的微生物组合,其特征在于,所述毕赤酵母、枯草芽孢杆菌和脱氮副球菌的菌体质量比为(1~2):(2~3):(1~3)。
3.一种除臭菌剂,其特征在于,所述菌剂为将权利要求1所述的微生物组合、生物炭和定殖液混合均匀,28~32℃孵育20~25小时。
4.根据权利要求3所述的除臭菌剂,其特征在于,生物炭、微生物组合和定殖液的用量比为1g:(2~3)g:(0.5~1.5)ml;优选的,生物炭、微生物组合和定殖液的用量比为1g:2g:1ml。
5.根据权利要求3所述的除臭菌剂,其特征在于,定殖液的配比为:磷酸二氢钾0.5~1.5g/L、磷酸氢二钠0.5~1.5g/L、氯化钙0.05~0.15g/L、氯化铵0.5~1.5g/L、可溶性淀粉0..5~1.5g/L、硫酸锌0.005~0.015g/L、硫酸铜0.005~0.015g/L、七水硫酸镁0.05~0.07g/L,pH为6~8。
6.权利要求1或2所述的微生物组合,或者权利要求3~5任一项所述的除臭菌剂在处理生物质发酵产的恶臭气体的中的应用。
7.根据权利要求6所述的应用,其特征在于,所述的生物质为畜禽粪便或厨余垃圾;所述的恶臭气体为氨气、硫化氢、硫醇、硫醚、挥发性有机物或综合恶臭气体中的一种或几种。
8.根据权利要求7所述的应用,其特征在于,当生物质为畜禽粪便时,所述毕赤酵母、枯草芽孢杆菌以及脱氮副球菌的菌体质量比为2:2:1。
9.根据权利要求7所述的应用,其特征在于,当生物质为厨余垃圾时,所述毕赤酵母、枯草芽孢杆菌以及脱氮副球菌的菌体质量比为3:1:1。
10.根据权利要求6~9任一项所述的应用,其特征在于,所述应用是将恶臭气体通过含有微生物组合或抑臭菌剂的载体中,优选的,所述载体为含有微生物组合的液体,或者为装有抑臭菌剂的管状容器。
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