CN113215315A - 一种h1n1禽流感病毒检测试剂盒 - Google Patents

一种h1n1禽流感病毒检测试剂盒 Download PDF

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CN113215315A
CN113215315A CN202110524904.4A CN202110524904A CN113215315A CN 113215315 A CN113215315 A CN 113215315A CN 202110524904 A CN202110524904 A CN 202110524904A CN 113215315 A CN113215315 A CN 113215315A
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    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
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Abstract

本发明涉及一种H1N1禽流感病毒检测试剂盒,所述试剂盒包括:10μM H1引物对、10μM N1引物对、10μM H1探针、10μM N1探针、5×TaqMan探针荧光定量PCR反应预混液、50×Rox dye、超纯水、2.5mM dNTP Mix、5×RT Buffer、RNase‑Free Water、SuperRT(200U/μl)、阳性对照模板、阴性对照,所述的阳性对照模板为含有H1、N1序列的线性质粒,所述的阴性对照为PBS,本发明的有益效果是提供了一种快速、准确检测H1N1禽流感病毒的试剂盒。

Description

一种H1N1禽流感病毒检测试剂盒
技术领域
本发明属于生物技术领域,具体涉及一种H1N1禽流感病毒检测试剂盒。
背景技术
禽流感病毒(Avian influenza virus,AIV)属于A型流感病毒,主要通过呼吸道和消化道传播,可以感染禽类、哺乳动物甚至人,并且具有高度传染性的急性综合症,1918年H1N1亚型病毒导致了“西班牙人流感”,1977年H1N1亚型病毒再次导致了“俄罗斯流感”,近年来,H1N1包含有猪流感、禽流感和人流感3种流感病毒的基因片段,病毒感染能力和重症程度加强,感染甲型H1N1流感病毒后的早期临床症状与流感类似,但甲型H1N1流感病情进展迅速,严重者可出现呼吸衰竭、多器官损伤,甚至死亡,最新疫情突出特点是重症和死亡病例数量显著增加。因此,研发快速、准确检测H1N1禽流感病毒的试剂盒很有必要。
发明内容
本发明的目的是提供一种能快速、准确检测H1N1禽流感病毒的试剂盒。
为达到上述目的,本发明通过以下技术方案实现:
本申请一方面公开了一种用于H1N1禽流感病毒检测的引物序列,H1上游引物为Seq ID No.1所示序列,H1下游引物为Seq ID No.2所示序列,H1探针为Seq ID No.3所示序列,N1上游引物为Seq ID No.4所示序列,N1下游引物为Seq ID No.5所示序列,N1探针为Seq ID No.6所示序列。
本申请的另一方面公开了用于H1N1禽流感病毒检测的试剂盒组成,该试剂盒包括:10μM H1引物对、10μM N1引物对、10μM H1探针、10μM N1探针、5×TaqMan探针荧光定量PCR反应预混液、50×Rox dye、超纯水、2.5mM dNTP Mix、5×RT Buffer、RNase-FreeWater、SuperRT(200U/μ1)、阳性对照模板、阴性对照,所述的阳性对照模板为含有H1、N1序列的线性质粒,所述的阴性对照为PBS。
本申请的再一方面还公开了一种H1N1禽流感病毒的使用方法,包括以下步骤:
1.提取待测样品的基因组RNA;
2.将RNA反转录成cDNA,体系如下:
表1反转录体系
成分 20μl反应体系(μ1) 终浓度
2.5mM dNTP 4 500μM
H1、N1上游引物(10μM) 1 -
H1、N1下游引物(10μM) 1 -
RNA模板 x 0.25g/l
RNase-Free Water up to 20μl -
将上面配好的体系,70℃孵育10min,迅速冰浴2min,加入5×RT Buffer,轻轻吹打混匀,加入1μl SuperRT(200U/μl),轻轻吹打混匀,42℃孵育50min,85℃孵育5min,反应结束后,短暂离心,置于冰上冷却,或置于-20℃长期保存;
3.配制荧光定量PCR反应体系,体系如下:
表2荧光定量PCR反应体系
成分 体积(μl)
TaqMan探针荧光定量PCR反应预混液(5×) 4
Rox dye(50×) 0.4
H1、N1上游引物(10μM) 0.5
H1、N1下游引物(10μM) 0.5
H1探针(10μM) 0.5
N1探针(10μM) 0.5
超纯水 13.6
RT-PCR反应程序95℃10min,(95℃15s,60℃35s,72℃45s),40个循环,72℃10min;
用10倍梯度稀释含有H1、N1序列的线性质粒作为标准品,进行实时荧光定量PCR,反应体系和反应程序同上,根据Ct值与模板浓度的Log值构建标准曲线;
4.将待检样品的实时荧光定量PCR检测结果与标准曲线对照,得出检测结果。
本发明进一步对所建立的H1N1双重荧光定量RT-PCR检测试剂盒的特异性、敏感性和稳定性进行分析,其中:
特异性检测:本发明以H1N1、H1N5、H5N5、H5N6、H7N1、H8N4、H1N3、H11N9、H9N1、H3N2、H6N6、H9N6、H9N2 RNA为模板,用本试剂盒进行荧光定量RT-PCR检测。
敏感性检测:构建含有H1、N1序列的pcDNA3.1-H1-N1质粒,质粒用微量核酸定量仪NanoDrop进行定量,取10、102、103、104、105、106、107、108拷贝/μl的重组质粒作为标准品模板,分别加入到体系中进行扩增,根据Ct值与模板浓度的Log值构建标准曲线,用于计算本检测体系的最低检测限度。
稳定性检测:在同一次试验中,同一个PCR板中,按照10×梯度稀释,设置三个稀释梯度,对H1N1禽流感病毒阳性核酸进行双重实时荧光RT-PCR检测,每个样本做三个重复,另外在不同PCR板上重复三次,计算各个稀释度样品的三个重复反应所获得的Ct值的变异系数。
本发明的有益效果是:
提供了一种快速、准确检测H1N1禽流感病毒的试剂盒。
附图说明
图1 H1N1基因在FAM、HEX通道的扩增结果
图2 H1N5、H1N9基因在FAM通道的扩增结果
图3 H7N1、H9N1基因HEX通道的扩增结果
图4标准曲线
具体实施方式
下面通过实施例对本发明做进一步详细说明,实施例仅用来说明本发明,并不限制本发明的范围。
实施例1
1.主要试剂
H1N1、H1N5、H5N5、H5N6、H7N1、H8N4、H1N3、H11N9、H9N1、H3N2、H6N6、H9N6、H9N2基因来自广州出入境检验检疫局,SuperRT cDNA kit购自北京华越洋生物科技有限公司,TaqMan探针荧光定量PCR反应试剂盒购自上海康朗生物科技有限公司,In-Fusion HDCloning Kit购自宝日医生物技术(北京)有限公司,pcDNA3.1载体、大肠杆菌DH5α感受态细胞均购自赛默飞世尔科技公司;
2.主要仪器设备
Thermal Cycler Dice Real Time System TP800购自日本TaKaRa生物股份有限公司,XPR电子分析天平购自梅特勒-托利多上海有限公司,H2100R高速冷冻离心机购自湘仪离心机仪器有限公司,JH-D超纯水仪购自江辉环保科技有限公司,JC-CHP-80s水套式二氧化碳培养箱购自青岛聚创环保集团有限公司;
3.引物设计
从NCBI上查找H1N1禽流感病毒株的HA基因序列(CY257501.1,Seq ID No.7)、NA基因序列(CY257503.1,Seq ID No.8),利用Primer Epress 3.0.1软件,针对保守区设计特异性引物和TaqMan探针序列,H1上游引物为Seq ID No.1所示序列,H1下游引物为Seq IDNo.2所示序列,H1探针为Seq ID No.3所示序列,N1上游引物为Seq ID No.4所示序列,N1下游引物为Seq ID No.5所示序列,N1探针为Seq ID No.6所示序列,H1探针荧光发射基团为FAM,N1探针荧光发射基团为HEX,淬灭基团为BHQ-1;
4.样品RNA提取
①样本采集
活禽样品采集,取咽喉试子和泄殖腔试子,取咽喉试子时将试子深入喉头口及上颚裂来回刮取咽喉分泌液,取泄殖腔试子时将试子深入泄殖腔转一圈沾取粪便,然后将试子一起放入盛有2ml PBS的试管,充分洗涤试子,转入无菌离心管中备用;
新鲜肌肉或脏器,取待测样品2g于已洗净、灭菌并烘干的研钵中充分研磨,加10mlPBS混匀,取上清转入无菌离心管中备用;
血清、血浆或冷冻组织渗出液可直接取用;
分离后的样本在2-8℃条件下保存应不超过24h,-80℃以下可长期保存,但应避免反复冻融;
②在样本中,加入5-10倍体积Trizol液,混匀;
③室温放置5min,然后以每1ml Trizol液加入0.2ml的氯仿,盖紧离心管,剧烈摇荡离心管15s;
④取上层水相于一新的离心管,按每1ml Trizol液加入0.5ml异丙醇,室温放置10min,12000g离心10min;
⑤重复步骤四;
⑥小心弃去上清液,室温干燥5-10min;
⑦将RNA溶于水中,-20℃保存备用;
5.将RNA反转录成cDNA,体系如下:
表1反转录体系
成分 20μl反应体系(μl) 终浓度
2.5mM dNTP 4 500μM
H1、N1上游引物(10μM) 1 -
H1、N1下游引物(10μM) 1 -
RNA模板 x 0.25g/l
RNase-Free Water up to 20μl -
将上面配好的体系,70℃孵育10min,迅速冰浴2min,加入5×RT Buffer,轻轻吹打混匀,加入1μl SuperRT(200U/μl),轻轻吹打混匀,42℃孵育50min,85℃孵育5min,反应结束后,短暂离心,置于冰上冷却,或置于-20℃长期保存;
6.配制荧光定量PCR反应体系,体系如下:
表2荧光定量PCR反应体系
成分 体积(μl)
TaqMan探针荧光定量PCR反应预混液(5×) 4
Rox dye(50×) 0.4
H1、N1上游引物(10μM) 0.5
H1、N1下游引物(10μM) 0.5
H1探针(10μM) 0.5
N1探针(10μM) 0.5
超纯水 13.6
RT-PCR反应程序95℃10min,(95℃15s,60℃35s,72℃45s)40个循环,72℃10min;
7.阳性质粒构建
用针对H1N1禽流感病毒的H1基因、N1基因特异性引物分别进行普通PCR扩增,H1基因引物序列如SEQ ID NO.9、SEQ ID NO.10所示,N1基因引物序列如SEQ ID NO.11、SEQ IDNO.12所示,其扩增范围包括荧光定量RT-PCR扩增区域,将H1基因、N1基因PCR反应结束后,混合,加20μl Cloning Enhancer到PCR体系中,37℃孵育15min,80℃孵育15min,采用NotI、BamH I酶切pcDNA3.1质粒,酶切产物经过0.75%琼脂糖凝胶电泳后回收,溶于灭菌双蒸水中,将孵育后的PCR产物与纯化的线性载体混合均匀,加入In-Fusion酶,50℃反应15min,转化E.coli DH5a感受态细胞,将转化的感受态细胞涂于含有X-Gal和IPTG的琼脂平板,37℃培养12-16h,从平板上长出的蓝色、白色菌落中随机挑取3-4个白色菌落,提取质粒,用PCR反应液检测,扩增阳性的菌落,送生物公司测序,将鉴定序列正确的阳性菌落,用3-5ml液体LB培养基培养,37℃摇床振荡培养12-16h,提取质粒,使用BssH II酶切重组质粒,获得线性化质粒DNA,作为构建标准曲线的阳性质粒,命名为pcDNA3.1-H1-N1;
8.制作标准曲线
用10倍梯度稀释含有H1N1序列的线性质粒作为标准品,进行实时荧光定量PCR,反应体系和反应程序同步骤五,根据Ct值与模板浓度的Log值构建标准曲线,结果判定标准为:Ct值≤33,判定为阳性;Ct值≥35,判断为阴性;Ct值在33-35之间为可疑,重复一次,如果Ct值仍在33-35之间,则为阳性,每个样本设置三个重复;
9.将待检样品的实时荧光定量PCR检测结果与标准曲线对照,得出检测结果。
实施例2特异性验证
实验步骤同实施例1,分别以H1N1、H1N5、H5N5、H5N6、H7N1、H8N4、H1N3、H11N9、H9N1、H3N2、H6N6、H9N6、H9N2 RNA为模板,利用本试剂盒进行荧光定量RT-PCR扩增。
由图1可知,只有H1N1禽流感病毒核酸在FAM检测通道和HEX检测通道都出现相应的特异性荧光扩增曲线,由图2可知,H1N5、H1N3由于含有H1基因,因此在FAM检测通道出现扩增曲线,而HEX检测通道则无扩增曲线,由图3可知,H7N1、H9N1由于含有N1在HEX检测通道出现扩增曲线,而FAM检测通道则无扩增曲线,其他流感病毒两个荧光通道都无扩增曲线,说明该方法具有很强的特异性。
实施例3灵敏度验证
根据标准曲线,计算最低检测限度,实验结果表明,由pcDNA3.1-H1-N1阳性质粒构建的标准曲线的循环阈值(Ct值)与模板浓度Log值具有良好的线性关系,相关系数为0.998,根据多重荧光RT-PCR检测方法结果判定标准,灵敏度为90拷贝/μl。
实施例4稳定性验证
在同一次试验中,同一个PCR板中,按照10×梯度稀释,设置三个稀释梯度,对H1N1禽流感病毒阳性核酸进行双重实时荧光RT-PCR检测,检测方法同实施例1,每个样本做三个重复,(见表3)另外在不同PCR板上重复三次,计算各个稀释度样品的三个重复反应所获得的Ct值的变异系数(见表4)。
从试验结果可得,同一个PCR板中的变异系数在0.12-0.27%之间,不同PCR板的变异系数在0.26-0.45%之间,说明本方法双重RT-PCR检测方法误差小、重复性好,可对H1N1禽流感病毒进行稳定、可靠的检测。
表3 H1N1禽流感病毒双重荧光RT-PCR检测方法的批内重复结果
Figure BDA0003065297670000071
表4 H1N1禽流感病毒双重荧光RT-PCR检测方法的批间重复结果
Figure BDA0003065297670000072
序列表
<110> 广州博识生物科技有限公司
<120> 一种H1N1禽流感病毒检测试剂盒
<160> 12
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cagcggttta aacttaagct tgaacttcac caataggaca gctca 45

Claims (2)

1.一种H1N1禽流感病毒检测试剂盒,其特征在于,所述试剂盒包括:10μM H1引物对、10μM N1引物对、10μM H1探针、10μM N1探针、5×TaqMan探针荧光定量PCR反应预混液、50×Rox dye、超纯水、2.5mM dNTP Mix、5×RT Buffer、RNase-Fre e Water、SuperRT(200U/μl)、阳性对照模板、阴性对照,所述的阳性对照模板为含有H1、N1序列的线性质粒,所述的阴性对照为PBS,所述的H1引物对上游引物序列为:GACAAGCTCATGGCCCAATT,下游引物序列为:TCCAGCGTGAGGACATGCT,H1探针序列为:ACTCGAACAAAGGTGTAACG,N1引物对上游引物序列为:ACCAACT TTGCTGCTGGACAGT,下游引物序列为:AACAGGGCAGAGAGAGGAATTG,N1探针序列为:TTTCCGTGAAATTAGC。
2.根据权利要求1所述的一种H1N1禽流感病毒检测试剂盒的使用方法,其特征在于,包括以下步骤:
①提取样品RNA;
②将RNA反转录成cDNA;
③配制荧光定量PCR反应体系,体系如下:TaqMan探针荧光定量PCR反应预混液(5×)4μl、Rox dye(50×)0.4μl、H1、N1上游引物(10μM)0.5μl、H1、N1下游引物(10μM)0.5μl、H1探针(10μM)0.5μl、N1探针(10μM)0.5μl、超纯水13.6μl;
RT-PCR反应程序为95℃10min,(95℃15s,60℃35s,72℃45s)40个循环,72℃10min;
④制作标准曲线
用10倍梯度稀释含有H1、N1序列的线性质粒作为标准品,进行实时荧光定量PC R,反应体系和反应程序同上,根据Ct值与模板浓度的Log值构建标准曲线;
⑤将待检样品的实时荧光定量PCR检测结果与标准曲线对照,得出检测结果。
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