CN113151162A - 外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用 - Google Patents

外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用 Download PDF

Info

Publication number
CN113151162A
CN113151162A CN202110392687.8A CN202110392687A CN113151162A CN 113151162 A CN113151162 A CN 113151162A CN 202110392687 A CN202110392687 A CN 202110392687A CN 113151162 A CN113151162 A CN 113151162A
Authority
CN
China
Prior art keywords
mesenchymal stem
umbilical cord
human umbilical
cell
stem cell
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Pending
Application number
CN202110392687.8A
Other languages
English (en)
Inventor
刘小翠
蒙燕瑶
唐淑艳
许峻荣
雅思敏
杨景利
王进辉
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Guangdong Vitalife Biotechnology Co ltd
Original Assignee
Guangdong Vitalife Biotechnology Co ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Guangdong Vitalife Biotechnology Co ltd filed Critical Guangdong Vitalife Biotechnology Co ltd
Priority to CN202110392687.8A priority Critical patent/CN113151162A/zh
Publication of CN113151162A publication Critical patent/CN113151162A/zh
Priority to PCT/CN2021/123376 priority patent/WO2022217868A1/zh
Priority to US17/720,279 priority patent/US20220325247A1/en
Pending legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0652Cells of skeletal and connective tissues; Mesenchyme
    • C12N5/0662Stem cells
    • C12N5/0668Mesenchymal stem cells from other natural sources
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0681Cells of the genital tract; Non-germinal cells from gonads
    • C12N5/0682Cells of the female genital tract, e.g. endometrium; Non-germinal cells from ovaries, e.g. ovarian follicle cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0081Purging biological preparations of unwanted cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/02Atmosphere, e.g. low oxygen conditions
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/70Undefined extracts
    • C12N2500/80Undefined extracts from animals
    • C12N2500/84Undefined extracts from animals from mammals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/90Serum-free medium, which may still contain naturally-sourced components
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2500/00Specific components of cell culture medium
    • C12N2500/99Serum-free medium
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00Coculture with; Conditioned medium produced by
    • C12N2502/02Coculture with; Conditioned medium produced by embryonic cells
    • C12N2502/025Coculture with; Conditioned medium produced by embryonic cells extra-embryonic cells, e.g. amniotic epithelium, placental cells, Wharton's jelly
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00Coculture with; Conditioned medium produced by
    • C12N2502/13Coculture with; Conditioned medium produced by connective tissue cells; generic mesenchyme cells, e.g. so-called "embryonic fibroblasts"
    • C12N2502/1352Mesenchymal stem cells
    • C12N2502/137Blood-borne mesenchymal stem cells, e.g. Msc from umbilical cord blood
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00Coculture with; Conditioned medium produced by
    • C12N2502/13Coculture with; Conditioned medium produced by connective tissue cells; generic mesenchyme cells, e.g. so-called "embryonic fibroblasts"
    • C12N2502/1352Mesenchymal stem cells
    • C12N2502/1388Mesenchymal stem cells from other natural sources
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2509/00Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2509/00Methods for the dissociation of cells, e.g. specific use of enzymes
    • C12N2509/10Mechanical dissociation

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Developmental Biology & Embryology (AREA)
  • Rheumatology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Reproductive Health (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

本发明公开了人脐带间充质干细胞外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用,及一种促进壁蜕膜间充质干细胞生长的方法。本发明将人脐带间充质干细胞外泌体与PDB‑MSCs共同培养后,PDB‑MSCs的细胞增殖能力强、细胞形态良好、细胞活力强,即本发明的人脐带间充质干细胞外泌体可提高PDB‑MSCs的质量,有效提高PDB‑MSCs分泌细胞因子VEGF和SCF的能力,从而可解决PDB‑MSCs多次传代增殖能力下降、细胞活力差等问题,进而有效有利于PDB‑MSCs的大规模培养和临床应用。

Description

外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用
技术领域
本发明涉及生物技术领域,尤其涉及一种外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用,以及一种促进壁蜕膜间充质干细胞生长的方法。
背景技术
壁蜕膜间充质干细胞(Parietal decidual basalis-mesenchymal stem cells,PDB-MSCs)具有间充质干细胞的多向分化潜能、低免疫原性等共同特点。与其它来源的间充质干细胞相比,PDB-MSCs来源于母体,和母体有更好的相容性,纯度更均一,成脂分化能力比围产期其它组织来源的间充质干细胞强;又有报道表明,PDB-MSCs比脐带间充质干细胞分泌更多的血管内皮生长因子(VEGF)和干细胞生长因子(SCF),表明PDB-MSCs具有促进血管再生和细胞***等功能,证明PDB-MSCs对组织损伤修复有重要作用。PDB-MSCs在干细胞临床应用中将有较好前景。
但目前,PDB-MSCs的应用还面临一些问题:现有方法和技术能分离纯度较高的PDB-MSCs,但在传代后PDB-MSCs易衰老,细胞扁平,增殖缓慢或停止增殖,失去分化能力等,因此需要新的方法或技术以有效保持PDB-MSCs的形态,防止细胞老化,维持细胞在多次传代后的增殖活力和分化能力。
外泌体是一种直径为30~100nm的脂质栓分子囊泡,包括肿瘤细胞在内,几乎所有类型的细胞都可以产生并释放外泌体。外泌体内含有细胞特异性表达的核酸、脂质、蛋白质等,可通过胞膜融合的方式将生物分子传递给与外环境接触的靶细胞,有促进靶细胞增殖的作用。
公开号为CN105349487的专利公开了一种基于外泌体的促人骨髓间充质干细胞增殖的方法,采用第一代或第二代的人脐带间充质干细胞分泌的外泌体来促进人骨髓间充质干细胞增殖,外泌体的含量和来源受到较大的限制。此外,外泌体促进人骨髓间充质干细胞的培养基,含有质量百分比5%UltraGRO和含质量百分比0.032%医用肝素钠的α-MEM基础培养基,该培养基配方复杂,难以重现试验效果。其次,促进间充质干细胞增殖实验进行放大培养时,操作较为繁琐。
发明内容
本发明所要解决的技术问题在于,提供了人脐带间充质干细胞外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用。
本发明还要解决的技术问题在于,提供了一种促进壁蜕膜间充质干细胞生长的方法,有效促进PDB-MSCs的增殖和缩短细胞倍增时间,增加细胞周期S期的比例,提高PDB-MSCs的质量,有效提高其分泌细胞因子VEGF和SCF的能力,有利于PDB-MSCs的大规模培养和临床应用。
为了解决上述技术问题,本发明提供了人脐带间充质干细胞外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用。
作为上述方案的改进,所述人脐带间充质干细胞外泌体是由P5代人脐带间充质干细胞分泌的。
作为上述方案的改进,所述人脐带间充质干细胞外泌体的制备方法,包括:
S1、将P4代的人脐带间充质干细胞按9000~12000个/cm2的浓度接种于培养瓶中,加入20~30ml无血清增殖培养基进行培养;
S2、培养至90%融合度时,收集上清液,得到第一上清液;
S3、将第一上清液离心,收集上清液,得到第二上清液;
S4、将第二上清液过滤,得到滤渣,将滤渣离心并收集底部沉淀,用0.8~1.5mlPBS重悬沉淀,最后通过过滤,滤渣即为人脐带间充质干细胞外泌体。
作为上述方案的改进,所述P4代人脐带间充质干细胞的制备方法包括:
S11、用组织保护液清洗脐带组织表面血液,去除表皮和血管组织,取出华通胶,清洗后剪碎成1~2mm3碎块,采用组织贴壁法接种培养;
S2、原代细胞培养至70%融合度时进行传代培养,培养至P4代。
作为上述方案的改进,步骤S12中,每代细胞增殖融合大于80%后,采用PBS缓冲液洗涤细胞表面至少2次,用胰酶消化4~7min,加入培养基终止消化,过滤,离心,细胞培养基重悬沉淀,再次传代,直至培养至P4代。
作为上述方案的改进,所述胰酶为20~30%的Tryple-EDTA酶。
作为上述方案的改进,步骤S11中,所述组织保护液由0.5~3ml生理盐水、20~30μg硫酸庆大霉素、3~6μg两性霉素B制成。
相应地,本发明还提供了一种促进壁蜕膜间充质干细胞生长的方法,包括:
A、制备含有外泌体的细胞培养基,将上述的人脐带间充质干细胞外泌体以浓度10~30μg/ml加入到间充质干细胞无血清培养基中;
B、将壁蜕膜间充质干细胞按照每孔1.5×103~2.5×103个的浓度接种于细胞培养板,并加入含有外泌体的细胞培养基;
C、将细胞培养板置于培养箱中培养,其中,培养箱内的培养温度为35~40℃,CO2浓度为4%~7%。
作为上述方案的改进,步骤B中,P12代的壁蜕膜间充质干细胞种于细胞培养板。
作为上述方案的改进,步骤A中,将人脐带间充质干细胞外泌体以浓度20μg/ml加入到间充质干细胞无血清培养基中。
实施本发明,具有如下有益效果:
1、本发明提供的人脐带间充质干细胞外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用,尚未被文献及专利公开。
2、本发明采用P5代人脐带间充质干细胞来提取外泌体,不仅拓宽外泌体的提取条件,获得更多的外泌体,且P5代人脐带间充质干细胞的外泌体质量与P2人脐带间充质干细胞的外泌体质量的质量相近。
3、本发明用由0.5~3ml生理盐水、20~30μg硫酸庆大霉素、3~6μg两性霉素B制成的组织保护液来提取人脐带间充质干细胞,可以提高人脐带间充质干细胞的提取效率,并或者质量更好的人脐带间充质干细胞。此外,本发明用20~30%的Tryple-EDTA酶来消化人脐带间充质干细胞,在传代培养时,可以保证人脐带间充质干细胞外泌体的质量。
4、本发明人脐带间充质干细胞外泌体的提取方法快速简便,提取率和纯度相对较高。
5、本发明的人脐带间充质干细胞外泌体可有效促进PDB-MSCs的增殖和缩短细胞倍增时间,增加细胞周期S期的比例。
6、本发明将人脐带间充质干细胞外泌体与PDB-MSCs共同培养后,PDB-MSCs的细胞增殖能力强、细胞形态良好、细胞活力强,即本发明的人脐带间充质干细胞外泌体可提高PDB-MSCs的质量,有效提高PDB-MSCs分泌细胞因子VEGF和SCF的能力,从而可解决PDB-MSCs多次传代增殖能力下降、细胞活力差等问题,进而有效有利于PDB-MSCs的大规模培养和临床应用。
附图说明
图1是本发明实施例1中P5代人脐带间充质干细胞的细胞外观图;
图2是本发明实施例1中人脐带间充质干细胞外泌体的扫描电子显微镜图;
图3是本发明实施例2不同浓度的人脐带间充质干细胞外泌体培养PDB-MSCs的细胞外观图;
图4是本发明实施例2不同浓度的人脐带间充质干细胞外泌体培养PDB-MSCs的细胞生长情曲线图;
图5是本发明实施例3不同浓度的人脐带间充质干细胞外泌体培养PDB-MSCs的细胞周期的各自细胞数量占比示意图;
图6是本发明实施例4加入不同浓度外泌体的细胞培养基培养P12代PDB-MSCs至对数生长期后VEGF分泌量的柱形图;
图7是实施例4加入不同浓度外泌体的细胞培养基培养P12代PDB-MSCs至对数生长期后SCF分泌量的柱形图。
具体实施方式
为使本发明的目的、技术方案和优点更加清楚,下面将结合附图对本发明作进一步地详细描述。仅此声明,本发明在文中出现或即将出现的上、下、左、右、前、后、内、外等方位用词,仅以本发明的附图为基准,其并不是对本发明的具体限定。
实施例1
人脐带间充质干细胞外泌体的制备方法,包含以下步骤:
S11、医院采集足月剖腹产胎儿胎盘组织,采集前签署客户知情同意书,组织于4℃冷藏无菌环境下运抵实验室,运输过程中使用组织保护液保护胎盘组织生物学活性,确保运输过程中无细菌和真菌污染;所述组织保护液由1ml生理盐水、25μg硫酸庆大霉素、5μg两性霉素B配制而成。
S12、实验室中用组织保护液清洗脐带组织表面血液,去除表皮和血管组织,取出华通胶,清洗后剪碎成1~2mm3碎块,采用组织贴壁法接种于T75培养瓶中培养,使用无血清且成分明确的选择培养基培养;
S13、原代细胞经14天培养长至70%融合度进行传代培养;按常规细胞培养操作,培养到P4代;(传代培养:待每代细胞增殖融合大于80%后,使用PBS缓冲液洗涤细胞表面2次,用胰酶消化5min,加入培养基终止消化,过滤,离心,细胞培养基重悬沉淀,进行计数和计算存活率,进行传代,胰酶为25%的Tryple-EDTA酶);
S14、选用生长状况良好的P4代脐带间充质干细胞,按10000/cm2密度接种于康宁T175培养瓶中,加入25ml无血清增殖培养基正常培养;
S16、培养至细胞生长至90%融合度时吸出上清液(吸上清液P5代人脐带间充质干细胞,见图1),得到第一上清液,用于分离外泌体,间充质干细胞正常传代培养,根据细胞生长状态决定培养代次;
S17、收集的第一上清液采用3000rpm转速离心20min去除细胞碎片,收集上清液,得到第二上清液;
S18、0.22μL滤膜过滤第二上清液,120000rpm转速离心120min,弃上清,用1ml PBS重悬沉淀,沉淀即为人脐带间充质干细胞外泌体,0.22μL滤膜过滤,4℃暂时保存,-80℃长期保存。
所述的人脐带间充质干细胞外泌体的扫描电子显微镜图如图2所示,所述的人脐带间充质干细胞外泌体为茶托型或一侧凹陷的半球形。
实施例2
促进壁蜕膜间充质干细胞增殖的方法,包括以下步骤:
S21、制备含有不同浓度外泌体的细胞培养基,将实施例1所制备得到的人脐带间充质干细胞外泌体以不同的浓度(0μg/ml、10μg/ml、20μg/ml和30μg/ml)分别加入到不同的间充质干细胞无血清培养基(友康恒业生物科技(北京)有限公司,产品货号:NC0103);
S22、P12代壁蜕膜间充质干细胞按照每孔2×103个细胞的浓度接种于96孔板,并分别加入步骤S21的含有外泌体的细胞培养基;
S13、放置在37℃、5%CO2饱和湿度二氧化碳培养箱中培养。
每组试验至少重复三次试验。
每隔24h收集PDB-MSCs并进行细胞计数,图3是实施例2不同浓度的人脐带间充质干细胞外泌体培养PDB-MSCs的细胞外观图;图4是实施例2不同浓度的人脐带间充质干细胞外泌体培养PDB-MSCs的细胞生长曲线图。
从图3和图4可知,加入不同浓度外泌体的细胞培养基培养PDB-MSCs,PDB-MSCs生长速度变快。
实施例3
促进壁蜕膜间充质干细胞增殖的方法,包括以下步骤:
S21、制备含有不同浓度外泌体的细胞培养基,将实施例1所制备得到的人脐带间充质干细胞外泌体以不同的浓度(0μg/ml、10μg/ml、20μg/ml和30μg/ml)分别加入到不同的间充质干细胞无血清培养基(友康恒业生物科技(北京)有限公司,产品货号:NC0103);
S22、P12代壁蜕膜间充质干细胞按照每孔4×105个细胞的浓度接种于96孔板,并分别加入步骤S21的含有外泌体的细胞培养基;
S13、放置在37℃、5%CO2饱和湿度二氧化碳培养箱中培养。
每组试验至少重复三次试验。
培养48h后收集PDB-MSCs,用细胞周期检测试剂盒(Solarbio公司)反应30min后,用流式细胞仪(Beckman公司)检测细胞周期G1期、G2期和S期。图5是实施例3不同浓度的人脐带间充质干细胞外泌体培养PDB-MSCs的细胞周期流式图。
从图5可知,加入不同浓度外泌体的细胞培养基培养PDB-MSCs,细胞周期S期的比例增加,并且,外泌体含量为的20μg/ml组的细胞S期比例要高于其它组,由此可知,添加人脐带间充质干细胞外泌体到培养基与PDB-MSCs共培养,可以加快PDB-MSCs的DNA复制,加快PDB-MSCs的增殖。
实施例4
促进壁蜕膜间充质干细胞增殖的方法,包括以下步骤:
S21、制备含有不同浓度外泌体的细胞培养基,将实施例1所制备得到的人脐带间充质干细胞外泌体以不同的浓度(0μg/ml、10μg/ml、20μg/ml和30μg/ml)分别加入到不同的间充质干细胞无血清培养基(友康恒业生物科技(北京)有限公司,产品货号:NC0103);
S22、P12代壁蜕膜间充质干细胞按照每孔2.5×105个细胞的浓度接种于96孔板,并分别加入步骤S21的含有外泌体的细胞培养基;
S13、放置在37℃、5%CO2饱和湿度二氧化碳培养箱中培养。
每组试验至少重复三次试验。
培养12代PDB-MSCs达到对数生长期,取上清液1ml,3000rpm离心20min后,分别用VEGF和SCF ELISA试剂盒(酶联生物)对细胞上清液VEGF和SCF含量进行检测。图6是实施例4加入不同浓度外泌体的细胞培养基培养P12代PDB-MSCs至对数生长期后VEGF分泌量的柱形图,图7是实施例4加入不同浓度外泌体的细胞培养基培养P12代PDB-MSCs至对数生长期后SCF分泌量的柱形图。
从图6和图7可知,加入不同浓度外泌体的细胞培养基培养PDB-MSCs,PDB-MSCs的VEGF和SCF分泌量增加,由此证明添加人脐带间充质干细胞外泌体可促进PDB-MSCs中两种因子的分泌。
以上所揭露的仅为本发明一种较佳实施例而已,当然不能以此来限定本发明之权利范围,因此依本发明权利要求所作的等同变化,仍属本发明所涵盖的范围。

Claims (10)

1.人脐带间充质干细胞外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用。
2.如权利要求1所述的人脐带间充质干细胞外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用,其特征在于,所述人脐带间充质干细胞外泌体是由P5代人脐带间充质干细胞分泌的。
3.如权利要求2所述的人脐带间充质干细胞外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用,其特征在于,所述人脐带间充质干细胞外泌体的制备方法,包括:
S1、将P4代的人脐带间充质干细胞按9000~12000个/cm2的浓度接种于培养瓶中,加入20~30ml无血清增殖培养基进行培养;
S2、培养至90%融合度时,收集上清液,得到第一上清液;
S3、将第一上清液离心,收集上清液,得到第二上清液;
S4、将第二上清液过滤,得到滤渣,将滤渣离心并收集底部沉淀,用0.8~1.5mlPBS重悬沉淀,最后通过过滤,滤渣即为人脐带间充质干细胞外泌体。
4.如权利要求3所述的人脐带间充质干细胞外泌体在制备壁蜕膜间充质干细胞生长试剂中的应用,其特征在于,所述P4代人脐带间充质干细胞的制备方法包括:
S11、用组织保护液清洗脐带组织表面血液,去除表皮和血管组织,取出华通胶,清洗后剪碎成1~2mm3碎块,采用组织贴壁法接种培养;
S2、原代细胞培养至70%融合度时进行传代培养,培养至P4代。
5.如权利要求4所述的人脐带间充质干细胞外泌体在制备壁蜕膜间充质干细胞生长试剂中的应用,其特征在于,步骤S12中,每代细胞增殖融合大于80%后,采用PBS缓冲液洗涤细胞表面至少2次,用胰酶消化4~7min,加入培养基终止消化,过滤,离心,细胞培养基重悬沉淀,再次传代,直至培养至P4代。
6.如权利要求5所述的人脐带间充质干细胞外泌体在制备壁蜕膜间充质干细胞生长试剂中的应用,其特征在于,所述胰酶为20~30%的Tryple-EDTA酶。
7.如权利要求4所述的人脐带间充质干细胞外泌体在制备壁蜕膜间充质干细胞生长试剂中的应用,其特征在于,步骤S11中,所述组织保护液由0.5~3ml生理盐水、20~30μg硫酸庆大霉素、3~6μg两性霉素B制成。
8.一种促进壁蜕膜间充质干细胞生长的方法,其特征在于,包括:
A、制备含有外泌体的细胞培养基,将权利要求1~7所述的人脐带间充质干细胞外泌体以浓度10~30μg/ml加入到间充质干细胞无血清培养基中;
B、将壁蜕膜间充质干细胞按照每孔1.5×103~2.5×103个的浓度接种于细胞培养板,并加入所述含有外泌体的细胞培养基;
C、将细胞培养板置于培养箱中培养,其中,培养箱内的培养温度为35~40℃,CO2浓度为4%~7%。
9.如权利要求8所述的促进壁蜕膜间充质干细胞生长的方法,其特征在于,步骤B中,P12代的壁蜕膜间充质干细胞种于细胞培养板。
10.如权利要求8所述的促进壁蜕膜间充质干细胞生长的方法,其特征在于,步骤A中,将人脐带间充质干细胞外泌体以浓度20μg/ml加入到间充质干细胞无血清培养基中。
CN202110392687.8A 2021-04-13 2021-04-13 外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用 Pending CN113151162A (zh)

Priority Applications (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202110392687.8A CN113151162A (zh) 2021-04-13 2021-04-13 外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用
PCT/CN2021/123376 WO2022217868A1 (zh) 2021-04-13 2021-10-12 外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用
US17/720,279 US20220325247A1 (en) 2021-04-13 2022-04-13 METHOD FOR PROMOTING GROWTH OF PARIETAL DECIDUAL BASALIS-MESENCHYMAL STEM CELLS (PDB-MSCs)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CN202110392687.8A CN113151162A (zh) 2021-04-13 2021-04-13 外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用

Publications (1)

Publication Number Publication Date
CN113151162A true CN113151162A (zh) 2021-07-23

Family

ID=76890085

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
CN202110392687.8A Pending CN113151162A (zh) 2021-04-13 2021-04-13 外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用

Country Status (3)

Country Link
US (1) US20220325247A1 (zh)
CN (1) CN113151162A (zh)
WO (1) WO2022217868A1 (zh)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113736730A (zh) * 2021-09-09 2021-12-03 天晴干细胞股份有限公司 一种培养脐带组织间充质细胞的方法
CN114540296A (zh) * 2022-03-22 2022-05-27 和携科技有限公司 一种复合外泌体的制备方法及其在定向增强血管生成能力方面的应用
CN114703132A (zh) * 2022-05-06 2022-07-05 深圳丹伦基因科技有限公司 一种细胞外囊泡在制备缓解iPSC-MSCs衰老培养基的应用
WO2022217868A1 (zh) * 2021-04-13 2022-10-20 广东唯泰生物科技有限公司 外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用
CN116515745A (zh) * 2023-04-27 2023-08-01 陕西朗泰生物科技有限公司 一种用于女性卵巢早衰生殖修复的干细胞制备方法

Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20110256159A1 (en) * 2008-09-02 2011-10-20 Moran Meiron Adherent cells from placenta tissue and use thereof in therapy
US20150125950A1 (en) * 2012-05-18 2015-05-07 Agency For Science, Technology And Research (A*Sta (A*Star) Umbilical cord mesenchymal stem cell exosomes
CN105349487A (zh) * 2015-11-16 2016-02-24 中国人民解放军第二军医大学 一种基于外泌体的促人骨髓间充质干细胞增殖的方法
CN109097326A (zh) * 2018-08-10 2018-12-28 广东唯泰生物科技有限公司 一种制备间充质干细胞外泌体的方法及其应用
CN109880797A (zh) * 2019-04-08 2019-06-14 济南磐升生物技术有限公司 一种制备人脐带间充质干细胞外泌体的方法
CN111088226A (zh) * 2019-12-30 2020-05-01 广东唯泰生物科技有限公司 一种胎盘间充质干细胞外泌体的制备和储存方法

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN107849535B (zh) * 2015-08-03 2022-11-22 国立大学法人大阪大学 源自间充质干细胞的外来体
CN106399247A (zh) * 2016-09-30 2017-02-15 广州赛莱拉干细胞科技股份有限公司 脐带间充质干细胞外泌体的用途
WO2022034355A1 (de) * 2020-08-11 2022-02-17 Quimex Verwaltungsgesellschaft Mbh Verfahren zur extraktion von exosomen
CN113151162A (zh) * 2021-04-13 2021-07-23 广东唯泰生物科技有限公司 外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用

Patent Citations (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20110256159A1 (en) * 2008-09-02 2011-10-20 Moran Meiron Adherent cells from placenta tissue and use thereof in therapy
US20150125950A1 (en) * 2012-05-18 2015-05-07 Agency For Science, Technology And Research (A*Sta (A*Star) Umbilical cord mesenchymal stem cell exosomes
CN105349487A (zh) * 2015-11-16 2016-02-24 中国人民解放军第二军医大学 一种基于外泌体的促人骨髓间充质干细胞增殖的方法
CN109097326A (zh) * 2018-08-10 2018-12-28 广东唯泰生物科技有限公司 一种制备间充质干细胞外泌体的方法及其应用
CN109880797A (zh) * 2019-04-08 2019-06-14 济南磐升生物技术有限公司 一种制备人脐带间充质干细胞外泌体的方法
CN111088226A (zh) * 2019-12-30 2020-05-01 广东唯泰生物科技有限公司 一种胎盘间充质干细胞外泌体的制备和储存方法

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
杨向荣等: "人脐带间充质干细胞来源外泌体的生物学特性研究", 《华中科技大学学报(医学版)》 *
肖漓等: "脐带间充质干细胞外泌体的分离和鉴定", 《中华细胞与干细胞杂志(电子版)》 *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2022217868A1 (zh) * 2021-04-13 2022-10-20 广东唯泰生物科技有限公司 外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用
CN113736730A (zh) * 2021-09-09 2021-12-03 天晴干细胞股份有限公司 一种培养脐带组织间充质细胞的方法
CN114540296A (zh) * 2022-03-22 2022-05-27 和携科技有限公司 一种复合外泌体的制备方法及其在定向增强血管生成能力方面的应用
CN114540296B (zh) * 2022-03-22 2023-11-24 和携科技有限公司 一种复合外泌体的制备方法及其在定向增强血管生成能力方面的应用
CN114703132A (zh) * 2022-05-06 2022-07-05 深圳丹伦基因科技有限公司 一种细胞外囊泡在制备缓解iPSC-MSCs衰老培养基的应用
CN116515745A (zh) * 2023-04-27 2023-08-01 陕西朗泰生物科技有限公司 一种用于女性卵巢早衰生殖修复的干细胞制备方法

Also Published As

Publication number Publication date
US20220325247A1 (en) 2022-10-13
WO2022217868A1 (zh) 2022-10-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN113151162A (zh) 外泌体在促进壁蜕膜间充质干细胞生长中的应用
CN106754674B (zh) 从人胎盘羊膜制备羊膜间充质干细胞的方法及其应用
CN110540959A (zh) 一种脐带间充质干细胞分离培养扩增方法
CN109234229B (zh) 从胎盘血管分离间充质干细胞的方法和所用消化酶组合物
WO2010040262A1 (zh) 分离动物胚胎间质性干细胞并提取其分泌物的方法
CN103422176A (zh) 人羊膜间充质干细胞库的构建方法
CN115058391B (zh) 一种低氧型脐带间充质干细胞的培养方法
CN115322964A (zh) 一种3d培养羊膜间充质干细胞种子库构建方法
CN109628388B (zh) 用消化酶组合物从胎盘血管分离间充质干细胞
CN109234230B (zh) 一种皮肤间充质干细胞的原代分离方法
CN111139221A (zh) 一种羊膜间充质干细胞的培养及冻存方法
CN110846273A (zh) 一种脂肪组织来源的间充质干细胞培养及三系分化诱导方法
CN111235100B (zh) 一种人脐带血间充质干细胞的培养方法
CN113913375A (zh) 一种人源胎盘来源间充质干细胞的优化培养基、试剂盒和培养方法
CN108034634B (zh) 一种从经血中分离宫内膜间充质干细胞的方法
CN114807031A (zh) 一种人外周血免疫细胞库和干细胞库的构建方法
WO2021197459A1 (zh) 从人经血中获得宫内膜间充质干细胞的方法
CN106676063A (zh) 一种人羊膜间充质干细胞的分离培养方法
CN110951683A (zh) 一种牙髓干细胞的制备方法
CN112574948A (zh) 一种人羊膜间充质干细胞的分离培养方法
CN114369569B (zh) 脐带沃顿胶间充质干细胞的分离方法
CN114561355B (zh) 一种脊髓瘢痕组织细胞急性快速分离方法
CN115141795B (zh) 一种皮肤干细胞制备方法
AU2021104393A4 (en) Method for sequential culture of human umbilical cord mesenchymal stem cells with triple mediums
CN116814533B (zh) 体外维持肺泡ⅱ型上皮细胞表型及功能的细胞培养基

Legal Events

Date Code Title Description
PB01 Publication
PB01 Publication
SE01 Entry into force of request for substantive examination
SE01 Entry into force of request for substantive examination