CN111888471A - 一种硫化铜光热响应局部释放体系及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一种硫化铜光热响应局部释放体系及其应用,属于医药技术领域。该释放体系为包载有硫化铜的红细胞,通过采用低渗‑重封闭法进行红细胞包载CuS,获得载药红细胞,然后将RGD修饰在载药红细胞表面,完成红细胞表面的修饰,使其具有靶向肿瘤部位的功能。本发明的释放体系制成的肿瘤治疗药物,能够主动靶向到肿瘤,并对980 nm激光响应,实现硫化铜快速释放,同时实现在肿瘤部位聚集,进一步提高硫化铜的光热治疗效果。
Description
技术领域
本发明属于医药技术领域,具体涉及一种硫化铜光热响应局部释放体系及其应用。
背景技术
光热疗法是利用具有较高光热转换效率的材料,将其注射入人体内部,并对激光响应,形成光热转化,提高肿瘤部位温度,并将肿瘤杀死的一种***的新方法,具有很大的发展潜力。该方法可以减少患者所经受的疼痛,治疗时间短(大约几分钟),治疗效果明显。
硫化铜(CuS)是一种光热转换材料,其结构具有增强光吸收能力的特性,可以大幅的提高激光的吸收效率,进而使光热转换能力得到很大的提高,具有成本低、毒性低、高热转换率的特点,在癌症治疗方面有重要的研究意义和广阔的应用前景。为了进一步提高肿瘤的光热治疗效果,虽然提高硫化铜的给药浓度是一个有效的途径,但也带来了副作用增加的风险。
发明内容
针对上述现有技术的不足,本发明提供了一种硫化铜光热响应局部释放体系及其应用。
为了实现上述目的,本发明采用以下技术方案:
一种硫化铜光热响应局部释放体系,该释放体系为包载有硫化铜的红细胞;在红细胞表面修饰有RGD。
上述体系的制备方法,包括以下步骤:
步骤1,采用低渗-重封闭法进行红细胞包载CuS,获得载药红细胞;
步骤2,将RGD修饰在载药红细胞表面,即得。
进一步地,步骤1中采用低渗-重封闭法进行红细胞包载CuS的具体过程如下:
a.纳米硫化铜的制备:以巯基乙酸为表面模板,氯化铜和硫代乙酰胺为反应物,在50℃的条件下保温2小时,合成硫化铜纳米粒子;
b.低渗:将红细胞重悬于硫化铜溶液中,红细胞与硫化铜溶液按1:1等比例混合,然后置于透析袋中,并置于低渗缓冲液中,4℃条件下放置24小时;
c.高渗:将透析袋从低渗溶液中转移到重密封高渗缓冲溶液中,在37℃下放置30分钟;
d.等渗:在PBS缓冲液中洗涤两次以除去未包封的硫化铜,最终获得包载有硫化铜的红细胞。
进一步地,步骤b中硫化铜溶液中硫化铜的浓度为5mg/mL,pH为7.4;步骤b中红细胞与低渗缓冲液的体积比为1:50,低渗缓冲液的组成为:15mM NaH2PO4·2H2O、15mMNaHCO3、2mM ATP、3mM还原型谷胱甘肽、20mM葡萄糖、5mM NaCl,72mOsm/Kg;步骤c中重封闭高渗缓冲溶液的组成为:250mM NaCl、12.5mM葡萄糖、12.5mM丙酮酸钠、12.5mM肌苷、12.5mMNaH2PO4·2H2O、0.63mM腺嘌呤、550mOsm/Kg。
进一步地,步骤2中将RGD修饰在载药红细胞表面的具体过程如下:
a.制备DSPE-PEG-biotin:将35mg DSPE-PEG-NH2和7mg NHS-biotin于5mL甲醇中反应2小时,然后用氮气吹干,再在去离子水中用3500D MWCO的透析袋透析,然后冷冻干燥;
b.将500μL红细胞重悬于4mL PBS中,并与0.5mg DSPE-PEG-biotin搅拌30分钟。将获得的红细胞-生物素RBC–biotin洗涤两次,重悬于4mL PBS中,连续搅拌加入1mg抗生物素蛋白溶液avidin,4℃反应60分钟,然后将RBC–biotin–avidin洗涤2次除去未结合的avidin;
c.制备生物素化的RGD:RGD和sulfo-NHS-LC-biotin混合反应;
d.将RBC–biotin–avidin和生物素化的RGD混合60分钟,PBS洗涤2次,4℃保存,即完成红细胞表面的修饰。
上述硫化铜光热响应局部释放体系在制备肿瘤治疗药物中的应用。
与现有技术相比,本发明具有以下优点:
1.CuS激光响应靶向释放:通过980nm激光照射肿瘤组织部位,红细胞破裂,CuS释放,激光照射CuS释放是研究成功的关键。将CuS的释放与980nm激光照射相关联,实现CuS释放使得肿瘤组织局部位置高热,实现光热治疗的结合。
2.提高生物相容性:红细胞具有良好的生物相容性,异于其他化学合成载体对动物体的危害,CuS被包载后,显著提高其生物相容性。
3.本发明通过运用980nm激光照射使得红细胞破裂,CuS释放,肿瘤局部高热,造成肿瘤细胞死亡,提高了光热治疗效果,有效抑制肿瘤生长。
4.光热疗法减少患者所经受的疼痛,治疗时间短(大约几分钟),治疗效果明显,材料无毒无害,对人体副作用小。
5.本发明的前期动物模拟实验研究结果,为CuS激光响应释放的光热治疗方法早日进入临床提供基础,也为更好抑制肿瘤生长等问题提供了一个新思路。
附图说明
图1中A为CuS@ER在体外980nm激光照射后CuS释放示意图;B为CuS@ER在体内980nm激光照射后CuS释放示意图。
图2为CuS@ER的表征及细胞毒性分析结果。其中:A为纳米CuS的TEM表征图;B为CuS@ER的SEM表征图;C为CuS@ER的紫外吸收分光光谱图;D为CuS@ER在不同浓度下的细胞毒性研究;
图3为CuS@ER在980nm激光照射后的考察结果。其中:A为激光照射时间对温度的影响;B为重复循环激光照射与CuS光热转化效率;C为激光照射前后的细胞形态;D为1分钟内CuS释放浓度变化。
图4为CuS@ER的活体成像及荧光强度分析结果。其中:A为尾静脉注射荧光标记的CuS@ER药物,激光照射后的小动物活体成像图;B为激光照射不同时间下对图(A)的肿瘤部位荧光强度分析;C为激光照射后肿瘤内Cu2+浓度与时间的关系;
图5为荷瘤小鼠肿瘤部位温度研究及肿瘤H&E染色分析。其中:A为激光(Laser)照射2分钟后荷瘤小鼠肿瘤部位温度监测图;B为不同激光照射时间对荷瘤小鼠肿瘤部位温度的影响;C为4组(PBS、Laser、CuS+Laser、CuS@ER+Laser)的肿瘤H&E病理染色图;
图6为小鼠尾静脉注射CuS@ER并激光照射后治疗28天的效果。其中:A为给药并激光照射治疗后28天时间内肿瘤体积大小的变化图;B为各组肿瘤消失情况;C为45天内荷瘤小鼠存活情况;D为给药并激光照射治疗28天时间,荷瘤小鼠体重的变化图。
图7为小鼠尾静脉注射CuS@ER并激光照射后治疗45天的效果。其中:A为治疗并观察45天后各组心肝脾肺肾组织的H&E病理染色图;B为荷瘤小鼠各项血液指标;C为荷瘤小鼠各项生化指标。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明进行详细说明。
实施例1
本发明提供了一种硫化铜光热响应局部释放体系(CuS@ER),该释放体系为包载有纳米硫化铜的红细胞,在红细胞表面修饰有生物素化的RGD。
首先采动物全血红细胞,经低渗-重封闭方法包封浓度为5mg/mL的CuS,形成载药红细胞(CuS@ER)。具体过程如下:
a.纳米CuS制备:以巯基乙酸作为表面模板,氯化铜和硫代乙酰胺为反应物,在50℃的条件下保温2小时,合成硫化铜纳米粒子;
b.低渗:将红细胞重悬于CuS溶液中,红细胞与CuS溶液按1:1等比例混合,而后置于透析袋中,并置于低渗缓冲液中,4℃条件下放置24小时;
c.高渗:将透析袋从低渗溶液中转移到重密封高渗缓冲溶液中,在37℃下放置30分钟;
d.等渗:在PBS缓冲液中洗涤两次以除去未包封的CuS,最终获得包载有CuS的红细胞(CuS@ER)。
所述步骤b中CuS溶液的浓度为5mg/mL,pH为7.4;所述步骤b中红细胞与低渗缓冲液的体积比为1:50,透析时间为24小时;所述低渗缓冲液采用15mM NaH2PO4·2H2O,15mMNaHCO3,2mM ATP,3mM还原型谷胱甘肽,20mM葡萄糖,5mM NaCl,72mOsm/Kg;所述步骤c中重封闭高渗缓冲溶液采用250mM NaCl,12.5mM葡萄糖,12.5mM丙酮酸钠,12.5mM肌苷,12.5mMNaH2PO4·2H2O,0.63mM腺嘌呤,550mOsm/Kg;所述步骤d中等渗缓冲溶液为PBS磷酸缓冲溶液。
然后在红细胞表面修饰有生物素化的RGD。具体过程如下:
a.制备DSPE-PEG-biotin:将35mg DSPE-PEG-NH2和7mg NHS-biotin于5mL甲醇中反应2小时,然后用氮气吹干,再在去离子水中用3500D MWCO的透析袋透析,然后冷冻干燥;
b.将500μL红细胞重悬于4mL PBS中,并与0.5mg DSPE-PEG-biotin搅拌30分钟。将获得的红细胞-生物素(RBC–biotin)洗涤两次,重悬于4mL PBS中,连续搅拌加入1mg抗生物素蛋白溶液(avidin),4℃反应60分钟,然后将RBC–biotin–avidin洗涤2次除去未结合的avidin;
c.制备生物素化的RGD(RGD为一种肿瘤新生血管靶向的肽):RGD和sulfo-NHS-LC-biotin混合反应;
d.将RBC–biotin–avidin和生物素化的RGD混合60分钟,PBS洗涤2次,4℃保存。即完成红细胞表面的修饰,使其具有靶向肿瘤部位的功能。
将上述硫化铜光热响应局部释放体系(CuS@ER),经静脉注射入体内,通过980nm激光照射肿瘤部位,靶向于肿瘤部位的CuS@ER受到响应,红细胞破裂,CuS释放,从而发挥治疗效果。所述激光照射时间为0-6分钟,选用激光照射波长为980nm,直接照射于肿瘤位置。
图1为体内外980nm激光照射后CuS释放过程。如图A所示,首先采动物全血红细胞,经低渗-重封闭方法包封浓度为5mg/mL的CuS,形成载药红细胞(CuS@ER),在980nm激光照射条件下,CuS自CuS@ER中释放。如图B所示,CuS@ER通过尾静脉注射进入小鼠体内,靶向抵达肿瘤部位,980nm激光照射荷瘤小鼠肿瘤位置,产生激光响应性,红细胞孔道打开,CuS释放,造成局部肿瘤位置高热,灼伤肿瘤细胞,从而达到光热***效果。
将得到的红细胞包载硫化铜(CuS@ER)进行表征及细胞毒性分析,结果如图2所示。图2中,A为纳米CuS的透射电镜图(TEM)、B为CuS@ER的扫描电镜图(SEM)、C为CuS@ER的紫外分光光谱图,均可以看出CuS被成功包载于ER中;D为CuS及CuS@ER在浓度分别为5mg/mL、10mg/mL、15mg/mL、20mg/mL时的细胞毒性分析,可以看出CuS溶液浓度越高对细胞的毒性越大,而CuS经红细胞包载形成CuS@ER后,浓度的增加对细胞毒性研究结果几乎无影响,表明CuS@ER无细胞毒性。
考察红细胞包载硫化铜(CuS@ER)在980nm激光照射后,其温度、释放率、细胞形态、释放浓度的影响,结果如图3所示。图3中,A为激光照射6分钟测量荷瘤小鼠肿瘤部位温度变化情况,结果表明,前2分钟CuS@ER组温度上升速度较快,2分钟后温度趋于稳定几乎不再上升,证明激光2分钟为较优时间;B为激光照射1次2分钟后CuS的光热效率可达65%,且可循环控制;C为激光照射前后细胞形态变化图,从图中可以看出照射前细胞形态完好,照射后细胞出现死亡,细胞皱缩失去原有的形态,表明激光照射会引起红细胞的破裂,释放CuS;D为1分钟内CuS的释放浓度变化,可以看出,30秒时间内释放速率较快,呈持续快速释放状态,30秒后浓度几乎不增加,趋于稳定状态。
实施例2
体内释药机制研究
1.活体成像及荧光强度分析研究
如图4所示,A为尾静脉分别注射单纯CuS药物及CuS@ER混合药物后,980nm激光照射2分钟,进行活体成像分析,从图中可以直观看出,CuS@ER组的荧光强度显著强于单纯CuS组,表明以红细胞为载体的CuS@ER比单纯CuS药物对激光有更好的响应;B为对不同时间条件下对小动物活体成像的荧光强度分析,可以看出CuS@ER组的荧光强度明显高于CuS组,且激光照射2分钟为较优时间选择,2分钟后荧光强度趋于稳定,表明2分钟后CuS释放率下降;C为给药及激光照射治疗结束后的30分钟时间内肿瘤内Cu2+变化情况,可以看出,注射CuS@ER的小鼠体内的Cu2+远远大于注射单纯CuS药物的,表明通过红细胞对CuS包载后,CuS可以更好靶向于肿瘤部位且进行缓慢释放。
2.荷瘤小鼠肿瘤部位温度研究及肿瘤H&E染色分析
如图5所示,A为激光照射2分钟后荷瘤小鼠温度监测分析结果;B为激光照射持续时间对肿瘤部位温度的影响,激光照射时间越长温度越高,但激光照射2分钟后,温度上升趋势不显著,温度趋于稳定;C为各组H&E染色结果,观察到CuS@ER+Laser组中细胞的凋亡显著多于对照组及Laser组、CuS+Laser组,表明能够有效遏制肿瘤细胞的生长。
3.动物实验
在小鼠尾静脉注射CuS@ER溶液后,经980nm激光照射2分钟,红细胞破裂孔道打开,CuS释放,每3天给药并激光照射1次,连续治疗5次。
如图6所示,A、B、D分别为经过28天治疗和观察,CuS@ER+Laser组肿瘤生长情况较对照组明显得到抑制,表明能够有效遏制肿瘤的生长;C为连续观察小鼠45天的生存情况,在45天时CuS@ER+Laser组存活率达到90%,对照组及单纯放疗组小鼠均未存活。
4.器官、血液、生化指标分析
经过45天治疗观察后,取出小鼠心肝脾肺肾器官组织,进行H&E病理染色分析。
如图7所示,图A显示几种组织的细胞形态和结构仍保持完整,B为血液指标分析,C为生化指标分析,其结果均证明CuS@ER联合激光疗法没有潜在毒性,可用于体内生物学研究。
Claims (7)
1.一种硫化铜光热响应局部释放体系,其特征在于:该释放体系为包载有硫化铜的红细胞;在红细胞表面修饰有RGD。
2.权利要求1所述释放体系的制备方法,其特征在于:包括以下步骤:
步骤1,采用低渗-重封闭法进行红细胞包载CuS,获得载药红细胞;
步骤2,将RGD修饰在载药红细胞表面,即得。
3.根据权利要求2所述的制备方法,其特征在于:步骤1中采用低渗-重封闭法进行红细胞包载CuS的具体过程如下:
a. 纳米硫化铜的制备:以巯基乙酸为表面模板,氯化铜和硫代乙酰胺为反应物,在50℃的条件下保温2小时,合成硫化铜纳米粒子;
b. 低渗:将红细胞重悬于硫化铜溶液中,红细胞与硫化铜溶液按1:1等比例混合,然后置于透析袋中,并置于低渗缓冲液中,4℃条件下放置24小时;
c. 高渗:将透析袋从低渗溶液中转移到重密封高渗缓冲溶液中,在37℃下放置30分钟;
d. 等渗:在PBS缓冲液中洗涤两次以除去未包封的硫化铜,最终获得包载有硫化铜的红细胞。
4.根据权利要求3所述的制备方法,其特征在于:步骤b中硫化铜溶液中硫化铜的浓度为5 mg/mL,pH为7.4;步骤b中红细胞与低渗缓冲液的体积比为1:50,低渗缓冲液的组成为:15mM NaH2PO4·2H2O、15mM NaHCO3、2mM ATP、3mM还原型谷胱甘肽、20mM葡萄糖、5mM NaCl,72mOsm / Kg;步骤c中重封闭高渗缓冲溶液的组成为:250mM NaCl、12.5mM葡萄糖、12.5mM丙酮酸钠、12.5mM肌苷、12.5mM NaH2PO4·2H2O、0.63mM腺嘌呤、550mOsm / Kg。
5.根据权利要求2所述的制备方法,其特征在于:步骤2中将RGD修饰在载药红细胞表面的具体过程如下:
a. 制备DSPE-PEG-biotin:将35mg DSPE-PEG-NH2和7mg NHS-biotin于5mL甲醇中反应2小时,然后用氮气吹干,再在去离子水中用3500 D MWCO的透析袋透析,然后冷冻干燥;
b. 将500μL红细胞重悬于4mL PBS中,并与0.5mg DSPE-PEG-biotin搅拌30分钟。
6.将获得的红细胞-生物素RBC–biotin洗涤两次,重悬于4mL PBS中,连续搅拌加入1mg抗生物素蛋白溶液avidin,4℃反应60分钟,然后将RBC–biotin–avidin洗涤2次除去未结合的avidin;
c. 制备生物素化的RGD:RGD和sulfo-NHS-LC-biotin混合反应;
d. 将RBC–biotin–avidin和生物素化的RGD混合60分钟,PBS洗涤2次,4℃保存,即完成红细胞表面的修饰。
7.权利要求1所述的硫化铜光热响应局部释放体系在制备肿瘤治疗药物中的应用。
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