CN111334528B - 水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆及其构建方法和应用 - Google Patents

水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆及其构建方法和应用 Download PDF

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Abstract

本发明提供了一种水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆及其构建方法和应用。该方法是将MEV复制形式的完整基因组进行酶切,以分段的形式依次定向克隆到基于载体pUC18‑M,获得重组质粒。将重组质粒与转染试剂混合后转染CRFK细胞,可获得拯救病毒。本发明利用反向遗传技术构建的水貂肠炎细小病毒感染性克隆在体外转染CRFK细胞,能够诱导细胞产生与亲本病毒相同的细胞病变和生长趋势。该方法简单、快速、省时省力,与传统PCR方法相比具有更高的准确性,应用该克隆***能够快速便捷地在MEV基因组任意位置进行碱基突变,从而为后续研发MEV的分子生物学研究和疫苗的研制提供了有效的途径和手段。

Description

水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆及其构建方法和应用
技术领域
本发明属于生物技术领域,涉及一种利用反向遗传操作技术的水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆及其构建方法和应用。
背景技术
水貂肠炎细小病毒(Mink enteritis parvovirus,MEV)可引起水貂病毒性肠炎,以胃肠黏膜出血和剧烈下痢为特征的高度接触性传染病,具有较高的发病率和死亡率,其中幼貂更易感。该病于上个世纪八十年代开始在我国暴发流行,给我国水貂养殖业造成了巨大的经济损失,也是世界公认的危害水貂养殖业的三大疾病之一。目前虽有疫苗用于水貂病毒性肠炎的预防,但在生产实践中该病仍较为多发,严重危害水貂健康。
反向遗传技术是开展病毒学研究有效的分子生物学手段,在阐明病毒致病机制和疫苗的研制中发挥着重要的作用。利用反向遗传技术构建水貂肠炎细小病毒感染性克隆,使得在病毒的任意位点引入突变成为可能,方便对病毒的致病机制进行更加精细、准确的研究,从而在基因层面上对该病毒有更为深入的研究和了解,同时也是研制水貂肠炎病毒疫苗的一个有效途径,具有重大的兽医公共卫生学意义。
根据GenBank报道的MEV全基因组序列,3’-端的发夹结构长205nt,成Y型结构,而5’-端发夹结构长为62nt,成U型结构。这种特殊结构的存在严重影响了细小病毒全基因组的克隆和反向遗传学操作平台的建立。现有技术构建水貂肠炎细小病毒感染性克隆主要是采用PCR方法,然而该PCR方法扩增病毒序列时会出现错配问题。同时由于采用常规质粒,还存在容量小、难承受长片段序列的问题。
目前,对整个细小病毒家族复制过程的研究还很少,尤其是对水貂肠炎细小病毒分子方面的研究。尽管GenBank已报道MEV全基因组序列,但是全长克隆的例子很少有人研究,特别是全长的感染性克隆。由于自主复制性细小病毒的基因组结构特殊,很难克隆出其全长基因组,严重影响了其反向遗传学操作平台的建立。
发明内容
针对现有技术中存在的问题,本发明的目的在于提供一种新的水貂肠炎细小病毒(Mink enteritis parvovirus,MEV)感染性克隆质粒的构建方法,并建立了反向遗传学操作***,为今后进行该病毒毒力研究和新型疫苗的研制提供了技术保障。
为实现上述发明目的,本发明一方面提供一种水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆,所述克隆通过将水貂肠炎细小病毒完整基因组酶切后,以分段的形式依次定向克隆到载体pUC18-M得到。其核苷酸序列如SEQ ID NO.1所示。
本发明另一方面,还提供一种水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆的构建方法,所述方法主要包括如下步骤:将水貂肠炎细小病毒复制形式的完整基因组进行酶切;将酶切后得到的两段基因片段,以分段的形式依次定向克隆到载体pUC18-M,获得重组质粒。
所述载体pUC18-M由载体pUC18经酶切改造而成;改造过程是:首先使用Hind Ⅲ酶切将环状质粒线性化,然后使用Blunting平端化酶处理将质粒DNA两端的粘性末端变为平末端,命名为载体pUC18-M。
水貂肠炎细小病毒复制形式的完整基因组通过如下方式获得:将水貂肠炎细小病毒接种CRFK细胞,当细胞生长旺盛且大部分肿胀变圆时收取细胞进行基因组提取,获得水貂肠炎细小病毒复制形式的完整基因组;用PstⅠ酶切基因组产生两个DNA片段。
具体地,本发明水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆的构建方法,步骤如下,
(1)载体pUC18改造
首先使用Hind Ⅲ将pUC18线性化,然后使用Blunting平端化酶处理使载体片段两端由黏性末端变为平末端,命名为pUC18-M;将pUC18-M载体进行PstⅠ酶切使载体片段的一端变为黏性末端;
(2)MEV复制形式基因组提取
将MEV病毒接种于CRFK细胞,当细胞密度约为106个/mL、MEV滴度为107TCID50时进行接种,将0.5mL MEV病毒液接种于10mLCRFK细胞,感染36h左右细胞生长旺盛且大部分肿胀变圆时收取细胞进行基因组提取获得MEV复制形式的完整基因组,长度约5.1kb。
(3)MEV复制形式基因组分段克隆
使用PstⅠ对步骤(2)得到的MEV复制形式双链基因组进行酶切,切下两个DNA片段MEV-5'(约3.1kb)和MEV-3'(约2kb),序列分别如SEQ ID NO.2和SEQ ID NO.3所示;将pUC18-M、MEV-3'进行连接转化,得到pM-MEV-3'重组质粒;然后将pM-MEV-3'重组质粒先进行PstⅠ酶切,再进行SmaI酶切;酶切后的pM-MEV-3'、MEV-5'连接转化后得到pM-MEV重组质粒。
本发明再一方面提供一种水貂细小病毒的反向遗传学操作***,所述的***包括上述的水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆以及宿主细胞。所述宿主细胞为CRFK细胞。
本发明反向遗传学操作***在水貂细小病毒拯救、水貂细小病毒的致病机理和致病力研究以及水貂细小病毒疫苗研制中的应用。
本发明再一方面,提供一种拯救水貂细小病毒的方法:离心管内加入Lipofectamine2000转染试剂,再加入Opti-DMEM培养液混匀,静置;加入pM-MEV重组质粒混匀,室温静置20min得到转染混合物;将长满单层的CRFK细胞去掉培养基,用PBS或无血清培养基清洗2-3次,加入所述转染混合物,将细胞放入37℃ 5%CO2培养箱中培养1h,然后加入血清含量7%的完全培养基继续培养24-48h,进行细胞传代;收集出现疑似细胞病变的细胞上清液,得到拯救病毒。
本发明与现有技术相比具有如下有益效果:
(1)本发明所构建的水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆,首次覆盖水貂肠炎细小病毒全长基因组。由于采用复制形式的DNA,避免了PCR方法扩增病毒序列时的错配问题,同时也克服了常规质粒容量小、难承受长片段序列的问题,为后续MEV全基因的改造和研究不同氨基酸位点对生物学特性的影响提供了重要的分子工具。
(2)本发明采用质粒的氨苄抗性及酶切验证的方法,筛选出水貂肠炎细小病毒感染性克隆,方便快捷。
(3)本发明建立的水貂细小病毒的反向遗传学操作***,将水貂肠炎细小病毒感染性克隆在体外转染CRFK细胞,能够诱导细胞产生与亲本病毒相同的细胞病变和生长趋势。该方法简单、快速、省时省力,与传统PCR方法相比具有更高的准确性,应用该克隆***能够快速便捷地在MEV基因组任意位置进行碱基突变,从而为今后MEV的分子生物学研究和疫苗的研制提供了有效的途径和手段。
附图说明
图1.MEVSD1株基因组DNA提取的琼脂糖凝胶电泳。M:DNA Marker DL5000;1:5kb左右的MEV复制形式双链DNA分子。
图2.pM-MEV-3'质粒酶切鉴定。M:DNA Marker DL5000;1:经PstⅠ酶切产生的大小为4748bp的DNA片段;2:经PvuⅡ酶切产生的大小为2355bp、1575bp和727bp的DNA片段;3:经SspⅠ酶切产生的大小为2568bp、1549bp、444bp和187bp的DNA片段。
图3.MEV株感染性克隆pM-MEV的构建策略。
图4.pM-MEV质粒酶切鉴定。M:DNA Marker DL5000;1:经PstⅠ酶切产生的大小为7823bp的DNA片段;2:经EcoRⅠ酶切产生的大小为6384bp和1439bp的DNA片段;3:经Hind Ⅲ酶切产生的大小为7161bp和662bp的DNA片段;4:经PvuⅡ酶切产生的大小为3893bp、2355bp和1575bp的DNA片段;5:经SspⅠ酶切产生的大小为5824bp、1368bp、444bp和187bp的DNA片段。
图5.验证pM-MEV质粒成功转染的琼脂糖凝胶电泳。M:DNA Marker DL2000;1:DNA酶酶切pM-MEV转染后的上清液并进行PCR扩增得到的大小为1755bp的VP2基因片段。
具体实施方式
为更好地理解本发明,以下结合具体生物材料及参数对本发明进一步说明,但不是对本发明的进一步限定。若未特别指明,实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段;所涉及到的试剂均可从商业途径得到。
1.载体pUC18改造
首先使用Hind Ⅲ将pUC18线性化,37℃作用1h后进行1%琼脂糖凝胶电泳,把目的条带的DNA切下回收纯化;然后使用Blunting平端化酶处理纯化后的载体,37℃作用10min、70℃作用5min后进行1%琼脂糖凝胶电泳,把目的条带的DNA切下回收纯化,该步骤使载体片段两端由黏性末端变为平末端,命名为pUC18-M;最后对上一步纯化后的载体进行PstⅠ酶切,37℃作用1h后进行1%琼脂糖凝胶电泳,把目的条带的DNA切下回收纯化,该步骤使载体片段的一端变为黏性末端,方便后续克隆。
2.MEV复制型基因组提取
将MEV病毒接种于CRFK细胞,根据病毒效价摸索接毒剂量和病毒接种时间。当细胞密度约为106个/mL、MEV滴度为107TCID50时进行接种,将0.5mL MEV病毒液接种于10mL CRFK细胞,感染36h左右细胞生长旺盛且大部分肿胀变圆时收取细胞进行基因组提取获得MEV复制形式的完整基因组。基因组提取具体方法如下:吸出细胞培养瓶中的营养液,用PBS清洗2-3次;倒出PBS,加入1mL裂解液,37℃作用1h;加入250μL 5M NaCl溶液,加的同时动摇细胞培养瓶,冰浴1h;将粘性溶解产物转移到1.5mL离心管中,4℃12000rpm离心30-45min;吸出上清液并转移到干净的离心管中,加入等体积的苯酚/氯仿=1:1,颠倒并静置一段时间,12000rpm离心15min,若离心分层后中间的蛋白部分过多,可重复此步骤;加入0.25M乙酸钠和2倍体积的无水乙醇,作用10-15min,12000rpm离心15min后倒掉上清液;用70%乙醇洗脱,缓慢加入并吹干;加入25-50μL TE,再加入1-2μL RNase,37℃作用20-30min;最后进行1%琼脂糖凝胶电泳,在紫外切胶仪内切下5.1kb左右的目的条带回收纯化(见图1)。
3.MEV复制形式基因组分段克隆(见图3)
使用PstⅠ对纯化后的MEV复制形式双链基因组进行酶切,37℃作用1h后进行1%琼脂糖凝胶电泳,分别切下两个DNA片段MEV-5'(3098bp)和MEV-3'(2064bp),序列分别如SEQID NO.2和SEQ ID NO.3所示。分别回收纯化。将2μl pUC18-M、4μL MEV-3'和6μL Ligationsolution I吹打混匀后置于16℃过夜。将该连接产物加入DH5α感受态细胞中,轻弹混匀,冰浴30min,42℃热激90s,冰浴2-3min,加入800μL无抗性LB液体培养基后放置于37℃摇床振荡45min;吸取200μL转化产物,均匀涂布在氨苄板上,37℃倒置8-12h;挑取氨苄板上的单菌落,将入具有氨苄抗性的LB液体培养基,置于37℃摇床振荡8-12h后进行质粒提取,通过酶切鉴定的方法筛选pM-MEV-3'重组质粒(见图2)。
对纯化后的pM-MEV-3'进行PstⅠ酶切,37℃作用1h后进行1%琼脂糖凝胶电泳,回收纯化得到的重组质粒再次进行SmaI酶切,30℃作用1h后进行1%琼脂糖凝胶电泳,将2μL酶切纯化后的pM-MEV-3'、4μLMEV-5'和6μL Ligation solution I吹打混匀后置于16℃过夜,重复上述转化过程,挑取单菌落进行扩大培养,并通过酶切鉴定的方法筛选pM-MEV重组质粒(见图4)。
4.重组质粒转染CRFK细胞拯救
4.1.转染试剂的配制
转染混合物的配制参照Lipofectamine 2000转染试剂(Invitrogen,Carlsbad,USA)说明书进行。载体和转染试剂按照1:2.5(μg:μL)进行。取16μg纯化的质粒溶液至1个灭菌的1.5mL离心管中,用DMEM培养液(Invitrogen)稀释至1mL,静置5min。另一个灭菌的1.5mL离心管内加入40μL Lipofectamine2000转染试剂,再加入960μL DMEM培养液混匀,静置5min。静置结束后,将稀释后的质粒和转染试剂轻轻混匀,室温静置20min后进行转染。
4.2.转染CRFK细胞
将长满单层的细胞去掉培养基,用PBS或无血清培养基清洗2-3次,加入上述配制好的转染试剂,将细胞放入37℃5%CO2培养箱中培养1h,然后加入血清含量7%的完全培养基继续培养24-48h,进行细胞传代,观察细胞是否出现病变,根据细胞状态决定是否需要二次转染。收集出现疑似细胞病变的细胞上清液,使用DNA酶把未转染进细胞的重组质粒随机切断后,对酶切后的上清液进行VP2片段的PCR扩增,引物序列:VP2-F:5'-CTTTGCCTCAATCTGAAGGAGT-3'、VP2-R:5'-GAATTGGATTCCAAGTATGAGAT-3',反应条件为96℃预变性3min;95℃变性30s;55℃退火30s;72℃延伸,140s;32个循环,72℃延伸10min,4℃保存。琼脂糖凝胶电泳出现1.8kb左右的目的条带证明转染成功(见图5)。
VP2基因PCR反应体系
Figure BDA0002420235580000051
序列表
<110> 山东农业大学
<120> 水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆及其构建方法和应用
<160> 5
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 5162
<212> DNA
<213> Mink enteritis parvovirus
<400> 1
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tttggtttaa tccaggagat tggcaactaa ttgttaatac tatgagtgag ttgcatttag 3240
ttagttttga acaagaaatt tttaatgttg ttttaaagac tgtttcagaa tctgctactc 3300
aaccaccaac taaagtttat aataatgatt taactgcatc attgatggtt gcattagata 3360
gtaataatac tatgccattt actccagcag ctatgagatc tgagacattg ggtttttatc 3420
catggaaacc aaccatacca actccatgga gatattattt tcaatgggat agaacattaa 3480
taccatctca tactggaact agtggcacac caacaaatgt atattatggt acagatccag 3540
atgatgttca attttatact attgaaaatt ctgtgccagt acacttacta agaacaggtg 3600
atgaatttgc tacaggaaca tttttttttg attgtaaacc atgtagacta acacatacat 3660
ggcaaacaaa tagagcattg ggcttaccac catttctaaa ttctttgcct caatctgaag 3720
gagctactaa ctttggtgat ataggagttc aacaagataa aagacgtggt gtaactcaaa 3780
tgggaaatac agactatatt actgaagcta ctattatgag accagctgag gttggttata 3840
gtgcaccata ttattctttt gaagcatcta cacaagggcc atttaaaaca cctattgcag 3900
caggacgggg gggagcgcaa acagatgaaa atcaagcagc agatggtgat ccaagatatg 3960
catttggtag acaacatggt caaaaaacta ctacaacagg agaaacaccc gagagattta 4020
catatatagc acatcaagat acaggaagat atccagaagg agattggatt caaaatatta 4080
actttaacct tcctgtaaca aatgataatg tattgctacc aacagatcca attggaggta 4140
aaacaggaat taactatact aatatattta atacttatgg tcctttaact gcattaaata 4200
atgtaccacc agtttatcca aatggtcaaa tttgggataa agaatttgat actgacttaa 4260
aaccaagact tcatgtaaat gcaccatttg tttgtcaaaa taattgtcct ggtcaattat 4320
ttgtaaaagt tgcgcctaat ttaacaaatg aatatgatcc tgatgcatct gctaatatgt 4380
caagaattgt gacttactca gatttttggt ggaaaggtaa attagtattt aaagctaaac 4440
taagagcatc tcatacttgg aatccaattc aacaaataag tattaatgta gataaccaat 4500
ttaactatgt accaaataat attggagcta tgaaaattgt atatgaaaaa tctcaactag 4560
cacctagaaa attatattaa tatacttact atgtttttat gtttattaca tatcaactag 4620
cacctagaaa attatattaa tatacttact atgtttttat gtttattaca tattatttta 4680
agattaatta aattacagca tagaaatatt gtacttgtat ttgatatagg atttagaagg 4740
tttgttatat ggtatacaat aactgtaaga aatagaagaa catttagatc atagttagta 4800
gtttgtttta taaaatgtat tgtaaactat taatgtatgt tgttatggtg tgggtggttg 4860
gttggtttgc ccttagaata tgttaaggac caaaaaaatc aataaaagac atttaaaact 4920
aaatggtctc gtatactgtc tataaggtga actaacctta ccataagtat caatctgtct 4980
ttaagggggg ggtgggtggg agatacacaa catcagtaga ctgactggcc tggttggttg 5040
ctctgcttaa tcaaccagac cgcgtagcgg tctggttgat taagcgcaac caaccaggcc 5100
agtcagtcta ctgatgttgt gtatctccca cccacccccc ccttaaagac agattgatac 5160
tt 5162
<210> 2
<211> 3098
<212> DNA
<213> Mink enteritis parvovirus
<400> 2
cgccaccttt tcccgcccaa gtttaaacac acaaaccgcc tatcattctt tagaaccaac 60
tgaccaagtt cacgtacgta tgacgtgatg acgcgcgctg cgcgcgctgc ctacggcagt 120
cacacgtcat acgtacgctc cttggtcagt tggttctaaa gaatgatagg cggtttgtgt 180
gtttaaactt gggcgggaaa aggtggcggg cattgtgggc gtggttaaag gtataaaaga 240
caaaccatag accgttactg acattcgctt cttgtctttg acagagtgaa cctctcttac 300
tttgactaac catgtctggc aaccagtata ctgaggaagt tatggaggga gtaaattggt 360
taaaaaaaca tgcagaaaat gaagcatttt cgtttgtttt taaatgtgac aacgtccaac 420
taaatggaaa ggatgttcgc tggaacaact ataccaaacc aattcaaaat gaagagctaa 480
catctttaat tagaggagca caaacagcaa tggatcaaac cgaagaagaa gaaatggact 540
gggaatcgga agttgatagt ctcgccaaaa agcaagtaca aacttttgat gcattaatta 600
aaaaatgtct ttttgaagtc tttgtttcta aaaatataga accaaatgaa tgtgtttggt 660
ttattcaaca tgaatgggga aaagatcaag gctggcattg tcatgtttta cttcatagta 720
agaacttaca acaagcaact ggtaaatggc tacgcagaca aatgaatatg tattggagta 780
gatggttggt gactctttgt tcggtaaatt taacaccaac tgaaaagatt aagctcagag 840
aaattgcaga agatagtgaa tgggtgacta tattaacata cagacataag caaacaaaaa 900
aagactatgt taaaatggtt cattttggaa atatgatagc atattacttt ttaacaaaga 960
aaaaaattgt ccacatgaca aaagaaagtg gctatttttt aagtactgat tctggttgga 1020
aatttaactt tatgaagtat caagacagac aaactgtcag cacactttac actgaacaaa 1080
tgaaaccaga aaccgttgaa accacagtga cgacagcaca ggaaacaaag cgcgggagaa 1140
ttcaaactaa aaaggaagtt tcaatcaaat gtactttgcg ggacttggtt agtaaaagag 1200
taacatcacc tgaagattgg atgatgttac aaccagatag ttatattgaa atgatggcac 1260
aaccaggagg tgaaaatctt ttaaaaaata cacttgaaat ttgtactttg actttagcaa 1320
gaacaaaaac agcatttgaa ttaatacttg aaaaagcaga taatactaaa ctaactaact 1380
ttgatcttgc aaattctaga acatgtcaaa tttttagaat gcacggatgg aattggatta 1440
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tttttcatgg accagcaagt acaggaaaat ctattattgc tcaagccata gcacaagctg 1560
tggggaatgt tggttgttat aatgcagcaa atgtaaattt tccatttaat gactgtacca 1620
ataaaaattt aatttggatt gaagaagctg gtaactttgg tcaacaagtt aatcaattta 1680
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ttgaaccaac tccagtaatt atgacaacta atgaaaatat aacaattgta agaattggat 1800
gtgaagaaag acctgaacat acacaaccaa taagagacag aatgttgaac attaagttag 1860
tatgtaagct tccaggagac tttggtttgg ttgataaaga agaatggcct ttaatatgtg 1920
catggttagt taaacatggt tatgaaccaa ccatggctaa ctatacacat cattggggaa 1980
aagtaccaga atgggatgaa aactgggcgg agcctaaaat acaagaaggt ataaattcac 2040
caggttgcaa agacttagag acacaagcgg caagcaatcc tcagagtcaa gaccaagttc 2100
taactcctct gactccggac gtagtggacc ttgcactgga accgtggagt actccagata 2160
cgcctattgc agaaactgca aatcaacaat caaaccaact tggcgttact cacaaagacg 2220
tgcaagcgag tccgacgtgg tccgaaatag aggcagacct gagagccatc tttacttctg 2280
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cttaactaag tatgtgtttt cttataggac ttgtgcctcc aggttataaa tatcttgggc 2460
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gacattattt ttttagagct aaaaaggcaa ttgctccagt attaactgat acaccagatc 2700
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tggaaatcac agcaaactca agcagacttg tacatttaaa tatgccagaa agtgaaaatt 3060
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<210> 3
<211> 2064
<212> DNA
<213> Mink enteritis parvovirus
<400> 3
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gttgatgcaa atgcttgggg agtttggttt aatccaggag attggcaact aattgttaat 120
actatgagtg agttgcattt agttagtttt gaacaagaaa tttttaatgt tgttttaaag 180
actgtttcag aatctgctac tcaaccacca actaaagttt ataataatga tttaactgca 240
tcattgatgg ttgcattaga tagtaataat actatgccat ttactccagc agctatgaga 300
tctgagacat tgggttttta tccatggaaa ccaaccatac caactccatg gagatattat 360
tttcaatggg atagaacatt aataccatct catactggaa ctagtggcac accaacaaat 420
gtatattatg gtacagatcc agatgatgtt caattttata ctattgaaaa ttctgtgcca 480
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agaccagctg aggttggtta tagtgcacca tattattctt ttgaagcatc tacacaaggg 780
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gcagatggtg atccaagata tgcatttggt agacaacatg gtcaaaaaac tactacaaca 900
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cctgatgcat ctgctaatat gtcaagaatt gtgacttact cagatttttg gtggaaaggt 1320
aaattagtat ttaaagctaa actaagagca tctcatactt ggaatccaat tcaacaaata 1380
agtattaatg tagataacca atttaactat gtaccaaata atattggagc tatgaaaatt 1440
gtatatgaaa aatctcaact agcacctaga aaattatatt aatatactta ctatgttttt 1500
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atgtttatta catattattt taagattaat taaattacag catagaaata ttgtacttgt 1620
atttgatata ggatttagaa ggtttgttat atggtataca ataactgtaa gaaatagaag 1680
aacatttaga tcatagttag tagtttgttt tataaaatgt attgtaaact attaatgtat 1740
gttgttatgg tgtgggtggt tggttggttt gcccttagaa tatgttaagg accaaaaaaa 1800
tcaataaaag acatttaaaa ctaaatggtc tcgtatactg tctataaggt gaactaacct 1860
taccataagt atcaatctgt ctttaagggg ggggtgggtg ggagatacac aacatcagta 1920
gactgactgg cctggttggt tgctctgctt aatcaaccag accgcgtagc ggtctggttg 1980
attaagcgca accaaccagg ccagtcagtc tactgatgtt gtgtatctcc cacccacccc 2040
ccccttaaag acagattgat actt 2064
<210> 4
<211> 22
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence)
<400> 4
ctttgcctca atctgaagga gt 22
<210> 5
<211> 23
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial sequence)
<400> 5
gaattggatt ccaagtatga gat 23

Claims (5)

1.一种水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆的构建方法,其特征在于, 所述方法主要包括如下步骤:将水貂肠炎细小病毒复制形式的完整基因组进行酶切;将酶切后得到的两段基因片段,以分段的形式依次定向克隆到载体pUC18-M,获得重组质粒;
所述载体pUC18-M由载体pUC18经酶切改造而成:首先使用Hind Ⅲ 酶切将环状质粒线性化,然后使用Blunting平端化酶处理将质粒DNA两端的粘性末端变为平末端;
所述两段基因片段获取方法如下:将水貂肠炎细小病毒接种CRFK细胞,当细胞生长旺盛且大部分肿胀变圆时收取细胞进行基因组提取,获得水貂肠炎细小病毒复制形式的完整基因组;用PstⅠ酶切基因组产生两个DNA片段。
2. 如权利要求1所述的方法,其特征在于,具体步骤如下,
(1)载体pUC18改造
首先使用Hind Ⅲ 将pUC18线性化,然后使用Blunting平端化酶处理使载体片段两端由黏性末端变为平末端,命名为pUC18-M;将pUC18-M载体进行PstⅠ酶切使载体片段的一端变为黏性末端;
(2)MEV复制形式基因组提取
将MEV病毒接种于CRFK细胞,当细胞状态处于生长旺盛且大部分细胞肿胀变圆时,进行基因组提取;
(3)MEV复制形式基因组分段克隆
使用PstⅠ对步骤(2)得到的MEV复制形式双链基因组进行酶切,切下两个DNA片段MEV-5'和MEV-3';先将pUC18-M、MEV-3'进行连接转化,得到pM-MEV-3'重组质粒;然后将pM-MEV-3'重组质粒先进行PstⅠ酶切,再进行Sma I酶切;酶切后的pM-MEV-3'、MEV-5'连接转化后得到pM-MEV重组质粒。
3.权利要求1或2所述的方法构建得到的水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆。
4.权利要求3所述的水貂肠炎细小病毒全基因组感染性克隆在水貂肠炎细小病毒拯救、非疾病治疗目的的水貂肠炎细小病毒的致病机理和致病力研究以及制备水貂肠炎细小病毒疫苗中的应用。
5.一种拯救水貂肠炎细小病毒的方法,其特征在于,包括以下步骤:离心管内加入Lipofectamine 2000转染试剂,再加入DMEM培养液混匀,静置;加入权利要求2所述方法得到的pM-MEV重组质粒混匀,室温静置20min得到转染混合物;将长满单层的CRFK细胞去掉培养基,用PBS或无血清培养基清洗2-3次,加入所述转染混合物,将细胞放入37℃、 5% CO2培养箱中培养1h,然后加入血清含量7%的完全培养基继续培养24-48h,进行细胞传代;收集出现疑似细胞病变的细胞上清液,得到拯救病毒。
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