CN110456056A - 一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法 - Google Patents
一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN110456056A CN110456056A CN201910659778.6A CN201910659778A CN110456056A CN 110456056 A CN110456056 A CN 110456056A CN 201910659778 A CN201910659778 A CN 201910659778A CN 110456056 A CN110456056 A CN 110456056A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- preparation
- antibody
- neonatal
- immune
- test paper
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/558—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor using diffusion or migration of antigen or antibody
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/577—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor involving monoclonal antibodies binding reaction mechanisms characterised by the use of monoclonal antibodies; monoclonal antibodies per se are classified with their corresponding antigens
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Hematology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
本发明涉及一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸及其制备方法,所述方法包括如下步骤：第一步，单克隆抗体的制备；第二步，试纸的制备：步骤S7：样品垫的制备，将硝酸纤维素膜切成25*30cm，用样品垫处理液浸泡30分钟上，取出烘干，切成相应宽度的2.5*30cm样品垫条备用；步骤S8：胶体金结合垫的制备；步骤S9：吸水材料的制备；步骤S10：金膜组合；步骤S11：分切；步骤S12：装袋和封口；步骤S13：外包。本发明的有益效果是：通过采集新生儿尿液以试纸法来筛查苯丙酮尿症。最大的优点是无创、简便、标本易得。可避免需采集新生儿足跟血的现有检测方法所致的创伤。避免造成新生儿的疼痛与不安，以及新生儿亲人的极度不安和心疼。
Description
技术领域
本发明涉及一种用于新生儿苯丙酮尿症的筛查方法，特别涉及一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸及其制备方法。
背景技术
苯丙酮尿症（PKU）是一种常见的氨基酸代谢病，是由于苯丙氨酸（PA）代谢途径中的酶缺陷，使得苯丙氨酸不能转变成为酪氨酸，导致苯丙氨酸及其酮酸蓄积，并从尿中大量排出。本病在遗传性氨基酸代谢缺陷疾病中比较常见，其遗传方式为常染色体隐性遗传。临床表现不均一，主要临床特征为智力低下、精神神经症状、湿疹、皮肤抓痕征及色素脱失和鼠气味等、脑电图异常。如果能得到早期诊断和早期治疗，则前述临床表现可不发生，智力正常，脑电图异常也可得到恢复。
目前诊断新生儿苯丙酮尿症的检查为普筛项目，每个新生儿均要检测血液中的苯丙氨酸，新生儿期苯丙酮尿症筛查的方法目前为：新生儿喂奶3日后，采集足跟末梢血，吸收再生厚滤纸上，晾干后邮寄到筛查中心，采用Guthrie细菌生长抑制试验半定量测定，其原理是苯丙氨酸能促进已被抑制的枯草杆菌重新生长，以生长圈的范围测定血中苯病氨酸的含量，亦可在苯丙氨酸脱氢酶的作用下进行比色定量测定，其假阳性率较低。当苯丙氨酸含量>0.24mmol/L（4mg/dl）即两倍于正常参考值时，应复查或采静脉血定量测定苯丙氨酸和酪氨酸。正常人苯丙氨酸浓度为0.06～0.18mmol/L（1～3mg/dl）而患儿血浆苯丙氨酸可高达1.2mmol/L（20mg/dl）以上，且血中酪氨酸正常或稍低。
上述检测方法存在较大的缺点：需要采集新生儿足跟血，会造成新生儿疼痛与不安，进而导致新生儿的亲人极度的不安和心疼。
发明内容
本发明的目的在于解决现有技术的不足，提供一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸，建立一种通过新生儿尿液来筛查苯丙酮尿症的试纸。避免采集新生儿足跟血的现有检测手段的不足。
本发明的目的之二在于提供一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法。该方法工艺流程设计合理，产业化实施方便，产品品质稳定。
本发明解决其技术问题所采用的技术方案是：
一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法，所述方法包括如下步骤：
第一步，单克隆抗体的制备：
步骤S1: 备置纯度≥95%的半抗原D-Phe，并备置纯度≥95%的筛选原L-Tyr及 L-Try；
步骤S2：免疫原制备，将半抗原和筛选原分别与KLH和BSA偶联，制成D-Phe-KLH、D-Phe-BSA、L-Tyr -KLH、L-Tyr- BSA、L-Try -BSA和L-Try- KLH；
步骤S3：动物免疫，分别设置A组和B组，其中A组5只Balb/c小鼠，用D-Phe-KLH免疫，然后用D-Phe-BSA检测；B组5只Balb/c小鼠，用D-Phe-BSA免疫，然后用D-Phe-KLH检测，免疫7天后，用间接ELISA和竞争ELISA方法检测免疫动物血清，确定免疫应答水平；
步骤S4：细胞融合和筛选，将步骤S3符合免疫应答水平要求的动物免疫细胞与鼠骨髓瘤细胞sp2/0进行细胞融合；
步骤S41：初筛，用间接ELISA方法筛选融合细胞培养上清液，挑选出能产生抗苯丙氨酸抗体的阳性克隆；
步骤S42：复筛，对初筛得到的能产生抗苯丙氨酸抗体的所有阳性克隆，进行复筛确认；
步骤S43： 竞争ELISA检测，将经复筛确认的能产生抗苯丙氨酸抗体的所有阳性克隆进行竞争ELISA检测；
步骤S44:阳性克隆的扩大培养和冻存，将上述阳性克隆细胞转到24孔板扩大培养，每个扩大培养的克隆收集2ml以上的上清液，用于间接ELISA和竞争ELISA检测，冻存能产生抗苯丙氨酸特异性抗体的阳性克隆细胞；
步骤S5：亚克隆，采用有限稀释法对上述阳性克隆进行亚克隆，以获得单克隆细胞，用间接ELISA和竞争ELISA方法进行亚克隆筛选，每个阳性克隆选择至少2个稳定的子克隆进行扩增和低温保存；
步骤S6：抗体生产，分别对亚克隆筛选的单克隆细胞进行抗体生产，采用ProteinA/G亲和层析方法纯化抗体，用透析方法将纯化抗体保存在磷酸盐缓冲液中；
第二步，试纸的制备
步骤S7：样品垫的制备，将硝酸纤维素膜切成25*30cm，用样品垫处理液浸泡30分钟上，取出烘干，切成相应宽度的2.5*30cm样品垫条备用；
步骤S8：胶体金结合垫的制备：用氯金酸-柠檬酸三钠还原法制备胶体金液冷却备用，调整pH值至一定值，加入一定量步骤S6制备的抗体，搅拌30分钟，加入一定量的BSA，搅拌10分钟，离心去上清，加入适量的复溶液复溶至适量体积，振荡均匀，喷涂在硝酸纤维素膜上，37℃干燥4小时以上，沿着喷胶体金复溶液的方向，在保证每条胶体金的完整的情况下，裁成1*30cm胶体金结合垫备用；
步骤S9：吸水材料的制备：将吸水板裁成3.3*30cm条形备用；
步骤S10：金膜组合，将吸水材料、胶体金结合垫、样品垫按照顺序层叠粘在PVC板上，形成成型板；
步骤S11：分切：将上述成型板根据需要切成2.5-6mm的条；
步骤S12：装袋和封口：将上述条装入铝泊袋中封口备用；
步骤S13：外包：将袋装产品装入外包装盒。
优选的，步骤S2中偶联的具体操作方法如下：
1.5mg半抗原和筛选原分别与2mgKLH和BSA溶于1.8mlpbs缓冲液中，缓慢滴加1%戊二醛20ul，再加0.15mol/LNaCl至蛋白终浓度为0.1mg/ml ，置振荡器中轻微振荡2.5到3小时，然后添加0.05-0.1mg甘氨酸，轻微振荡20-30min即可。
优选的，步骤S3中动物免疫的具体操作方法如下：
免疫前采血，然后第一次免疫，剂量和途径为50μg/只，皮下免疫，佐剂为弗氏完全佐剂，第二次免疫为首次免疫后第14天，25μg/只，皮下免疫，佐剂为弗氏不完全佐剂，首次免疫后第21天，采血检测一次，第28天第三次免疫，25μg/只，皮下免疫，佐剂为弗氏不完全佐剂，第35天采血检测，第50±7天，最后一次免疫，25μg/只，静脉免疫，佐剂为弗氏不完全佐剂。
优选的，步骤S4细胞融合的动物细胞，其免疫应答水平OD值＞1.0，效价达到1:8000。
优选的，步骤S6中抗体质量的控制方法具体为：采用SDS-PAGE，间接ELISA和竞争ELISA进行，抗体浓度采用NanoDrop2000测定，抗体亲和力采用SPR Biacore测定。
优选的，步骤S8中调节pH值7.5-8.4，抗体的添加量为每1.0ml胶体金溶液添加5-8μL 0.1mg/mL的抗体，BSA溶液的浓度为1%，添加量为0.1-0.3ml。
本发明的有益效果是：通过采集新生儿尿液以试纸法来筛查苯丙酮尿症。最大的优点是无创、简便、标本易得。可避免需采集新生儿足跟血的现有检测方法所致的创伤。避免造成新生儿的疼痛与不安，以及新生儿亲人的极度不安和心疼。
具体实施方式
下面通过具体实施例，对本发明的技术方案作进一步的具体说明。
一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法，所述方法包括如下步骤：第一步，单克隆抗体的制备：
步骤S1: 备置纯度≥95%的半抗原D-Phe，并备置纯度≥95%的筛选原L-Tyr及 L-Try；
步骤S2：免疫原制备，将半抗原和筛选原分别与KLH和BSA偶联，制成D-Phe-KLH、D-Phe-BSA、L-Tyr -KLH、L-Tyr- BSA、L-Try -BSA和L-Try- KLH；
步骤S3：动物免疫，分别设置A组和B组，其中A组5只Balb/c小鼠，用D-Phe-KLH免疫，然后用D-Phe-BSA检测；B组5只Balb/c小鼠，用D-Phe-BSA免疫，然后用D-Phe-KLH检测，免疫7天后，用间接ELISA和竞争ELISA方法检测免疫动物血清，确定免疫应答水平；
步骤S4：细胞融合和筛选，将步骤S3符合免疫应答水平要求的动物免疫细胞与鼠骨髓瘤细胞sp2/0进行细胞融合；
步骤S41：初筛，用间接ELISA方法筛选融合细胞培养上清液，挑选出能产生抗苯丙氨酸抗体的阳性克隆；
步骤S42：复筛，对初筛得到的能产生抗苯丙氨酸抗体的所有阳性克隆，进行复筛确认；
步骤S43： 竞争ELISA检测，将经复筛确认的能产生抗苯丙氨酸抗体的所有阳性克隆进行竞争ELISA检测；
步骤S44:阳性克隆的扩大培养和冻存，将上述阳性克隆细胞转到24孔板扩大培养，每个扩大培养的克隆收集2ml以上的上清液，用于间接ELISA和竞争ELISA检测，冻存能产生抗苯丙氨酸特异性抗体的阳性克隆细胞；
步骤S5：亚克隆，采用有限稀释法对上述阳性克隆进行亚克隆，以获得单克隆细胞，用间接ELISA和竞争ELISA方法进行亚克隆筛选，每个阳性克隆选择至少2个稳定的子克隆进行扩增和低温保存；
步骤S6：抗体生产，分别对亚克隆筛选的单克隆细胞进行抗体生产，采用ProteinA/G亲和层析方法纯化抗体，用透析方法将纯化抗体保存在磷酸盐缓冲液中；
第二步，试纸的制备
步骤S7：样品垫的制备，将硝酸纤维素膜切成25*30cm，用样品垫处理液浸泡30分钟上，取出烘干，切成相应宽度的2.5*30cm样品垫条备用；
步骤S8：胶体金结合垫的制备：用氯金酸-柠檬酸三钠还原法制备胶体金液冷却备用，调整pH值至一定值，加入一定量步骤S6制备的抗体，搅拌30分钟，加入一定量的BSA，搅拌10分钟，离心去上清，加入适量的复溶液复溶至适量体积，振荡均匀，喷涂在硝酸纤维素膜上，37℃干燥4小时以上，沿着喷胶体金复溶液的方向，在保证每条胶体金的完整的情况下，裁成1*30cm胶体金结合垫备用；
步骤S9：吸水材料的制备：将吸水板裁成3.3*30cm条形备用；
步骤S10：金膜组合，将吸水材料、胶体金结合垫、样品垫按照顺序层叠粘在PVC板上，形成成型板；
步骤S11：分切：将上述成型板根据需要切成2.5-6mm的条；
步骤S12：装袋和封口：将上述条装入铝泊袋中封口备用；
步骤S13：外包：将袋装产品装入外包装盒。
具体到本发明中，步骤S2中偶联的具体操作方法如下：
1.5mg半抗原和筛选原分别与2mgKLH和BSA溶于1.8mlpbs缓冲液中，缓慢滴加1%戊二醛20ul，再加0.15mol/LNaCl至蛋白终浓度为0.1mg/ml ，置振荡器中轻微振荡2.5到3小时，然后添加0.05-0.1mg甘氨酸，轻微振荡20-30min即可。
另外，具体的说，步骤S3中动物免疫的具体操作方法如下：
免疫前采血，然后第一次免疫，剂量和途径为50μg/只，皮下免疫，佐剂为弗氏完全佐剂，第二次免疫为首次免疫后第14天，25μg/只，皮下免疫，佐剂为弗氏不完全佐剂，首次免疫后第21天，采血检测一次，第28天第三次免疫，25μg/只，皮下免疫，佐剂为弗氏不完全佐剂，第35天采血检测，第50±7天，最后一次免疫，25μg/只，静脉免疫，佐剂为弗氏不完全佐剂，步骤S4细胞融合的动物细胞，其免疫应答水平OD值＞1.0，效价达到1:8000，步骤S6中抗体质量的控制方法具体为：采用SDS-PAGE，间接ELISA和竞争ELISA进行，抗体浓度采用NanoDrop2000测定，抗体亲和力采用SPR Biacore测定，步骤S8中调节pH值7.5-8.4，抗体的添加量为每1.0ml胶体金溶液添加5-8μL 0.1mg/mL的抗体，BSA溶液的浓度为1%，添加量为0.1-0.3ml。
本发明实施例制备得到的试纸储存于4-15℃避光干燥，严禁冷冻，有效期为18个月，其用于测试的样本要求及测试方法如下：
采用一次性洁净容器收集新生儿的新鲜尿样，以早晨5；00至6.00之间的晨尿为最优测试尿样。尿样如果呈现浑浊状，先离心、过滤或者待其沉淀后取上清液检测。当采集的尿样不能及时检测时，尿液样本放于2-5℃冷藏保藏36小时，最长不得超过48h，如果需要长期保藏，则需冷冻于-15℃，同时避免反复的冷冻和解冻。
在进行尿样检测前，将尿液样本恢复至室温（20-25℃），25℃最优。测试及结果判定的具体步骤如下：
1.取出本发明实施例的试纸条，并在0.5h内使用；
2.将试纸条的下端***尿液样本中，尿液液面务必要低于试纸条的标记线；至少8s后取出，放于干净平整的台面上；
3.等待色带的出现，检测结果应在4-5分钟时判读，超出8分钟判读无效；
阳性（+）：出现两条色带，一条位于测试区，一条位于质控区，表明系苯丙酮尿症患者。
阴性（-）： 仅质控区出现一条色带，测试区无色带，排除苯丙酮尿症。
无效：质控区未出现色带，表明试纸条不正确使用或者已经变质损坏。
遵照前述测试方法，经实验验证，测试有效率高达99%。以上所述的实施例只是本发明的一种较佳的方案，并非对本发明作任何形式上的限制，在不超出权利要求所记载的技术方案的前提下还有其它的变体及改型。
Claims (7)
1.一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法，其特征在于：所述方法包括如下步骤：
第一步，单克隆抗体的制备：
步骤S1: 备置纯度≥95%的半抗原D-Phe，并备置纯度≥95%的筛选原L-Tyr及 L-Try；
步骤S2：免疫原制备，将半抗原和筛选原分别与KLH和BSA偶联，制成D-Phe-KLH、D-Phe-BSA、L-Tyr -KLH、L-Tyr- BSA、L-Try -BSA和L-Try- KLH；
步骤S3：动物免疫，分别设置A组和B组，其中A组5只Balb/c小鼠，用D-Phe-KLH免疫，然后用D-Phe-BSA检测；B组5只Balb/c小鼠，用D-Phe-BSA免疫，然后用D-Phe-KLH检测，免疫7天后，用间接ELISA和竞争ELISA方法检测免疫动物血清，确定免疫应答水平；
步骤S4：细胞融合和筛选，将步骤S3符合免疫应答水平要求的动物免疫细胞与鼠骨髓瘤细胞sp2/0进行细胞融合；
步骤S41：初筛，用间接ELISA方法筛选融合细胞培养上清液，挑选出能产生抗苯丙氨酸抗体的阳性克隆；
步骤S42：复筛，对初筛得到的能产生抗苯丙氨酸抗体的所有阳性克隆，进行复筛确认；
步骤S43： 竞争ELISA检测，将经复筛确认的能产生抗苯丙氨酸抗体的所有阳性克隆进行竞争ELISA检测；
步骤S44:阳性克隆的扩大培养和冻存，将上述阳性克隆细胞转到24孔板扩大培养，每个扩大培养的克隆收集2ml以上的上清液，用于间接ELISA和竞争ELISA检测，冻存能产生抗苯丙氨酸特异性抗体的阳性克隆细胞；
步骤S5：亚克隆，采用有限稀释法对上述阳性克隆进行亚克隆，以获得单克隆细胞，用间接ELISA和竞争ELISA方法进行亚克隆筛选，每个阳性克隆选择至少2个稳定的子克隆进行扩增和低温保存；
步骤S6：抗体生产，分别对亚克隆筛选的单克隆细胞进行抗体生产，采用ProteinA/G亲和层析方法纯化抗体，用透析方法将纯化抗体保存在磷酸盐缓冲液中；
第二步，试纸的制备
步骤S7：样品垫的制备，将硝酸纤维素膜切成25*30cm，用样品垫处理液浸泡30分钟上，取出烘干，切成相应宽度的2.5*30cm样品垫条备用；
步骤S8：胶体金结合垫的制备：用氯金酸-柠檬酸三钠还原法制备胶体金液冷却备用，调整pH值至一定值，加入一定量步骤S6制备的抗体，搅拌30分钟，加入一定量的BSA，搅拌10分钟，离心去上清，加入适量的复溶液复溶至适量体积，振荡均匀，喷涂在硝酸纤维素膜上，37℃干燥4小时以上，沿着喷胶体金复溶液的方向，在保证每条胶体金的完整的情况下，裁成1*30cm胶体金结合垫备用；
步骤S9：吸水材料的制备：将吸水板裁成3.3*30cm条形备用；
步骤S10：金膜组合，将吸水材料、胶体金结合垫、样品垫按照顺序层叠粘在PVC板上，形成成型板；
步骤S11：分切：将上述成型板根据需要切成2.5-6mm的条；
步骤S12：装袋和封口：将上述条装入铝泊袋中封口备用；
步骤S13：外包：将袋装产品装入外包装盒。
2.根据权利要求1所述的新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法，其特征在于：步骤S2中偶联的具体操作方法如下：
1.5mg半抗原和筛选原分别与2mgKLH和BSA溶于1.8mlpbs缓冲液中，缓慢滴加1%戊二醛20ul，再加0.15mol/LNaCl至蛋白终浓度为0.1mg/ml ，置振荡器中轻微振荡2.5到3小时，然后添加0.05-0.1mg甘氨酸，轻微振荡20-30min即可。
3.根据权利要求1所述的新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法，其特征在于：步骤S3中动物免疫的具体操作方法如下：
免疫前采血，然后第一次免疫，剂量和途径为50μg/只，皮下免疫，佐剂为弗氏完全佐剂，第二次免疫为首次免疫后第14天，25μg/只，皮下免疫，佐剂为弗氏不完全佐剂，首次免疫后第21天，采血检测一次，第28天第三次免疫，25μg/只，皮下免疫，佐剂为弗氏不完全佐剂，第35天采血检测，第50±7天，最后一次免疫，25μg/只，静脉免疫，佐剂为弗氏不完全佐剂。
4.根据权利要求3所述的新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法，其特征在于：步骤S4细胞融合的动物细胞，其免疫应答水平OD值＞1.0，效价达到1:8000。
5.根据权利要求1所述的新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法，其特征在于：步骤S6中抗体质量的控制方法具体为：采用SDS-PAGE，间接ELISA和竞争ELISA进行，抗体浓度采用NanoDrop2000测定，抗体亲和力采用SPR Biacore测定。
6.根据权利要求1所述的新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法，其特征在于：步骤S8中调节pH值7.5-8.4，抗体的添加量为每1.0ml胶体金溶液添加5-8μL 0.1mg/mL的抗体，BSA溶液的浓度为1%，添加量为0.1-0.3ml。
7.一种权利要求1-6任意一项所述方法制备的新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201910659778.6A CN110456056A (zh) | 2019-07-22 | 2019-07-22 | 一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201910659778.6A CN110456056A (zh) | 2019-07-22 | 2019-07-22 | 一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN110456056A true CN110456056A (zh) | 2019-11-15 |
Family
ID=68481654
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN201910659778.6A Pending CN110456056A (zh) | 2019-07-22 | 2019-07-22 | 一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN110456056A (zh) |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0126544A2 (en) * | 1983-04-14 | 1984-11-28 | Howard Hughes Medical Institute | Phenylalanine hydroxylase cDNA clones, their methods of production and use in diagnosing classical phenylketonuria |
| US20080008695A1 (en) * | 2006-06-12 | 2008-01-10 | Vellard Michel C | Compositions of prokaryotic phenylalanine ammonia-lyase and methods of using compositions thereof |
| CN108196054A (zh) * | 2017-07-27 | 2018-06-22 | 数字本草中医药检测有限公司 | 一种检测甘草酸的试纸条及其制备方法和应用 |
| CN109879961A (zh) * | 2019-03-26 | 2019-06-14 | 天津喜诺生物医药有限公司 | 一种抗隐球菌荚膜多糖单克隆抗体及其杂交瘤细胞株制备与应用 |
-
2019
- 2019-07-22 CN CN201910659778.6A patent/CN110456056A/zh active Pending
Patent Citations (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| EP0126544A2 (en) * | 1983-04-14 | 1984-11-28 | Howard Hughes Medical Institute | Phenylalanine hydroxylase cDNA clones, their methods of production and use in diagnosing classical phenylketonuria |
| US20080008695A1 (en) * | 2006-06-12 | 2008-01-10 | Vellard Michel C | Compositions of prokaryotic phenylalanine ammonia-lyase and methods of using compositions thereof |
| CN101842482A (zh) * | 2007-05-25 | 2010-09-22 | 生物马林药物股份有限公司 | 原核生物苯丙氨酸氨裂合酶的组合物及使用所述组合物的方法 |
| CN108196054A (zh) * | 2017-07-27 | 2018-06-22 | 数字本草中医药检测有限公司 | 一种检测甘草酸的试纸条及其制备方法和应用 |
| CN109879961A (zh) * | 2019-03-26 | 2019-06-14 | 天津喜诺生物医药有限公司 | 一种抗隐球菌荚膜多糖单克隆抗体及其杂交瘤细胞株制备与应用 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Robertson et al. | Late asthmatic responses induced by ragweed pollen allergen | |
| RU2137130C1 (ru) | Способ раннего определения, определения тяжести заболевания и оценка процесса лечения сепсиса, а также средства для осуществления указанного способа | |
| CN100418984C (zh) | N-11端截短的β-淀粉样蛋白的单克隆抗体、组合物、方法和用途 | |
| Drummond et al. | The blue diaper syndrome: Familial hypercalcemia with nephrocalcinosis and indicanuria: A new familial disease, with definition of the metabolic abnormality | |
| DE68924773T2 (de) | Monoklonale antikörper gegen den bereich der leichten kette von menschlichem faktor xii sowie methoden zu deren herstellung und verwendung. | |
| PL178003B1 (pl) | Sposób wykrywania in vitro obecności lub ilości rozpuszczalnych sieciowanych polimerów fibryny DesAABB, sposób oceny predyspozycji do wystąpienia zakrzepu i zestaw do wykrywania in vitro obecności lub ilości rozpuszczalnych sieciowanych polimerów fibryny DesAABB | |
| CN110352073A (zh) | 针对timp-2的抗体用于改善肾功能的用途 | |
| Schück | Examination of kidney function | |
| Mitton et al. | Protein turnover rates in sick, premature neonates during the first few days of life | |
| Campbell et al. | Acute effects of peritoneovenous shunting on plasma atrial natriuretic peptide in cirrhotic patients with massive refractory ascites | |
| JPWO2003016906A1 (ja) | 糖代謝異常の診断又はモニタリング方法 | |
| Valeyre et al. | The relationships between noninvasive explorations in pulmonary sarcoidosis of recent origin, as shown in bronchoalveolar lavage, serum, and pulmonary function tests | |
| Cameron et al. | On the presence of immunoreactive growth hormone in a bronchogenic carcinoma | |
| CN110456056A (zh) | 一种新生儿苯丙酮尿症无创筛查试纸的制备方法 | |
| Giselson et al. | Renal medullary cystic disease or familial juvenile nephronophthisis: A renal tubular disease: Biochemical findings in two siblings | |
| CN110441524A (zh) | 检测苯丙酮尿症标记物的抗体在制备诊断试纸中的应用 | |
| CN110551219A (zh) | 一种苯丙氨酸单克隆抗体的制备方法 | |
| Hatori et al. | Na (+)-H+ antiport activity in skin fibroblasts from blacks and whites. | |
| Quattrin et al. | Comparison of urinary growth hormone and IGF-I excretion in small-and appropriate-for-gestational-age infants and healthy children | |
| ES2302383T3 (es) | Metodos para obtener anticuerpos contra las bacterias del acido lactico que deterioran la cerveza y su uso diagnostico. | |
| Tamura et al. | Digoxin-like immunoreactive substance in urine of patients with mucocutaneous lymph node syndrome (MCLS) | |
| CN107043752A (zh) | 杂交瘤细胞株及基于杂交瘤细胞株的抗crh抗体n‑d19及其检测方面的应用 | |
| Lavö et al. | Jejunal secretion of secretory immunoglobulins and gliadin antibodies in celiac disease | |
| Cerda et al. | Intraduodenal hydrolysis of gelatin as a measure of protein digestion in normal subjects and in patients with malabsorption syndromes | |
| Blazy et al. | Endothelin-1 in children with chronic renal failure |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| PB01 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20191115 |
|
| RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |