CN105802909B - 具有her2特异性tcr的t细胞制备物及其用途 - Google Patents
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Abstract
本发明提供包含CD8+T细胞的细胞制备物。本发明还提供制备包含修饰的CD8+T细胞的细胞制备物的方法,以及本发明的细胞制备物在治疗HER2阳性肿瘤的用途。
Description
技术领域
本发明涉及免疫学领域,并具体涉及特异性识别表达HER2的肿瘤的细胞制备物、其制备方法及其用途。
背景技术
T细胞在抗肿瘤免疫中发挥重要作用。然而,在肿瘤患者体内,局部的特异性细胞毒性T淋巴细胞(CTL)含量很少,其获取和体外扩增比较困难,且CTL的亲和力低,限制了其在肿瘤的临床治疗中的应用。T细胞过继转移是近年来获得较高关注的特异性、无毒性的抗肿瘤方法,对于血液性和实体肿瘤的治疗具有一定效果。在T细胞过继转移中,T细胞受体(TCR)基因转移是一种发展迅速的免疫治疗方法。TCR基因转移技术是从肿瘤反应性T细胞中克隆TCR的α和β链,通过基因工程技术,以逆转录病毒或慢病毒作为载体,对初始T细胞进行抗原特异性TCR修饰,从而赋予T细胞特异性识别和杀伤肿瘤细胞的能力,并提高T细胞与肿瘤的亲和力。利用TCR基因转移技术对患者自体的来源地T细胞进行TCR基因修饰,经体外扩增,获取大量具有特异高效识别能力的T细胞,再过继回输给肿瘤患者,使之在体内发挥抗肿瘤作用。
在T细胞中,TCR-α和TCR-β链形成异源二聚体,并与CD3结合形成在T细胞表面稳定存在的复合体,从而能够识别主要组织相容性复合体(MHC)和抗原肽。因此,在TCR基因转移技术中存在一个关键性的技术问题,即TCR的α和β链配对问题。
人类表皮生长因子受体2(HER2)是EGFR家族成员,属I型跨膜酪氨酸蛋白激酶。HER2高表达于多种实体肿瘤,因此可作为肿瘤治疗的靶点。研究发现,HER2抗原肽致敏的抗原递呈细胞可在体内诱导出HER2特异性的CTL细胞,发挥杀伤肿瘤的效应。因此,可以克隆和筛选出HER2高反应性的TCR的α和β链基因,制备HER2特异性TCR修饰的T细胞,靶向治疗癌症。
发明内容
本发明提供包含CD8+T细胞的细胞制备物,所述CD8+T细胞具有由α和β链组成的TCR,所述α链由SEQ ID NO:11所示的氨基酸序列组成,且所述β链由SEQ ID NO:17所示的氨基酸序列组成,或所述α链由SEQ ID NO:13所示的氨基酸序列组成,且所述β链由SEQ IDNO:18所示的氨基酸序列组成。优选地,所述α链由SEQ ID NO:1所编码,且所述β链由SEQ IDNO:7所编码;或所述α链由SEQ ID NO:3所编码,且所述β链由SEQ ID NO:18所编码。
本发明还提供制备包含修饰的CD8+T细胞的细胞制备物的方法,其包括用至少一种载体转化包含CD8+T细胞的分离的细胞群,其中,所述载体包含编码分别由SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:17所示的TCRα链和β链的氨基酸序列的核苷酸序列,或所述载体包含编码分别由SEQ ID NO:13和SEQ ID NO:18所示的TCRα链和β链的氨基酸序列的核苷酸序列在所述T细胞中表达,并且,所述修饰的CD8+T细胞表达由所述α链和β链组成的TCR。优选地,所述α链由SEQ ID NO:1所编码,且所述β链由SEQ ID NO:7所编码;或所述α链由SEQ ID NO:3所编码,且所述β链由SEQ ID NO:8所编码。
在本发明的优选实施方式中,所述细胞群包含富集的CD8+T细胞。
在本发明的更优选实施方式中,所述载体是慢病毒载体。
在本发明进一步的优选实施方式中,所述方法进一步包括体外扩增所述修饰的CD8+T细胞。
本发明还提供包含修饰的CD8+T细胞的细胞制备物,其根据上述本发明的方法制备。
本发明还提供上述本发明的制备物在制备用于治疗患有HER2阳性癌症的患者的药物中的用途。优选地,所述癌症包括乳腺癌、卵巢癌、胃癌、***癌和高度恶性子宫癌。
本发明还提供分离的多核苷酸,其包含选自SEQ ID NO:1、SEQ ID NO:3、SEQ IDNO:7和SEQ ID NO:8所示的核苷酸序列。
本发明还提供真核表达载体,其包含本发明的多核苷酸。
附图说明
图1:HER2/neu(689)抗原肽诱导的特异性CTL的流式细胞仪检测结果。
图2:HER2/neu(689)特异性CTL靶向杀伤肿瘤细胞检测。
图中A是HER2/neu(689)特异性CTL与肿瘤细胞共培养后上清中IFN-γ的含量检测,B是HER2/neu(689)特异性CTL对肿瘤杀伤能力检测。
图3:HER2特异性TCR的α和β链的膜表达检测。
图4:HER2-TCR-T细胞结合抗原肽检测结果。
图5:pLenti6.3_MCS-IRES2-EGFP慢病毒载体图谱。
图6:以流式细胞仪检测HER2-TCR慢病毒感染CD8+T的效率的结果。
图7:HER2-TCR慢病毒转染的CD8+T与肿瘤细胞共培养后,ELISA检测分泌IFN-γ的结果,其中纵坐标轴为细胞培养上清中IFN-γ的浓度。阴性对照组代表未加肿瘤细胞组。
图8:检测HER2-TCR-T细胞对HER2阳性的肿瘤细胞生长的抑制作用。
图中E:T表示CD8+T细胞与McF7细胞的细胞数的比;CFSE Low(%)表示CFSE低标记的细胞所占的比例;control表示以未改造的慢病毒转染的PBMC组。
图9:检测HER2-TCR-T细胞对HER2阳性肿瘤细胞的杀伤。
图中E:T表示CD8+T细胞与McF7细胞的细胞数的比;control表示未改造的慢病毒转染的PBMC组。
图10:过继回输HER2-TCR-T细胞对HER2阳性的肿瘤细胞抑制作用。
发明详述
在抗肿瘤免疫中,T细胞发挥重要作用。然而,天然存在的特异性CTL含量很少,并且CTL亲和力低。T细胞受体(TCR)基因转移技术可以赋予T细胞特异性识别和杀伤肿瘤细胞的能力,并提高T细胞与肿瘤的亲和力。
TCR基因转移技术是从肿瘤反应性T细胞中克隆TCR,通过基因工程技术修饰T细胞。TCR分为TCR1和TCR2,TCR1由γ和δ两条链组成,TCR2由α和β两条链组成。外周血中,90%-95%的T细胞表达TCR2;而且任一个T细胞只表达TCR2和TCR1之一。
人类表皮生长因子受体2(HER2)在多种实体肿瘤中高表达,例如乳腺癌、卵巢癌、胃癌、***癌和高度恶性子宫癌等。靶向HER2可以使T细胞特异性识别HER2阳性的肿瘤,有利于对肿瘤的治疗。
本发明筛选对HER2高反应性的TCR,并对T细胞进行修饰,制备HER2特异性TCR基因修饰T细胞,靶向治疗HER2阳性的肿瘤。
发明人克隆了4种编码TCR的α链的核苷酸,其序列分别如SEQ ID NO:1-4所示;发明人还克隆了4种编码TCR的β链的核苷酸,其序列分别如SEQ ID NO:5-8所示。
在本发明的具体实施方式中,使用TCR基因转移技术修饰CD8+T细胞,修饰的CD8+T细胞具有由选自SEQ ID NO:1-4的核苷酸序列所编码的α链和由选自SEQ ID NO:5-8的核苷酸序列所编码的β链,并且所述α和β链组成完整的TCR。
发明人发现,其中SEQ ID NO:11所示的α链和SEQ ID NO:17所示的β链配对,以及SEQ ID NO:13所示的α链和SEQ ID NO:18所示的β链配对所形成的TCR对HER2的反应性显著高于其它TCR。在本发明的一个具体实施方式中,提供具有由α和β链组成的TCR的CD8+T细胞,其中,所述α和β链分别是SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:17所示的氨基酸序列,或者,所述α和β链分别是SEQ ID NO:13和SEQ ID NO:18所示的氨基酸序列。优选地,所述α链由SEQ IDNO:1所编码,且所述β链由SEQ ID NO:7所编码;或所述α链由SEQ ID NO:3所编码,且所述β链由SEQ ID NO:18所编码。
在本发明的一些具体实施方式中,提供制备包含修饰的CD8+T细胞的细胞制备物的方法,用至少一个载体转化分离的包含CD8+T细胞的细胞群,其中,所述载体包含编码分别由SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:17所示的TCRα链和β链的氨基酸序列的核苷酸序列,或所述载体包含编码分别由SEQ ID NO:13和SEQ ID NO:18所示的TCRα链和β链的氨基酸序列的核苷酸序列在所述T细胞中表达,并且,所述修饰的CD8+T细胞表达由所述α链和β链组成的TCR。优选地,所述α链由SEQ ID NO:1所编码,且所述β链由SEQ ID NO:7所编码;或所述α链由SEQ ID NO:3所编码,且所述β链由SEQ ID NO:8所编码。优选地,所述细胞群包含富集的CD8+T细胞。更优选地,所述载体是慢病毒载体。进一步优选地,体外扩增修饰的CD8+T细胞。在本发明的一些具体实施方式中,用上述方法制备包含修饰的CD8+T细胞的细胞制备物。
在本发明的一些具体实施方式中,使用本发明的细胞制备物治疗患有HER2阳性的癌症的患者。优选地,使用本发明的细胞制备物治疗HER2阳性的乳腺癌、卵巢癌、胃癌、***癌和高度恶性子宫癌。
本发明以HER2特异性CTL细胞的cDNA为模板,利用5,RACE-PCR技术克隆HER2抗原肽特异性TCR的α和β链基因,得到TCRα和β链基因各4种。以上述克隆的TCR的四种α链基因分别和四种β链基因配对,并从中筛选出对HER2具有较高反应性的两种TCR(即α和β链配对)。修饰CD8+T细胞,使其分别表达这两种TCR。本发明还通过体内和体外实验证明,本发明的修饰的CD8+T细胞对HER2阳性的肿瘤具有杀伤作用。
实施例
实施例1.诱导识别HER2/neu的特异性CTL
分离和体外培养HLA-A2.1小鼠(Jackson Lab)(A2小鼠)的树突状细胞(DC),利用人HER2/neu(689)表位肽(RLLQETELV(SEQ ID NO:11),称为RLL肽)及无关对照肽MP-5866对DC进行致敏。然后用细菌脂多糖(Sigma公司)(LPS)诱导,得到成熟的DC。取1×106DC经尾静脉注射免疫A2小鼠。重复免疫3-4次(每周一次)后,取小鼠的脾脏和***,分离T细胞,利用表位肽特异性四聚体(ProImmune公司)和CD8荧光抗体(Invitrogen)共同标记淋巴细胞,并以FACSCalibur流式细胞仪(购自Becton Dickinson公司,型号:BD LSRII)检测双阳性的细胞,结果显示,成功诱导出具有RLL特异性的CTL,其中,RLL特异性的CTL在***中的比例高于脾脏(图1)。
用流式细胞仪分选出上述RLL特异性CTL,并进行体外功能实验。结果显示这群CTL细胞可靶向杀伤A2阳性的结肠癌细胞SW620细胞,对预先吸附RLL的SW620细胞显示出更强的杀伤活性;但对A2阴性的肺癌细胞MDA-MB-231无杀伤能力(图2)。
实施例2.克隆HER2/neu特异性TCR基因
以实施例1中分选出的HER2特异性的CTL细胞cDNA为模板,利用5’RACE-PCR技术克隆HER2抗原肽特异性TCRα和β链基因。基因特异性引物(GSP):TCRα链GSP:aggagaagccccgcccctgccgt(SEQ ID NO:9,TM79.2℃);TCRβ链GSP:cccaggcctctgcactgatgttc(SEQ ID NO:10,TM 73.7℃)。cDNA第一链和第二链的合成按照试剂盒(Clontec)说明书进行。
以如下方法合成第一链DNA(5’-RACE-Ready cDNA):
1.将2μL 5×first Strand Buffer、1μL DTT(20μm)和1μL dNTP Mix(10μm)混合,得到总体积4μL的混合物A;
2.将1.0-2.75μL从HER2特异性CTL抽提的RNA和1μL 5,-CDSprimer A混合并加水至总体积3.75μL,混匀并离心,得到混合物B;
3.将混合物B置于72℃,3分钟,再置于42℃,2分钟,然后14000g离心10秒;
4.向混合物B中加1μL SMARTer IIA oligo,得到总体积为4.75μL的混合物C;
5.将4μL混合物A、4.75μL混合物C、0.25μL Rnase Inhibitor和1μL SMARTScriberReverse Transcriptase混合,置于42℃,90分钟,再置于70℃,10分钟,然后加入20μLTricine-EDTA-Buffer。
然后,扩增目的片段。扩增反应的体系为34.5μL PCR-Grade Water、5μL10×Advantage 2PCR Buffer、1μL dNTP Mix、1μL 50×Advantage 2Polymerase Mix、2.5μL5’-RACE-Ready cDNA、5μL UPM(10×)和1μL GSP(10μm)。扩增反应程序为:94℃30s,72℃3min,进行5个循环;94℃30s,70℃30s,72℃3min,进行5个循环;94℃30s,68℃30s,72℃3min,进行27个循环。
PCR产物经胶回收纯化后直接以T/A连接***pMD18-T载体(购自Takara,),进行测序、同源比对并以IMGT软件分析出TCR的α和β链基因序列。共克隆了HER2/neu(689)特异性的TCR的四种α链基因(TCRα1-4)和四种β链基因(TCRβ1-4)。
实施例3.克隆的HER2/neu特异性TCR的α和β链基因表达模式分析
首先使用pcDNA3.1表达载体(Invitrogen公司)构建TCRα真核表达载体(Flag标签)和TCRβ真核表达载体(HA标签),并以如下方法分别转染293T细胞:将293T细胞接种于6孔细胞培养板,在37℃,5%CO2的条件下在细胞培养箱中培养过夜;将1μg TCRα-Flag质粒或1μg TCRβ-HA质粒溶于100μL的50nM NaCl溶液中,得到溶液I;将5-10μL JetPEI转染试剂(购自Polyplus公司)溶于100μL的50nM NaCl,得到溶液II,静置5分钟;将溶液I和II混合,在室温作用15分钟,随即将混合物加入待转染的细胞中,转染细胞48小时。
然后,用FocusTMGlobal Fraction Kit(G-Biosciencesiosciences公司)分离转染的细胞的膜蛋白,并用BCA法定量蛋白质样品。取50μg蛋白质进行SDS-PAGE电泳并进行Western Blot检测,其中使用抗Flag、HA和GAPDH的抗体(Cell Signaling Technology,货号依次为#8146、#2367和#2118,来源依次为鼠源、鼠源和兔源)作为一抗,HRP抗鼠(Santacruz,货号sc-2748)和HRP抗兔(Santacruz,货号sc-2749)作为二抗。以Syngene BioImaging Systems(Frederick,MD)观察Western Blot检测的结果,发现四种TCRα基因和四种TCRβ基因均定位在细胞膜(如图3所示)。
实施例4.抗原肽结合分析
将TCRα真核表达载体之一和TCRβ真核表达载体之一共转染293T细胞,转染方法如实施例3中所述。转染的293T细胞与FITC标记的RLL肽(委托生工公司进行)共同温育4小时,用流式细胞仪检测与RLL肽的结合。结果发现表达TCRα1-TCRβ3及TCRα3-TCRβ4的293T细胞均显示出较强的与RLL肽结合的能力(如图4所示,其它组合的数据未显示),说明TCRα1-TCRβ3及TCRα3-TCRβ4这两种组合显示出对RLL肽的高亲和力。实施例5.制备HER2特异性TCR修饰的T细胞
将HER2特异性的TCRα1或TCRα3基因***携带GFP编码基因的穿梭质粒pLenti6.3_MCS-IRES2-EGFP载体(图5),将HER2特异性TCRβ3或TCRβ4的基因***携带DSRED编码基因的穿梭质粒pLenti6.3_MCS-IRES2-DSRED载体(其结构与图5的载体相似,只是DSRED替换EGFP),构建相应的慢病毒载体,序列***在限制性酶切位点BamHI和AscI之间。
将293T细胞接种入10cm培养皿,过夜培养;用质粒包装***(Invitrogen)与病毒载体共转染,换液,继续培养2-3天,并收集病毒液;2000g离心10min以除去细胞及其碎片,并以0.45μm滤膜过滤上清液,获得病毒原液;将病毒超速离心浓缩100倍,测定病毒活性滴度为109。所得病毒分别命名为TCRα1β3-lentvirus和TCRα3β4-lentivirus。上述工作是Invitrogen公司提供的商业化服务。
将这两种病毒分别转染从A2小鼠分离的CD8+T细胞,并用FACSCalibur流式细胞仪检测转染的细胞。结果显示,两种慢病毒转染CD8+T细胞各获得了HER2/neu-TCR-T细胞,转染中的病毒感染率高于50%(图6)。
实施例6.HER2/neu-TCR T细胞抗肿瘤功能的体外鉴定
首先,检测了HER2/neu-TCR-T细胞分泌杀伤性细胞因子的情况,发现实施例5中获得的两种HER2/neu-TCR-T细胞与HER2阳性的、A2阳性的乳腺癌细胞系McF7或卵巢癌细胞CAOV-3共同温育时,上清中可检测到较高水平IFN-γ;而与HER2阴性且A2阴性的乳腺癌细胞系MDA-MB-231细胞共同温育时,分泌的IFN-γ水平很低(图7)。
进一步,检测了HER2/neu-TCR-T细胞的肿瘤杀伤能力。用CFSE(sigma公司)标记McF7或MDA-MB-231细胞24小时;分别与两种HER2/neu-TCR-T细胞共孵育48小时;然后用流式细胞仪检测肿瘤细胞的增殖情况。结果显示两种HER2/neu-TCR-T细胞均可明显抑制McF7细胞的增殖(图8),但对MDA-MB-231没有影响(数据未显示)。此外,体外杀伤功能实验显示两种HER2/neu2-TCR-T细胞均具有较强的杀伤HER2/neu2阳性的、A2阳性肿瘤的能力(图9)。
实施例7.HER2/neu-TCR-T细胞抗肿瘤功能的体内鉴定
首先,制备具有HER2阳性、A2阳性肿瘤的荷瘤小鼠膜型:培养McF7细胞,制备浓度2×107细胞/ml的细胞悬液,将100μL细胞悬液(即2×106个细胞)皮下接种于裸鼠右后腿外侧。每隔两日观测所述裸鼠,例如,接种部位有无感染、接种的肿瘤有无消退现象。用游标卡尺测量肿瘤的长径a和短径b,利用公式V=a×b2/2计算肿瘤的体积。制备荷瘤小鼠的成功率高于70%。
当肿瘤长至3mm3后,尾静脉或腹腔注射体外扩增的两种HER2/neu-TCR-T细胞和对照T细胞(用未***TCR的慢病毒载体转染的CD8+T细胞),其中,每只小鼠注射4×106T细胞,每实验组5只小鼠。每周测量肿瘤大小和小鼠体重,并观察小鼠的存活情况;在过继回输第35天处死小鼠,剥离肿瘤,观测肿瘤大小。结果如图10所示,发现过继回输两种HER2/neu-TCR-T细胞均可显著抑制肿瘤的生长。从图10可以看出,HER2-TCRα3/β4-T细胞具有较强的抑瘤效应。这提示,过继回输HER2-TCR-T细胞具有抑制HER2阳性肿瘤生长的效果。以上结果说明HER2/neu-TCR-T细胞对HER2/neu2阳性的肿瘤具有杀伤功能,能够抑制肿瘤细胞的生长。
Claims (10)
1.一种包含CD8+T细胞的细胞制备物,所述CD8+T细胞具有由α和β链组成的TCR,其中
所述α链由SEQ ID NO:11所示的氨基酸序列组成,且所述β链由SEQ ID NO:17所示的氨基酸序列组成。
2.权利要求1的细胞制备物,其中
所述α链由SEQ ID NO:1所编码,且所述β链由SEQ ID NO:7所编码。
3.一种制备包含修饰的CD8+T细胞的细胞制备物的方法,其包括用至少一种载体转化包含CD8+T细胞的分离的细胞群,其中
所述载体包含编码分别由SEQ ID NO:11和SEQ ID NO:17所示的TCRα链和β链的氨基酸序列的核苷酸序列,
并且,所述修饰的CD8+T细胞表达由所述α链和β链组成的TCR。
4.权利要求3的方法,其中
所述α链由SEQ ID NO:1所编码,且所述β链由SEQ ID NO:7所编码。
5.权利要求3或4的方法,其中所述细胞群包含富集的CD8+T细胞。
6.权利要求3或4的方法,其进一步包括体外扩增所述修饰的CD8+T细胞。
7.一种包含修饰的CD8+T细胞的细胞制备物,其根据权利要求3-6中任一项的方法制备。
8.权利要求1、2或7的细胞制备物在制备用于治疗患有表皮生长因子受体2阳性的癌症的患者的药物中的用途。
9.一种组合物,其包含SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:7所示的核苷酸序列。
10.一种组合物,其包含真核表达载体中的SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:7所示的核苷酸序列。
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Legal Events
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PB01 | Publication | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
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GR01 | Patent grant | ||
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