CN105675800A - 包括中和剂的灭菌指示器以及方法 - Google Patents

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图沙尔·A·克希尔萨加尔
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Abstract

本发明公开了包括中和剂的灭菌指示器以及方法，此类指示器可用于通过测量活性酶的活性来测试灭菌工序的有效性，所述活性酶的活性与微生物的存活相关联。

Description

包括中和剂的灭菌指示器以及方法
本申请是申请日为2011年12月20日、申请号为201180061941.0(国际申请号为PCT/US2011/066079)、发明名称为“包括中和剂的灭菌指示器以及方法”的发明专利申请的分案申请。
相关专利申请的交叉引用
本申请要求于2010年12月22日提交的美国临时专利申请号61/426,291的优先权。
背景技术
灭菌指示器(也称为生物指示器)提供了用于确定灭菌机器(例如用于对医院中的外科器械灭菌的那些)是否适当地发挥功能以及是否在灭菌工序中杀灭存在于灭菌室中的微生物的装置。
在本领域中公认灭菌指示器能提供用于测试灭菌工序的有效性的准确且精确的装置。常规灭菌指示器通过监测容纳在灭菌指示器内的测试微生物的存活来度量灭菌工序的有效性，所述测试微生物对灭菌过程的耐受性比将通常由天然污染提供的大多数微生物高数倍。使灭菌指示器经受灭菌周期并且随后在将促进任何存活的测试微生物的生长的条件下进行温育。如果灭菌周期失效，则灭菌指示器产生指示生物样本仍存活的可检测信号。可检测信号常常为如下指示，例如颜色变化或者发出冷光或荧光信号。
一种熟知类型的灭菌指示器采用得自细菌或真菌的孢子(其对灭菌极其耐受)来测试灭菌工序的有效性。典型的灭菌指示器具有由可压缩、塑性材料制成的外部容器(如，管、套管、或安瓿)和由易破碎材料(例如玻璃)制成的密封内部容器(如，管、套管、或安瓿)。外部容器上的不能透过细菌、透气的覆盖物允许灭菌剂在灭菌工序期间进入外部容器。位于一块载体上的活孢子设置在外部容器和内部容器的壁之间。内部容器包含刺激活孢子的生长的生长培养基。在灭菌工序期间，灭菌剂通过盖件进入外部容器并且接触载体内的孢子。在灭菌工序之后，通过压缩外部容器来压缩内部容器，由此释放生长培养基并且使其接触载体内的孢子。然后在刺激孢子生长的条件下来温育指示器。如果灭菌工序无效，则存活孢子将生长并且引起生长培养基中的pH指示剂改变颜色，由此指示出灭菌周期不能杀灭微生物测试群并且可能已不能杀灭存在于灭菌器载液中的污染微生物。尽管依赖于孢子生长的灭菌指示器为准确的，但它们为缓慢的，通常需要1到7天才能提供最终结果。
相比于测量仅孢子生长的灭菌指示器，酶指示器提供快速应答(通常在大约几小时内)。这种指示器通过测量酶的活性来测量灭菌工序的有效性，所述酶的活性与污染微生物在灭菌工序期间的毁灭相关联。指示器具有可压缩的外部容器、易破碎的内部容器、以及不能透过细菌但透气的盖件。活性酶浸渍在位于外部和内部容器的壁之间的载体上，并且与活性酶反应的底物容纳在密封的内部容器中。在灭菌工序期间，灭菌剂进入外部容器并且接触载体内的活性酶。在灭菌工序之后，压碎内部小瓶，使酶条带暴露于底物并且进行温育。如果灭菌工序适当地起作用，则酶在该工序期间被灭活并且在温育之后不存在可检测的变化。然而，如果灭菌工序无效，则酶未被灭活并且将与底物反应以形成可检测的产物。酶-底物产物可被检测为颜色变化或者荧光或冷光信号。
双作用快速读出式指示器为通过测量经受灭菌工序之后的酶活性和孢子生长两者来测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器。酶体系给出灭菌周期的有效性的快速指示，这随后通过在较长时间段上测量孢子生长进行确认。在双作用快速读出式指示器中，用于指示器的孢子生长部分中的活孢子也可充当用于此分析的酶活性部分中的活性酶源。快速酶测试测量与孢子相关的酶的活性，并且随后温育孢子自身以促使在灭菌工序中存活的任何孢子的生长。得自明尼苏达州圣保罗(St.Paul,MN)的3M公司的3MATTEST1291和1292快速读出式生物指示器为双作用快速读出式指示器，其通过测量与指示器中的嗜热脂肪土芽孢杆菌(先前称为嗜热脂肪芽孢杆菌)孢子相关的酶的活性以及孢子自身的存活来测试灭菌周期的有效性。
发明内容
本发明涉及用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器以及使用方法。本发明的灭菌指示器可为测量孢子生长的指示器(在本文中称为孢子生长指示器)、测量酶活性并且提供快速应答的指示器(在本文中称为酶基指示器)、或者通过测量经受灭菌工序后的酶活性和孢子生长来测试灭菌工序的有效性的指示器(在本文中也称为酶基指示器，并且更具体地讲称为酶基/孢子生长指示器)。
在一个实施例中，本发明提供了用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器，其中所述指示器包括：容器，其具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在灭菌工序期间进入容器；容纳在容器内的载体；由载体承载的生物材料，所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因有效的灭菌工序而灭活并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及用于形成灭菌工序失效的可检测指示的装置。其可为孢子生长指示器(其中所述生物材料包括孢子，并且可检测指示为pH指示)。作为另外一种选择，其可为酶基指示器(其中所述生物材料包括活性酶源，并且可检测指示包括可检测的荧光、发光和/或显色指示)。酶基指示器可为双作用酶基/孢子生长指示器(其中所述生物材料包括也适用于孢子生长测试的活性酶源，并且可检测指示包括可检测的荧光、发光和/或显色指示以及随后的pH指示)。
在另一个实施例中，本发明提供了用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器，其中所述指示器包括：容器，其具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在灭菌工序期间进入容器；容纳在容器内的载体；包括活性酶源的生物材料，其中所述活性酶源由载体承载；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死测试微生物的灭菌工序而灭活；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及用于形成酶改性产物的装置，所述酶改性产物提供灭菌工序失效的可检测指示。
在另一个实施例中，本发明提供了用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器，其中所述指示器包括：外部容器，其具有至少一个开口以允许灭菌剂在灭菌工序期间进入外部容器；容纳在外部容器内的载体；包括活性酶源的生物材料，其中所述活性酶源由载体承载；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死测试微生物的灭菌工序而灭活；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及位于外部容器内的易破碎内部容器，其中所述内部容器：不能透过用于灭菌工序中的灭菌剂；包括酶底物；并且适于使其可破碎，由此允许酶底物与活性酶反应，以形成提供灭菌工序失效的可检测指示的酶改性产物。
在另一个实施例中，本发明提供了用于测试过氧化氢灭菌工序的有效性的快速读出式过氧化氢灭菌指示器，其中所述指示器包括：外部容器，其具有至少一个开口以允许过氧化氢灭菌剂在灭菌工序期间进入外部容器；容纳在外部容器内的载体；包括活性酶源的生物材料，其中所述活性酶源由载体承载；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死测试微生物的灭菌工序而灭活；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的过氧化氢灭菌剂；以及位于外部容器内的易破碎内部容器，其中所述内部容器：不能透过用于灭菌工序中的过氧化氢灭菌剂；包括含有酶底物和中和剂的混合物，所述中和剂以能有效中和残余的过氧化氢灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；并且适于使其可破碎，由此允许酶底物与活性酶反应以形成酶改性产物，所述酶改性产物提供过氧化氢灭菌工序失效的可检测指示，其中所述可检测指示在8小时或更短的时间内形成。
本发明还提供了使用方法。在一个实施例中，本发明提供了用于测试灭菌工序的有效性的方法，所述方法包括：提供灭菌指示器，所述灭菌指示器包括：容器，其具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在灭菌工序期间进入容器；容纳在容器内的载体；由载体承载的生物材料，所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因有效的灭菌工序而灭活并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及用于形成灭菌工序失效的可检测指示的装置；使包括生物材料的灭菌指示器经受灭菌工序；在灭菌之后，使灭菌指示器经受培育工序以确定存在还是不存在可检测指示；以及使可检测指示的存在与灭菌工序的失效相关联，并且使可检测指示的不存在与灭菌工序的成功相关联。
使用示例性的孢子生长灭菌指示器来测试灭菌工序的有效性的方法包括：提供灭菌指示器，所述灭菌指示器包括：载体；包括孢子的生物材料，其中所述孢子由载体承载；所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因有效的灭菌工序而灭活并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；和中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；使包括生物材料的灭菌指示器经受灭菌工序；在灭菌之后，将生物材料与包含pH指示剂的生长培养基混合，并且在刺激孢子生长的条件下来温育生物材料和生长培养基的混合物；确定在生物材料中存在还是不存在具有可检测的pH信号的存活孢子；以及使可检测的信号的存在与灭菌工序的失效相关联，并且使可检测的信号的不存在与灭菌工序的成功相关联。
使用示例性的酶基灭菌指示器来测试灭菌工序的有效性的方法包括：提供灭菌指示器，所述灭菌指示器包括：载体；包括活性酶源的生物材料，其中所述活性酶源由载体承载；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死测试微生物的灭菌工序而灭活；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；和酶底物，其在灭菌工序失效时与活性酶反应以形成具有可检测的信号的酶改性产物；使活性酶源经受灭菌工序；将酶和底物混合以形成酶改性产物；确定存在还是不存在具有可检测的信号的酶改性产物；以及使可检测的信号的存在与灭菌工序的失效相关联，并且使可检测的信号的不存在与灭菌工序的成功相关联。在尤其优选的实施例中，灭菌指示器为双作用快速读出式指示器，并且活性酶源包括如下微生物的孢子，所述微生物的孢子充当用于酶活性测试的活性酶源以及用于孢子生长测试的测试微生物。
在本文中，“多孔”载体是指灭菌剂可在正常灭菌条件(这些条件由特定灭菌工序来限定)下穿过载体。“三维”多孔载体为占据所在容器(如，双容器装置的外部容器)的体积的至少5％的载体。
在本文中，“由载体承载”是指生物材料可设置在载体的表面上(具体地讲，如果其并非为多孔的)或者可分布在多孔载体内。
在本文中，“分布在多孔载体内”是指生物材料可均匀地或不均匀地贯穿分布在多孔载体的体积的至少一部分中(即，并非仅在其表面上)。“分布在内部”包括贯穿分布在(并且均匀地贯穿分布在)多孔载体的整个体积中。
在本文中，“生物材料”是指由载体承载的与至少一种测试微生物的存活相关联，并且有助于形成可检测的信号的材料。即，生物材料因有效的灭菌工序而灭活(如，杀灭)，并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示。生物材料可为充当活性酶源的孢子或其他微生物。活性酶源也可为分离酶。
在本文中，“测试微生物”是指常用于检测灭菌工序的有效性的微生物，例如嗜热脂肪土芽孢杆菌。
在本文中，就制备载体的材料而言，术语“亲水性”是指具有零接触角(即，被水润湿)。此疏水性材料可为无机物、有机物、或它们的组合。
在本文中，就制备载体的材料而言，术语“疏水性”是指在非零接触角下测量为斥水的，如在E.Sharfrin等人的TheJournalofPhysicalChemistry(物理化学杂志)，64(5):519-524(1960)中所述。此疏水性材料可为无机物、有机物、或它们的组合。
当术语“包括”和其变型出现在说明书和权利要求书中时，这些术语不具有限制性含义。
词语“优选的”和“优选地”是指在某些情况下，可以提供某些有益有效性的本发明实施例。然而，在相同的情况或其他情况下，其他实施例也可以是优选的。此外，对一个或多个优选实施例的表述并不暗示其他实施例是不可用的，且并非意图将其他实施例排除在本发明范围之外。
本文所用的“一种(个)”、“所述(该)”、“至少一种(个)”以及“一种或多种(一个或多个)”可互换使用。
如本文所用，术语“或”一般以包括“和/或”的普通含义使用，除非内容另外明确指明。术语“和/或”是指所列要素中的一者或全部或者所列元素中的任何两者或更多者的组合(如，预防和/或处理痛苦是指预防、处理、或既处理又预防更多的痛苦)。
本文中的所有数字均假定被术语“约”并且优选地由术语“精确”修饰。如本文结合测得数量所用，术语“约”是指将被技术人员预期到的测得数量的变化，所述技术人员实施测量并且运用与所用测量设备的测量目标和精度相当的谨慎水平。由端点表述的数值范围包括涵盖在该范围内的所有数字(如，1至5包括1、1.5、2、2.75、3、3.80、4、和5)。本发明中描述的份数，包括下面的实例部分中描述的份数，除非另外指明，皆以重量计。
本发明的上述发明内容并非旨在描述本发明所公开的每个实施例或每种实施方式。以下描述更具体地举例说明了示例性实施例。在整个申请的若干地方，通过实例清单提供了指导，所述实例可以按多种组合方式来使用。在每一种情形下，所列举的清单仅仅作为代表性群组，而不应被理解为排他性清单。
附图说明
图1为本发明的灭菌指示器的实施例的分解视图。
图2为图1所示的装置的剖视图。
图3为本发明的灭菌指示器的可供选择的实施例的分解视图。
图4为图3所示的装置的剖视图。
图5为本发明的灭菌指示器的优选实施例的分解视图。
图6为图5所示的装置的剖视图。
图7为本发明的灭菌指示器的可供选择的优选实施例的分解视图。
图8为图7所示的装置的剖视图。
图9a为示例性方法的流程图，所述示例性方法用于制备本发明的三维多孔载体以及将生物材料(如，孢子)添加到三维多孔载体以使其分布在载体内。
图9b为具有分布在三维多孔载体内的孢子的三维多孔载体的分解视图。
图10为本发明的灭菌指示器的可供选择的优选实施例的分解视图。
图11为图10所示的装置的透视图。
具体实施方式
本发明提供了用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器，其中所述灭菌指示器包括一种或多种中和剂。
一般来讲，在本文中，用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器包括：容器(如，管、套管、或安瓿)，其具有至少一个开口以允许灭菌剂在灭菌工序期间进入容器；容纳在容器内的载体；由载体承载的生物材料，所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；以及用于形成灭菌工序失效的可检测指示的装置。其中可使用本发明的中和剂的灭菌指示器的实例包括描述于美国专利No.5,486,459(Burnham等人)或美国专利No.6,897,059(Foltz等人)中的那些。
本发明的灭菌指示器可测量经受灭菌工序之后的仅孢子生长、仅酶活性、或者酶活性和孢子生长这两者。优选的灭菌指示器测量活性酶的活性，所述活性酶的活性与测试微生物的存活相关联。
选择由载体承载的生物材料以使其因致死测试微生物的灭菌工序而灭活(如，杀灭)，但其中所述生物材料不会因亚致死测试微生物的灭菌工序而灭活。即，生物材料因有效的灭菌工序而灭活，并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示。优选地，对于酶基灭菌指示器而言，生物材料为活性酶源，所述酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述活性酶源因致死测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死测试微生物的灭菌工序而灭活。
可用于孢子生长指示器中的生物材料包括孢子或繁殖体状态的细菌或真菌。对于酶基灭菌指示器而言，生物材料包括活性酶源，所述活性酶源可为：(1)衍生自适当微生物的纯化、分离酶；(2)微生物，其中酶是内源酶，或通过基因工程添加的；或(3)其中已在孢子形成或生长期间添加酶的微生物。在本发明的灭菌指示器中，选择生物材料(无论其为酶、微生物、还是孢子)以使其因致死测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述生物材料可不会因亚致死测试微生物的灭菌工序而灭活。
用于生物材料的载体可由疏水性或亲水性的材料制成。这些材料可为无机物、有机物、或它们的组合。包括疏水性材料(或由其制备)的载体可用于任何指示器，而包括亲水性材料(或由其制备)的载体优选地用于监测使用过氧化氢蒸气相的灭菌工序。合适疏水性材料的实例包括聚丙烯、聚氨酯、尼龙、包含这些聚合物中的一者或多者的聚合物共混物(如，与其他疏水性聚合物的共混物)、或它们的组合。合适亲水性材料的实例包括玻璃、人造丝、纤维素、包含这些聚合物中的一者或多者的聚合物共混物(如，与其他亲水性聚合物的共混物)、或它们的组合。
本发明的灭菌指示器可适当地用于监测一种或多种类型的灭菌工序的有效性，所述灭菌工序包括使用蒸汽、过氧化氢蒸气相(其可包括或可不包括过氧化氢等离子体)、环氧乙烷气体、干热、环氧丙烷气体、甲基溴化物、二氧化氯、甲醛和过乙酸(单独使用或结合另一种材料的蒸气相使用)、臭氧、以及它们的组合的灭菌工序。例如，本发明的灭菌指示器可用于监测本领域已知的过氧化氢等离子体灭菌工序中的任何一种的有效性，所述过氧化氢等离子体灭菌工序包括例如描述于美国专利No.4,643,876(Jacobs等人)和美国专利No.4,756,882(Jacobs等人)中的工序。优选地，灭菌指示器可用于监测使用氧化性灭菌剂的蒸气相灭菌工序的有效性。更优选地，灭菌指示器可用于监测过氧化氢蒸气相灭菌工序的有效性。
尽管过氧化氢(H2O2)作为灭菌剂具有长期的使用史，但在过去的十年中已形成了蒸气相过氧化氢(VPHP)灭菌的观念。此过程为杀灭宽泛范围的微生物的低温灭菌过程，所述微生物包括常用作测试物有机物以评价和验证医院中的灭菌周期的有效性的产细菌内生袍子的细菌。过氧化氢的主要优点为其短期接触周期(几分钟)。此外，在过氧化氢灭菌过程结束时，仅空气和水保留在室中。尽管具有这些优点，但当前在市场上无法获得用于过氧化氢灭菌过程监测的自备式快速读出式生物指示器。值得注意的是，本文所述的灭菌指示器的新颖特征允许开发出快速读出式过氧化氢灭菌指示器。
在某些情况下，灭菌指示器的一个或多个部件(如，生物材料的载体、容器的壁)可保留残余的氧化性灭菌剂。这可发生于过氧化氢蒸气以及其他蒸气灭菌剂，例如臭氧和过乙酸。例如，某些载体材料(尤其是具有零接触角的那些(即，亲水性的，例如玻璃纤维和纤维素材料))可保留残余的氧化性灭菌剂(尤其是过氧化氢)。在此上下文中，“残余的”是指抑制少量存活孢子生长的保留下来的灭菌剂的量。通常，这意味着每微克载体保留有不止10微克灭菌剂。在某些情况下，残余的灭菌剂的量可大于40微克灭菌剂/毫升生长培养基。作为比较，如果载体材料具有大于90°的接触角，则其为疏水性的，并且每微克载体通常保留有不超过10微克的灭菌剂。
在这种灭菌指示器中，将一种或多种中和剂(其并非为酶并且并非为金属催化剂(如美国专利No.5,552,320(Smith)所限定))设置在灭菌指示器内。中和剂为与残余的灭菌剂(如，过氧化氢)反应以中和其有效性的材料，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂。酶中和剂通常在高温下为不稳定的，因此并非为理想的。
中和剂的合适实例包括含硫材料(例如甲硫氨酸、L-半胱氨酸、D-乙硫氨酸、S-甲基-L-半胱氨酸、S-苄基-L-半胱氨酸、硫代硫酸钠、谷胱甘肽、L-胱硫醚、N-乙酰基-L-半胱氨酸、羧甲基半胱氨酸、D,L-高半胱氨酸、D,L-高半胱氨酸-硫代内酯、和硫代二丙酸)和非含硫材料(例如异抗坏血酸、铁***、和丙酮酸钠)。可使用这些中和剂的各种组合。优选的中和剂包括甲硫氨酸、L-半胱氨酸、D-乙硫氨酸、S-甲基-L-半胱氨酸、S-苄基-L-半胱氨酸、硫代硫酸钠、硫代二丙酸、异抗坏血酸、铁***、丙酮酸钠、以及它们的组合。
可将一种或多种此类中和剂设置在灭菌指示器的多个位置中，前提条件是中和剂受到保护以防在工序的灭菌阶段期间与灭菌剂发生直接作用。例如，可将一种或多种中和剂设置在点眼药器中(如美国专利No.5,486,459(Burnham等人)所示)、或内部容器中(如，安瓿)(如美国专利No.6,897,059(Foltz等人)和本文所示)。优选地，将一种或多种中和剂在工序的灭菌阶段期间与灭菌剂隔离，但随后在工序的培育阶段期间(即，在形成可检测指示的过程中)允许与任何残余的灭菌剂进行接触。优选地，通过将一种或多种中和剂设置在内部容器(如，安瓿)中来使其与灭菌过程隔离。
在某些实施例中，本发明提供了用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器，所述指示器包括：容器，其具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在灭菌工序期间进入外部容器；容纳在容器内的载体；由载体承载的生物材料，所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因致死测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述生物材料不会因亚致死测试微生物的灭菌工序而灭活；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及用于形成灭菌工序失效的可检测指示的装置。在某些实施例中，生物材料分布在载体内(优选的是，均匀地贯穿分布在载体的整个体积中)。
在本发明的灭菌指示器中，载体可包括片状形式的材料，而不管其是多孔的还是无孔的(优选的是，其为多孔的)。作为另外一种选择，其可为允许活性酶源分布在三维多孔载体内的独特三维多孔构型形式。在此上下文中，“分布在三维多孔载体内”是指生物材料(如，活性酶源)可均匀或非均匀地贯穿分布在三维多孔载体的至少一部分体积中(与仅位于其表面上相反)。为了获得较好的结果，生物材料优选地贯穿分布在(更优选地，均匀地分布在)三维多孔载体的整个体积中。这可通过共混(如，在实验室共混机中)片状材料例如以形成三维多孔构型并且在共混之前、期间、或之后混入生物材料(如，活性酶源)来实现。
本文所述的三维多孔载体比用于灭菌指示器中的常规载体具有显著较大的体积。这意味着此实施例的载体材料比常规载体占据较大的三维空间并因此称为三维多孔载体。相比之下，公开于美国专利No.6,897,059(Foltz等人)中的平坦载体条带被视为二维载体，并且适用于本发明的某些实施例。通常，三维多孔载体占据其所在容器(如，双容器装置的外部容器)的体积的至少5％。在某些实施例中，三维多孔载体占据其所在容器(如，双容器装置的外部容器)的体积的至少10％、或至少15％、或至少20％。通常，三维多孔载体占据其所在容器(如，双容器装置的外部容器)的体积的不超过50％、或不超过40％、或不超过30％。
通常，与设置在常规二维和/或无孔载体上的一定量的生物材料形成对照的是，相同量的生物材料分布在本发明的三维多孔载体内。这可实现生物材料(如，孢子)的较均匀分布，从而相比于位于常规载体上的较致密堆积和聚簇的生物材料，允许灭菌剂较彻底地渗透到三维多孔载体内并且与生物材料具有较均匀的接触。因此，本文所述的三维多孔载体可提供如下优点中的一个或多个：较快的灭活(如，杀灭)；较高的可重复性；较高的精度；和较清晰的终点。在较少孔和较小体积的常规载体中，生物材料可形成团块，这可抑制灭菌剂渗透到团块的中心内。因此，可不存在清晰的终点，这可导致灭菌失效的错误指示。因此，用作多孔载体的材料的物理形式(如，大体积三维构型)具有提高蒸气相灭菌过程的速度和精度的能力。这尤其可用于过氧化氢蒸气过程中。
在某些实施例中，三维多孔载体具有大于5％、大于10％、大于15％、大于20％、大于25％、大于30％、或大于35％的密实度(如实例部分中所限定)。在某些实施例中，三维多孔载体具有不大于50％、不大于45％、或不大于40％的密实度。
在某些实施例中，三维多孔载体的材料的有效纤维直径(如实例部分中所限定)大于10微米、大于15微米、大于20微米、大于25微米、大于30微米、大于35微米、大于40微米、大于45微米、或大于50微米。在某些实施例中，三维多孔载体的材料的有效纤维直径不大于100微米、不大于90微米、或不大于80微米。
可通过多种方式来制备多孔载体。在一种示例性方法中，如实例部分中更详细所述并且如图9a所示，通过在实验室共混机中共混非织造片状材料以获得较大体积的结构(如，类似于棉球的三维结构)来将非织造片状材料转变成三维结构(步骤1)。作为另外一种选择，其可通过用于制备非织造材料的标准技术来进行短切、熔喷、或制备。然后从共混机中移出此三维多孔载体(步骤2)并且放置在容器内(步骤3)(如，示于图1和2中的外部容器)，并且将所需的生物材料(如，孢子)施用到多孔载体(步骤4)。容器随后可进行混合(如，仅通过挤压)并且可根据生物材料的需要来进行进一步的处理(步骤5)(如，在58℃下温育16小时(过夜))以提供分布在三维多孔载体内的生物材料(如图9b所示，其中箭头表示灭菌剂的流动)。然后可利用诸如屏蔽件、包含酶底物或生物培养基的内部安瓿(例如，过滤器)、和打孔盖件之类的部件来装配灭菌指示器(步骤6)，这对于本领域的技术人员而言为熟知的。
因此，可通过如下方法来制备包括三维多孔载体的灭菌指示器，所述方法包括：提供容器，所述容器具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在灭菌工序期间进入容器；提供三维多孔载体(如，提供片材形式的非织造材料并且共混该片材以形成三维结构)；将三维多孔载体以足以占据容器的体积的至少5％的量放置到容器中；将生物材料设置在三维多孔载体中以使其分布在三维多孔载体内，所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因有效的灭菌工序而灭活并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示；任选地将用于形成灭菌工序失效的可检测指示的装置(即，一个或多个部件)设置在容器中；以及将容器、三维多孔载体、生物材料、和其他任选部件(用于形成可检测指示的部件、屏蔽件等)装配到形成灭菌指示器的装置中(包括完成灭菌指示器构造(例如，使用打孔盖件)的其他步骤)。
本发明的灭菌指示器包括用于形成灭菌工序失效的可检测指示的装置。例如，本发明的灭菌指示器可包括用于形成酶改性产物(如，由酶底物与活性酶的反应形成)的装置，所述酶改性产物提供灭菌工序失效的可检测指示。这通常称为酶活性测试。灭菌工序失效的这种可检测指示优选地包括可检测的荧光、发光和/或显色指示。这些指示优选地用于快速读出式灭菌指示器中的快速酶应答。在此上下文中，“快速读出式”是指在小于24小时并且优选在8小时或更短的时间内形成可检测的信号。
在本发明的灭菌指示器的某些实施例(如，双作用读出式灭菌指示器和仅基于孢子生长的生物指示器)中，灭菌工序失效的可检测指示包括可检测的pH指示。所使用的pH指示通常在孢子生长24小时之后并且常在7天之后出现。在双作用读出式灭菌指示器中，这提供出用于验证快速读出的可靠性的机制。一般来讲，pH指示剂为用于辨识酸形成的物质，例如溴甲酚紫。这为得自荧光、发光和/或显色指示(用于快速酶应答)的读出特性的稳定性和/或可靠性提供证据。这称为孢子生长测试。
在其中在灭菌工序之后评价孢子生长的此类实施例(例如，在孢子生长指示器中)中，使孢子与生长培养基(如，任选地具有pH指示剂的大豆酪蛋白消化培养基)进行接触。例如，通过压缩外部容器来压碎包含生长培养基的内部容器，由此释放出生长培养基并使其与由外部容器中的载体承载的孢子进行接触。然后在刺激孢子生长的条件下来温育指示器。如果灭菌工序无效，则存活的孢子将生长并且引起生长培养基中的pH指示剂改变颜色(如，源于由生长孢子形成的酸性副产物)。这表明灭菌周期不能杀灭微生物测试群并且可已不能杀灭存在于灭菌器载液中的污染微生物。尽管依赖于孢子生长的生物指示器为准确的，但它们为缓慢的，通常需要1到7天才能提供最终结果。
在上文论述的制备灭菌指示器的方法的某些实施例中，将用于形成灭菌工序失效的可检测指示的一个或多个部件设置在容器中的步骤包括设置包含刺激活孢子生长的生长培养基和pH指示剂的内部容器。
在上文论述的制备灭菌指示器的方法的某些实施例中，将用于形成灭菌工序失效的可检测指示的一个或多个部件设置在容器中的步骤包括设置包含酶底物的内部容器，所述酶底物与活性酶反应以形成可检测的酶-底物产物。
在某些实施例中，灭菌指示器包括：容器，其具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在灭菌工序期间进入容器；容纳在容器内的载体(优选的是，多孔载体)；由载体承载(优选的是，分布在多孔载体内)的生物材料，所述生物材料常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因有效的灭菌工序而灭活并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及用于形成灭菌工序失效的可检测指示的装置。
在某些实施例中，灭菌指示器包括：容器，其具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在灭菌工序期间进入容器；容纳在容器内的载体(优选的是，多孔载体)；包含活性酶源的生物材料，其中所述活性酶源由载体承载(优选的是，分布在多孔载体内)；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死测试微生物的灭菌工序而灭活；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及用于形成酶改性产物的装置，所述酶改性产物提供灭菌工序失效的可检测指示。
在某些实施例中，灭菌指示器还包括位于外部容器内的易破碎的内部容器(如，管、套管、或安瓿)，所述外部容器不能透过用于灭菌工序中的灭菌剂。对于仅基于孢子生长的指示器而言，此内部容器包括刺激活孢子生长的生长培养基。在灭菌工序之后，内部容器适于使其可破碎，由此允许生长培养基和孢子之间的接触。对于酶基指示器而言，此内部容器包括底物，其中所述内部容器适于使其可破碎，由此允许底物与活性酶反应以形成提供灭菌工序失效的可检测指示的酶改性产物。在此类实施例中，优选的是，外部容器可压缩并且通过压缩外部容器来改变内部容器以使其可破碎。作为另外一种选择，外部容器可为或可不为可压缩的并且通过如下方式来改变内部容器以使其可破碎：下压盖件以将内部容器压缩到具有尖头的元件(如，套管)上，以使得内部容器在压入尖头内时破碎。
本发明的示例性灭菌指示器示于图1和2以及图5和6中(括号内的数字指的是后两个附图)。灭菌指示器10(110)包括使***的各个部件直到灭菌周期完成之后仍彼此分离的嵌套容器。灭菌指示器10(110)包括外部容器12(112)(此处示为管或安瓿形式，但可使用本领域的技术人员将会理解的其他类型的容器)、密封的内部容器18(118)(此处示为密封的管或安瓿形式，但可使用本领域的技术人员将会理解的其他类型的密封容器)、和通气盖件26(126)。外部容器12(112)优选地由可压缩塑料制成。内部容器18(118)由玻璃或某些其他易碎材料制成。封闭构件22(122)优选地为装配在外部容器12(112)的开口端14(114)上的不能透过细菌、透气的屏蔽件。载体16(116)包括(即，承载)生物材料(如，活性酶源)，并且设置在内部容器18(118)和外部容器12(112)之间。内部容器18(118)包含中和剂。在图1和2中，载体16为材料条带(如，由例如纸制成的平坦载体条带，如美国专利No.6,897,059(Foltz等人)中所公开))。在图5和6中，载体(116)为多孔的并且占据外部容器(112)的体积的至少5％。在这些实施例中，内部容器18(118)包括本文所述的一种或多种中和剂。对于酶基灭菌指示器而言，内部容器18(118)还包括酶底物，所述酶底物与由载体16(116)承载的活性酶反应并且如果灭菌工序无效则产生可检测的信号。对于孢子生长指示器而言，内部容器18(118)还包括用于由载体16(116)承载的存活的任何孢子的生长培养基，其中如果灭菌工序无效，则孢子生长产生可检测的信号。
图3和4以及图7和8(括号内的数字指的是后两个附图)示出了可供选择的实施例，其中灭菌指示器30(130)包括位于外部容器12(112)内且靠近该容器的封闭端的载体36(136)以及位于多孔载体36(136)和内部容器18(118)之间的屏蔽件38(138)。
在图3和4中，载体36为材料条带(如，公开于美国专利No.6,897,059(Foltz等人)中的载体条带)。在图7和8中，载体(116)为多孔的且占据外部容器(112)的体积的至少5％，并且在本文中称为三维多孔载体。在这些实施例中，内部容器18(118)包括本文所述的一种或多种中和剂。如图1和2以及5和6的实施例中所述，对于酶基灭菌指示器而言，内部容器18(118)还包括酶底物，所述酶底物与由载体36(136)承载的活性酶反应并且如果灭菌工序无效则产生可检测的信号。对于孢子生长指示器而言，内部容器18(118)还包括用于由载体36(136)承载的存活的任何孢子的生长培养基，其中如果灭菌工序无效，则孢子生长产生可检测的信号。
作为另外一种选择，在某些实施例中，可有利地在不存在屏蔽件的情况下使用本文所述的多孔载体。例如，包括疏水性材料的多孔载体可充当载体和屏蔽件。
屏蔽件38(138)用于使多孔载体36(136)与内部容器18(118)分离。屏蔽件38(138)优选由疏水性材料制成，使得酶改性产物例如集中在多孔载体周围并且不会快速地扩散到位于屏蔽件另一侧的容器区域内。相比于多孔载体36(136)与内部容器18(118)的全部内容物反应的情况，在指示器的下部中保持较高浓度的酶改性产物使得所述酶改性产物(无论其发光还是变色)能够在较短的培养期间之后被检测到。装配屏蔽件38(138)的优选装置在约10分钟内提供出有关灭菌功效的可靠信息。
图3和4所示的具有屏蔽件38的构型通常用于过氧化氢蒸气灭菌工序中。屏蔽件优选为具有200克/平方米的重量的聚丙烯吹塑微纤维材料盘，其可以“THINSULATE200-BbrandThermalInsulation”从明尼苏达州圣保罗(St.Paul,MN)的3M公司商购获得。此外，然而如果多孔载体为本文所述的疏水性材料，则不需要屏蔽件，甚至是在过氧化氢灭菌工序中。另外，当使用指示器来监测过氧化氢工序时(无论使用图1和2所示的实施例还是使用图3和4所示的实施例)，封闭构件22优选地由高密度纤维材料(例如可从特拉华州威尔明顿(Wilmington,DE)的杜邦公司(E.I.duPontdeNeMoursandCo.)商购获得的TYVEK高密度聚乙烯纤维材料)制成。
参见图1和2以及图5和6(括号内的数字指的是后两个附图)，在通常的灭菌工序期间，灭菌剂通过盖件26(126)上的通气口28(128)进入外部容器12(112)并且接触由载体16(116)承载的生物材料(如，活性酶源)但不接触密封的内部容器18(118)中的内容物(如，底物溶液和/或生长培养基)。在灭菌周期之后，压缩外部容器12(112)的侧面，由此使得内部容器18(118)破碎并且使内部容器18(118)的内容物和由载体16(116)支承的生物材料载体彼此进行接触。然后将灭菌指示器温育足够的时间段以允许任何剩余的生物材料(如，活性酶或活孢子)形成可检测指示。例如，如果生物材料为活性酶，则温育足够的时间以允许其与底物反应，由此形成产生可检测的信号(例如，冷光、荧光、或颜色变化)的酶改性产物，这样指示灭菌工序可已无效。
在本发明的灭菌指示器10(110)的优选实施例中，由载体16(116)承载的生物材料为活性酶源。优选地，活性酶源为活微生物，例如细菌或真菌孢子。在最优选的实施例中，孢子为活性酶源，并且灭菌指示器10(110)为通过测量酶活性和孢子生长来监测灭菌工序的有效性的双作用快速读出式指示器。在此实施例中，内部容器18(118)包含孢子生长培养基和酶底物。在灭菌周期完成之后，使内部容器18(118)破碎并且将载体16(116)暴露于其内容物且进行温育。酶测试在几小时内产生可见的结果，并且活微生物生长测试在7天来确认这些结果。
酶指示器操作的基本理论为酶的灭活将与指示器中的测试微生物的死亡相关联。选择用于灭菌指示器中的酶对于灭菌工序必须具有至少与可能存在为污染物的微生物相同的耐性，并且优选具有比这些微生物更高的耐性。在灭菌周期不能杀灭污染微生物之后，则酶也不会因杀灭污染微生物的灭菌周期而灭活，这样酶应保留足够的活性以形成可检测的酶-底物产物。
如上所述，活性酶源可为：(1)衍生自适当微生物的纯化、分离酶；(2)微生物，其中酶是内源酶，或通过基因工程添加的；或(3)微生物，其中已在孢子形成或生长期间添加酶，使得酶与微生物结合或相连，如，在孢子形成期间将酶添加到孢子中，从而结合到孢子内。
适用于本发明的灭菌指示器中的酶在美国专利No.5,252,484(Matner等人)和美国专利No.5,073,488(Matner等人)中有所描述。合适的酶包括衍生自产孢子微生物(嗜热脂肪土芽孢杆菌和萎缩芽孢杆菌(先前称为枯草芽孢杆菌))的酶。可用于本发明的灭菌指示器中的源自产孢子微生物的酶包括衍生自产孢子微生物的β-D-葡萄糖苷酶、α-D-葡萄糖苷酶、碱性磷酸酶、酸性磷酸酶、丁酸酯酶、辛酸酯酶脂肪酶、肉豆蔻酸脂肪酶、亮氨酸氨基肽酶、缬氨酸氨基肽酶、胰凝乳蛋白酶、磷酸水解酶、α-D-半乳糖苷酶、β-D-半乳糖苷酶、酪氨酸氨基肽酶、苯丙氨酸氨基肽酶、β-D-葡糖醛酸酶、α-L-***呋喃糖苷酶、N-乙酰基-B-氨基葡糖苷酶、β-D-纤维二糖糖苷酶、丙氨酸氨基肽酶、脯氨酸氨基肽酶和脂肪酸酯酶。
当将微生物用作活性酶源时，本发明的方法可包括在灭菌周期完成之后利用水性营养培养基来温育微生物中的任何一种的步骤。添加此步骤以通过常规技术来确认灭菌条件是否已足以杀灭指示器中的全部微生物，由此指示出灭菌条件是否已足以对灭菌器中的所有物品灭菌。如果以常规方式使用微生物的生长来确认酶测试的结果，则所述微生物应为常规用于监测灭菌条件的微生物。这些常规使用的微生物对于所采用的灭菌工序通常比在天然污染物中遇到的大多数有机体具有高数倍的耐性。
可用作活性酶源或者可用作孢子生长指示器中所用的生物材料的优选微生物为孢子或繁殖体状态的细菌或真菌。细菌孢子被公认为是具有最高耐性的微生物生命形式。其在用于确定装置、化学物质、和工序的灭菌功效的所有测试中均为所选生命形式。尤其优选的酶源包括芽孢杆菌属、梭状芽孢杆菌属、脉孢菌属、和假丝酵母属的微生物。源自芽孢杆菌属和梭状芽孢杆菌属的孢子最常用于监测采用饱和蒸汽、干热、γ射线照射、和环氧乙烷的灭菌工序。
常用于监测灭菌条件的尤其优选的微生物包括嗜热脂肪土芽孢杆菌和萎缩芽孢杆菌。嗜热脂肪土芽孢杆菌尤其可用于监测蒸汽灭菌条件下的灭菌。已在嗜热脂肪土芽孢杆菌(例如，可以“ATCC7953”从马里兰州罗克维尔(Rockville,MD)的美国模式培养物保藏所(AmericanTypeCultureCollection)商购获得的那些)的孢子中识别出α-D-葡萄糖苷酶。萎缩芽孢杆菌尤其可用于监测气体和干热灭菌条件。已在萎缩芽孢杆菌(如，可以“ATCC9372”从美国模式培养物保藏所(AmericanTypeCultureCollection)商购获得)中发现β-D-葡萄糖苷酶。
如果使用双作用快速读出式指示器，则这些微生物可充当快速酶测试中的活性酶源以及孢子生长测试中的测试微生物。嗜热脂肪土芽孢杆菌尤其优选用于监测蒸汽和过氧化氢等离子体灭菌工序。萎缩芽孢杆菌尤其优选用于监测环氧乙烷灭菌工序并且可用于监测过氧化氢等离子体灭菌工序。
作为另外一种选择，在采用分离酶的情况下，或者在用作酶源的微生物不比天然污染物更耐灭菌条件的情况下，可使常用于监测灭菌条件的另一微生物随该酶源一起经受灭菌周期。此外，在这种情况下，本发明的方法可包括将灭菌周期后残留的任何活微生物与水性营养培养基一起温育以确认灭菌功效的步骤。
尽管本文主要以单一酶和/或微生物物质进行描述，但本发明应理解为也涉及使用多种酶和/或微生物物质。例如，单个灭菌指示器可包含三种类型的分离酶(可衍生自三种类型的微生物)，其中一种酶为耐热的，第二种酶为耐气态灭菌介质的，并且第三种酶为耐辐射(γ射线和β射线照射)的。相似地，单个灭菌指示器可包含三种微生物物质，其中一种物质为耐热的，第二种物质为耐气态灭菌介质的，并且第三种物质为耐辐射的。
适用于本发明的灭菌指示器中的酶底物在美国专利No.5,252,484(Matner等人)和美国专利No.5,073,488(Matner等人)中有所描述。能与酶反应形成可检测的产物且适用于本发明的灭菌指示器的发色底物和荧光底物为本领域公知的。(M.Roth,Methodsof BiochemicalAnalysis,Vol.17,D.Block,Ed.,IntersciencePublishers,NewYork,1969,p.89(《生物化学分析方法》第17卷第89页，作者M.Roth，编辑D.Block，Interscience出版社，纽约，1969年)；S.Udenfriend,FluorescenceAssayinBiologyandMedicine,AcademicPress,NewYork,1962,p.312(《生物和医学中的荧光测定》第312页，作者S.Udenfriend，学术出版社，纽约，1962年)；D.J.R.Lawrence,FluorescenceTechniquesfortheEnzymologist,MethodsinEnzymology,Vol.4,S.P.ColowickandN.O.Kaplan,Eds.,AcademicPress,NewYork,1957,p.174(《酶学方法，酶学家所用的荧光技术》第4卷第174页，作者D.J.R.Lawrence，编辑S.P.Colowick和N.O.Kaplan，学术出版社，纽约，1957年)。这些底物根据它们产生视觉上可检测的信号的方式可分为两类。第一类底物与酶反应形成本身发色或发荧光的酶改性产物。第二类底物所形成的酶改性产物必须再与另一种化合物反应才能产生颜色或荧光信号。
本发明还提供了使用方法。通常，本发明提供了用于测试灭菌工序的有效性的方法，所述方法包括：提供本文所述的灭菌指示器；使包括生物材料的灭菌指示器经受灭菌工序；在灭菌之后，使灭菌指示器经受培育工序以确定存在还是不存在可检测指示；以及使可检测指示的存在与灭菌工序的失效相关联，并且使可检测指示的不存在与灭菌工序的成功相关联。
使用示例性的孢子生长灭菌指示器来测试灭菌工序的有效性的方法包括：提供灭菌指示器，其包括：载体；包括孢子的生物材料，其中所述孢子由载体承载；所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因有效的灭菌工序而灭活并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；和中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；使包括生物材料的灭菌指示器经受灭菌工序；在灭菌之后，将生物材料与包含pH指示剂的生长培养基混合，并且在刺激孢子生长的条件下来温育生物材料和生长培养基的混合物；确定在生物材料中存在还是不存在具有可检测的pH信号的存活孢子；以及使可检测的信号的存在与灭菌工序的失效相关联，并且使可检测的信号的不存在与灭菌工序的成功相关联。
使用示例性的酶基灭菌指示器来测试灭菌工序的有效性的方法包括：提供灭菌指示器，其包括：载体；包括活性酶源的生物材料，其中所述活性酶源由载体承载；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死测试微生物的灭菌工序而灭活；其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；中和剂，其以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；和酶底物，其在灭菌工序失效时与活性酶反应以形成具有可检测的信号的酶改性产物；使活性酶源经受灭菌工序；将酶和底物混合以形成酶改性产物；确定存在还是不存在具有可检测的信号的酶改性产物；以及使可检测的信号的存在与灭菌工序的失效相关联，并且使可检测的信号的不存在与灭菌工序的成功相关联。
在尤其优选的实施例中，灭菌指示器为双作用快速读出式指示器，并且活性酶源包括如下微生物的孢子，所述微生物的孢子充当用于酶活性测试的活性酶源以及用于孢子生长测试的测试微生物。合适的微生物包括嗜热脂肪土芽孢杆菌和萎缩芽孢杆菌。在最优选的实施例中，将嗜热脂肪土芽孢杆菌孢子用于指示器中。
参见图1和2，在其中所述生物材料包括孢子的示例性应用中，将灭菌指示器10设置在灭菌室中并且使其经受过氧化氢蒸气灭菌工序。灭菌剂通过通气孔28和封闭构件22进入指示器10，并且接触由载体16承载的孢子。在工序完成之后，从灭菌室中移出指示器10并且压缩外部容器12的侧面，由此使易碎的内部容器18破碎并且释放出包含pH指示剂的生长培养基以使其可接触由载体16承载的孢子。然后将灭菌指示器10温育足够长的时间段，以允许保留在指示器中的任何存活孢子生长并且引起pH指示剂的颜色变化，所述颜色变化提供出灭菌工序失效的可检测指示。如果灭菌工序有效并且所有的孢子均已灭活，则在温育时不会产生颜色变化。
参见图1和2，在其中所述生物材料包括活性酶源的示例性应用中，将灭菌指示器10设置在灭菌室中并且使其经受过氧化氢蒸气灭菌工序。灭菌剂通过通气孔28和封闭构件22进入指示器10，并且接触由载体16承载的活性酶源。在工序完成之后，从灭菌室中移出指示器10并且压缩外部容器12的侧面，由此使易碎的内部容器18破碎并且释放出酶底物以使其可接触由载体16承载的活性酶源。然后将灭菌指示器10温育足够长的时间段，以允许保留在指示器中的任何活性酶与底物反应并且形成酶改性产物，所述酶改性产物提供出灭菌工序失效的可检测指示。酶改性产物可检测为荧光、冷光、或颜色变化。如果灭菌工序有效并且所有的活性酶均已灭活，则在温育时不会产生可检测的信号。
本发明的另一个示例性的灭菌指示器示于图10-11中。生物灭菌指示器200包括壳体202，其包含联接在一起从而得到自备式生物灭菌指示器的第一部分204(如，中空管)和第二部分206(如，盖件)。盖件可由聚丙烯模制而成，其大致尺寸为长大约21mm，直径14mm。第一部分204(中空管)可由聚碳酸酯模制而成，其大致尺寸为长约52mm，顶部直径12mm，具有图10-11所示的形状。第一部分204(如，中空管)的总体积为大约3mL。
壳体202可由至少一个不透液体的壁界定，所述壁例如第一部分204的壁208和/或第二部分206的壁210。应当理解，在不脱离本发明精神和范围的前提下，也可采用一件式一体壳体202，或者第一部分204和第二部分206可具有其他形状、尺寸和相对结构。壳体202(如，壁208和210)的合适材料可包括(但不限于)玻璃、金属(如，箔)、聚合物(如，聚碳酸酯(PC)、聚丙烯(PP)、聚丙乙烯(PPE)、聚乙烯、聚苯乙烯(PS)、聚酯(如，聚对苯二甲酸乙二醇酯(PET))、聚甲基丙烯酸甲酯(PMMA或丙烯酸类树脂)、丙烯腈-丁二烯-苯乙烯(ABS)、环状烯烃聚合物(COP)、环状烯烃共聚物(COC)、聚砜(PSU)、聚醚砜(PES)、聚醚酰亚胺(PEI)、聚对苯二甲酸丁二酯(PBT))、陶、瓷、或它们的组合。
壳体202的第二部分(盖件)206可包括6个孔口或开口207，其提供壳体202的内部(如，贮存室203)与外界之间的流体连通。充当屏蔽件的滤纸材料(未示出)；设置在灭菌剂路径中孔口207的上方并用具有压敏粘合剂背衬的纸标签将其保持在合适位置。滤纸材料与目前可用的用于蒸汽灭菌器(得自明尼苏达州圣保罗(St.Paul,MN)的3M公司)的3MATTEST1291快速读出式生物指示器的盖件中存在的材料相同。
生物灭菌指示器200还包括含有液体生长培养基222的易碎容器220。易碎容器220由硼硅酸盐玻璃制成并包含孢子生长培养基。培养基由包含pH指示剂溴甲酚紫的改性的胰酶大豆肉汤(TSB)和荧光酶底物4-甲基伞形酮基-α-D-葡糖苷组成。安瓿长大约40mm，直径约4mm，并容纳大约500μL的培养基液体。合适的液体生长培养基222的实例为目前用于蒸汽灭菌器的以3MATTEST1292快速读出式生物指示器得自3M公司的产品中所用的培养基。
液体培养基容器220可通过插件230保持在生物灭菌指示器200内的合适位置。插件(也称为破碎器)230用于将容器220保持在合适位置并且还用于方便容器220的受控破碎。在BI的激活步骤期间，当下压第二部分(盖件)206以使液体培养基容器220破碎时，产生受控破碎。插件230可为模制的聚碳酸酯结构，其大致尺寸为22mm长×9mm宽。
第二部分206具有密封件，所述密封件被设置为在第一部分204的开口上端处接触第一部分204的第一末端201，以便在激活之后封闭或密封(如，气密地密封)生物灭菌指示器200。
生物灭菌指示器200还包括设置为与第一部分204流体连通的合适的耐灭菌剂孢子(例如嗜热脂肪土芽孢杆菌孢子(ATCC7953))300。孢子300设置在孢子载体116上。
壳体202包括下部214(其至少部分地限定第一室209)和上部216(其至少部分地限定第二室211)，它们被部分内壁或凸缘218部分地分开，在其中形成提供第一室209与第二室211之间的流体连通的开口217。第二室211适于容纳孢子载体116。第一室209适于容纳易碎容器220，特别是在激活之前。壁218为成角度的或倾斜的，相对于壳体202的纵向DL成非零度角和非直角。
也称为“孢子生长室”或“检测室”的第二室211包括有待检查孢子活性以确定灭菌工序功效的空间。
液体培养基容器220通过插件230设置和保持在第一室209中的合适位置。孢子300设置在孢子载体116上，容纳在第二室211中，并且在灭菌期间与外界流体连通。在灭菌期间，灭菌剂(如，经由第一室109)移动到第二室211中。在灭菌周期之后，BI被有意激活，当容器220破碎并且将液体222释放到壳体202的内部内时，液体培养基222移动到第二室211内(如，从第一室209)。
第一室209具有约2800微升的体积(清空所有内部部件)。壁218正上方的第一室209的横截面积为大约50mm2。第二室211具有约210微升的体积。壁218正下方的第二室211的横截面积为大约20mm2。
壳体202为锥形的(参见(如)锥形部分246)，使得壳体202的横截面积沿着纵向DL从第一部分204的第一末端201到壳体202的封闭端205逐渐递减。
本发明的灭菌指示器中的任何一个均可用作测试包。在本发明的一个实施例中，本发明的非挑战性测试包并不提供超过仅灭菌指示器的额外耐灭菌工序性。非挑战性测试包相比于不使用测试包的指示器的优势在于其将灭菌指示器在灭菌工序期间牢固地保持在单一位置。非挑战性测试包因而减轻了通常较小且易于滚动的灭菌指示器在灭菌工序期间在材料负载中移位或错位所产生的问题。称为管腔测试物测试包的替代测试包相比于灭菌指示器提供额外的耐性，其在设置于具有限定横截面积和长度的管腔内时将经受与指示器相同的耐性。管腔测试物测试包提供出用于确定灭菌工序是否将有效地杀灭可位于管状器械内部深处的微生物的精确方法。示例性的非挑战性和管腔挑战灭菌测试包在美国专利No.6,897,059(Foltz等人)中有所描述。
将参照下面的详细实施例和实例进一步描述本发明的操作。提供这些实施例和实例以进一步说明各种具体的和优选的实施例和技术。然而，应当理解，可以在不脱离本发明范围的前提下进行多种变型和更改。
示例性实施例
1.一种用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器，所述指示器包括：
容器，所述容器具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在所述灭菌工序期间进入所述容器；
容纳在所述容器内的载体；
由所述载体承载的生物材料，所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因有效的灭菌工序而灭活并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示；
其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；
中和剂，所述中和剂以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在所述指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及
用于形成灭菌工序失效的可检测指示的装置。
2.一种用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器，所述指示器包括：
容器，所述容器具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在灭菌工序期间进入所述容器；
容纳在所述容器内的载体；
包括活性酶源的生物材料，其中所述活性酶源由所述载体承载；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活；
其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；
中和剂，所述中和剂以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在所述指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及
用于形成酶改性产物的装置，所述酶改性产物提供灭菌工序失效的可检测指示。
3.一种用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器，所述指示器包括：
外部容器，所述外部容器具有至少一个开口以允许灭菌剂在所述灭菌工序期间进入所述外部容器；
容纳在所述外部容器内的载体；
包括活性酶源的生物材料，其中所述活性酶源由所述载体承载；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活；
其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；
中和剂，所述中和剂以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在所述指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及
以及位于所述外部容器内的易破碎的内部容器，其中所述内部容器：不能透过用于所述灭菌工序中的所述灭菌剂；包括酶底物；并且适于使其可破碎，由此允许所述酶底物与活性酶反应，以形成提供灭菌工序失效的可检测指示的酶改性产物。
4.一种用于测试过氧化氢灭菌工序的有效性的快速读出式过氧化氢灭菌指示器，所述指示器包括：
外部容器，所述外部容器具有至少一个开口以允许过氧化氢灭菌剂在所述灭菌工序期间进入所述外部容器；
容纳在所述外部容器内的载体；
包括活性酶源的所述生物材料，其中所述活性酶源由所述载体承载；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活；
其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的过氧化氢灭菌剂；以及
以及位于所述外部容器内的易破碎的内部容器，其中所述内部容器：
不能透过用于所述灭菌工序中的所述过氧化氢灭菌剂；
包括含有酶底物和中和剂的混合物，所述中和剂以能有效中和残余的过氧化氢灭菌剂的量设置在指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；并且
适于使其可破碎，由此允许所述酶底物与活性酶反应以形成酶改性产物，所述酶改性产物提供过氧化氢灭菌工序失效的可检测指示，其中所述可检测指示在8小时或更短的时间内形成。
5.根据实施例1至4中任一项所述的灭菌指示器，其中所述中和剂为含硫化合物。
6.根据实施例5所述的灭菌指示器，其中所述含硫化合物选自甲硫氨酸、L-半胱氨酸、D-乙硫氨酸、S-甲基-L-半胱氨酸、S-苄基-L-半胱氨酸、硫代硫酸钠、谷胱甘肽、L-胱硫醚、N-乙酰基-L-半胱氨酸、羧甲基半胱氨酸、D,L-高半胱氨酸、D,L-高半胱氨酸-硫代内酯、硫代二丙酸、以及它们的组合。
7.根据实施例1至4中任一项所述的灭菌指示器，其中所述中和剂为非含硫化合物。
8.根据实施例7所述的灭菌指示器，其中所述非含硫化合物选自异抗坏血酸、铁***、丙酮酸钠、以及它们的组合。
9.根据实施例1至8中任一项所述的灭菌指示器，其中所述中和剂在灭菌期间与所述灭菌剂分离。
10.根据实施例1至9中任一项所述的灭菌指示器，其中所述载体包括片状形式的材料。
11.根据实施例1至10中任一项所述的灭菌指示器，其中所述载体包括多孔载体，并且所述生物材料分布在所述载体内。
12.根据实施例11所述的灭菌指示器，其中所述多孔载体占据其所在容器的体积的至少5％。
13.根据实施例11或12所述的灭菌指示器，其中生物材料均匀地贯穿分布在所述载体的整个体积中。
14.根据实施例12或13所述的灭菌指示器，其中所述多孔载体占据所述容器的体积的不超过50％。
15.根据实施例12至14中任一项所述的灭菌指示器，其中所述多孔载体具有大于5％的密实度。
16.根据实施例12至15中任一项所述的灭菌指示器，其中所述多孔载体具有大于10微米的有效纤维直径。
17.根据实施例1至16中任一项所述的灭菌指示器，其中所述载体保留残余的氧化性灭菌剂。
18.根据实施例1至16中任一项所述的灭菌指示器，其中所述载体包括疏水性材料。
19.根据实施例18所述的灭菌指示器，其中所述疏水性材料包括聚丙烯、聚氨酯、尼龙、包含这些聚合物中的一者或多者的聚合物共混物、或它们的组合。
20.根据实施例1至16中任一项所述的灭菌指示器，其中所述载体包括亲水性材料。
21.根据实施例20所述的灭菌指示器，其中所述亲水性材料包括玻璃、人造丝、纤维素、包含这些聚合物中的一者或多者的聚合物共混物、或它们的组合。
22.根据实施例1至21中任一项所述的灭菌指示器，其中所述灭菌工序失效的所述可检测指示包括可检测的荧光、发光和/或显色指示。
23.根据实施例1至22中任一项所述的灭菌指示器，其中所述灭菌工序失效的所述可检测指示包括可检测的pH指示。
24.根据实施例1至23中任一项所述的灭菌指示器，其中所述生物材料包括微生物。
25.根据实施例1至23中任一项所述的灭菌指示器，其中所述生物材料包括分离酶。
26.根据实施例1以及取决于实施例1的实施例5至21所述的灭菌指示器，所述灭菌指示器为孢子生长指示器，其中所述生物材料包括孢子，并且所述可检测指示包括pH指示。
27.根据实施例1以及取决于实施例1的实施例5至21所述的灭菌指示器，所述灭菌指示器为酶基指示器，其中所述生物材料包括活性酶源，并且所述可检测指示包括可检测的荧光、发光和/或显色指示。
28.根据实施例27所述的灭菌指示器，所述灭菌指示器为双作用酶基/孢子生长指示器，其中所述生物材料包括也适用于孢子生长测试的活性酶源，并且所述可检测指示包括可检测的荧光、发光和/或显色指示以及随后的pH指示。
29.根据实施例1至3中任一项以及取决于实施例1至3中任一项的实施例4至28所述的灭菌指示器，其中所述氧化性灭菌剂包括过氧化氢蒸气。
30.根据实施例29所述的灭菌指示器，其中过氧化氢蒸气包括过氧化氢等离子体。
31.一种用于测试灭菌工序的有效性的方法，所述方法包括：
提供灭菌指示器，所述灭菌指示器包括：
容器，所述容器具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在所述灭菌工序期间进入所述容器；
容纳在所述容器内的载体；
由所述载体承载的生物材料，所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因有效的灭菌工序而灭活并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示；
其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；
中和剂，所述中和剂以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在所述指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；和
用于形成灭菌工序失效的可检测指示的装置；
使包括生物材料的所述灭菌指示器经受灭菌工序；
在灭菌之后，使所述灭菌指示器经受培育工序以确定存在还是不存在可检测指示；以及
使所述可检测指示的存在与所述灭菌工序的失效相关联，并且使所述可检测指示的不存在与所述灭菌工序的成功相关联。
32.一种用于测试灭菌工序的有效性的方法，所述方法包括：
提供灭菌指示器，所述灭菌指示器包括：
载体；
包括孢子的生物材料，其中所述孢子由所述载体承载；所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因有效的灭菌工序而灭活并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示；
其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；和
中和剂，所述中和剂以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在所述指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；
使包括生物材料的所述灭菌指示器经受灭菌工序；
在灭菌之后，将所述生物材料与包含pH指示剂的生长培养基混合，并且在刺激孢子生长的条件下来温育生物材料和生长培养基的混合物；
确定在所述生物材料中存在还是不存在具有可检测的pH信号的存活孢子；以及
使所述可检测的信号的存在与所述灭菌工序的失效相关联，并且使所述可检测的信号的不存在与所述灭菌工序的成功相关联。
33.一种用于测试灭菌工序的有效性的方法，所述方法包括：
提供灭菌指示器，所述灭菌指示器包括：
载体；
包括活性酶源的生物材料，其中所述活性酶源由所述载体承载；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活；
其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；
中和剂，所述中和剂以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在所述指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；和
酶底物，所述酶底物在灭菌工序失效时与所述活性酶反应以形成具有可检测的信号的酶改性产物；
使所述活性酶源经受灭菌工序；
将所述酶和所述底物混合以形成酶改性产物；
确定存在还是不存在具有可检测的pH信号的所述酶改性产物；以及
使所述可检测的信号的存在与所述灭菌工序的失效相关联，并且使所述可检测的信号的不存在与所述灭菌工序的成功相关联。
34.根据实施例33所述的方法，其中所述灭菌指示器为双作用快速读出式指示器，并且所述活性酶源包括下述微生物的孢子，所述微生物的孢子充当用于所述酶活性测试的所述活性酶源以及用于所述孢子生长测试的所述测试微生物。
35.根据实施例31至34中任一项所述的方法，其中所述灭菌工序使用过氧化氢蒸气。
实例
本发明的目的和优点通过下面的实例进一步说明，但是这些实例中所提到的具体材料及其量，以及其他条件和细节，均不应被解释为对本发明的不当限制。
材料及方法
孢子的制备
用于所有实例中的嗜热脂肪土芽孢杆菌(ATCC7953)孢子均是在TSA琼脂平板制备的。收集孢子并且将粒料利用4℃去离子H2O洗涤三次。将孢子悬浮液在8000转/分钟(rpm)下离心15分钟(min)并且通过添加无菌去离子H2O使清洁菌株的体积达到800毫升(mL)。测量并记录孢子悬浮液的透射百分比(λ＝625纳米(nm))。
孢子载体材料
测试了十四种孢子载体材料。这些孢子载体材料均为非织造样品。所有的非织造材料在其化学组成和/或其制造方法方面有所不同。
表1：孢子载体材料的说明
处理孢子载体材料以获得3D多孔载体
为了有利于过氧化氢的透过和移除，将每个非织造样品在实验室共混机韦林商用公司(WaringCommercial,CN)中进行共混以获得三维(3D)多孔载体。使用约1.6立方厘米(cm3)的三维多孔载体来填充聚丙烯套管(直径＝0.8cm)的底部部分。使所有非织造样品转变成三维多孔载体材料的方法示于图9a中。
孢子涂布方法和生物指示器的组装
实施稀释以便获得72％透射比的嗜热脂肪土芽孢杆菌孢子悬浮液。为了改善涂布过程，将360微升(μL)稀释30倍的孢子悬浮液涂覆到1.6cm3的三维多孔载体。挤压套管以提高液体吸收效果并且使得能够进行均匀的孢子涂布。将包含分布在共混的3D多孔载体材料内的涂布孢子的套管在58℃下温育16小时(过夜)。使用3MATTEST1292生物指示器(得自明尼苏达州圣保罗(St.Paul,MN)的3M公司)的部件来组装生物指示器，不同的是使用上文列出的孢子涂布的多孔载体来代替纸孢子条带。还使用其他部件，例如1292培养基安瓿、屏蔽件、和打孔盖件。
实例1
疏水性-接触角测量
非织造片状材料的疏水性通过测量水接触角来确定。接触角为片状形式的孢子载体材料由水润湿的定量测量值。其在几何学上被定义为由液体在其中液态、气态、和固态相交的三相界面处形成的角度。180°的接触角表示完全疏水的表面。接近0°的接触角表示亲水性表面。将10-20微升(μL)量的固着水滴施用到每个未共混的非织造片状材料的表面上。非织造片状材料的疏水性通过测量水接触角来确定(表2)。基于接触角结果，将载体材料分类成两组。第一组载体材料因其接触角等于零而表征为亲水性的(Paper-591、CRANEGLAS、SX-314、和HEF140-114)。第二组因其接触角大于或等于30°而为疏水性的(CEREXPBN、TO505、SOFTEX、40AA0、SB3396018、UHF-50、DOODLEDUSTER、SRF2732A-1、UNILAYER、UNIPRO125)。
表2：载体材料的接触角
载体材料 接触角(°)
PAPER-591 0±0
CRANEGLAS 0±0
SX-314 0±0
HEF140-114 0±0
CEREX PBN 30±8
TO505 101±6
SOFTEX 104±6
40AA0 113±4
SB3396018 119±3
UHF-50 121±3
DOODLE DUSTER 121±4
SRF2732A-1 123±3
UNILAYER 124±4
UNIPRO 125 126±2
实例2
载体材料的有效纤维直径(EFD)和密实度(％)测定
利用差压式流量计(得自明尼苏达州圣保罗的TSI公司(TSIInc.,St.Paul,MN)在15升/分钟的体积空气流速下来测量压降(ΔP)。对于每次ΔP测量，将给定基重的载体材料样品(每种材料均按上述进行处理/共混)堆积到具有7mm内径的塑料管内，以形成4mm高度的材料塞。塑料管的一端通向大气压并且另一端通向真空泵，所述真空泵用于建立穿过载体材料塞的恒定体积空气流速。差压式流量计位于将塑料管连接到真空泵的路径中。使用具有大开口的稀松布层盖住连接到泵的塑料管端，以便在ΔP的测量过程中将载体材料保持在管内。根据C.N.Davies在“TheSeparationofAirborneDustandParticles,”InstitutionofMechanicalEngineers,London,Proceedings1B,1952(1952年的伦敦机械工程学会的论文集1B中的《空气传播的尘土和颗粒的分离》)中阐述的方法来测量和计算基重(以克/平方米(g/m2)为单位)、密实度(以百分比(％)为单位)、和有效纤维直径(EFD)。结果示于表3中。将有效纤维直径和密实度相对于基重进行标准化以便于比较。亲水性材料显示具有位于16-41微米(μm)之间的标准化有效纤维直径，而疏水性载体的EFD在33-53μm之间。亲水性载体的标准化密实度的值在16-33％之间并且疏水性材料的标准化密实度的值在27-36％之间。
表3：有效纤维直径(EFD)和密实度(％)
实例3
残余的过氧化氢的测定
执行此工序以确定由载体条带材料保留的残余的H2O2的量。此工序使用得自ThermoScientific的赛默科技公司(ThermoScientific)的PEROXOQUANTQuantitativePeroxideAssayKitNumber23280(PEROXOQUANT定量过氧化物测定套件No.23280)。此测定法基于亚铁离子(Fe2+)在存在二甲酚橙的情况下氧化成铁离子(Fe3+)来检测H2O2。此络合物产生在560纳米(nm)下具有最大吸光度的紫色产物。稀释10毫摩尔(mM)浓度的H2O2原液以获得0.25；0.2；0.15；0.1；0.05；和0.001mMH2O2。标准曲线在整个测定范围上并非为线性的，并且推荐使用二次曲线或最佳拟合曲线来获得标准点。在实验中使用五个平坦的载体条带(4个样品和1个对照物)。在将条带转移到清洁管之后，添加1.5mL。在测试溶液之前，将条带在水中浸渍45分钟到一个小时。样品和比色杯中的工作试剂之间的停留时间为至关重要的。根据载体材料在灭菌工程中吸收H2O2的程度，必须增加或降低样品溶液的稀释因子以便获得低于1单位吸光度的目标值。这确保最高精度以确定存在于材料上的H2O2的量。
通过PEROXOQUANTQuantitativePeroxideAssayKit(PEROXOQUANT定量过氧化物测定套件)方法获得的数据示于表4中。根据载体疏水性将这些数据分为两类。亲水性材料显示具有13-273μg的H2O2保留量，而疏水性载体保留0.03-16.09μg的H2O2。残余的过氧化氢的量与通过接触角测量法估计的载体疏水性呈负相关。
表4：残余的过氧化氢
实例4
在STERRAD容器中暴露于过氧化氢的生物指示器
过氧化氢恢复性测试
此实例比较由不同的亲水性和疏水性载体保留的残余的过氧化氢对于孢子生长的影响。修改得自明尼苏达州圣保罗(St.Paul,MN)的3M公司的3MATTEST1292生物指示器，使得孢子条带被替换成14个不同的经处理(共混)的多孔孢子载体材料(表1)。对修改的3MATTEST1292生物指示器进行蒸汽灭菌以杀灭存在的孢子群。将蒸汽灭菌的BI暴露于STERRAD100S过氧化氢/等离子体灭菌周期的后架和底架中。紧随过氧化氢/等离子体灭菌之后，将包含大约1×102；1×103；或1×105嗜热脂肪土芽孢杆菌孢子的孢子悬浮液移取到每个BI中的载体材料上。对于每种载体材料，利用每一种孢子悬浮液测试三个BI。随后，压碎每个BI中的生长培养基的安瓿并在60℃(+/-2℃)下来温育所有的BI。在温育24小时之后，观察每个BI的生长指示(即，培养基中的pH指示剂产生从紫色到黄色的pH变化)。
残余的过氧化氢对于BI性能的影响示于表5中。结果表示为对于每个浓度所测试的3个BI中的BI生长阳性的数量。此数据可分类为两组。第一组包含均为亲水性的载体材料；此组载体材料在未涂布的BI暴露于H2O2之后显示无生长(CRANEGLAS、SX-314、HEF140-114、和Paper-591)。所观察到的生长抑制可归因于存在的残余的过氧化氢。第二组载体材料包括疏水性材料。这些材料在暴露于过氧化氢之后未抑制孢子生长(CEREXPBN、TO505、SOFTEX、40AA0、SB3396018、UHF-50、SRF2732A-1、UNILAYER、UNIPRO125)。数据表明在H2O2保留量和载体材料的亲水性之间存在关系。示于表5中的疏水性、残余的过氧化氢、和BI性能数据表明当在孢子载体中使用疏水性材料时通常不抑制孢子生长。
表5：疏水性、残余的H 2 O 2 保留量、以及BI性能
实例5
生物指示器性能测试-生长读出(24小时)
此实例比较不同的亲水性和疏水性载体的性能。实施稀释以便获得72％透射比的嗜热脂肪土芽孢杆菌孢子悬浮液(3×106个孢子/毫升)。为了改善涂布过程，使用360微升(μL)稀释30倍的孢子悬浮液来涂布约1.6cm3的三维多孔载体。将包含分布在共混的3D多孔载体材料内的涂布孢子的套管在58℃下温育16小时(过夜)。使用3MATTEST1292生物指示器(得自明尼苏达州圣保罗(St.Paul,MN)的3M公司)的部件来组装生物指示器，不同的是使用上文列出的孢子涂布的多孔载体来代替纸孢子条带。还使用其他部件，例如1292培养基安瓿、和打孔盖件。
利用100GMPSTERRAD容器(位于加州的高级灭菌产品公司(AdvancedSterilizationProducts,CA))来测试所有的生物指示器(BI)。在100GMPSTERRAD容器的后架和底架中测试BI(生物指示器)样品。将这些BI在过氧化氢蒸气中暴露10秒到8分钟(半周期)。对于每个测试周期，将1.8mL体积的59％H2O2通过隔膜注入到STERRAD容器室中。激活(压碎)生物指示器安瓿并且随后温育和观察BI以用于24小时生长读出，如实例4中所述。
得自在STERRAD中暴露不同时间的H2O2BI的数据示于表6中。结果表示为对于每个周期所测试的5个BI中的BI生长阳性的数量。涂布在亲水性载体材料上的孢子显示出对于变化的过氧化氢暴露量具有不一致的响应。而亲水性材料(CRANEGLAS、SX-314、和HEF140-114)包括一种或多种类型的异常趋势周期(在较小周期之前杀灭)(Paper-591)。
表6：BI性能-生长读出(24小时)
NT＝未测试
实例6
生长读出可靠性
得自BI生长读出可靠性的数据示于表7中。执行此实验以研究每天的读出可靠性。这些数据表明，无论载体材料的疏水性如何，在第一天到第七天均具有可靠的生长响应。
表7：1天到7天的生长读出可靠性(1分钟暴露时间)
实例7
荧光/生长相关性
8小时荧光和24小时生长读出之间的相关性示于表8中。这些结果表明，10个疏水性多孔载体材料中的8个显示出荧光和生长具有100％的相关性。相比之下，对于多孔亲水类型的材料，4个载体中的仅2个为100％相关的。
表8：荧光/生长相关性
实例8
残余的过氧化氢孢子恢复方法的修正
将每种样品的约1.6cm3的未涂布(不存在孢子)的三维多孔载体组装到BI构型中。利用100GMPSTERRAD容器来将未涂布的BI在过氧化氢蒸气中暴露8分钟。在暴露于过氧化氢蒸气之后，拆卸BI并且随后利用不同的稀释因子来涂布载体材料以便对于每个BI获得102；103；和105个孢子。为了测试孢子恢复能力，将50微升1克/升(g/L)的硫代硫酸钠(Na2S2O3)添加到每个BI。重新组装、压碎、和温育BI，以便获得8小时荧光和24小时生长读出。
此实验显示出利用“中和剂”(硫代硫酸钠)对于残余的过氧化氢的修正。在添加50微升1克/升(g/L)的硫代硫酸钠之后，得自全部载体材料的全部BI无论其疏水性如何均为生长阳性的。表9中的结果表示为对于每个浓度所测试的3个BI中的BI生长阳性的数量。结果表明，用于指定情况下的硫代硫酸钠为良好的孢子恢复试剂。这些结果表明，如果在被设计用于过氧化氢灭菌的BI中使用亲水性载体材料，则应使用恢复试剂(例如硫代硫酸钠)来移除残余的过氧化氢。疏水性载体有助于消除或显著地降低残余的H2O2。
表9：残余的过氧化氢的修正
实例9
载体材料空间形式及其对BI性能的影响
为了较好地理解载体的疏水性对于过氧化氢保留量和BI性能的影响，使用润湿剂(SILWET77；得自康乃狄克州丹伯里的联合碳化物公司(UnionCarbideCorporation,Danbury,CT))来改变表面特性。选择两种疏水性材料(T0505和UNIPRO125)并且使其成为亲水性的。将T0505和UNIPRO125载体以2D(二维或片状形式)和3D(三维多孔形式)来进行测试。组装BI，并且在3个不同的暴露时间下进行测试(表10)。仅当两个3D多孔形式的疏水性载体未通过润湿剂进行处理时才观察到随暴露时间增加而降低的孢子耐性。这指示出疏水性和载体构型在BI性能中起作用。
表10.疏水性改变和载体形式对于BI性能的影响
实例10
载体材料空间形式以及残余的过氧化氢的影响
表11提供了当亲水性载体以2D或3D形式以及在存在或不存在中和剂硫代硫酸钠的情况下进行使用时的BI性能数据。数据显示，当将中和剂添加到BI时检测到较高的生长阳性。
表11.残余的H 2 O 2 的修正和载体形式对于BI性能的影响
实例11
蒸汽灭菌的应用
调节孢子菌株浓度以获得67％的透射比。将10％浓度的山梨醇添加到涂布溶液。将孢子涂布到表12所示的选定多孔材料上并且进行温育。然后按照上文的孢子涂布方法和生物指示器的组装部分中所述，利用这些孢子涂布的多孔材料来组装生物指示器。对于每个样品而言，每周期将4个BI在121℃重力下暴露于蒸汽7分钟、11分钟、和15分钟。在蒸汽BIER容器(JoslynModelNo.SB-001灭菌器，得自纽约法明顿的强士林灭菌器公司(JoslynSterilizerCorporation,Farmington,NY)中测试BI。激活(压碎)BI并且进行温育以获得3小时荧光读出和24小时生长读出。
在与采用得自3M公司的290AutoReader的市售1292蒸汽快速读出式生物指示器相同的条件下来测试BI。表12显示，当使用HEF140-114、T0505、和Unilayer时，孢子耐性随暴露时间增加而降低，由此证明本发明可使用蒸汽作为灭菌剂。
表12.蒸汽灭菌中的生物指示器性能
实例12
环氧乙烷灭菌的应用
调节孢子菌株浓度以获得15％的透射比。将7％浓度的山梨醇添加到涂布溶液。按照上文的孢子涂布部分中所述来涂布、温育、和组装孢子。对于每个样品，利用OxyfumeCycle每周期将4个BI暴露于环氧乙烷气体17分钟、24分钟、和30分钟。在环氧乙烷容器(JoslynModelNo.EB-001灭菌器，得自纽约法明顿的强士林灭菌器公司(JoslynSterilizerCorporation,Farmington,NY)中测试BI。压碎BI并且进行温育以获得4小时荧光和24小时生长读出。
在与市售1294环氧乙烷快速读出式生物指示器相同的条件下来测试BI。表13显示，当使用HEF140-114、T0505、和Unilayer时，孢子耐性随暴露时间增加而降低，由此证明本发明可使用EO作为灭菌剂。
表13.环氧乙烷灭菌中的生物指示器性能
实例13
各种过氧化氢中和剂
此实例比较生物指示器恢复培养基中的不同添加剂的中和有效性。将添加剂(中和剂)添加到3MATTEST1292快速读出式生物指示器所用的恢复培养基中。过氧化氢酶、L-半胱氨酸、硫代硫酸钠、D-乙硫氨酸、S-甲基-半胱氨酸、S-苄基-L-半胱氨酸、硫代二丙酸、铁***、和丙酮酸钠均购自密苏里州圣路易斯的西格玛奥德里奇公司(Sigma-AldrichCorporation,St.Louis,MO)。异抗坏血酸购自马萨诸塞州黑弗里尔阿法埃莎公司(AlfaAesar,WardHill,MA)。甲硫氨酸购自新泽西州吉布斯敦的EMD化学品公司的生化公司(Calbiochem,EMDChemicals,Gibbstown,NJ)。
对3MATTEST1292生物指示器进行蒸汽灭菌以杀灭存在的孢子群。对两组3MATTEST1292BI进行评价，其中一组包含用于市售指示器中的纸孢子载体。在第二组中，将孢子载体替换成以CRANEGLAS230-11.0(位于马萨诸塞州多尔顿市的起重机公司(Crane&Co.,Inc.,Dalton,MA)商购获得的玻璃纤维条带。将蒸汽灭菌的BI暴露于STERRAD100S过氧化氢/等离子体灭菌周期中。紧随过氧化氢/等离子体灭菌之后，利用从3MATTEST1292BI孢子条带恢复的少于100个嗜热脂肪土芽孢杆菌孢子对包含具有和不具有添加剂的BI进行接种。将指示器在60℃(+/-2℃)下温育7天并且观察生长，所述生长由从紫色到黄色的颜色变化来指示。对于每种添加剂来测试阳性和阴性对照物。阳性对照物为蒸汽灭菌的并且利用少于100个孢子进行接种的。阴性对照物为蒸汽灭菌的。结果概述于下表14中。
表14.有效的过氧化氢中和剂
仅培养基1-未添加中和剂
过氧化氢酶2-每个小瓶添加226单位
阴性3-阳性对照物未生长
阳性*/阴性*-阳性(黄色)或阴性(紫色)因添加剂而变色。
上表14中的数据显示，在仅有培养基(不含添加剂)的情况下，对于纸和玻璃纤维载体两者而言，残余的过氧化氢均抑制孢子的生长。将过氧化氢酶添加到培养基中以充分地中和残余的过氧化氢，从而允许孢子生长并且使pH指示剂从紫色变为黄色。相比于纸载体，玻璃纤维载体保留较少的残余的过氧化氢并且可利用1-2克/升的添加剂来有效地中和过氧化氢。仅异抗坏血酸、硫代硫酸钠、和铁***能够在1克/升的浓度下来有效地中和纸载体。除s-苄基-L-半胱氨酸之外的所有其他中和剂添加剂能够在4-8克/升的浓度下中和纸载体。s-苄基-L-半胱氨酸在8克/升下为不可溶剂的。pH指示剂颜色受异抗坏血酸、硫代硫酸钠、s-甲基-半胱氨酸、和铁***的某些浓度的影响。此实例证明，测试的所有添加剂均能够有效地中和过氧化氢并且与嗜热脂肪土芽孢杆菌的生长相容。
将本文所引用的专利、专利文献以及出版物中的完全公开内容以引用方式全文并入本文，就如同将它们各自单独并入本文一样。在不脱离本发明的范围和精神的前提下，本发明的各种修改和更改对本领域的技术人员而言将是显而易见的。应该理解，本发明不限于本文示出的示例性实施例和实例，上述实例和实施例仅以举例的方式提出，而且本发明的范围仅受以下所附的权利要求书的限制。

Claims (5)

1.一种用于测试灭菌工序的有效性的灭菌指示器，所述指示器包括：
容器，所述容器具有至少一个开口以允许氧化性灭菌剂在所述灭菌工序期间进入所述容器；
容纳在所述容器内的载体；
由所述载体承载的生物材料，所述生物材料与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联，其中所述生物材料因有效的灭菌工序而灭活并且因无效的灭菌工序而提供可检测指示；
其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；
中和剂，所述中和剂以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在所述指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂；以及
用于形成灭菌工序失效的可检测指示的装置；
其中所述生物材料包括活性酶源，其中所述活性酶源由所述载体承载；
其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测所述灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；
其中所述活性酶源因致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活；
其中用于形成可检测指示的所述装置包括用于形成酶改性产物的装置。
2.根据权利要求1所述的灭菌指示器，其中所述生物材料包括分离酶。
3.一种用于测试灭菌工序的有效性的方法，所述方法包括：
提供灭菌指示器，所述灭菌指示器包括：
载体；
包括活性酶源的生物材料，其中所述活性酶源由所述载体承载；其中所述活性酶具有酶活性，所述酶活性与常用于监测灭菌工序的有效性的至少一种测试微生物的存活相关联；其中所述活性酶源因致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活，但其中所述活性酶源不会因亚致死所述测试微生物的灭菌工序而灭活；
其中所述灭菌指示器的一个或多个部件保留残余的氧化性灭菌剂；
中和剂，所述中和剂以能有效中和残余的氧化性灭菌剂的量设置在所述指示器内，其中所述中和剂并非为酶并且并非为金属催化剂，其中所述中和剂在灭菌期间与所述灭菌剂分离；和
酶底物，所述酶底物在灭菌工序失效时与所述活性酶反应以形成具有可检测的信号的酶改性产物；
使所述活性酶源经受灭菌工序；
将所述酶和所述底物混合以形成酶改性产物；
确定存在还是不存在具有可检测的信号的所述酶改性产物；以及
使所述可检测的信号的存在与所述灭菌工序的失效相关联，并且使所述可检测的信号的不存在与所述灭菌工序的成功相关联。
4.根据权利要求3所述的方法，其中所述灭菌指示器为双作用快速读出式指示器，并且所述活性酶源包括微生物的孢子，所述微生物的孢子充当用于酶活性测试的活性酶源以及用于孢子生长测试的测试微生物。
5.根据权利要求3所述的方法，其中所述灭菌工序使用过氧化氢蒸气。
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