CN105505901A - 一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物及其使用方法 - Google Patents
一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物及其使用方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN105505901A CN105505901A CN201410500338.3A CN201410500338A CN105505901A CN 105505901 A CN105505901 A CN 105505901A CN 201410500338 A CN201410500338 A CN 201410500338A CN 105505901 A CN105505901 A CN 105505901A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- composition
- cellulase
- inducing
- cellulase production
- fungi
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
本发明涉及纤维素酶发酵领域，特别涉及一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物及其使用方法。本发明公开了一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物，按重量份计，包括以下组分：木质纤维素0.5～1.5、以及微晶纤维素6～9.5。该诱导真菌高产纤维素酶的组合物的使用方法为：在真菌培养基中加入所述组合物，所述组合物的添加量为30～35g/L。本发明所述诱导真菌产纤维素酶的组合物配比简单，原料易于获得，且成本低，是新型廉价的纤维素酶合成的诱导物；该组合物的使用方法具有工艺简单，条件温和以及环境友好的优点，为纤维素酶高效低成本生产提供新的途径。
Description
技术领域
本发明涉及纤维素酶发酵领域，特别涉及一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物及其使用方法。
背景技术
碳源是影响纤维素酶基因表达的首要因素，真菌的纤维素酶需要在纤维素底物存在的情况下才能被诱导出来。天然纤维素原料是真菌产纤维素酶的最佳底物，它能够有效地促进纤维素酶的产生。天然纤维素原料本身作为不溶性碳源并不能直接触发对纤维素酶的诱导作用，而是通过基础水平表达的纤维素酶水解纤维素释放出可溶性的寡糖，寡糖进入细胞内进而诱导纤维素酶大量表达。目前已对很多寡糖及其衍生物进行研究，发现纤维二糖，槐糖，龙胆二糖，乳糖等对纤维素酶的生产是有诱导作用的。但是以这种寡糖直接加入培养基中诱导真菌产生纤维素酶，成本过高，并且二糖对纤维素酶有反馈抑制作用，影响纤维素酶的降解作用。所以在培养基中采用二糖物质作为纤维素酶生产的诱导物是不合适的。目前亟待发现新型廉价的纤维素酶合成的诱导物，为纤维素酶高效低成本生产提供新的途径。
发明内容
本发明目的之一在于提供一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物，用于解决现有纤维素酶诱导成本过高，诱导物效果一般的不足。本发明目的之二在于提供诱导真菌高产纤维素酶的组合物的使用方法，用于提供使用本发明所述诱导真菌高产纤维素酶的组合物的比较好的方法，发挥出诱导真菌高产纤维素酶的组合物的最佳效果。
为实现上述目的，本发明所采取的技术方案为：
一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物，其特征在于，按重量份计，包括以下组分：木质纤维素0.5～1.5、以及微晶纤维素6～9.5。
优选的是，按重量份计，包括以下组分：木质纤维素1～1.5、以及微晶纤维素7～8。
优选的是，按重量份计，包括以下组分：木质纤维素1、以及微晶纤维素7.5。
优选的是，所述木质纤维素为紫菜、水稻或者小麦中的任一种。
优选的是，所述木质纤维素为紫菜。
一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物的使用方法，其特征在于，在真菌培养基中加入所述组合物，所述组合物的添加量为30～35g/L。
优选的是，所述组合物的添加量为33g/L。
优选的是，所述真菌培养基为液体培养基，所述液体培养基还包括真菌生长所需氮源和无机盐离子为：质量分数为1.7％的玉米浆干粉，质量分数为0.5％的(NH4)2SO4，质量分数为0.1％的MgSO4，质量分数为0.25％的甘油，质量分数为0.25％的CaCO3，并调节pH为4.5-5.5。
优选的是，还包括以下步骤：
在所述液体培养基中接入真菌的孢子悬液，于28-30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
优选的是，所述真菌为桧状青霉或者里氏木霉中的一种。
本发明的有益效果是：
本发明方法采用将木质纤维素以及微晶纤维素按比例配合实现对木质纤维素的充分利用，节约资源；
木质纤维素为紫菜、水稻或者小麦中的任一种，是普通常见，且极易获得的资源，成本低，且解决了日常生活中处理木质纤维素的难题；
木质纤维素水解成的多糖为真菌大量繁殖和诱导其合成纤维素酶提供原料，取代了直接向培养基汇总加二糖物质作为纤维素酶生产的诱导物的做法，降低了生产成本，并且也不会发生对纤维素酶的反馈抑制作用，也不会影响纤维素酶的降解作用。
总之，本发明所述诱导真菌产纤维素酶的组合物配比简单，原料易于获得，且成本低，是新型廉价的纤维素酶合成的诱导物；该组合物的使用方法具有工艺简单，条件温和以及环境友好的优点，为纤维素酶高效低成本生产提供新的途径。
具体实施方式
下面结合实施例对本发明做进一步的详细说明，以令本领域技术人员参照说明书文字能够据以实施。
实施例1
步骤一、将紫菜干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的紫菜使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的紫菜按照9.5∶0.5混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为30g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入桧状青霉(Penicilliumpiceum)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导桧状青霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导桧状青霉酶液中beta-葡萄糖苷酶酶活力提高46.2％。蛋白浓度提高了35.7％，外切酶酶活力提高47.6％，滤纸酶活力提高14.2％。
实施例2
步骤一、将紫菜干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的紫菜使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的紫菜按照9∶1混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为33g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入桧状青霉(Penicilliumpiceum)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导桧状青霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导桧状青霉酶液中beta-葡萄糖苷酶酶活力提高61.2％。蛋白浓度提高了56.7％，外切酶酶活力提高61.4％，滤纸酶活力提高19.5％。
实施例3
步骤一、将紫菜干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的紫菜使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的紫菜按照8.5∶1混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为35g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入桧状青霉(Penicilliumpiceum)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导桧状青霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导桧状青霉酶液中beta-葡萄糖苷酶酶活力提高67.9％。蛋白浓度提高了59.1％，外切酶酶活力提高100％，滤纸酶活力提高39.2％。
实施例4
步骤一、将紫菜干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的紫菜使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的紫菜按照7.5∶1.5混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为30g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入桧状青霉(Penicilliumpiceum)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导桧状青霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导桧状青霉酶液中beta-葡萄糖苷酶酶活力提高57.2％。蛋白浓度提高了54.7％，外切酶酶活力提高70.0％，滤纸酶活力提高19.3％。
实施例5
步骤一、将紫菜干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的紫菜使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的紫菜按照6∶0.5混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为33g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入桧状青霉(Penicilliumpiceum)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导桧状青霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导桧状青霉酶液中beta-葡萄糖苷酶酶活力提高21.2％。蛋白浓度提高了14.2％，外切酶酶活力提高24.5％，滤纸酶活力提高11.6％。
实施例6
步骤一、将紫菜干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的紫菜使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的紫菜按照9∶1混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为35g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入里氏木霉(T.reesei)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导里氏木霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导里氏木霉酶液中beta-葡萄糖苷酶酶活力提高104％。蛋白浓度提高了24％，外切酶酶活力提高17.2％，木聚糖酶活力提高479％。
实施例7
步骤一、将紫菜干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的紫菜使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的紫菜按照7.5∶1混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为30g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入里氏木霉(T.reesei)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导里氏木霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导里氏木霉酶液中beta-葡萄糖苷酶酶活力提高112％。蛋白浓度提高了21.4％，外切酶酶活力提高54.1％，木聚糖酶活力提高521％。
实施例8
步骤一、将紫菜干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的紫菜使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的紫菜按照8.5∶1.5混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为33g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入里氏木霉(T.reesei)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导里氏木霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导里氏木霉酶液中beta-葡萄糖苷酶酶活力提高108％。蛋白浓度提高了15.7％，外切酶酶活力提高50％，木聚糖酶活力提高495％。
实施例9
步骤一、将水稻杆干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的水稻使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的水稻杆按照9∶1混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为35g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入里氏木霉(T.reesei)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导里氏木霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导里氏木霉酶液中滤纸酶活力提高59.5％。内切酶酶活力提高了72.5％，外切酶酶活力提高103.5％。
实施例10
步骤一、将小麦杆干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的水稻使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的小麦杆按照9∶1混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为30g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入里氏木霉(T.reesei)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导里氏木霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导里氏木霉酶液中滤纸酶活力提高41.3％。内切酶酶活力提高了68.7％。
实施例11
步骤一、将芒草杆干燥至恒重，之后用粉碎机粉碎，将粉碎的水稻使用80目标准筛子进行过筛处理，备用；
步骤二、将微晶纤维素与过筛后的芒草杆按照9∶1混合，作为诱导真菌产纤维素酶的组合物加入真菌液体培养基中，添加量为33g/L；
步骤三、向液体培养基中加入真菌生长需要的N源和无机盐离子，玉米浆干粉1.7％，(NH4)2SO40.5％，MgSO40.1％，甘油0.25％，CaCO30.25％，调节pH4.5-5.5；
步骤四、在培养基中接入里氏木霉(T.reesei)的孢子悬液，于30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
发酵120h后，采用国际理论与应用化学联合会(IUPAC)推荐的国际标准方法测定发酵液酶活力，与只用微晶纤维素诱导里氏木霉酶液相比，利用诱导真菌产纤维素酶的组合物诱导里氏木霉酶液中滤纸酶活力提高38.4％，外切酶酶活力提高72.1％。
尽管本发明的实施方案已公开如上，但其并不仅仅限于说明书和实施方式中所列运用，它完全可以被适用于各种适合本发明的领域，对于熟悉本领域的人员而言，可容易地实现另外的修改，因此在不背离权利要求及等同范围所限定的一般概念下，本发明并不限于特定的细节和这里示出的实施例。
Claims (10)
1.一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物，其特征在于，按重量份计，包括以下组分：木质纤维素0.5～1.5、以及微晶纤维素6～9.5。
2.如权利要求1所述的诱导真菌高产纤维素酶的组合物，其特征在于，按重量份计，包括以下组分：木质纤维素1～1.5、以及微晶纤维素7～8。
3.如权利要求2所述的诱导真菌高产纤维素酶的组合物，其特征在于，按重量份计，包括以下组分：木质纤维素1、以及微晶纤维素7.5。
4.如权利要求3所述的诱导真菌高产纤维素酶的组合物，其特征在于，所述木质纤维素为紫菜、水稻、小麦或者芒草中的任一种。
5.如权利要求4所述的诱导真菌高产纤维素酶的组合物，其特征在于，所述木质纤维素为紫菜。
6.一种如权利要求1所述的诱导真菌高产纤维素酶的组合物的使用方法，其特征在于，在真菌培养基中加入所述组合物，所述组合物的添加量为30～35g/L。
7.如权利要求6所述的诱导真菌高产纤维素酶的组合物的使用方法，其特征在于，所述组合物的添加量为33g/L。
8.如权利要求7所述诱导真菌高产纤维素酶的组合物的使用方法，其特征在于，所述真菌培养基为液体培养基，所述液体培养基还包括真菌生长所需氮源和无机盐离子为：质量分数为1.7％的玉米浆干粉，质量分数为0.5％的(NH4)2SO4，质量分数为0.1％的MgSO4，质量分数为0.25％的甘油，质量分数为0.25％的CaCO3，并调节pH为4.5-5.5。
9.如权利要求8所述的诱导真菌高产纤维素酶的组合物的使用方法，其特征在于，还包括以下步骤：
在所述液体培养基中接入真菌的孢子悬液，于28-30℃的条件下，以转速170-200转/分速率的摇床上震荡培养96-120h。
10.如权利要求9所述诱导真菌高产纤维素酶的组合物的使用方法，其特征在于，所述真菌为桧状青霉或者里氏木霉中的一种。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201410500338.3A CN105505901A (zh) | 2014-09-26 | 2014-09-26 | 一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物及其使用方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| CN201410500338.3A CN105505901A (zh) | 2014-09-26 | 2014-09-26 | 一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物及其使用方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| CN105505901A true CN105505901A (zh) | 2016-04-20 |
Family
ID=55714196
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| CN201410500338.3A Pending CN105505901A (zh) | 2014-09-26 | 2014-09-26 | 一种诱导真菌高产纤维素酶的组合物及其使用方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| CN (1) | CN105505901A (zh) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN108118020A (zh) * | 2018-01-16 | 2018-06-05 | 中国科学院青岛生物能源与过程研究所 | 纤维素降解微生物的培养基、制备及其应用 |
Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2004035070A1 (en) * | 2002-09-10 | 2004-04-29 | Genencor International, Inc. | Induction of gene expression using a high concentration sugar mixture |
| CN101705217A (zh) * | 2009-10-29 | 2010-05-12 | 安徽丰原发酵技术工程研究有限公司 | 一种联产木聚糖酶和纤维素酶的方法 |
| CN102660519A (zh) * | 2012-05-02 | 2012-09-12 | 东华大学 | 一种利用发酵废液制备生物酶的方法 |
| CN102994481A (zh) * | 2012-12-05 | 2013-03-27 | 天津工业生物技术研究所 | 一种高效降解木质纤维素的复合酶系的制备方法及其应用 |
| CN103045569A (zh) * | 2013-01-15 | 2013-04-17 | 熊鹏 | 添加高聚木糖提高纤维素酶生产效率的方法 |
| CN103045566A (zh) * | 2012-12-14 | 2013-04-17 | 河南天冠纤维乙醇有限公司 | 一种利用底物诱导调控纤维素酶生产的方法 |
-
2014
- 2014-09-26 CN CN201410500338.3A patent/CN105505901A/zh active Pending
Patent Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2004035070A1 (en) * | 2002-09-10 | 2004-04-29 | Genencor International, Inc. | Induction of gene expression using a high concentration sugar mixture |
| CN101705217A (zh) * | 2009-10-29 | 2010-05-12 | 安徽丰原发酵技术工程研究有限公司 | 一种联产木聚糖酶和纤维素酶的方法 |
| CN102660519A (zh) * | 2012-05-02 | 2012-09-12 | 东华大学 | 一种利用发酵废液制备生物酶的方法 |
| CN102994481A (zh) * | 2012-12-05 | 2013-03-27 | 天津工业生物技术研究所 | 一种高效降解木质纤维素的复合酶系的制备方法及其应用 |
| CN103045566A (zh) * | 2012-12-14 | 2013-04-17 | 河南天冠纤维乙醇有限公司 | 一种利用底物诱导调控纤维素酶生产的方法 |
| CN103045569A (zh) * | 2013-01-15 | 2013-04-17 | 熊鹏 | 添加高聚木糖提高纤维素酶生产效率的方法 |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN108118020A (zh) * | 2018-01-16 | 2018-06-05 | 中国科学院青岛生物能源与过程研究所 | 纤维素降解微生物的培养基、制备及其应用 |
| CN108118020B (zh) * | 2018-01-16 | 2020-06-12 | 中国科学院青岛生物能源与过程研究所 | 纤维素降解微生物的培养基、制备及其应用 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Marques et al. | Cellulases and xylanases production by endophytic fungi by solid state fermentation using lignocellulosic substrates and enzymatic saccharification of pretreated sugarcane bagasse | |
| Sohail et al. | Cellulase production from Aspergillus niger MS82: effect of temperature and pH | |
| da Silva Delabona et al. | Effect of initial moisture content on two Amazon rainforest Aspergillus strains cultivated on agro-industrial residues: Biomass-degrading enzymes production and characterization | |
| Bentil et al. | Cellulase production by white-rot basidiomycetous fungi: solid-state versus submerged cultivation | |
| Kolasa et al. | Co-cultivation of Trichoderma reesei RutC30 with three black Aspergillus strains facilitates efficient hydrolysis of pretreated wheat straw and shows promises for on-site enzyme production | |
| Deswal et al. | Optimization of cellulase production by a brown rot fungus Fomitopsis sp. RCK2010 under solid state fermentation | |
| Metreveli et al. | Alteration of white-rot basidiomycetes cellulase and xylanase activities in the submerged co-cultivation and optimization of enzyme production by Irpex lacteus and Schizophyllum commune | |
| de Oliveira Rodrigues et al. | Lignocellulose-degrading enzymes production by solid-state fermentation through fungal consortium among Ascomycetes and Basidiomycetes | |
| Saini et al. | Cost-effective cellulase production using Parthenium hysterophorus biomass as an unconventional lignocellulosic substrate | |
| Aita et al. | Production of cell-wall degrading enzymes by solid-state fermentation using agroindustrial residues as substrates | |
| Julia et al. | Potential use of soybean hulls and waste paper as supports in SSF for cellulase production by Aspergillus niger | |
| Kaur et al. | A low-cost approach for the generation of enhanced sugars and ethanol from rice straw using in-house produced cellulase-hemicellulase consortium from A. niger P-19 | |
| Patel et al. | Improved yield of α-L-arabinofuranosidase by newly isolated Aspergillus niger ADH-11 and synergistic effect of crude enzyme on saccharification of maize stover | |
| Kazeem et al. | Enhanced cellulase production by a novel thermophilic Bacillus licheniformis 2D55: characterization and application in lignocellulosic saccharification | |
| CN104262024A (zh) | 一种金针菇培养基及其制备方法 | |
| Lin et al. | Artificial construction and characterization of a fungal consortium that produces cellulolytic enzyme system with strong wheat straw saccharification | |
| Rajoka | Influence of various fermentation variables on exo-glucanase production in Cellulomonas flavigena | |
| CN105254353A (zh) | 玉米秸秆高温腐熟剂及其制备方法 | |
| de Almeida et al. | Study of gamba grass as carbon source for cellulase production by Fusarium verticillioides and its application on sugarcane bagasse saccharification | |
| El-Ghonemy et al. | Improvement of Aspergillus oryzae NRRL 3484 by mutagenesis and optimization of culture conditions in solid-state fermentation for the hyper-production of extracellular cellulase | |
| Chantorn et al. | Optimization of extracellular mannanase production from Penicillium oxalicum KUB-SN2-1 and application for hydrolysis property | |
| CN105018447A (zh) | 一种利用木霉属真菌高产纤维素酶的方法 | |
| Mezadri et al. | Evaluation of ultrasound waves for the production of chitinase and β-1, 3 glucanase by Trichoderma harzianum through SSF | |
| Lu et al. | Enzyme production by the mixed fungal culture with nano‐shear pretreated biomass and lignocellulose hydrolysis | |
| Noor El-Deen et al. | Improvement of β-glucosidase production by co-culture of Aspergillus niger and A. oryzae under solid state fermentation through feeding process |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| C06 | Publication | ||
| PB01 | Publication | ||
| C10 | Entry into substantive examination | ||
| SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
| RJ01 | Rejection of invention patent application after publication | ||
| RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20160420 |