CN105274041A - 一株重组大肠杆菌及其在生产2-丁醇中的应用 - Google Patents
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Abstract
本发明公开了一株重组大肠杆菌,所述菌株命名为大肠杆菌(Escherichia?coli)BL21/pETDuet-fdh-adh,该菌株含有甲酸脱氢酶基因fdh和醇脱氢酶基因adh,其中所述fdh基因的核苷酸序列如SEQ?ID?NO.1所示,所述adh基因的核苷酸序列如SEQ?ID?NO.2所示;该菌株已于2015年9月23日保藏于“中国典型培养物保藏中心”,保藏号为:CCTCC?NO:M?2015572。本发明还公开了所述菌株作为生物催化剂在催化2-丁酮生产2-丁醇中的应用,实验证实应用本发明的菌株制备的2-丁醇浓度可达18.2克/升(转化率达0.68g/g)以上,并且实现辅因子的再生,极具工业应用前景。
Description
技术领域
本发明涉及一株基因重组菌及其应用,具体的说,涉及一株共表达甲酸脱氢酶(FDH)基因fdh和醇脱氢酶(ADH)基因adh的重组大肠杆菌及其在催化2-丁酮生产2-丁醇中的应用。
背景技术
2-丁醇为无色透明液体,有葡萄酒香味。能与醇、酯、醚、芳香烃等多种有机溶剂混溶,是一种有价值的生物燃料,具有较高的辛烷值,低吸湿性,比乙醇更高的能量密度,与汽油相同的功能【1】。当2-丁醇转化成2-丁烯时,可在聚酯和其它生物塑料的合成中使用【2,3】。
已报道的2-丁醇生产方法分为传统的化学法和生物法。化学方法通常采用正丁烯水合法【4】,该过程使用的起始原料来自石油化工产品,通常既昂贵又不环保。利用生物法生产2-丁醇具有原材料成本低、反应条件温和等优势。文献【5】报道利用乳杆菌生产2-丁醇的研究,筛选42种不同乳酸菌菌株,证明了其利用meso-2,3-丁二醇产生2-丁醇的能力,文献【6】利用酿酒酵母共表达来自乳酸菌的B12-醇脱水酶和来自大头茶属的仲醇脱氢酶,转化meso-2,3-丁二醇生产4mg/L2-丁醇。
近年来,研究者也进行利用基因工程改造微生物从葡萄糖生产2-丁醇的研究,文献【7】报道基因工程改造肺炎克雷伯氏菌生产2-丁醇,共表达来自肺炎克雷伯氏菌的乙酰乳酸合酶(ILVIH)、酮酸苯双甲吗啉异构酶(ILVC)、二羟酸脱水酶(ILVD)和来自乳酸乳球菌的α-酮异戊酸脱羧酶(KIVD)和醇脱氢酶(ADHA),以葡萄糖为底物可生产320mg/L2-丁醇。该肺炎克雷伯氏菌经过进一步改造,共表达二醇脱水酶和仲醇脱氢酶,敲除副产物乳酸合成基因ldhA,添加辅因子B12,2-丁醇产量提高至1030mg/L【8】。但是该菌株生产2-丁醇产量较低且工艺繁琐,并有副产物如乳酸、乙偶姻的生成,降低了产物纯度,增加了后期分离纯化的成本。基于此,迫切需要寻找更好的方法或途径,以实现2-丁醇的高效生产。
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发明内容
针对上述现有方法中,产品的生产率低,成本高,难以大规模生产的不足。本发明要解决的问题是提供一株共表达甲酸脱氢酶基因fdh和醇脱氢酶基因adh的重组大肠杆菌及其在催化2-丁酮生产2-丁醇中的应用。
本发明所述的重组大肠杆菌,其特征在于:所述重组大肠杆菌命名为大肠杆菌(Escherichiacoli)BL21/pETDuet-fdh-adh,该菌株含有甲酸脱氢酶(FDH)基因fdh和醇脱氢酶(ADH)基因adh,其中所述fdh基因的核苷酸序列如SEQIDNO.1所示,所述adh基因的核苷酸序列如SEQIDNO.2所示;所述菌株已于2015年9月23日保藏于“中国典型培养物保藏中心”,保藏号为:CCTCCNO:M2015572。
上述重组大肠杆菌为革兰氏阴性菌,需氧或兼性厌氧生长,该菌的较佳培养温度为37±1℃,可以在含有100μg/mL氨苄青霉素的LB培养基上生长。具有能催化2-丁酮产生2-丁醇的特性。
上述重组大肠杆菌以如下方法制得:
克隆甲酸脱氢酶(FDH)基因fdh,构建重组质粒pETDuet-fdh;将醇脱氢酶(ADH)基因adh连接到pETDuet-fdh上,得到质粒pETDuet-fdh-adh;将该质粒经转化导入宿主E.coliBL21(DE3)中得到重组基因工程菌株——大肠杆菌(Escherichiacoli)BL21/pETDuet-fdh-adh。
本发明所述重组大肠杆菌作为生物催化剂在催化2-丁酮生产2-丁醇中的应用。
上述应用涉及的操作步骤顺序如下:
(1)平板培养:将大肠杆菌(Escherichiacoli)BL21/pETDuet-fdh-adh划线到含有质量体积比为1.5~1.8%琼脂并含100μg/mL氨苄青霉素的LB平板上,37±1℃培养12±1小时;
(2)一级种子:在无菌的条件下,用无菌的牙签挑取步骤(1)平板上的一个单菌落,然后接种到5mL的含100μg/mL氨苄青霉素的LB液体培养基中,37±1℃摇床振荡培养12±1小时;
(3)二级种子:在无菌条件下,取步骤(2)所培养的菌液以体积比为1~2%的接种量,接种到100mL含有100μg/mL的氨苄青霉素的LB液体培养基中,37±1℃摇床振荡培养12±1小时;
(4)摇瓶培养:在无菌条件下,取步骤(3)所得的菌液以体积比为5~10%的接种量接种到1L的LB液体培养基中,37±1℃培养约2小时,加入终浓度为0.5mM的IPTG,16℃诱导10~12小时;
其中:上述步骤(1)~(4)中所述的LB培养基配方是:蛋白胨10g/L;酵母粉5g/L;NaCl10g/L,pH7.0;115℃灭菌20分钟;
(5)收集菌体:将步骤(4)培养得到的培养物6,000±500转/分钟离心10分钟;并用pH7.4、1/15M的磷酸盐缓冲液洗涤菌体2~3遍,然后将细胞悬起到磷酸盐缓冲液中,使细胞的终浓度以OD600nm计为5~35,即得到生物催化剂;或将其置于4℃的冰箱中冻存待用;
(6)转化实验制备产物:
将制得的生物催化剂在30℃,pH5.5~8.5厌氧条件下,转化浓度为100~600mM的2-丁酮和甲酸钠;50±5转/分钟振荡1~6小时,即得到含2-丁醇的转化液。
上述应用中:步骤(6)所述生物催化剂优选在转化液中的细胞浓度以OD600nm计为30,所述2-丁酮和甲酸钠的浓度优选为400mM,所述pH优选为6.0。
将上述得到的含2-丁醇的转化液以13,000±500转/分离心10~15分钟,去除所加入的生物催化剂,然后用终浓度10%的三氯乙酸溶液进行蛋白降解,离心过滤后的上清进行高效液相色谱分析,测定转化产物中2-丁醇的浓度。具体的检测方法如下:
向步骤(6)中得到的去除生物催化剂的含2-丁醇的转化液样品中加入终浓度10%的三氯乙酸溶液,35℃水浴放置10分钟,13,000±500转/分离心15~20分钟,取上层样品过滤后进行液相检测。对于样品中底物2-丁酮、甲酸钠和产物2-丁醇浓度的液相检测条件如下:
所用高效液相色谱仪的型号是Agilent1100Hewlett-Packard,配备示差折光检测器和Bio-RadAminexHPX-87H分析柱(300×7.8mm),柱温55℃,流动相10mMH2SO4,流速0.6mL/min,进样体积5μL。
检测结果:最终2-丁醇浓度达到18.2g/L,转化率达0.68g/g。
本发明提供了一株共表达甲酸脱氢酶基因fdh和醇脱氢酶基因adh的重组大肠杆菌,并公开了利用该重组大肠杆菌(Escherichiacoli)BL21/pETDuet-fdh-adh的全细胞作为生物催化剂催化2-丁酮生产2-丁醇的应用。其中该菌表达的醇脱氢酶(ADH)催化2-丁酮生成2-丁醇,表达的甲酸脱氢酶(FDH)提供醇脱氢酶所需的辅因子NADH,实现辅因子的再生。该重组大肠杆菌转化2-丁酮生产2-丁醇的转化原理示意图见图1。本发明提供的重组大肠杆菌菌株要求的培养基简单、成本低,其作为生物催化剂进行转化,反应条件温和,操作方便,并具有产物浓度和底物转化效率高的特点,检测证实最终2-丁醇浓度达到18.2g/L,转化率达0.68g/g。同时本发明所述的生物催化剂可以用过滤法或离心法去除,后续精馏分离提取费用低廉,极具工业应用前景。
附图说明
本发明所述菌株大肠杆菌(Escherichiacoli)BL21/pETDuet-fdh-adh已于2015年9月23日保藏于中国典型培养物保藏中心(地址:中国.武汉.武汉大学),保藏号为:CCTCCNO:M2015572。
图1:本发明所述重组大肠杆菌转化2-丁酮生产2-丁醇的转化原理示意图。
图2:本发明所述重组大肠杆菌的蛋白电泳图
其中M:Marker;1:E.coliBL21(DE3);2:E.coliBL21/pETDuet-1;3:E.coliBL21/pETDuet-fdh;4:E.coliBL21/pETDuet-fdh-adh。
图3:本发明所述重组大肠杆菌催化2-丁酮生产2-丁醇过程曲线图。
具体实施方式
本发明涉及的甲酸脱氢酶基因fdh来自博伊丁假丝酵母(Candidaboidinii)NCYC1513(购自英国酵母菌文化收藏中心,菌株编号为:NCYC1513);醇脱氢酶基因adh来自***滑假丝酵母(Candidaparapsilosis)(由生工生物工程(上海)股份有限公司全基因合成);E.coliBL21(DE3)(购自北京全式金生物技术有限公司)。
实施例1:共表达甲酸脱氢酶基因fdh和醇脱氢酶基因adh的大肠杆菌的构建
(1)基因fdh的克隆:采用常规的方法制备菌株博伊丁假丝酵母(Candidaboidinii)NCYC1513的基因组DNA,该过程可参考科学出版社出版的《精编分子生物学指南》中基因组的小量制备的方法,提取CandidaboidiniiNCYC1513的基因组DNA;使用合成的引物从CandidaboidiniiNCYC1513的基因组DNA中PCR扩增得到甲酸脱氢酶基因fdh;
CandidaboidiniiNCYC1513作为fdh基因的来源菌,根据已测序的该菌的基因组序列,设计引物,引入能***质粒pETDute-1(Novagen)的NdeI和XhoI限制性酶切位点,引物序列如下:
上游引物5’-CATATGAAGATCGTTTTAGTCTTATATGATGCTGGTA-3’,携带一个NdeI位点;
下游引物5’-CTCGAGTTATTTCTTATCGTGTTTACCGTAAGCTTTG-3’,携带一个XhoI位点。
将步骤(1)PCR扩增得到的片段连接到pEasy-T上,得到重组质粒pEasy-T-fdh,使用NdeI、XhoI双酶切质粒pETDuet-1和pEasy-T-fdh,回收片段fdh及pETDuet-1,连接,得到重组质粒pETDuet-fdh;
(2)基因adh的克隆及连接:通过生工生物工程(上海)股份有限公司全基因合成来自***滑假丝酵母菌(Candidaparapsilosis)的adh基因,引入能***质粒pETDute-1的BamHI和SalI限制性酶切位点,连接adh到pETDuet-fdh上,得到质粒pETDuet-fdh-adh;
(3)将上述质粒经转化导入宿主E.coliBL21(DE3)中得到重组工程菌株——大肠杆菌(Escherichiacoli)BL21/pETDuet-fdh-adh。
上述菌株在含100μg/mL氨苄青霉素的LB液体培养基中,37℃培养2小时,加入终浓度为0.5mM的IPTG,16℃诱导10小时,得到同时表达有FDH和ADH的细胞,经12.5%的SDS-PAGE验证,结果如图2所示。
上述菌株含有甲酸脱氢酶基因fdh和醇脱氢酶基因adh,其中所述fdh基因的核苷酸序列如SEQIDNO.1所示(序列长度为1095个碱基),所述adh基因的核苷酸序列如SEQIDNO.2所示(序列长度为1024个碱基);所述菌株已于2015年9月23日保藏于“中国典型培养物保藏中心”,保藏号为:CCTCCNO:M2015572。
上述重组大肠杆菌为革兰氏阴性菌,需氧或兼性厌氧生长,该菌的较佳培养温度为37±1℃,可以在含有100μg/mL氨苄青霉素的LB培养基上生长。具有能催化2-丁酮产生2-丁醇的特性。
实施例2:全细胞催化剂的制备
(1)平板培养:将大肠杆菌(Escherichiacoli)BL21/pETDuet-fdh-adh划线到含有质量体积比为1.5~1.8%琼脂并含100μg/mL氨苄青霉素的LB平板上,37±1℃培养12±1小时;
(2)一级种子:在无菌的条件下,用无菌的牙签挑取步骤(1)平板上的一个单菌落,然后接种到5mL的含100μg/mL氨苄青霉素的LB液体培养基中,37±1℃摇床振荡培养12±1小时;
(3)二级种子:在无菌条件下,取步骤(2)所培养的菌液以体积比为1~2%的接种量,接种到100mL含有100μg/mL的氨苄青霉素的LB液体培养基中,37±1℃摇床振荡培养12±1小时;
(4)摇瓶培养:在无菌条件下,取步骤(3)所得的菌液以体积比为5~10%的接种量接种到1L的LB液体培养基中,37±1℃培养约2小时,加入终浓度为0.5mM的IPTG,16℃诱导10~12小时;
其中:上述步骤(1)~(4)中所述的LB培养基配方是:蛋白胨10g/L;酵母粉5g/L;NaCl10g/L,pH7.0;115℃灭菌20分钟;
(5)收集菌体:将步骤(4)培养得到的培养物6,000±500转/分钟离心10分钟;并用pH7.4、1/15M的磷酸盐缓冲液洗涤菌体2~3遍,然后将细胞悬起到磷酸盐缓冲液中,使细胞的终浓度以OD600nm计为5~35,即得到生物催化剂;或将其置于4℃的冰箱中冻存待用。
实施例3:利用实施例2得到的生物催化剂制备2-丁醇
转化实验:在30℃,pH6.0厌氧条件下,以实施例2制得的生物催化剂转化浓度为400mM的2-丁酮和甲酸钠,其中生物催化剂即大肠杆菌(Escherichiacoli)BL21/pETDuet-fdh-adh在转化液中的细胞浓度以OD600nm计为30;50转/分钟振荡反应6小时,得到含2-丁醇的转化液。
转化过程中,可随时取转化液,以6,000转/分离心10分钟,去除所加入的生物催化剂,测定上清液中甲酸钠、2-丁酮和2-丁醇的含量。
反应结束时收集得到的含2-丁醇的转化液以13,000±500转/分离心10~15分钟,去除所加入的生物催化剂,然后加入终浓度10%的三氯乙酸溶液,35℃水浴放置10分钟,13,000±500转/分离心15~20分钟,取上层样品过滤后进行高效液相色谱检测。对于样品中底物2-丁酮、甲酸钠和产物2-丁醇浓度的液相检测条件如下:
所用高效液相色谱仪的型号是Agilent1100Hewlett-Packard,配备示差折光检测器和Bio-RadAminexHPX-87H分析柱(300×7.8mm),柱温55℃,流动相10mMH2SO4,流速0.6mL/min,进样体积5μL。
液相检测样品的HPLC结果见图3,消耗2-丁酮26.8g/L,产生2-丁醇18.2g/L,转化率达0.68g/g。
Claims (4)
1.一株重组大肠杆菌,其特征在于:所述重组大肠杆菌命名为大肠杆菌(Escherichiacoli)BL21/pETDuet-fdh-adh,该菌株含有甲酸脱氢酶基因fdh和醇脱氢酶基因adh,其中所述fdh基因的核苷酸序列如SEQIDNO.1所示,所述adh基因的核苷酸序列如SEQIDNO.2所示;所述菌株已于2015年9月23日保藏于“中国典型培养物保藏中心”,保藏号为:CCTCCNO:M2015572。
2.权利要求1所述的重组大肠杆菌作为生物催化剂在催化2-丁酮生产2-丁醇中的应用。
3.如权利要求2所述的应用,其涉及的步骤顺序如下:
(1)平板培养:将大肠杆菌(Escherichiacoli)BL21/pETDuet-fdh-adh划线到含有质量体积比为1.5~1.8%琼脂并含100μg/mL氨苄青霉素的LB平板上,37±1℃培养12±1小时;
(2)一级种子:在无菌的条件下,用无菌的牙签挑取步骤(1)平板上的一个单菌落,然后接种到5mL的含100μg/mL氨苄青霉素的LB液体培养基中,37±1℃摇床振荡培养12±1小时;
(3)二级种子:在无菌条件下,取步骤(2)所培养的菌液以体积比为1~2%的接种量,接种到100mL含有100μg/mL的氨苄青霉素的LB液体培养基中,37±1℃摇床振荡培养12±1小时;
(4)摇瓶培养:在无菌条件下,取步骤(3)所得的菌液以体积比为5~10%的接种量接种到1L的LB液体培养基中,37±1℃培养约2小时,加入终浓度为0.5mM的IPTG,16℃诱导10~12小时;
其中:上述步骤(1)~(4)中所述的LB培养基配方是:蛋白胨10g/L;酵母粉5g/L;NaCl10g/L,pH7.0;115℃灭菌20分钟;
(5)收集菌体:将步骤(4)培养得到的培养物6,000±500转/分钟离心10分钟;并用pH7.4、1/15M的磷酸盐缓冲液洗涤菌体2~3遍,然后将细胞悬起到磷酸盐缓冲液中,使细胞的终浓度以OD600nm计为5~35,即得到生物催化剂;或将其置于4℃的冰箱中冻存待用;
(6)转化实验制备产物:
将制得的生物催化剂在30℃,pH5.5~8.5厌氧条件下,转化浓度为100~600mM的2-丁酮和甲酸钠;50±5转/分钟振荡1~6小时,即得到含2-丁醇的转化液。
4.如权利要求3所述的应用,其特征在于:步骤(6)所述生物催化剂在转化液中的细胞浓度以OD600nm计为30,所述2-丁酮和甲酸钠的浓度为400mM,所述pH为6.0。
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PB01 | Publication | ||
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GR01 | Patent grant | ||
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