一种聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球的制备方法
技术领域
本发明涉及一种聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球的制备方法。
背景技术
光热消融治疗作为治疗癌症的一种新方法近年来受到极大地关注,选择合适的光热转换材料尤为重要。目前的光热转换材料主要有四大类:贵金属基光热转换材料、碳基光热转换材料、有机化合物光热转换材料、半导体光热转换材料。在具有超强光热转化效率的纳米材料中,广泛研究的是贵金属纳米材料,如金纳米颗粒。但是贵金属材料存在成本较高,光稳定性不好,具有一定的生物毒性等不足。特别是,受光激发下,材料会发生形貌变化甚至发生融化,从而导致等离子共振吸收峰会随着光致而偏移,最终影响到光热效果。碳基光热材料存在光热转化效率低,光热效果差等不足。至于有机化合物光热材料,尽管它们的生物毒性较低,但是存在光热转换效率低、光热性能不稳定、易被光漂白、需要使用高功率激光密度等缺点。
相比而言,铜基半导体光热剂是一类新型近红外响应的光热转换材料,具有生物毒性低、吸收系数大、光稳定性好、价格便宜等优点,在癌症细胞消融方面具有明显优势。但是目前报道的铜基材料存在光学吸收系数小,光热转化率不高;材料尺寸过大不适合生物体系应用;产物未经高分子改性而不稳定、易聚沉;比表面积较小难以载药等不足。
发明内容
本发明为了克服现有技术的不足,提供一种操作过程简便、所需原材料易得,制造成本低的聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球的制备方法,该方法制得的Cu3BiS3空心纳米球可以负载高剂量的药物,具有高效的光热转化效率。
为了实现上述目的,本发明采用以下技术方案:一种聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球的制备方法,包括如下步骤: 1)制备A混合溶液:将氯化铜CuCl2、五水硝酸铋Bi(NO3)35H2O,溶于乙二醇中,搅拌1小时后得到A混合溶液,CuCl2、Bi(NO3)35H2O、乙二醇的比例为0.45 mmol: 0.15 mmol:55
ml; 制备B混合溶液:将L-半胱氨酸、PEG(Mn=2000),溶于乙二醇,搅拌1小时后得到B混合溶液;L-半胱氨酸、PEG、乙二醇的比例为0.6 mmol:4 mL:5 mL;
CuCl2、Bi(NO3)35H2O和L-半胱氨酸的摩尔比为3:1:4;
2)将步骤1)得到的A混合溶液在200 ℃条件下油浴回流反应1 h,得到A反应液;将步骤1)得到的B混合溶液注入A反应液中,搅拌1小时后转移到高压釜中,在200 ℃条件下反应1 h,冷却,离心,洗涤,干燥,即得聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球。
进一步的,所述步骤1)中B混合溶液的PEG分子量为2000,用量为4mL。
进一步的,所述步骤2)中高压釜为150 mL的聚四氟乙烯不锈钢反应釜。
所述步骤2)中洗涤过程采用为水、乙醇各洗涤3-5次。
进一步的,制得的所述Cu3BiS3空心纳米球应用于红外光激发的药物传递、热疗、热疗协同化疗杀死癌细胞
本发明制得的纳米Cu3BiS3经聚乙二醇修饰后,则可以阻止它们被蛋白质吸附、提高它们的生物相容性及防止它们在生物环境下的团聚;当纳米Cu3BiS3制备成空心结构时,则有利于光在其空腔中的多次反射,从而增加了光能利用率;同时,空心纳米球具有大的比表面积,可以负载高剂量的药物;因此,制备聚乙二醇化的空心结构的Cu3BiS3纳米球,既可以保证满足生物医学应用要求,又增强了红外光的利用率,表现为提高了其光热转化效率;且具有高比表面积的纳米空心球,又可以负载高剂量的药物,同时实现药物传递、光热释药及光热协同药物疗法来治愈癌细胞。
综上所述,本发明具有以下优点:1)本发明具有环境友好、原材料廉价易得、操作过程简便、重复率高等优点;2)本发明的产物在溶液中的分散性好,稳定性高;可以很好的分散在水、乙醇、甲苯等极性与非极性溶剂中。3)本发明制得的聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球具有可以忽略的细胞毒性;4)本发明制得的聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球在近红外区有很强的吸收,能有效的将近红外光转换成热;在对人体安全功率为0.72 Wcm-2的980 nm的激光照射下,5 min内含本发明制得的Cu3BiS3空心纳米球的水溶液能升高30 ℃,而纯水仅升高3 ℃;5) 本发明提供的聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球具有多功能性,在红外光激发下能够实现药物传递,光热杀死癌细胞,以及光热协同药物杀死癌细胞。
附图说明
图1为本发明制备的聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球的透射电镜照片。 图2为本发明制备的聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球的XRD花样。
图3 为本发明制备的聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球的红外光谱。
图4为本发明制备的Cu3BiS3空心纳米球的紫外吸收光谱。
图5为本发明制备的Cu3BiS3空心纳米球的细胞毒理性图片。
图6为本发明制备的Cu3BiS3空心纳米球在功率为0.72 Wcm-2的980 nm激光器照射下温度-时间曲线图。
图7为Hela细胞在不同浓度的Cu3BiS3纳米球存在下,经功率为0.72 Wcm-2的980 nm激光照射5 min 后细胞的抑制情况。
图8为不加纳米粒子的正常Hela细胞、本发明制备的Cu3BiS3空心纳米球(5g/mL)处理Hela细胞24 h后的显微图像及本发明制备的Cu3BiS3空心纳米球(5g/ml)在0.72 Wcm-2的980 nm激光器照射Hela细胞5 min 显微图像三者间的对比图。
图9 为制备的聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球在不同pH条件下,光热释放药物情况。
图10为热疗、药疗及热疗协同药疗杀死癌细胞的情况。
具体实施方式
为了使本技术领域的人员更好的理解本发明方案,下面将结合本发明实施例中的附图,对本发明实施例中的技术方案进行清楚、完整的描述。
实施例1
制备聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球
1)制备A混合溶液:将0.45 mmol氯化铜CuCl2、0.15 mmol五水硝酸铋Bi(NO3)35H2O,溶于55 ml乙二醇中,然后搅拌,得到A混合溶液;
制备B混合溶液:将0.6 mmol L-半胱氨酸、4 ml PEG(Mn=2000),溶于5 ml乙二醇,然后搅拌,得到B混合溶液;其中,CuCl2、Bi(NO3)35H2O和L-半胱氨酸的摩尔比为3:1:4。
2)将步骤1)得到的A混合溶液在200 ℃条件下油浴回流反应1 h,得到A反应液中;将步骤1)得到的B混合溶液迅速注入A反应液中,搅拌1小时候,立即转移到150ml的聚四氟乙烯不锈钢反应釜内,于200 ℃条件下反应1 h,冷却,离心,洗涤,干燥,即得所述光热转换材料,其中,所述洗涤为水、乙醇各洗涤3-5次;透射电镜照片显示产物为空心纳米球,粒径为100-150 nm ,如图1所示;粉末X-射线衍射研究表明产物为纯相的Cu3BiS3,如图2所示;红外光谱表明,产物表面含有聚乙二醇,如图3所示。紫外漫反射谱测试显示Cu3BiS3空心纳米球对红外光有很好的吸收性能,如图4所示。
实施例2
将实施例1制得的12 mg聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球分别超声分散在4 ml水、乙醇与甲苯中。12小时后观察,,聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球仍然可以在中保持很好的分散性与稳定性。
实施例3
1)用96孔细胞培养板培养HeLa细胞,保证每个孔的细胞数为5×103个,用含胎牛血清培养基(DMEM)在CO2含量5%的37 ℃恒温细胞培养箱中培养24小时;
2)24小时后吸掉培养液,并用PBS冲洗一次HeLa细胞,洗掉已凋零死亡的HeLa细胞;加入无血清DMEM培养基,在CO2含量5%的37 ℃恒温细胞培养箱中培养12小时;
3)12小时后吸掉培养液,用含胎牛血清DMEM培养基分散实施例1中制得的Cu3BiS3空心纳米球配成浓度为1 mg/ml的Cu3BiS3空心纳米球培养基溶液,用DMEM稀释成一系列浓度的溶液(0.5,5,10,20,100 μg/ml),并用这一系列浓度的溶液代替细胞培养基进行HeLa细胞培养,每个浓度都设置10个副孔,同时另外设置10个孔为阴性对照组(加不含Cu3BiS3空心纳米球的胎牛血清培养基,随后其余实验条件一致)在CO2含量5%的37 ℃恒温细胞培养箱中培养24小时;
4)24小时后,每个孔中加入20 μl(5 mg/ml) 3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐(MTT),随后放入CO2含量5%的37 ℃恒温细胞培养箱中培养4小时;
5)4小时后,出现蓝色大颗粒结晶,加入200μlDMSO,放到低速摇床上震荡10 min,用酶标仪测得490 nm下的光学密度值。细胞毒理性研究表明,Cu3BiS3空心纳米球显示可以忽略的毒性,如图图6、图9中的a、b部分所示;
实施例4
1.将实施例1制得的聚乙二醇化的Cu3BiS3空心纳米球重新分散于高纯水中,浓度为1 mg/ml,取其2 ml加入到石英比色皿(容量3 ml)中,磁子搅拌,用测温仪测得其初始温度为22 ℃;
2.固定980 nm激光器到石英比色皿的距离为5 cm,调节激光器电流大小,控制输出功率为1.2 Wcm-2,间隔30 s读取测温仪温度示数,记录温度,300 s后测得末温为52 ℃,即5 min中温度升高了30 ℃ ,如图7所示,说明Cu3BiS3空心纳米球可以有效的将近红外光转化为热,具有很好的光热转化性能
3.取2 ml高纯水加入同等容量石英比色皿中,磁子搅拌,用测温仪测得初始温度为22 ℃,同样固定980 nm激光器到石英比色皿的距离为5cm,调节激光器电流大小,控制输出功率为1.2 Wcm-2,间隔30s读取测温仪温度示数,记录温度,300 s后测得末温为25 ℃,即5 min中温度升高了3 ℃,如图7所示,结果表明没有Cu3BiS3空心纳米球存在时,水吸收红外光仅产生有限的热。
实施例5
1)用96孔细胞培养板培养HeLa细胞,保证每个孔的细胞数为5×103个,用含胎牛血清培养基(DMEM)在CO2含量5%的37 ℃恒温细胞培养箱中培养24小时;
2)24小时后吸掉培养液,并用PBS冲洗一次HeLa细胞,洗掉已凋零死亡的HeLa细胞;加入无血清DMEM培养基,在CO2含量5%的37 ℃恒温细胞培养箱中培养12小时;
3)12小时后吸掉培养液,用含胎牛血清DMEM培养基分散实施例1中制得的Cu3BiS3空心纳米球,配成浓度为1 mg/ml的Cu3BiS3空心纳米球培养基溶液,用DMEM稀释成一系列浓度的溶液(0.1,0.5,1,5,10,25 μg/ml),并用这一系列浓度的溶液代替细胞培养基进行HeLa细胞培养,每个浓度都设置8个副孔,同时另外设置8个孔位阴性对照组(加不含Cu3BiS3空心纳米球的胎牛血清培养基,随后其余实验条件一致)在CO2含量5%的37 ℃恒温细胞培养箱中培养24小时;
4)取出96孔板后,固定980 nm激光器到孔液面距离为5 cm,调节电流大小控制激光器输出功率为0.72 Wcm-2,从上往下照射每个孔的时间为5 min;
5)照射结束后每个孔中加入20 ul(5 mg/ml) 3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐(MTT),随后放入CO2含量5%的37 ℃恒温细胞培养箱中培养4小时;
4小时后,出现蓝色大颗粒结晶,加入200 μl DMSO,放到低速摇床上震荡10 min,用酶标仪测得490 nm下的光学密度值。光学密度值分析结果(如图8所示)和显微镜观察(如图9中的c部分所示)表明,5μg/mL浓度的Cu3BiS3空心纳米球即可以有效消融癌细胞。
实施例6
1)2 mg DOX分散到20 ml超纯水中,搅拌溶解后,紫外可见分光光度计测得480 nm处最强吸光度值。
2)10 mg Cu3BiS3空心纳米球分散到20 ml的DOX水溶液中(0.1 mg/ml),室温下暗处搅拌48小时,吸附平衡后离心(1000 rpm)10 min,并用超纯水洗两遍,洗去未吸附的DOX,收集上清液,用紫外可见分光光度计测得480 nm处最强吸光度值,剩余固体粉末放于60 ℃的真空干燥箱干燥6小时。
3)取步骤2)中所得的固体粉末(Cu3BiS3-DOX)分别分散到2 ml PBS(pH =5)和2 ml PBS(pH=7)溶液中,形成两种浓度为1 mg/ml的溶液。在37 ℃的环境温度下搅拌,间隔1小时后两种溶液各用980 nm激光器(输出功率为0.72 Wcm-2)照射5 min,各取1 ml上诉照射后的溶液离心取上清液用紫外可见分光光度计测其480 nm吸光度值,同时离心后的粉末用等pH 等体积的新PBS溶液分散补回原来的2 ml溶液中,重复上诉操作继续进行药物释放研究5小时。如图10所示,样品在红外光辐照下,特别是pH = 5时,显示很好的释放性能。
实施例7
1)10 mg Cu3BiS3空心纳米球分散到20 ml(0.1 mg/ml)的DOX溶液中,室温下暗处搅拌48小时,吸附平衡后离心(1000 rpm)10 min,并用高纯水洗两遍,洗去未吸附的DOX,剩余黑色固体粉末放于60 ℃的真空干燥箱干燥6小时。
2)取步骤1)所得的黑色固体粉末2 mg分散到DMEM培养基中(1 mg/ml),并用DMEM稀释成一系列浓度的溶液(0.1,0.5,1,5,10,25 μg/ml),替代细胞培养基进行HeLa细胞培养(5×103 个/孔,经24小时培养),每个浓度都设置8个副孔,同时另外设置8个孔为阴性对照组(纯胎牛血清培养基,随后其余实验条件一致)在CO2含量5%的37 ℃恒温细胞培养箱中培养24小时;
3)取出96孔板后,固定980 nm激光器到孔液面距离为5 cm,调节电流大小控制激光器输出功率为0.72 Wcm-2,从上往下照射每个孔的时间为5 min;
4)照射结束后每个孔中加入20 ul(5 mg/ml) 3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐(MTT),随后放入CO2含量5%的37 ℃恒温细胞培养箱中培养4小时;
5)4小时后,出现蓝色大颗粒结晶,加入200 μl DMSO,放到低速摇床上震荡10 min,用酶标仪测得490 nm下的光学密度值。
如图10所示,在光热及药物协同作用下,样品显示最佳的杀死细胞功能。