CN104356214B - 一种与植物抗逆性相关蛋白及其编码基因GsBET11a与应用 - Google Patents

一种与植物抗逆性相关蛋白及其编码基因GsBET11a与应用 Download PDF

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Abstract

本发明公开了一种与植物抗逆性相关蛋白及其编码基因GsBET11a与应用。该蛋白质,是如下a)或b)的蛋白质:a)由序列表中序列2所示的氨基酸序列组成的蛋白质;b)将序列表中序列2所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与植物抗逆性相关的蛋白质。通过实验证明,本发明的蛋白具有提高植物抗盐胁迫的功能,该蛋白在植物育种方面具有重要应用价值。

Description

一种与植物抗逆性相关蛋白及其编码基因GsBET11a与应用
技术领域
本发明涉及一种生物技术领域,具体涉及一种与植物抗逆性相关蛋白及其编码基因GsBET11a与应用。
背景技术
目前,受全球气候变化、人口不断增长的影响,土壤盐碱化日趋严重。我国长江以北以及沿海许多地区,土壤中盐碱含量往往过高,对植物造成危害。这种由于土壤盐碱含量过高对植物造成的危害称为盐害,植物对盐害的适应能力叫抗盐性。根据许多研究报道,土壤含盐量超过0.2%~0.25%时就会造成危害。据***教科文组织和粮农组织不完全统计,我国盐碱地总面积为9913万hm2,东北松嫩平原西部有盐碱地373万hm2,其中黑龙江省盐碱地面积就高达1740余万亩。为确保我国粮食供给的安全,全国耕地面积必须保证在18亿亩以上,但实际上我国的耕地面积却逐年减少,目前已逼近这一红线。因此,开发利用盐碱地和挖掘逆境生态区的生产潜力成为了保障我国农业稳定持续高效发展的重要课题。
近年来,随着分子生物学技术的飞速发展和基因工程技术的日臻成熟,通过挖掘耐盐碱的关键调控基因,借助转基因分子育种手段来改良作物的抗盐碱性,进而提高作物产量也已成为可能。
发明内容
本发明的目的是提供一种蛋白质。
本发明所提供的蛋白质,是如下a)或b)的蛋白质:
a)由序列表中序列2所示的氨基酸序列组成的蛋白质;
b)将序列表中序列2所示的氨基酸序列经过一个或几个氨基酸残基的取代和/或缺失和/或添加且与植物抗逆性相关的蛋白质。
本发明还提供了与上述蛋白质相关的生物材料,为下述B1)至B6)中的任一种:
B1)编码上述所述蛋白质的核酸分子;
B2)含有B1)所述核酸分子的表达盒;
B3)含有B1)所述核酸分子的重组载体、或含有B2)所述表达盒的重组载体;
B4)含有B1)所述核酸分子的重组质粒、或含有B2)所述表达盒的重组质粒;
B5)含有B1)所述核酸分子的重组菌、或含有B2)所述表达盒的重组菌、或含有B3)所述重组载体的重组菌;
B6)含有B1)所述核酸分子的转基因植物细胞系、或含有B2)所述表达盒的转基因植物细胞系、或含有B3)所述重组载体的转基因植物细胞系。
上述生物材料中,B1)所述核酸分子的核苷酸序列如序列表中序列1所示。
上述所述蛋白质或上述所述相关生物材料在提高植物抗逆性中的应用也属于本发明的保护范围。
上述应用中,所述抗逆性为抗盐胁迫。
上述蛋白质在与GsCBRLK蛋白相互作用中的应用也属于本发明的保护范围。
本发明还提供一种构建转基因植物的方法。
本发明所提供的构建转基因植物的方法,包括如下步骤:使上述蛋白质在出发植物中过表达,进而使植物的抗逆性提高。
上述方法中,所述使上述蛋白质在出发植物中过表达的方法为:向出发植物中导入上述蛋白质的编码基因,得到转基因植物;转基因植物与出发植物相比,抗逆性提高。
上述方法中,所述抗逆性为抗盐胁迫。
上述方法中,所述出发植物为单子叶植物或双子叶植物;所述双子叶植物具体为拟南芥。
本发明提供了一种与植物抗逆性相关蛋白及其编码基因GsBET11a与应用。通过实验证明,本发明的蛋白具有提高植物抗盐胁迫的功能,该蛋白在植物育种方面具有重要应用价值。
附图说明
图1为GsCBRLK蛋白在酵母细胞NMY51中的表达。
图2为酵母双杂交筛选及回转验证。图2A为在10mM3-AT的SD/-Trp-Leu-His-Ade培养基上的复筛;图2B为在2mM3-AT、10mM3-AT、40mM3-AT的SD/-Trp-Leu-His-Ade培养基上的回转验证。
图3为采用酵母双杂交技术在酵母体内验证GsBET11a与GsCBRLK蛋白相互作用。
图4为采用BiFc技术在植物体内验证GsBET11a与GsCBRLK蛋白相互作用。
图5为GsBET11a蛋白在植物细胞内的亚细胞定位分析。
图6为在盐胁迫条件下的野生型与转基因拟南芥种子的萌发情况、种子萌发率、幼苗展叶率和鲜重的比较。
图7为在盐胁迫条件下的野生型与转基因拟南芥幼苗的根长、叶绿素含量和丙二醛含量的比较。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明,均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等,如无特殊说明,均可从商业途径得到。
实验材料:野生大豆G50109种子在文献“Liang Yang,Wei Ji,Yanming Zhu,PengGao,Yong Li,Hua Cai,Xi Bai and Dianjing Guo.GsCBRLK,a calcium/calmodulin-binding receptor-like kinase,is a positive regulator of plant tolerance tosalt and ABA stress.Journal of Experimental Botany,2010,61(9):2519-33.”中公开过,公众可从东北农业大学处获得。
pA7-NYFP和pA7-CYFP载体在文献“Chen S,Tao L,Zeng L,Vega-Sanchez ME,Umemura K,Wang GL.A highly efficient transient protoplast system foranalyzing defence gene expression and protein-protein interactions inrice.Mol Plant Pathol.2006,7(5):417-27.”中公开过,公众可从东北农业大学获得。
pCAMBIA330035Su载体在文献“Hussam H.Nour-Eldin,Bjarne G.Hansen,MortenH.H.Jacob K.Jensen and Barbara A.Halkier.Advancing uracil-excisionbased cloning towards an ideal technique for cloning PCR fragments.NucleicAcids Research,2006,3(18):e122.”中公开过,公众可从东北农业大学获得。
实施例1、野生大豆中耐盐相关蛋白编码基因GsBET11a的分离
一、野生大豆cDNA文库的构建
1、选取饱满的野生大豆G50109种子,用浓H2SO4处理10min,无菌水冲洗3~4次,25℃暗培养2-3d催芽。待芽长到1~2cm时,将其转移至1/4Hogland营养液中,置于人工气候箱中培养。
2、取3周龄野生大豆幼苗的根(根尖3cm)和叶(未完全展开的第3个三出复叶),采用RNaprep pure Plant Kit(天根,货号DP441)试剂盒提取总RNA。
3、以总RNA为模板,采用EasyClone reverse transcriptase(DUAL,货号P01011)反转录合成第一链cDNA。
4、采用EasyClone Polymerase Mix(DUAL,货号P01011)进行LD-PCR获得dsDNA,将扩增产物进行琼脂糖凝胶电泳分析,观察到0.3~6Kb的弥散状条带。采用SfiI(Fermentas,货号FD1824)酶切dsDNA,通过CHROMA SPINTM-400(Clontech,货号636076)纯化dsDNA去除小片段。
5、将纯化后的dsDNA与SfiI酶切后的pPR3-N(DUAL,货号P03234)载体连接,电转化大肠杆菌感受态细胞DH10B(Invitrogen,货号12033015),共获得约1.2×106个单克隆,文库复杂度符合要求。
6、随机挑选20个阳性克隆进行PCR检测,发现扩增条带大小在200-2000bp之间,文库覆盖度较大。
7、收集所有单克隆,提取质粒备用。
二、耐盐碱蛋白激酶基因GsCBRLK酵母双杂交诱饵表达载体的构建
1、设计GsCBRLK基因PCR扩增的引物,并在引物两端添加SfiI酶切位点(下划线所示序列为酶切识别位点)。引物序列如下:
5’-ATTAACAAGGCCATTACGGCCATGAAGAAAACACCAG-3’;
5’-AACTGATTGGCCGAGGCGGCCCCAGCAGATACAAATT-3’。
2、以pET32b-GsCBRLK质粒为模板,采用上述步骤1中的引物PCR扩增GsCBRLK基因全长CDS区,用SfiI酶切PCR回收产物和pBT3-STE空载体,并回收酶切产物。
3、将酶切回收后的GsCBRLK基因与pBT3-STE载体连接,构建pBT3-STE-GsCBRLK诱饵表达载体,使GsCBRLK蛋白与LexA-VP16-Cub融合表达。
三、GsCBRLK蛋白表达及拓扑结构分析
为了检测GsCBRLK诱饵蛋白是否表达,采用LiAc法制备酵母NMY51感受态细胞,通过LiAc/PEG法将pBT3-STE-GsCBRLK诱饵表达载体转化酵母感受态细胞,再用液体SD/-Leu培养基活化重组酵母菌,采用TCA法提取酵母总蛋白,进行Western blot检测。结果显示在含pBT3-STE-GsCBRLK质粒的酵母总蛋白中能够检测到目的条带,说明GsCBRLK蛋白在酵母细胞NMY51中能够正常表达(图1)。
为了统计重组酵母菌在不同选择培养基上的生长情况,将pBT3-STE-GsCBRLK/pOst1-NubI、pBT3-STE-GsCBRLK/pPR3-N、pTSU2-APP/pNubG-Fe65、pTSU2-APP/pPR3-N共转化酵母NMY51感受态细胞,并涂板至SD/-Trp-Leu、SD/-Trp-Leu-His、SD/-Trp-Leu-His-Ade筛选培养基,30℃倒置培养3-7d后发现:含pBT3-STE-GsCBRLK/pOst1-NubI的重组酵母菌在SD/-Trp-Leu-His和SD/-Trp-Leu-His-Ade缺陷培养基上均能正常生长,说明GsCBRLK蛋白拓扑结构符合该酵母双杂交***;含pBT3-STE-GsCBRLK/pPR3-N的酵母菌在SD/-Trp-Leu培养基上正常生长,但在SD/-Trp-Leu-His和SD/-Trp-Leu-His-Ade培养基上则不生长(表1)。因此,在进行大规模酵母双杂交筛选时,我们采用SD/-Trp-Leu-His作为筛选培养基。
表1、GsCBRLK蛋白拓扑结构分析
四、利用酵母双杂交技术从野生大豆cDNA文库中筛选GsBET11a基因
采用PEG/LiAc法,将文库质粒转化含pBT3-STE-GsCBRLK的酵母NMY51感受态细胞,并涂板至SD/-Trp-Leu-His培养基,共筛选获得了131个阳性克隆。将阳性克隆划线至含10mM3-AT的SD/-Trp-Leu-His-Ade培养基上进行复筛,共获得66个阳性克隆(图2A)。提取重组酵母质粒,转化大肠杆菌使Prey质粒大量复制,与pBT3-STE-GsCBRLK共转化酵母NMY51感受态。经过2mM3-AT、10mM3-AT和40mM3-AT的SD/-Trp-Leu-His-Ade培养基上的复筛,共获得24个阳性克隆(图2B)。将阳性克隆送交测序,发现其中2个克隆均编码全长或部分GsBET11a基因。根据栽培大豆同源基因序列设计PCR扩增引物,同源克隆GsBET11a基因。
引物序列如下:5’-ATGAATGCTAGAAGAGATGGTCG-3’;
5’-TTACCTAGTCAGATAGTATATTATAAGAAAAAG-3’
实施例2、GsBET11a与GsCBRLK蛋白相互作用验证
为了证明GsBET11a与GsCBRLK蛋白能否相互作用,本发明采用酵母双杂交Y2H和免疫双分子荧光互补BiFc技术进行验证。
一、采用酵母双杂交技术在酵母体内验证GsBET11a与GsCBRLK蛋白相互作用
1、以3周龄野生大豆幼苗的cDNA为模板,采用特异引物PCR扩增GsBET11a基因全长CDS区(下划线所示序列为酶切识别位点)。引物序列如下:
5’-TTTGAATTCCATGAATGCTAGAAGAG-3’;
5’-AAGGTCGACTTACCTAGTCAGATAGTATATT-3’。
2、扩增产物经EcoRI和SalI双酶切后与pPR3-N载体(DUAL,货号P03234)连接,构建酵母双杂交表达载体,使GsBET11a蛋白与NubG融合表达,将得到的重组载体记作pPR3-N-GsBET11a。
将载体pPR3-N-GsBET11a进行测序验证,结果表明:在pPR3-N载体的EcoRI和SalI酶切位点间***的GsBET11a基因序列如SEQ ID No.1中自5’末端起第1-381位核苷酸所示,表明载体正确。
3、采用PEG/LiAc法,将pBT3-STE-GsCBRLK与pPR3-N(阴性对照)、pOst1-NubI(阳性对照)和pPR3-N-GsBET11a载体共转化酵母NMY51感受态细胞,PCR鉴定获得阳性克隆。
4、用液体SD/-Trp-Leu培养基,将PCR鉴定阳性的重组酵母菌活化至OD600=0.6,按1:10、1:100、1:1000稀释菌液。分别取1μL在SD/-Trp-Leu、SD/-Trp-Leu-His-Ade、SD/-Trp-Leu-His-Ade+40mM3-AT固体培养基上点点,于30℃培养箱中倒置培养4d。
结果表明:含pBT3-STE-GsCBRLK/pPR3-N(阴性对照)的重组酵母菌能在SD/-Trp-Leu培养基上正常生长,而不能在SD/-Trp-Leu-His-Ade、SD/-Trp-Leu-His-Ade+40mM3-AT培养基上生长。而含pBT3-STE-GsCBRLK/pOst1-NubI(阳性对照)和pBT3-STE-GsCBRLK/pPR3-N-GsBET11a的重组酵母菌在SD/-Trp-Leu、SD/-Trp-Leu-His-Ade、SD/-Trp-Leu-His-Ade+40mM3-AT培养基上均能正常生长(图3)。该结果表明GsBET11a能够在酵母体内与GsCBRLK蛋白相互作用。
二、采用BiFc技术在植物体内验证GsBET11a蛋白与GsCBRLK蛋白相互作用
1、采用含酶切位点的基因特异引物,以pBT3-STE-GsCBRLK和pPR3-N-GsBET11a质粒为模板,PCR扩增GsCBRLK和GsBET11a基因。引物序列如下(下划线代表酶切位点):
GsCBRLK的扩增引物:5’-TAACTCGAGATGAAGAAAACACCAGCCC-3’,
5’-GGGACTAGTAGCAGATACAAATTTATAG-3’;
GsBET11a的扩增引物:5’-TATCTCGAGATGAATGCTAGAAGAG-3’,
5’-GGGACTAGTCCTAGTCAGATAGTATATT-3’。
2、PCR产物双酶切后分别与pA7-NYFP和pA7-CYFP载体连接,构建植物瞬时表达载体,使GsCBRLK与NYFP融合表达(GsCBRLK-NYFP),GsBET11a与CYFP融合表达(GsBET11a-CYFP),将两种载体分别记作pGsCBRLK-NYFP和pGsBET11a-CYFP。
3、采用PEG法将pGsCBRLK-NYFP/pGsBET11a-CYFP、pA7-NYFP/pA7-CYFP(阴性对照)和pAtbZIP63-NYFP/pAtbZIP63-CYFP(阳性对照)分别共转化拟南芥原生质体,用激光共聚焦观察YFP荧光信号。
激光共聚焦结果如图4所示,其中NYFP/CYFP(阴性对照)共表达时未观察到YFP荧光信号,而共表达AtbZIP63-NYFP/AtbZIP63-CYFP(阳性对照)和GsCBRLK-NYFP/GsBET11a-CYFP的原生质体中能观察到黄色荧光信号。结果表明:GsBET11a能够在植物体内与GsCBRLK蛋白相互作用。
实施例3、GsBET11a蛋白在植物细胞内的亚细胞定位分析
为了定位GsBET11a蛋白在植物细胞内的分布,对GsBET11a蛋白进行了亚细胞定位分析。具体步骤如下:
1、采用基因特异引物PCR扩增GsBET11a基因全长CDS区(下划线所示序列为酶切识别位点)。引物序列如下:
5’-TTACTCGAGATGAATGCTAGAAGAGAT-3’;
5’-GGGACTAGTCCTAGTCAGATAGTATATTAT-3’。
2、将扩增产物与pBSK-eGFP载体连接,构建GsBET11a-eGFP融合表达载体,记作pBSK-GsCBRLK-eGFP。
将载体进行测序验证,结果表明:连入pBSK-eGFP载体的GsBET11a基因序列如SEQID No.1中自5’末端起第1-378位核苷酸所示,表明载体正确。
3、通过PEG法将pBSK-GsCBRLK-eGFP和pBSK-eGFP(阳性对照)转化拟南芥原生质体,通过激光共聚焦显微镜在488nm激发波长下观察绿色荧光蛋白的表达情况。
结果表明:GFP阳性对照在原生质体细胞中遍在表达,而GsBET11a蛋白主要定位在细胞质膜和转运囊泡等膜转运***,如图5所示。
实施例4、GsBET11a转基因拟南芥植株的获得及耐盐性分析
一、植物表达载体的构建
1、以pPR3-N-GsBET11a质粒为模板,采用如下引物PCR扩增GsBET11a基因全长CDS区。引物序列如下(下划线所示序列为酶切识别位点):
5’-GGCTTAAUATGAATGCTAGAAGAG-3’;
5’-GGTTTAAUTTACCTAGTCAGATAGTATATT-3’。
2、采用pCAMBIA330035Su载体作为植物超量表达载体,将扩增产物与pCAMBIA330035Su载体连接,构建GsBET11a植物超量表达载体pCAMBIA330035Su-GsBET11a。
将载体pCAMBIA330035Su-GsBET11a进行测序验证,结果表明:***表达载体的GsBET11a基因序列如SEQ ID No.1中自5’末端起第1-381位核苷酸所示,表明载体正确。GsBET11a基因编码的蛋白的氨基酸序列如SEQ ID No.2所示。
3、采用冻融法,将pCAMBIA330035Su-GsBET11a载体转化根癌农杆菌GV3101,经PCR鉴定获得重组农杆菌。
二、GsBET11a转基因拟南芥的获得及鉴定
1、将上述重组农杆菌通过Floral-dip法侵染野生型拟南芥(哥伦比亚生态型),收取T0代种子。
2、将T0代种子表面消毒后,播种于含25mg/L固杀草(Glufosinate ammonium)的1/2MS培养基上进行筛选。
3、待种子萌发后,将绿色的T0代抗性苗移栽至营养钵中培养,并收集种子进行T1代筛选。
4、将T1代抗性苗移栽至营养钵中培养,采用EasyPure Plant Genomic DNA Kit(全式金,货号EE111-12)提取抗性植株基因组DNA进行PCR鉴定。
5、采用RNaprep pure Plant Kit(天根,货号DP441)试剂盒提取抗性植株总RNA并反转录成cDNA,采用GsBET11a基因特异引物,以拟南芥ACTIN2基因为内参,以野生型拟南芥为对照,通过半定量RT-PCR分析GsBET11a基因在转基因植株中的表达量。引物序列如下:
5’-ATGAATGCTAGAAGAGATGGTCG-3’;
5’-TTACCTAGTCAGATAGTATATTATAAGAAAAAG-3’。
6、将RT-PCR阳性的T1代转基因拟南芥单株收种子,并分别播种于含25mg/L固杀草的1/2MS培养基上进行筛选,观察T2代分离情况。如此重复,直至得到T3代转基因拟南芥纯合体株系。
三、GsBET11a转基因拟南芥耐盐性分析
1、为了比较GsBET11a转基因拟南芥与野生型拟南芥在盐胁迫下的种子萌发情况。选取饱满的野生型和转基因拟南芥纯合体种子,用5%NaClO处理6-8min,灭菌ddH2O冲洗5-7次,4℃春化3d,播种于正常、含有125mM NaCl的1/2MS培养基,22℃培养8d,观察拟南芥种子萌发及幼苗生长状态。各株系采用90个种子,实验重复三次。
结果表明:盐胁迫严重抑制了野生型与转基因拟南芥种子的萌发和幼苗的生长(图6A),但GsBET11a转基因株系的种子萌发率、幼苗展叶率和鲜重显著高于野生型(图6B-D)。
2、为了比较GsBET11a转基因拟南芥与野生型拟南芥幼苗在盐胁迫下的长势,统计初生根长度。将在正常1/2MS培养基上生长7d的、长势一致的野生型和转基因拟南芥幼苗,转移至新鲜的正常、或含150mM NaCl的1/2MS培养基,垂直培养10-12d,观察幼苗长势并统计初生根长度。各株系采用15棵植株,实验重复三次。
结果表明:在正常1/2MS培养基上,转基因拟南芥和野生型拟南芥幼苗长势一致,但在含150mM NaCl的1/2MS培养基上,转基因拟南芥的初生根明显长于野生型(图7A-B)。
3、为了比较GsBET11a转基因拟南芥与野生型拟南芥植株在盐胁迫下的长势,统计存活率、电导率等情况。选取饱满的野生型和转基因拟南芥纯合体种子,春化后播种于营养钵中(营养土:君子兰土:蛭石的比例为1:1:1),置于人工气候培养箱中培养。选取长势一致的4周龄拟南芥植株,每3d浇灌1次200mM NaCl溶液进行盐胁迫处理,观察胁迫处理后植株长势,测定叶绿素含量和MDA(丙二醛)含量。每钵中种植6-8棵植株,各株系采用9钵,实验重复三次。
结果表明:盐胁迫处理后,转基因拟南芥的长势优于野生型(图7C),叶绿素含量显著高于野生型(图7D),而MDA含量则低于野生型(图7E),进而说明了GsBET11a基因超量表达显著提高了植物的盐胁迫耐性。

Claims (5)

1.如下1)或2)所述蛋白质或生物材料在提高植物抗逆性中的应用;
1)由序列表中序列2所示的氨基酸序列组成的蛋白质;
2)与1)所述蛋白质相关的生物材料,为下述B1)至B5)中的任一种:
B1)编码1)所述蛋白质的核酸分子;
B2)含有B1)所述核酸分子的表达盒;
B3)含有B1)所述核酸分子的重组载体、或含有B2)所述表达盒的重组载体;
B4)含有B1)所述核酸分子的重组质粒、或含有B2)所述表达盒的重组质粒;
B5)含有B1)所述核酸分子的重组菌、或含有B2)所述表达盒的重组菌、或含有B3)所述重组载体的重组菌;
所述抗逆性为抗盐胁迫;
所述植物为双子叶植物。
2.根据权利要求1所述的应用,其特征在于:B1)所述核酸分子的核苷酸序列如序列表中序列1所示。
3.权利要求1中所述蛋白质在与GsCBRLK蛋白相互作用中的应用。
4.一种构建转基因植物的方法,包括如下步骤:使权利要求1中所述蛋白质在出发植物中过表达,进而使植物的抗逆性提高;所述使权利要求1所述蛋白质在出发植物中过表达的方法为:向出发植物中导入权利要求1所述蛋白质的编码基因,得到转基因植物;转基因植物与出发植物相比,抗逆性提高;
所述蛋白质的编码基因序列如序列表中序列1所示;
所述抗逆性为抗盐胁迫;
所述出发植物为双子叶植物。
5.根据权利要求4所述的方法,其特征在于:所述双子叶植物为拟南芥。
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