CN103830722A - 一种产气荚膜梭菌β毒素基因工程疫苗及其应用 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种产气荚膜梭菌β毒素基因工程苗及其应用;是利用β毒素特异性引物,复活C型产气荚膜梭菌菌种,PCR扩增获得β毒素基因片段(930bp)连接到PET-28a(+)质粒上,然后将重组质粒导入受体菌株,成功构建重组菌株BL21(DE3)-β;重组的菌株BL21(DE3)以包涵体的形式高效表达β毒素;将β毒素蛋白与白油佐剂以体积比为1:1的比例进行乳化,加入0.01%的硫柳汞制得疫苗。该疫苗用于免疫妊娠后期的母畜,新生仔畜通过初乳获得被动免疫,能有效预防幼畜出血性坏死性肠炎(羔羊痢疾、犊牛肠毒血症、仔猪红痢等);通过进行免疫保护效力实验证明该疫苗对兔的保护力达到了100%。
Description
(一)技术领域
本发明涉及一种产气荚膜梭菌β毒素基因工程疫苗及其应用。
(二)发明背景
产气荚膜梭菌(Clostridium perfringens)是一种革兰氏阳性、产生芽胞、严格厌氧及形成特殊荚膜的梭状杆菌。根据其产生四种致死性毒素(α、β、ε、ι毒素)的能力,将其分为五种类型,即A、B、C、D、E五种类型。产气荚膜梭菌β毒素是由产气荚膜梭菌B型和C型菌株产生的坏死、致死性毒素,可以产生溶血性的坏死,其毒性作用表现在小肠绒毛上,可引起人和动物的坏死性肠炎。
我国是畜牧业大国,猪、牛、羊是主要经济家畜,幼畜腹泻是影响畜牧业发展的重要疫病。由产气荚膜梭菌β毒素引起的幼畜出血性坏死性肠炎(羔羊痢疾、犊牛肠毒血症、仔猪红痢等),在我国广大牧区流行十分严重,有较高的发病率和死亡率,给畜牧业造成了巨大的经济损失。幼畜腹泻的药物治疗不但价格昂贵、费力费工,而且效果不好,更因致病菌抗药菌株日趋增多,用药往往无效,因而免疫预防是控制这类疫病的最佳选择。临床上产气荚膜梭菌类毒素疫苗存在致病的隐患,而基因工程疫苗安全性高而且产量高、纯度高。
(三)发明内容
为了解决上述问题,本发明提供了一种产气荚膜梭菌β毒素基因工程疫苗及其应用,具备免疫力强、针对性好、无毒副作用、安全性好等优点。
一种产气荚膜梭菌β毒素基因工程疫苗,是将β毒素蛋白与白油佐剂以体积比为1:1的比例进行乳化,每100ml乳化液中加入0.01克硫柳汞制得;所述的β毒素蛋白的制备方法包括以下步骤:
1)菌种复活及模板制备
用接种环挑取C型产气荚膜梭菌菌种接种于一个血平板培养基上,40℃厌氧(88%N2、7%H2、5%CO2)培养36h。取单个菌落接种于一个含7-8毫升硫乙醇酸盐流体培养基(FT)的试管内,37℃厌氧培养12h,取1~5ml的培养液按照DNA提取试剂盒说明提取DNA,作为扩增目的基因的模板。
2)β毒素基因的克隆
根据GenBank中β毒素的基因序列设计引物进行PCR扩增目的基因,扩增产物经琼脂糖凝胶电泳后,回收扩增产物;
Primer1:GGAATTCAATGATATAGGTAAAACTAC;(SEQ.ID.N03所示)
Primer2:CCTCGAGTTAAATAGCTGTTACTTTGTGAGT(SEQ.ID.N04所示)
3)构建原核表达载体pET28a-β
将目的基因PCR产物和表达载体pET28a均使用Eco RI和Xho I酶切;将酶切后分别回收的目的基因PCR产物和表达载体pET28a进行纯化。将纯化的目的基因PCR产物和载体pET28a进行连接,得到重组质粒pET28a-β。将pET28a-β与BL21(DE3)感受态细胞混合后进行转化,得到重组菌株BL21(DE3)-β。
4)β毒素基因的原核表达、蛋白纯化
用0.6mM的IPTG,37℃,对重组菌诱导表达12h,经纯化得到β毒素蛋白。
本发明还涉及一种产气荚膜梭菌β毒素基因工程疫苗的制备方法,包括以下步骤:
1)菌种复活及模板制备
用接种环挑取C型产气荚膜梭菌菌种接种于一个血平板培养基上,40℃厌氧(88%N2、7%H2、5%CO2)培养36h。取单个菌落接种于一个含7-8毫升硫乙醇酸盐流体培养基(FT)的试管内,37℃厌氧培养12h,取1~5ml的培养液按照DNA提取试剂盒说明提取DNA,作为扩增目的基因的模板。
2)β毒素基因的克隆
根据GenBank中β毒素的基因序列设计引物进行PCR扩增目的基因,扩增产物经琼脂糖凝胶电泳后,回收扩增产物;
Primer1:GGAATTCAATGATATAGGTAAAACTAC;(SEQ.ID.N03所示)
Primer2:CCTCGAGTTAAATAGCTGTTACTTTGTGAGT(SEQ.ID.N04所示)
3)构建原核表达载体pET28a-β
将目的基因PCR产物和表达载体pET28a均使用Eco RI和Xho I酶切;将酶切后分别回收的目的基因PCR产物和表达载体pET28a进行纯化。将纯化的目的基因PCR产物和载体pET28a进行连接,得到重组质粒pET28a-β。将pET28a-β与BL21(DE3)感受态细胞混合后进行转化,得到重组菌株BL21(DE3)-β。
4)β毒素基因的原核表达、蛋白纯化
用0.6mM的IPTG,37℃,对重组菌诱导表达12h,经纯化得到β毒素蛋白。
5)β毒素基因工程苗制备
将上述步骤中制备好的β毒素蛋白与白油佐剂以体积比为1:1的比例进行乳化,每100ml乳化液中加入0.01克硫柳汞得到。
本发明还涉及一种产气荚膜梭菌β毒素基因工程疫苗在预防因产气荚膜梭菌β毒素引起的仔猪红痢中的应用:
于怀孕母猪产前30日和15日各肌肉注射一次本发明制备的产气荚膜梭菌β毒素基因工程苗,每次6ml/只,用于免疫妊娠后期母猪,新生仔猪通过吮食初乳而获得被动免疫,预防仔猪红痢。
有益效果
本研究开发制备了安全性高、免疫力强、治疗效果好,无毒副作用的产气荚膜梭菌β毒素基因工程疫苗,用于免疫妊娠后期的母畜,新生仔畜通过初乳获得被动免疫,能有效预防幼畜出血性坏死性肠炎(羔羊痢疾、犊牛肠毒血症、仔猪红痢等)。
(四)附图说明
图1是表达出的目的蛋白β毒素SDS-PAGE电泳图。
从图上可以看出表达出的目的蛋白大小为38KD与β毒素大小一致,说明成功表达出了目的蛋白。
图2是该基因工程苗的制备工艺流程
(五)具体实施方式
1、菌种复活及模板制备
用接种环挑取C型产气荚膜梭菌菌种(National Collection of Type Cultμres英国微生物菌种保藏中心保藏,NCTC3180)接种于一个血平板培养基(100毫升蒸馏水、1克葡萄糖和3.8克豆琼脂粉灭菌后,加入5毫升绵羊血分装到六个血平板上)上,40℃厌氧(88%N2、7%H2、5%CO2)培养36h。取单个菌落接种于一个含7-8毫升硫乙醇酸盐流体培养基(FT)(培养基成分通用)的试管内,37℃厌氧培养12h,取1~5ml的培养液按照DNA提取试剂盒(大连宝生物公司)说明提取DNA,作为扩增目的基因的模板。
2、β毒素基因的克隆及表达载体的构建
(1)引物的设计
根据GenBank中β毒素的基因序列(登录号L13198,其核苷酸序列如SEQ.ID.N01所示)设计的引物如下:
Primer1:GGAATTCAATGATATAGGTAAAACTAC;
Primer2:CCTCGAGTTAAATAGCTGTTACTTTGTGAGT
(2)β毒素基因的克隆及回收
以第一步提取的DNA为模板,扩增产物为930bp的目的基因(反应体系如下:上游引物2μl,下游引物2μl,cDNA2μl,dNTP1μl,10X pfμBμffer5μl,Pfμ高温聚合酶0.4μl,ddH2O补齐至50μl)。PCR扩增产物经琼脂糖凝胶电泳后,用DNA凝胶回收试剂盒(大连宝生物公司)回收目的条带。
(3)酶切目的基因PCR产物及表达载体pET28a
将目的基因PCR产物使用EcoR I和Xho I酶切(反应体系为:PCR产物20μl,EcoR I1μl,Xho I1μl,10X Buffer Tango5μl,ddH2O23μl)在37℃恒温水浴锅中反应4h;将表达载体pET28a用EcoR I和Xho I酶切(体系为:pET28a1μg,EcoR I1μl,Xho I1μl,10X Buffer Tango5μl,ddH2O补足至50μl)在37℃恒温水浴锅中反应4h。
(4)回收目的基因PCR产物及载体并进行纯化
酶切结束后通过1%琼脂糖凝胶电泳分别回收目的基因PCR产物及载体并进行纯化。胶回收及纯化目的基因PCR产物及载体的过程如下:
a.从琼脂糖凝胶中分别割下含有目的基因PCR产物及载体的胶块并称重。
b.加入胶块重量3倍的BμfferB2,50℃水浴5min。
c.将溶胶液移入吸附柱中,8000g离心30s,倒掉收集管中的液体。
d.加入500μlWash Solution,9000g离心30s,倒掉收集管中的液体,重复该过程一次。
e.将另一空吸附柱于9000g离心1min,再放入一个干净的1.5ml离心管中,在吸附膜中央加入40μl Elution Buffur,室温静置1min,然后保存管中的胶回收及纯化的目的基因PCR产物。
(5)重组质粒的制备
将回收纯化的目的基因PCR产物与载体pET28a进行连接,反应体系为:PCR产物5μl,表达载体pET28a5μl,10X T4DNA ligase Buffer2μl,T4DNA ligase1μl,ddH2O7μl,在16℃恒温水浴锅中反应2h进行连接反应得到重组质粒。
(6)重组菌株的制备及阳性重组质粒的鉴定
将重组质粒转入BL21(DE3)的感受态细胞(购自北京神州红叶科技有限公司)中:重组质粒与BL21(DE3)感受态细胞按1:5体积比加入离心管中,在冰浴条件下静置20min。再置于42℃恒温水浴锅中热激90s,然后在冰浴条件下静置5min,在离心管中加入800μl LB培养基再恒温摇床37℃,200r/m培养30min;至此已将重组质粒转入了重组菌株BL21(DE3)。吸取200μl已转化了的感受态细胞加到含有浓度为34μg/mL的硫酸卡那霉素的LB琼脂培养基上,将细胞均匀涂开。将平板置于37℃培养至液体被吸收,倒置平板,37℃过夜培养。无菌操作挑取单菌落接种于含有浓度为34μg/mL的硫酸卡那霉素的LB液体培养基增菌,37℃振荡培养12-14h,按照质粒提取试剂盒(泰安博傲生物技术公司)说明提取质粒。
提取得到的质粒DNA用Nci I/BamHⅠ和BamHⅠ/NotⅠ限制性内切酶37℃酶切3h,酶切体系10ul:限制性内切酶各0.5ul,重组质粒6ul,10×buffer1ul,ddH2O2ul。
酶切产物于1%琼脂糖凝胶观察酶切片断,确定阳性重组质粒,送金斯特工程有限公司进行核苷酸序列测定。Blast在线比对所测β毒素全基因序列与GenBank已发表相应序列的同源性在98%以上。
3、β毒素基因的原核表达、蛋白纯化及特异性检测
挑取重组菌株BL21(DE3)的单菌落于5mL lysogeny broth培养基的试管中(lysogenybroth培养基组分:Tryptone2g,Yeast extract1g,Nacl2g溶于200mL去离子水每1mLlysogeny broth培养基中加入34μg的硫酸卡那霉素)37℃,220rpm/min过夜培养。将培养的菌液按1:100的体积比例接种于200ml lysogeny broth培养基(每1mL lysogeny broth培养基中加入34μg的硫酸卡那霉素)中,37℃,180rpm/min扩大培养。当OD值达到0.6左右时,添加终浓度为0.6mM的IPTG,37℃,120rpm/min诱导12h。表达的蛋白以包涵体的形式存在于菌体中,收集菌体并用PBS缓冲液(组分:NaCl8g,KCl0.2g,Na2HPO4·12H2O3.58g,KH2PO40.27g溶于1000mL去离子水中)悬浮。超声破碎菌体以得到表达的蛋白:冰浴中超声破碎菌体,功率200W,99次循环(超声3S,暂停5S为一个循环)。超声完毕,8000rpm/min,4℃,离心15min,收集上清和沉淀。目的蛋白β毒素存在于上清中,取上清准备纯化。通过Ni-Agarose His标签蛋白纯化柱(南京金斯瑞生物科技有限公司)纯化,得到了较纯净的β毒素。纯化后样品进行SDS-PAGE电泳,并通过Western blot检测表达蛋白的特异性。
4、β毒素基因工程苗制备
将制取好的β毒素蛋白与白油佐剂以体积比为1:1的比例进行乳化,每100ml乳化液中加入0.01克硫柳汞,即得产气荚膜梭菌β毒素基因工程苗。
5、β毒素基因工程苗安全检验
用体重1.5-2千克的家兔4只,各肌肉注射疫苗5毫升,观察10日,均健活,注射部位没有发生坏死。
6、β毒素基因工程苗无菌检验
参照《中华人民共和国兽用生物制品质量标准》(2001年版)附录301页进行,无菌生长。
7、β毒素基因工程苗硫柳汞含量测定
参照《中华人民共和国兽用生物制品质量标准》(2001年版)附录313页进行,符合《制品检验的有关规定》(硫柳汞含量不超过0.01%)。
8、β毒素基因工程苗免疫保护效力试验
取1.5-2kg健康兔10只,分为对照组和实验组,每组各5只,实验组每只肌肉注射2ml的β毒素基因工程苗,对照组每只各肌肉注射等量的无菌生理盐水,21日后,10只兔分别注射2ml产气荚膜梭菌β毒素,观察3-5日,对照组5只兔全部死亡,免疫组5只兔均未死,说明该疫苗对兔的保护力达到了100%。
9、应用
在某仔猪红痢病发生较严重的猪厂,将怀孕母猪分为两组分别为免疫组和非免疫组,每组各20只;免疫组的怀孕母猪于产前30日和15日各肌肉注射一次产气荚膜梭菌β毒素基因工程苗,每次6ml作为免疫组;非免疫组不注射疫苗,同时把免疫组的母猪与非免疫组的母猪分开饲养。结果表明,免疫组的母猪所产的仔猪无仔猪红痢现象发生,而非免疫组每只母猪所产的仔猪中都有仔猪红痢现象发生。
Claims (3)
1.一种产气荚膜梭菌β毒素基因工程疫苗,其特征在于是将β毒素蛋白与白油佐剂以体积比为1:1的比例进行乳化,每100ml乳化液中加入0.01克硫柳汞制得;所述的β毒素蛋白的制备方法包括以下步骤:
1)菌种复活及模板制备
用接种环挑取C型产气荚膜梭菌菌种接种于一个血平板培养基上,40℃厌氧(88%N2、7%H2、5%CO2)培养36h;取单个菌落接种于一个含7-8毫升硫乙醇酸盐流体培养基(FT)的试管内,37℃厌氧培养12h,取1~5ml的培养液按照DNA提取试剂盒说明提取DNA,作为扩增目的基因的模板;
2)β毒素基因的克隆
根据GenBank中β毒素的基因序列设计引物进行PCR扩增目的基因,扩增产物经琼脂糖凝胶电泳后,回收扩增产物;
Primer1:GGAATTCAATGATATAGGTAAAACTAC;
Primer2:CCTCGAGTTAAATAGCTGTTACTTTGTGAGT
3)构建原核表达载体pET28a-β
将目的基因PCR产物和表达载体pET28a均使用Eco RI和Xho I酶切;将酶切后分别回收的目的基因PCR产物和表达载体pET28a进行纯化;将纯化的目的基因PCR产物和载体pET28a进行连接,得到重组质粒pET28a-β;将pET28a-β与BL21(DE3)感受态细胞混合后进行转化,得到重组菌株BL21(DE3)-β;
4)β毒素基因的原核表达、蛋白纯化
用0.6mM的IPTG,37℃,对重组菌诱导表达12h,经纯化得到β毒素蛋白。
2.一种产气荚膜梭菌β毒素基因工程疫苗的制备方法,其特征在于包括以下步骤:
1)菌种复活及模板制备
用接种环挑取B型产气荚膜梭菌菌种接种于一个血平板培养基上,40℃厌氧(88%N2、7%H2、5%CO2)培养36h;取单个菌落接种于一个含7-8毫升硫乙醇酸盐流体培养基(FT)的试管内,37℃厌氧培养12h,取1~5ml的培养液按照DNA提取试剂盒说明提取DNA,作为扩增目的基因的模板;
2)β毒素基因的克隆
根据GenBank中β毒素的基因序列设计引物进行PCR扩增目的基因,扩增产物经琼脂糖凝胶电泳后,回收扩增产物;
Primer1:GGAATTCAATGATATAGGTAAAACTAC;(SEQ.ID.N02所示)
Primer2:CCTCGAGTTAAATAGCTGTTACTTTGTGAGT(SEQ.ID.N03所示)
3)构建原核表达载体pET28a-β
将目的基因PCR产物和表达载体pET28a均使用Eco RI和Xho I酶切;将酶切后分别回收的目的基因PCR产物和表达载体pET28a进行纯化;将纯化的目的基因PCR产物和载体pET28a进行连接,得到重组质粒pET28a-β;将pET28a-β与BL21(DE3)感受态细胞混合后进行转化,得到重组菌株BL21(DE3)-β;
4)β毒素基因的原核表达、蛋白纯化
用0.6mM的IPTG,37℃,对重组菌诱导表达12h,经纯化得到β毒素蛋白;
5)β毒素基因工程苗制备
将上述步骤中制备好的β毒素蛋白与白油佐剂以体积比为1:1的比例进行乳化,每100ml乳化液中加入0.01克硫柳汞得到。
3.如权利要求1所述的一种产气荚膜梭菌β毒素基因工程疫苗在预防因产气荚膜梭菌β毒素引起的仔猪红痢中的应用。
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20140604 |