CN103060298B - 一种头孢菌素c酰化酶突变体及其编码基因与应用 - Google Patents
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Abstract
本发明涉及一种头孢菌素C酰化酶突变体及其编码基因与应用。其氨基酸序列如SEQ ID NO.4所示或该序列经替换、缺失或添加一个或几个氨基酸且具有同等功能的由SEQ ID NO.4衍生的氨基酸序列。本发明的头孢菌素C酰化酶突变体,在使用该突变体转变CPC→7-ACA酶促反应过程中,转化率达99%,得率达96%。
Description
技术领域
本发明涉及生物技术制药领域,具体地涉及一种头孢菌素C酰化酶突变体及其编码基因与应用。
背景技术
近年来,由于头孢菌素类抗生素过敏反应小,对β-内酰胺酶较稳定,具有抗菌谱广、疗效好、毒低、同其他抗生素无交叉耐药性、与青霉素较少产交叉过敏反应等优点,已经成为抗感染最重要的有效药物。研究发现,头孢菌素的抗菌部为其母核7-氨基头孢烷酸(7-aminocephalosporanic acid,7-ACA),因此作为合成半合成头孢菌素重要中间体,7-ACA的研究生产显得至关重要。
头孢菌素C(Cephalosporin C,CPC)经化学法或是酶法裂解得到7-ACA。化学法的反应条件较为苛刻,反应过程必须在超低温条件下进行,而且涉及到大量有毒有害的有机溶剂,会带来环境污染等问题。因此,对环境友好的酶法开始成为工业生产的新方向。
目前使用两步酶法制备7-ACA在生产成本和环境保护方面有优势,但是从头孢菌素C到7-ACA的转化率与化学法相比要低,而且DAAO催化反应难以控制。
头孢菌素C酰化酶(CPC acylase)可以直接把头孢菌素C转变成7-ACA(不经过GL-7-ACA等中间产物),利用头孢菌素C酰化酶生产7-ACA的一步酶法既具有化学法的优势(高转化率和纯度)也具有两步酶法的优势(高经济性和环境保护)。但是野生型的头孢菌素酰化酶活力较低,不能胜任工业化生产的需要。本发明提供一种高酶活头孢菌素C酰化酶制备方法。
发明内容
本发明目的是提供一种头孢菌素C酰化酶突变体及其编码基因。
本发明另一目的是提供头孢菌素C酰化酶突变体的制备方法。
本发明又一目的是提供头孢菌素C酰化酶突变体及其编码基因在制备7-氨基头孢烷酸中的应用。
所述头孢菌素C酰化酶突变体,其氨基酸序列如SEQ ID NO.4所示或该序列经替换、缺失或添加一个或几个氨基酸且具有同等功能的由SEQ ID NO.4衍生的氨基酸序列。所述头孢菌素C酰化酶突变体基因的核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。
与野生型的头孢菌素C酰化酶相比,本发明的头孢菌素C酰化酶突变体具体的氨基酸序列的改变是:K171S(第171位赖氨酸变为丝氨酸),M270W(第270位蛋氨酸变为色氨酸),I314S(第314位异亮氨酸变为丝氨酸),L535T(第535位亮氨酸变为苏氨酸)。
所述头孢菌素C酰化酶突变体的筛选方法,包括以下步骤:
(1)由产头孢菌素C酰化酶CPCA假单孢杆菌(Pseudomonas sp.)SE83,扩增CPCA的编码基因adfQ;
(2)采用易错PCR技术,以CPCA的编码基因adfQ为模板,扩增获得CPCA突变体基因;
(3)将步骤(2)所得易错PCR产物及表达质粒pET30a用NdeⅠ和XhoⅠ双酶切后连接,连接产物转入大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞,涂布至LB(Kan)平板,即得构建好的重组CPCA基因突变库;
(4)将LB(Kan)平板上长出的菌落一一对应转入LB(Kan)平板和LB(Kan、IPTG、CPC-Na)平板上,转板后将平板置37℃恒温培养箱培养,LB(Kan)平板培养8h后取出放入4℃冰箱保存,LB(Kan、IPTG、CPC-Na)平板继续25℃培养36h,然后分别破菌,测定CPCA酶活力,挑选酶活力最强的一株,并测定其基因序列,分别为SEQ ID NO.3所示的基因序列和SEQ ID NO.4所示的氨基酸序列。
其中,所述头孢菌素C酰化酶具有SEQ ID NO.1所示的基因序列和SEQ ID NO.2所示的氨基酸序列。
本发明进一步提供含有所述基因的载体。含有所述基因或所述载体的宿主细胞。
本发明的另一方面提供所述头孢菌素C酰化酶突变体的制备方法,包括以下步骤:
(1)PCR扩增上述头孢菌素C酰化酶突变体基因;
(2)将步骤(1)所得PCR产物连接表达载体pET-30b;
(3)连接产物转入大肠杆菌感受态细胞,获得表达产物。
其中,步骤(1)中所用引物为:
反向引物:
其中所述过表达的头孢菌素C酰化酶C-端含有6个组氨酸标签。
进一步,采用亲和层析法分离纯化表达产物,分离纯化包括步骤:
1)以NTA介质填柱,用2倍柱体积的去离子水洗涤,接着加NiSO4溶液至NTA介质结合度达到饱和,用5倍柱体积的NAT-0缓冲液(20mM Tris-HCl pH7.9,0.5M NaCl)洗柱;
2)将含有表达的头孢菌素C酰化酶的大肠杆菌破碎菌体离心后得到的上清加入到Ni2+-NTA树脂柱中,用5倍柱体积的NAT-1缓冲液(即NAT-0缓冲液含有80mmol/L咪唑)洗涤介质以去除杂蛋白,最后用含有300mmol/L咪唑的NAT-0缓冲液洗脱带有6个组氨酸标签的头孢菌素C酰化酶,并做SDS-PAGE分析。
本发明的另一方面提供一种7-氨基头孢烷酸的制备方法,其是通过在大肠杆菌中表达头孢菌素C酰化酶基因及其突变体,然后对表达的头孢菌素C酰化酶进行分离纯化,在有底物头孢菌素C的情况下,制备7-ACA。
借由上述技术方案,本发明至少具有下列优点及有益效果:
本发明利用蛋白质亲和色谱技术,利用带有6个组氨酸标签的头孢菌素C酰化酶能与蛋白纯化树脂Ni-NTA层析柱特异性结合的原理,再用含有低浓度的咪唑洗去杂蛋白,保留在Ni-NTA层析柱上的6×His-XK,从而简化6×His-XK分离纯化步骤。
本发明涉及固定化酶技术,带有6个组氨酸标签的头孢菌素C酰化酶与蛋白纯化树脂Ni-NTA层析柱特异性结合,在洗去杂蛋白后,Ni-NTA层析柱保留特异性成分—头孢菌素C酰化酶,用此酶制备7-氨基头孢烷酸。
本发明涉及头孢菌素C酰化酶突变体,在使用该突变体转变CPC—>7-ACA酶促反应过程中,转化率达99%,得率达96%,而野生型转化率只有39%,得率只有32%。
附图说明
图1为PCR技术扩增头孢菌素C酰化酶基因片段,长度2.3kb;
图2为SDS-PAGE分析纯化前后头孢菌素C酰化酶,①为纯化前②为纯化后;
图3为HPLC分析头孢菌素C酰化酶酶促反应;①为头孢菌素酰化酶将头孢菌素C转化为7-氨基头孢烷酸的HPLC图谱;②为头孢菌素CHPLC图谱;③为7-氨基头孢烷酸HPLC图谱。
具体实施方式
以下实施例用于说明本发明,但不用来限制本发明的范围。在不背离本发明精神和实质的情况下,对本发明方法、步骤或条件所作的修改或替换,均属于本发明的范围。
若未特别指明,实施例中所用的技术手段为本领域技术人员所熟知的常规手段。
实施例1头孢菌素C酰化酶基因的获得
以1μg假单孢杆菌(Pseudomonas sp.)SE83基因组DNA为PCR反应模板,按SEQ ID NO.1的序列设计正向引物CPC-F为5′-AAAACGATGGCGGCCA-3′;反向引物:5′-AAATCAATGATGATGATGATGATGATGGGCCGGGACGAGTTCCTGCGAG-3′。其中斜体字母部分分别为酶切位点NdeI和XhoI。PCR反应在50μL总体积中进行,反应条件为在94℃变性5min后开始循环,然后94℃变性50s,58℃退火1min,72℃延伸2min,共30个循环后,再于72℃延伸10min。取3μL PCR扩增产物做琼脂糖凝胶电泳验证,结果如图1所示。取100μL PCR产物做琼脂糖凝胶电泳,按照胶回收试剂盒的步骤回收目的片段。
实施例2野生型头孢菌素C酰化酶基因表达载体的构建
实施例1中PCR产物经限制性内切酶NdeI和XhoI双酶切消化后,与用相同内切酶消化的pET-30a质粒(购自Novagen公司)进行连接反应,构建的载体被称为pET-CPCA,然后用连接产物pET-CPCA混合物转化大肠杆菌DH5-a(购自promega公司),并进行序列测定提取转化菌体库的质粒,转化大肠杆菌BL(DE3)菌株(购自Novagen公司)。
实施例3易错PCR扩增头孢菌素C酰化酶基因
利用TaqDNA聚合酶不具有3′-5′校对功能的性质,在高镁离子浓度(5mmol/L-9mmol/L)和不同浓度dNTP的浓度下(1.5mmol/L-3.5mmol/L),来控制随机突变的频率,向目的基因中引入随机突变,构建突变库。实验中最优的突变率约为0.6%。
易错PCR反应体系(100μl):
PCR程序为:96℃预变性4min,94℃变性1min,56℃退火1min,75℃延伸1min40s,反应45个循环,最后75℃延伸15min。采用胶回收方法回收PCR产物。取5μl产物1%琼脂糖凝胶电泳检验,-20℃保存备用。
实施例4突变体的构建
实施例3中PCR产物(DNA改组后的混合物)经限制性内切酶NdeI和XhoI双酶切消化后,与用相同内切酶消化的pET-30a质粒进行连接反应,构建的载体被称为pET-CPCAM,然后用连接产物pET-CPCAM混合物转化大肠杆菌DH5-a,构建转化菌体库。
实施例5构建表达突变库及高酶活突变体的筛选
提取转化菌体库的质粒,分别转化大肠杆菌BL(DE3)菌株,获得转化子约500株,构建表达突变体库。挑取突变菌株至含150μlLB/kan培养基的96孔板中30℃、150rpm培养,待OD值达0.6-0.8,加入IPTG(终浓度0.2M),继续培养36h,收集菌体。超声破菌得上清,并进行酶活及蛋白含量测定。检测酶活力最高的菌株,并挑选其克隆,并提取质粒,测定与头孢菌素C酰化酶对应的基因序列。测定的基因序列为SEQ ID NO.3所示,其对应的氨基酸序列为SEQID NO.4所示。
头孢菌素C酰化酶的酶活检测:
(1)离心收集菌体,用0.1mol/L Tris-HC1缓冲液(pH8.0)洗涤后低温超声破碎,离心取适量上清液加入100μl底物头孢菌素C(CPC)(0.1mol/L Tris-HC1缓冲液配制),并用缓冲液补加至200μl,37℃反应5分钟。
(2)终止条件:取20μl反应液,加入500μl终止液(20%乙酸与0.05M NaOH)。
(3)终止后处理:12000rpm离心5min,取500μl溶液加入样品瓶中。
(4)HPLC进样条件:采用C18柱(4.6mm*150mm),柱温30℃,进样体积10μl,检测吸收峰254nm,进样流量1ml/min。进样时间20min。
(5)流动相:0.1M柠檬酸(每1L加入1g辛烷磺酸钠)88%:乙腈12%,流速为1ml/min,进样体积为4μl,检测吸光度为254nm,C18柱。
(6)酶活单位定义为每分钟催化生成1μmol7-ACA所需的酶量。
表1野生型CPC酰化酶和高酶活CPC酰化酶突变体的酶活
表1为野生型CPC酰化酶和高酶活CPC酰化酶突变体的酶活结果。结果表明,通过易错PCR对CPC酰化酶进行改造,获得酶活力提高了108.6%的突变菌株。
实施例6利用Ni2+-层析柱纯化野生型和突变体头孢菌素C酰化酶
以测序验证的pET-CPCA和pET-CPCAM表达质粒转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞;挑取阳性克隆,接种于含卡那霉素的LB培养基中,30℃振荡培养至约为0.6~0.8时,加入终浓度为0.2mmol/L的IPTG,30℃诱导36h。接种上述转化后的大肠杆菌BL21于1000mL LB培养基,待OD600值约达2.0时,诱导与上述相同。离心收集菌体,以50mmol/L、pH8.0Tris-HCl缓冲液悬浮(湿菌体与缓冲液的比例为1g湿菌体:5mL缓冲液),在冰浴中以超声波破碎菌体,离心后收集上清。
NTA介质填柱,用2倍柱体积的去离子水洗涤,接着加NiSO4溶液至NTA介质结合度达到饱和,用5倍柱体积的NAT-0缓冲液(20mMTris-HCl pH7.9,0.5M NaCl)洗柱。将上述收集破碎菌体离心后得到的上清加入到Ni2+-NTA树脂柱中,反复加入2~3次后,用5倍柱体积的NAT-1缓冲液(即NAT-0缓冲液含有80mmol/L咪唑)洗涤介质以去除杂蛋白,最后用含有300mmol/L咪唑的上述缓冲液洗脱带有6个组氨酸标签的头孢菌素C酰化酶,并做SDS-PAGE分析和蛋白浓度测定。纯化分析如图2所示。
实施例7一步酶法制备7-ACA
(1)底物浓度20g/L,即1.2gCPC先用30mL0.1MTris-HCl(pH8.0)溶解,用1M NaOH调pH8.0。调pH前后各取一个样,取样20μl,加入500μl终止液。
(2)加入30mL透析处理后酶液,用1M NaOH调节pH使其维持pH8.0,维持反应温度31.5℃±1.5℃。
(3)分别于加入酶液后0min、5min、10min、15min、20min、25min、30min、40min、50min、60min、1.5h、2h、3h取样,取样20μl,每次取的样立即加入500μl终止液终止,终止液为20%乙酸和0.05M NaOH按2:1配制。
(4)终止后溶液12000rpm离心5min,HPLC检测。测得转化率99%,得率96%。头孢菌素C酰化酶酶促反应结果的如图3所示。
虽然,上文中已经用一般性说明及具体实施方案对本发明作了详尽的描述,但在本发明基础上,可以对之作一些修改或改进,这对本领域技术人员而言是显而易见的。因此,在不偏离本发明精神的基础上所做的这些修改或改进,均属于本发明要求保护的范围。
Claims (10)
1.一种头孢菌素C酰化酶突变体,其氨基酸序列如SEQ ID NO.4所示。
2.编码权利要求1所述头孢菌素C酰化酶突变体的基因。
3.根据权利要求2所述的基因,其特征在于,其核苷酸序列如SEQ ID NO.3所示。
4.含有权利要求2或3所述基因的载体。
5.含有权利要求2或3所述基因或权利要求4所述载体的宿主细胞。
6.权利要求1所述的头孢菌素C酰化酶突变体的制备方法,包括以下步骤:
(1)PCR扩增权利要求2或3所述头孢菌素C酰化酶突变体基因;
(2)将步骤(1)所得PCR产物连接表达载体pET-30b;
(3)连接产物转入大肠杆菌感受态细胞,获得表达产物。
7.根据权利要求6的制备方法,其特征在于,所用引物为:
正向引物:5′-AAACATATGACGATGGCGGCCA-3′;
反向引物:
5′-AAACTCGAGTCAATGATGATGATGATGATGATGGGCCGGGACGAGTTCCTGCGAG-3′。
8.根据权利要求6或7所述的制备方法,其特征在于,所述头孢菌素C酰化酶突变体采用亲和层析法进行分离纯化。
9.权利要求1所述头孢菌素C酰化酶突变体、权利要求2或3所述基因在制备7-氨基头孢烷酸中的应用。
10.根据权利要求9所述的应用,其特征在于,以头孢菌素C为底物,采用一步酶法制备7-氨基头孢烷酸。
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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