CN102288768A - 弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 - Google Patents
弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 Download PDFInfo
- Publication number
- CN102288768A CN102288768A CN2011102780536A CN201110278053A CN102288768A CN 102288768 A CN102288768 A CN 102288768A CN 2011102780536 A CN2011102780536 A CN 2011102780536A CN 201110278053 A CN201110278053 A CN 201110278053A CN 102288768 A CN102288768 A CN 102288768A
- Authority
- CN
- China
- Prior art keywords
- igg antibody
- antibody
- toxoplasma gondi
- preparation
- kit
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法,涉及一种试剂盒。试剂盒设有载体板、硝酸纤维膜、弓形虫IgG抗体检测线和对照线;所述弓形虫IgG抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在弓形虫IgG抗体检测线处包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgG抗体;辣根过氧化物酶标记抗人γ链抗体。制备弓形虫重组抗原;硝酸纤维素膜的点样;制备抗人IgG特异性片段γ链单克隆抗体;抗人IgG特异性片段γ链单克隆抗体的辣根过氧化物酶标记;制备免疫印迹试剂盒。检测时,所需的标本量极小,不需要特殊仪器,肉眼直接判读结果,且检测简便快速,特异性强,灵敏度高,准确可靠,成本低,应用广泛。
Description
技术领域
本发明涉及一种试剂盒,尤其是涉及一种弓形虫IgG抗体检测免疫印迹试剂盒及其制备方法。
背景技术
弓形虫病(Toxoplasmosis)是刚地弓形虫(Toxoplasmagondii)引起的一种严重危害人类健康的***共患寄生虫病,其病原体弓形虫可寄生在人及多种动物的有核细胞内,人群及动物普遍易感。该病广泛分布于世界各地,据统计全球约有10亿人被弓形虫感染([1]奚琳琳,李威.弓形虫致病机理,毒力及基因型研究进展[J].中国病原生物学杂志,2009,4(11):859-861.)。弓形虫病在我国分布很广泛,全国各省、市、自治区均有弓形虫感染的报道,我国正常人群平均感染率在4%~9%左右([2]刘敏,陈晓光.中国人群弓形虫病的流行特征分析[J].寄生虫与医学昆虫学报,2010,17(3):131-134.),特殊人群如肿瘤患者、精神病患者、先天缺陷婴幼儿、免疫抑制、免疫缺陷患者感染率更高。所幸的是极大多数免疫功能正常的成人或儿童被弓形虫感染后常无症状或仅有轻微症状,且多能自愈并获永久免疫力。但先天感染的胎儿、儿童以及免疫缺陷者被感染后,则预后极为严重。是造成艾滋病患者死亡的一个重要并发病。人类免疫缺陷病毒(HIV)感染者约有20%~80%合并弓形虫感染,更重要的是它也是造成人类先天畸形、缺陷、智力低下、死胎、早产的重要病原体之一。
弓形虫病的的诊断方法包括直接从脏器、血液、脑脊液等组织分离弓形虫进行病原学诊断,需要几天甚至几周时间,费时费力,在实际应用中价值不大。临床上常规检测主要是应用各种血清学方法,检测其特异IgG和IgM([3]周彬,张珏,王柯,等.弓形虫IgG和IgM抗体双标记时间分辨荧光免疫分析的建立及其初步临床应用[J].中华检验医学杂志,2010,33(010):957-959.),血清学方法可以诊断先天性、急性和慢性弓形虫病,但由于大多数免疫缺陷的人或动物其抗弓形虫的IgG滴度不会上升或不会出现高的IgM滴度,所以不能有效地用血清学方法对患有免疫缺陷的人或动物诊断弓形虫病。另外,在抗原消失相当长时间后血清抗体滴度才会逐步下降,所以也不能应用于治疗效果评价。目前检测IgG抗体存在较高的假阳性,而IgM抗体检测普遍灵敏度差等问题([4]韩靖云,刘倩,郭健.弓形虫感染实验室诊断的技术进展[J].检验医学,2009,24(5):393-395)。因此,对疾病的早期诊断帮助不大,急需建立一种具有高度敏感性,且价廉、快速、操作简单、不需特殊设备,更适合于临床的早期诊断方法。
弓形虫病的诊断与流行病学调查主要依赖于血清学试验,正常人体感染弓形虫多为隐性感染,当机体免疫力下降时,虫体大量繁殖,侵入除红细胞外的各组织细胞内寄生,造成各种组织的广泛炎症,从而出现临床症状。人类感染弓形虫后能诱导产生特异性抗体。感染早期IgM抗体增高,IgM在感染4个月后逐渐消失,在感染1个月后出现高浓度IgG抗体([5]KASPER D C,PRUSA A R,HAYDE M,et al.Evaluation of the vitros eciq immunodiagnosticsystem for detection of anti-toxoplasma immunoglobulin g and immunoglobulin m antibodies forconfirmatory testing for acute toxoplasma gondii infection in pregnant women[J].Journal of clinicalmicrobiology,2009,47(1):164-168)。因此,弓形虫IgG抗体是弓形虫病诊断和流行病学调查的一项重要指标。
早期的血清学方法使用弓形虫循环抗原。研究和诊断用的弓形虫循环抗原是以弓形虫感染小鼠腹腔获得,这种方法花费大、获得的抗原量少且不纯(常混有宿主蛋白),因此假阳性也时有发生。随着分子生物学技术的普及及弓形虫抗原的相继克隆,将重组抗原应用于弓形虫实验已经越来越多。目前研究比较多的弓形虫的表面抗原(SAG1(P30)、SAG2(P22)、SAG3(P43)、SAG4(P18))、虫体棒状体抗原(ROP1、ROP2)、致密颗粒蛋白(GRA1、GRA7)等([6]熊美华,王秀珍,刘露霞,等.弓形虫速殖子抗原的提取及蛋白分析[J].中国寄生虫病防治杂志,2001,14(3):237-238.)。采用重组DNA技术制备的重组抗原可以克服完整弓形虫抗原的缺点,能快速、经济地制备无限量特异重组弓形虫抗原。
现有的弓形虫抗体检测方法包括ELISA、Western-blot等,其特异性均较高。采用Western-blot方法制成的试剂盒,一般常规实验室均可完成,不需要特殊设备,判读也简单明了。现市售的Western-blot试剂均为进口试剂,价格昂贵。面对严峻的防制形式,不但需要特异准确的检测手段,还需要一种更经济实用的试剂来筛查,以便为临床和疾病防控提供对策。
发明内容
本发明的目的是提供一种弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法。
所述弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒设有载体板、硝酸纤维膜、弓形虫IgG抗体检测线和对照线;所述弓形虫IgG抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在弓形虫IgG抗体检测线处包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgG抗体;辣根过氧化物酶标记抗人γ链抗体。
所述弓形虫重组抗原为SAG1(P30)、SAG2(P22)、ROP2、GRA7重组抗原。
所述载体板可采用PVC板。
所述弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒的制备方法,包括以下步骤:
1)制备弓形虫重组抗原
采用基因克隆技术,PCR扩增编码弓形虫抗原的DNA,并***大肠杆菌中使其表达,得弓形虫重组抗原;
2)硝酸纤维素膜的点样
在硝酸纤维素膜IgG检测线上包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgG抗体,晾干;
3)制备抗人IgG特异性片段γ链单克隆抗体
以人IgG特异性片段γ链为抗原免疫Balb/c小鼠,通过杂交瘤技术,筛选获得稳定分泌抗人IgG单克隆抗体的杂交瘤细胞株;
4)抗人IgG特异性片段γ链单克隆抗体的辣根过氧化物酶(HRP)标记
采用过碘酸钠法进行辣根过氧化物酶(HRP)标记;
5)制备免疫印迹试剂盒
将硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,弓形虫IgG抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上,在弓形虫IgG抗体检测线处包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被包被人IgG抗体,用切条机切成条状,与酶标记的抗人γ链单克隆抗体及其底物共同组装成弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒。
在步骤1)、2)、5)中,所述弓形虫重组抗原为SAG1(P30)、SAG2(P22)、ROP2、GRA7等。
在步骤2)中,所述弓形虫重组抗原和人IgG抗体的浓度可为1~4mg/mL;点样量可为1μL/cm。
在步骤3)中,采用ELISA的方法鉴定McAb效价在1∶107以上。
在步骤4)中,所述辣根过氧化物酶的底物由0.03%(W/V)的过氧化氢和0.07%(W/V)的二氨基联苯胺组成。
本发明提供了一种采用免疫印迹技术建立弓形虫IgG抗体检测试剂条,可用于全血、血清、血浆及脑脊液等标本中弓形虫IgG抗体的检测。该检测方法所需的标本量极小,不需要特殊仪器,肉眼直接判读结果,且检测简便快速,特异性强,灵敏度高,准确可靠,成本低,应用广泛。
附图说明
图1为本发明所述弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒中膜条实施例的结构组成示意图。
图2为实验结果模式示意图。在图2中,H为使用前的示意图,G为无效试验(产品质量问题),F为阴性结果,A~E为弓形虫IgG阳性结果;2为弓形虫SAG1(P30)-IgG抗体检测线,3为弓形虫SAG2(P22)-IgG抗体检测线,4为弓形虫ROP2-IgG抗体检测线,5为弓形虫GRA7-IgG抗体检测线,6为对照线。
具体实施方式
以下实施例将结合附图对本发明作进一步的说明。
参见图1,本发明所述弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒实施例设有载体板1、弓形虫IgG抗体检测线2~5,对照线6和硝酸纤维膜(NC膜)7。
硝酸纤维膜7粘贴在载体板1上表面,弓形虫IgG抗体检测线2~5和对照线6依次设在硝酸纤维膜7上;在弓形虫IgG抗体检测线处分别包被弓形虫重组抗原SAG1(P30)、SAG2(P22)、ROP2和GRA7,在对照线6处包被人IgG抗体。
所述载体板采用PVC板。
所述弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒的制备方法,包括以下步骤:
1)制备SAG1(P30)、SAG2(P22)、ROP2和GRA7弓形虫重组抗原
采用基因克隆技术,PCR扩增编码弓形虫螺旋体抗原的DNA,并***大肠杆菌中使其表达,得弓形虫重组抗原SAG1(P30)、SAG2(P22)、ROP2和GRA7。
2)硝酸纤维素膜的点样
在硝酸纤维素膜IgG检测线上包被SAG1(P30)、SAG2(P22)、ROP2和GRA7弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgG抗体,晾干。
3)制备抗人IgG特异性片段γ链单克隆抗体
以人IgG特异性片段γ链为抗原免疫Balb/c小鼠,通过杂交瘤技术,筛选获得稳定分泌抗人IgG单克隆抗体的杂交瘤细胞株。采用ELISA的方法鉴定McAb效价在1∶107以上。
4)抗人IgG特异性片段γ链单克隆抗体的辣根过氧化物酶(HRP)标记
采用过碘酸钠法进行辣根过氧化物酶(HRP)标记。
5)制备免疫印迹试剂盒
将硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,弓形虫IgG抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在弓形虫IgG抗体检测线处包被弓形虫重组抗原SAG1(P30)、SAG2(P22)、ROP2和GRA7,在对照线处包被人IgG抗体,用切条机切成条状,和酶标记的抗人γ链单克隆抗体及其底物共同组装成弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒。
以下给出采用弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒检测患者的临床标本:
1)标本采用0.01mol/LPBS缓冲液进行1∶50稀释。
2)封闭:采用5%脱脂奶粉(0.01mol/L PBST缓冲液配制)作为封闭液,于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
3)血清温育:取出所需的膜条,将其放入温育槽内,并编号。在温育槽中分别加入1.5ml已稀释样本。于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
4)清洗:吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1.5ml 0.01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3次,每次5min。
5)加酶结合物:在温育槽中加入1.5ml已稀释的酶结合物(采用辣根过氧化物酶标记的抗人IgG特异性片段γ链单克隆抗体为检测抗体),于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
6)清洗:吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1.5ml 0.01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3次,每次5min。
7)底物温育:在温育槽中分别加入1.5ml底物液(DAB),于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育10min。
8)终止:吸去槽内液体,用蒸馏水清洗膜条3次,每次1min。
结果判断:将检测膜条放置在结果判定模板中,风干后判断结果。任何蛋白靶标出现的特异性条带,均可判断为阳性,可辅助诊断弓形虫病(见图2)。
以下给出弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒的性能检定:
1)外观检查:试剂盒无破损,包被反应膜平整、干净无污染斑点、无裂缝,胶带无开胶,无切斜现象。
2)阳性标本符合率:用弓形虫IgG阳性的不同滴度的阳性参比血清各50份采用弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒检定,计算阳性符合率。阳性参比血清的确定采用ELISA(进口试剂)法确定的临床标本。
3)阴性标本符合率:用50份阴性参比血清检定,计算阴性性符合率。阴性参比血清的确定采用ELISA(进口试剂)法确定的临床标本。
4)批内差异:同一批次弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒,用特征性血清检测,要求阳性血清检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性血清检测的结果阴性。
5)批间差异:不同批次弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒,用特征性血清检测,要求阳性血清检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性血清检测的结果阴性。
6)干扰试验:检测结果不受标本溶血(n=50)、脂血(n=50)和黄疸(n=50)的干扰。
7)交叉反应:采用本弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒,采用***性红斑狼疮(n=30)、类风湿病(n=30)、免疫性肝炎(n=30)等自身免疫***疾病的血清检测,未发现交叉反应。
8)稳定性检测:应用Arrhenius法则,将弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒放置37℃20天后检测,以上各项指标无显著变化,确保成品在室温干燥条件下保存,有效期为18个月。
以下给出具体实施例。
实施例1
将硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,弓形虫IgG抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在弓形虫IgG抗体检测线处包被弓形虫重组抗原SAG1(P30)、SAG2(P22)、ROP2和GRA7,在对照线处包被人IgG抗体,用切条机切成条状,和酶标记的抗人γ链单克隆抗体及其底物共同组装成弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒。
1)标本采用0.01mol/LPBS缓冲液进行1∶50稀释。
2)封闭:采用5%脱脂奶粉(0.01mol/L PBST缓冲液配制)作为封闭液,于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
3)血清温育:取出所需的膜条,将其放入温育槽内,并编号。在温育槽中分别加入1.5ml已稀释样本。于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
4)清洗:吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1.5ml 0.01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3次,每次5min。
5)加酶结合物:在温育槽中加入1.5ml已稀释的酶结合物(采用辣根过氧化物酶标记的抗人IgG特异性片段γ链单克隆抗体为检测抗体),于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育30min。
6)清洗:吸去槽内液体,在摇摆摇床上用1.5ml 0.01mol/L PBS缓冲液清洗膜条3次,每次5min。
7)底物温育:在温育槽中分别加入1.5ml底物液(DAB),于室温(18~25℃)在摇摆摇床上温育10min。
8)终止:吸去槽内液体,用蒸馏水清洗膜条3次,每次1min。
结果判断:将检测膜条放置在结果判定模板中,风干后判断结果。任何蛋白靶标出现的特异性条带,均可判断为阳性,可辅助诊断弓形虫病(见图2)。
实施例2
与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由SAG2(P22)、ROP2和GRA7弓形虫重组抗原组成,不含有SAG1(P30)弓形虫重组抗原。结果判断与实施例1相同。
实施例3
与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由SAG1(P30)、ROP2和GRA7弓形虫重组抗原组成,不含有SAG2(P22)弓形虫重组抗原。结果判断与实施例1相同。
实施例4
与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由SAG1(P30)、SAG2(P22)和GRA7重组抗原组成,不含有ROP2重组抗原。结果判断与实施例1相同。
实施例5
与实施例1相似,其区别在于硝酸纤维膜检测线仅由SAG1(P30)、SAG2(P22)和ROP2弓形虫重组抗原组成,不含有GRA7弓形虫重组抗原。结果判断与实施例1相同。
实施例6
与实施例1相似,其区别在于待检标本为脑脊液标本,结果判断与实施例1相同。
实施例7
性能验证试验:按实施例1方案制备弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒,再进行性能验证。
1)外观检查:试剂盒无破损,包被反应膜平整、干净无污染斑点、无裂缝,胶带无开胶,无切斜现象。
2)阳性标本符合率:用弓形虫IgG阳性的不同滴度的阳性参比标本各50份采用弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒检定,计算阳性符合率。阳性参比标本的确定采用ELISA(进品试剂)法确定的临床标本。
3)阴性标本符合率:用50份阴性参比标本检定,计算阴性符合率。阴性参比标本的确定采用ELISA(进品试剂)法确定的临床标本。
4)批内差异:同一批次弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒,用特征性标本检测,要求阳性标本检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性标本检测的结果阴性。
5)批间差异:不同批次弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒,用特征性标本检测,要求阳性标本检测结果显示色带的颜色深浅一致,阴性标本检测的结果阴性。
6)交叉反应:采用本弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒,进行***性红斑狼疮(n=30)、类风湿病(n=30)、免疫性肝炎(n=30)等自身免疫***疾病的检测,未发现交叉反应。
7)稳定性检测:应用Arrhenius法则,将弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒放置37℃20天后检测,以上各项指标无显著变化,确保成品在室温干燥条件下保存,有效期为18个月。
Claims (8)
1.弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒,其特征在于设有载体板、硝酸纤维膜、弓形虫IgG抗体检测线、对照线,弓形虫IgG抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上;在弓形虫IgG抗体检测线处包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgG抗体;辣根过氧化物酶标记抗人γ链抗体。
2.如权利要求1所述的弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒,其特征在于所述弓形虫重组抗原为SAG1(P30)、SAG2(P22)、ROP2、GRA7。
3.如权利要求1所述的弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒,其特征在于所述载体板采用PVC板。
4.如权利要求1所述的弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒的制备方法,其特征在于包括以下步骤:
1)制备弓形虫重组抗原
采用基因克隆技术,PCR扩增编码弓形虫螺旋体抗原的DNA,并***大肠杆菌中使其表达,得弓形虫重组抗原;
2)硝酸纤维素膜的点样
在硝酸纤维素膜IgG检测线上包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgG抗体,晾干;
3)制备抗人IgG特异性片段γ链单克隆抗体
以人IgG特异性片段γ链为抗原免疫Balb/c小鼠,通过杂交瘤技术,筛选获得稳定分泌抗人IgG单克隆抗体的杂交瘤细胞株;
4)抗人IgG特异性片段γ链单克隆抗体的辣根过氧化物酶标记
采用过碘酸钠法进行辣根过氧化物酶标记;
5)制备免疫印迹试剂盒
将硝酸纤维膜粘贴在载体板上表面,弓形虫IgG抗体检测线和对照线依次设在硝酸纤维膜上,在弓形虫IgG抗体检测线处包被弓形虫重组抗原,在对照线处包被人IgG抗体,用切条机切成条状,与酶标记的抗人γ链单克隆抗体及其底物共同组装成弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒。
5.如权利要求4所述的弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒的制备方法,其特征在于在步骤1)中,所述弓形虫重组抗原为SAG1(P30)、SAG2(P22)、ROP2、GRA7。
6.如权利要求4所述的弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒的制备方法,其特征在于在步骤2)中,所述弓形虫重组抗原和人IgG抗体的浓度为1~4mg/mL;点样量为1μL/cm。
7.如权利要求4所述的弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒的制备方法,其特征在于在步骤3)中,采用ELISA的方法鉴定McAb效价在1∶107以上。
8.如权利要求4所述的弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒的制备方法,其特征在于在步骤4)中,所述辣根过氧化物酶的底物按质量/体积百分比由0.03%的过氧化氢和0.07%的二氨基联苯胺组成。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2011102780536A CN102288768A (zh) | 2011-09-19 | 2011-09-19 | 弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CN2011102780536A CN102288768A (zh) | 2011-09-19 | 2011-09-19 | 弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
CN102288768A true CN102288768A (zh) | 2011-12-21 |
Family
ID=45335358
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
CN2011102780536A Pending CN102288768A (zh) | 2011-09-19 | 2011-09-19 | 弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
CN (1) | CN102288768A (zh) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103837688A (zh) * | 2014-03-27 | 2014-06-04 | 吉林农业大学 | 一种检测犬猫弓形虫抗体的间接elisa试剂盒 |
CN104745536A (zh) * | 2015-03-02 | 2015-07-01 | 南方医科大学 | 一种弓形虫蛋白TgVP1单克隆抗体杂交瘤3A6及单克隆抗体 |
CN106053817A (zh) * | 2016-05-03 | 2016-10-26 | 吉林大学 | 检测弓形虫循环抗原的双抗夹心试剂盒及其制备方法 |
Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20040067239A1 (en) * | 2002-10-02 | 2004-04-08 | Maine Gregory T. | Genetically engineered P30 antigen, improved antigen cocktail, and uses thereof |
CN101137674A (zh) * | 2005-03-08 | 2008-03-05 | 肯顿有限公司 | 刚地弓形虫的嵌合重组抗原 |
EP1982993A2 (en) * | 2007-04-20 | 2008-10-22 | F.Hoffmann-La Roche Ag | Detection of primary infections with pathogens |
CN102081096A (zh) * | 2011-01-25 | 2011-06-01 | 厦门大学附属中山医院 | 梅毒心磷脂和特异性抗体IgG免疫印迹试剂盒及其制备 |
CN102095860A (zh) * | 2011-01-25 | 2011-06-15 | 厦门大学附属中山医院 | 梅毒特异性IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 |
-
2011
- 2011-09-19 CN CN2011102780536A patent/CN102288768A/zh active Pending
Patent Citations (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20040067239A1 (en) * | 2002-10-02 | 2004-04-08 | Maine Gregory T. | Genetically engineered P30 antigen, improved antigen cocktail, and uses thereof |
CN101137674A (zh) * | 2005-03-08 | 2008-03-05 | 肯顿有限公司 | 刚地弓形虫的嵌合重组抗原 |
EP1982993A2 (en) * | 2007-04-20 | 2008-10-22 | F.Hoffmann-La Roche Ag | Detection of primary infections with pathogens |
CN102081096A (zh) * | 2011-01-25 | 2011-06-01 | 厦门大学附属中山医院 | 梅毒心磷脂和特异性抗体IgG免疫印迹试剂盒及其制备 |
CN102095860A (zh) * | 2011-01-25 | 2011-06-15 | 厦门大学附属中山医院 | 梅毒特异性IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 |
Non-Patent Citations (3)
Title |
---|
D.AUBERT等: "Recombinant Antigens To Detect Toxoplasma gondii-Specific Immunoglobulin G and Immunoglobulin M in Human Sera by Enzyme Immunoassay", 《JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOG》, vol. 38, no. 3, 31 March 2000 (2000-03-31), XP055540051 * |
司进等: "重组抗原用于弓形虫病免疫诊断研究进展", 《中国血吸虫病防治杂志》, vol. 16, no. 5, 31 October 2004 (2004-10-31) * |
熊美华等: "弓形虫速殖子抗原的提取及蛋白分析", 《中国寄生虫病防治杂志》, vol. 14, no. 3, 30 September 2001 (2001-09-30) * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103837688A (zh) * | 2014-03-27 | 2014-06-04 | 吉林农业大学 | 一种检测犬猫弓形虫抗体的间接elisa试剂盒 |
CN104745536A (zh) * | 2015-03-02 | 2015-07-01 | 南方医科大学 | 一种弓形虫蛋白TgVP1单克隆抗体杂交瘤3A6及单克隆抗体 |
CN104745536B (zh) * | 2015-03-02 | 2018-03-09 | 南方医科大学 | 一种弓形虫蛋白TgVP1单克隆抗体杂交瘤3A6及单克隆抗体 |
CN106053817A (zh) * | 2016-05-03 | 2016-10-26 | 吉林大学 | 检测弓形虫循环抗原的双抗夹心试剂盒及其制备方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN104407137B (zh) | 一种猪瘟病毒强毒株和弱毒株鉴别检测试纸 | |
CN104459144B (zh) | 一种猪伪狂犬病毒强毒株和疫苗毒株鉴别检测试纸 | |
CN106556701A (zh) | 羊布鲁氏菌间接elisa抗体检测试剂盒 | |
CN101858914A (zh) | 梅毒特异性总抗体胶体金免疫层析检测试剂条及其制备方法 | |
CN106771182A (zh) | 牛布鲁氏菌IgM亚型抗体间接ELISA检测试剂盒 | |
CN101858916A (zh) | 梅毒特异性IgM抗体胶体金免疫层析检测试剂条及其制备方法 | |
CN102435732A (zh) | 弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 | |
CN101592660A (zh) | 布鲁氏菌病间接酶联免疫吸附试验奶液抗体检测试剂盒 | |
CN101858915A (zh) | 梅毒特异性IgG抗体胶体金免疫层析检测试剂条及其制备方法 | |
CN201673156U (zh) | 梅毒特异性IgM抗体胶体金免疫层析检测试剂条 | |
CN101825635A (zh) | 梅毒特异性IgG抗体与特异性总抗体联合检测试剂条及其制备方法 | |
CN102288768A (zh) | 弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 | |
Sampaio et al. | Measles, rubella, mumps and Toxoplasma gondii antibodies in saliva of vaccinated students of schools and universities in São Paulo City, Brazil | |
CN102095858A (zh) | 梅毒心磷脂和特异性抗体IgM免疫印迹试剂盒及其制备 | |
CN202256346U (zh) | 弓形虫IgM抗体免疫印迹试剂盒 | |
CN102435744A (zh) | 弓形虫总抗体胶体金免疫层析检测试剂条及其制备方法 | |
CN202256347U (zh) | 弓形虫IgM抗体与总抗体联合检测试剂条 | |
CN102360012A (zh) | 弓形虫IgG抗体与总抗体联合检测试剂条及其制备方法 | |
CN102305861B (zh) | 弓形虫IgM与IgG抗体联合检测试剂条及其制备方法 | |
CN202230085U (zh) | 弓形虫IgG抗体免疫印迹试剂盒 | |
CN202230087U (zh) | 弓形虫总抗体免疫印迹试剂盒 | |
CN102323420A (zh) | 弓形虫总抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 | |
CN201965132U (zh) | 梅毒特异性IgM抗体免疫印迹试剂盒 | |
CN201955343U (zh) | 梅毒心磷脂和特异性抗体IgM免疫印迹试剂盒 | |
CN102095860B (zh) | 梅毒特异性IgG抗体免疫印迹试剂盒及其制备方法 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20111221 |