CN102206252A - 早老素5抑制因子抗原表位、抗早老素5抑制因子抗体及其用途 - Google Patents
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Abstract
本发明属于分子生物学和免疫学领域,涉及早老素5抑制因子抗原表位、抗早老素5抑制因子抗体及其用途。具体地,所述早老素5抑制因子抗原表位具有SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4或SEQ ID NO:5所示的序列。本发明还涉及一种抗早老素5抑制因子多克隆抗体,所述多克隆抗体与上述抗原表位特异性结合。所述多克隆抗体具有高的特异性和效价。本发明还涉及所述多克隆抗体的制备方法和用途、含有该多克隆抗体的组合物、以及检测早老素5抑制因子的方法。
Description
技术领域
本发明属于分子生物学和免疫学领域。具体地,涉及一种早老素5抑制因子抗原表位、抗早老素5抑制因子抗体。本发明还涉及分别含有所述抗原表位或抗体的组合物、以及所述抗体在检测早老素5抑制因子中的用途。
背景技术
早老素5抑制因子(又称Spr-5,酶分类号EC:1)是定位于水稻第四号染色体上的基因,早老素5抑制因子是一个组织特异性基因,在叶中有特异性表达。它所表达的早老素5抑制因子蛋白质,其构象与人基因KIAA0601所编码的多胺氧化酶类似。水稻早老素5抑制因子是位于叶绿体上的具有电子载体活性和氧化还原活性的蛋白酶,属于氨基氧化酶家族。这个家族由各种各样的氨基氧化酶组成,包括许多的多胺氧化酶(PAO)和各种黄素多巴胺氧化酶(MAO)。在植物、细菌和原生动物中PAOs把亚精胺和精胺氧化成氨基丁缩醛、双氨基丙烷和过氧化氢,参与到多胺的分解代谢中。在其他生物中,大部分的早老素5抑制因子质导致hop-1的低表达。早老素5抑制因子与抑制转录复合体具有同源性,它的抑制活性需要功能性的早衰蛋白HOP-1,并通过非等位基因特异性使sel-12Egl表型低表达。
水稻(Oryzae Sativa L.)是世界上最重要的粮食作物,也是单子叶植物的模式植物,它为全球近一半的人口提供食物。水稻基因组测序工作的成果极大地推动了水稻相关研究的进展,带动了水稻转录组学和蛋白质组学的研究,目前一些研究功能基因组学的新技术如cDNA微阵列、基因芯片、基因表达***分析、基因敲除等在分析基因表达、发掘基因资源上取的了很大进展,很多与优良性状相关的基因被克隆并转化应用。在研究基因功能过程中,作为一种灵敏度高、特异性好、操作简便、结果直观的技术,蛋白质印记(Western Blot)表现出了良好的效果。蛋白印迹(Western Blot)是根据抗原抗体的特异性结合检测复杂样品中的某种蛋白的方法,用于检测经电泳或斑点杂交后固定于膜上的蛋白质。特异、稳定的液态酶标抗体和相应的底物,保证了快速、准确的检测;而避免了放射性物质的使用,现已成为蛋白分析的一种常规技术,对蛋白进行定性和半定量分析。
然而,迄今为止,在水稻生长发育过程中表达的早老素5抑制因子基因的功能研究目前并不清楚。并且在现有技术中,通常制备的多克隆抗体特异性不高,用于检测目标物质会存在准确性不足的问题。另一方面,如果用早老素5抑制因子制备抗原的话,如果是采用重组表达的方法,步骤比较繁琐,如果是采用化学合成的方法,全长的氨基酸序列有492个氨基酸,合成很困难,而且蛋白质空间结构的重建是一个很困难的工作,再现与生物体内相同的空间构象仍然是现阶段蛋白质学研究的难点。一般来说抗原表位合成简易,准确性高,成本低廉,空间构象容易再现,因此有必要开发一种具有代表早老素5抑制因子本身的抗原表位(antigenic determinant,AD)(又称抗原决定簇,是指抗原分子中决定抗原特异性的特殊化学基团)来代替全长蛋白。
尽管目前已经有用于预测抗原表位的软件,例如BEPITOPE软件,但是预测得到的抗原表位中会有30%左右的非有效抗原表位,即不能特异性地代表抗原的抗原表位,或者不能引发免疫应答(Chang HT,Liu CH,Pai TW.Estimation and extraction of B-cell linear epitopes predicted by mathematical morphology approaches.J Mol Recognit.2008Nov-Dec;21(6):431-41)。
发明内容
为了解决上述问题,本发明人在通过BEPITOPE软件预测得到多个抗原表位序列的基础上,进行了大量的实验和不懈的努力,结果发现在预测的40个抗原表位中有一个抗原表位序列DNISLKNWDQEHVL(SEQID NO:3)是最有效的抗原表位,并且其具有良好的抗原特异性,并且制备了能与该蛋白酶特异免疫结合的抗体,该抗体具有足够的灵敏性和准确性。由此提供了下述发明:
本发明的一个方面涉及一种早老素5抑制因子抗原表位,其氨基酸序列如SEQ ID NO:3所示。
在本发明的一个实施方案中,为了增加与载体的交联性,在上述抗原表位的N末端添加了一个半胱氨酸(半胱氨酸提供二硫键与载体交联),得到序列为CDNISLKNWDQEHVL(SEQ ID NO:4)的抗原表位。
半胱氨酸也可以加在多肽的C末端,得到序列为DNISLKNWDQEHVLC(SEQ ID NO:5)的抗原表位。
末端加1个半胱氨酸就可以了。如果在同一端加多个半胱氨酸,导致成本上升,而且会影响抗体的特异性,并且二硫键密度太大,而实际上也不需要这么多二硫键。另外不宜在N末端和C末端都加半胱氨酸,因为一个抗原表位和一个载体结合,如果在两端分别加1个半胱氨酸,半胱氨酸与载体结合后,抗原表位少了游离端,反而不利于产生抗体。
本发明的抗原表位可以通过常规的肽合成技术化学合成得到,也可以在适当的宿主中表达得到;优选的是化学合成。
本发明的还一方面涉及一种组合物,其包含SEQ ID NO:3或SEQID NO:4或SEQ ID NO:5所示的早老素5抑制因子抗原表位,任选地,可以含有免疫佐剂,例如氢氧化铝、弗氏完全佐剂、或者弗氏不完全佐剂等。
本发明的还一方面涉及一种早老素5抑制因子抗原表位-载体复合物;其中,所述早老素5抑制因子抗原表位为SEQ ID NO:3或SEQID NO:4或SEQ ID NO:5所示的早老素5抑制因子抗原表位,所述载体可以是钥孔戚血蓝素(KLH)、BSA、或酪蛋白等。
本发明的还一方面涉及一种抗早老素5抑制因子抗体,所述抗早老素5抑制因子抗体能够特异性地结合SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4或SEQ ID NO:5所示的早老素5抑制因子抗原表位。所述抗早老素5抑制因子抗体可以是单克隆抗体,也可以是多克隆抗体。
本发明的抗早老素5抑制因子多克隆抗体可以得自各种常规制备多克隆抗体的动物,例如山羊,兔子,大鼠,小鼠等。
对本领域技术人员而言,可以根据SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4或SEQ ID NO:5所示的早老素5抑制因子抗原表位制备单克隆抗体,具体操作可以参见本领域的技术手册,也可以参考文献例Nature1975Kohler & Milstein Vol 256,p495。
本发明的还一方面涉及一种含有抗早老素5抑制因子多克隆抗体的血清(简称多抗血清),其通过使用SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4或SEQ ID NO:5所示的抗原表位免疫动物制得。
本发明的还一方面涉及一种抗早老素5抑制因子多克隆抗体制备方法,包括将SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4或SEQ ID NO:5所示的早老素5抑制因子抗原表位作为抗原免疫动物的步骤。任选地,所述免疫步骤可以加入佐剂,例如氢氧化铝、弗氏完全佐剂、或者弗氏不完全佐剂,等等。
本发明的一个实施方案中,所述抗早老素5抑制因子多克隆抗体制备方法,包括如下步骤:
1)将SEQ ID NO:3或SEQ ID NO:4或SEQ ID NO:5所示的早老素5抑制因子抗原表位作为抗原免疫动物;
2)取血,离心收集多抗血清;和
3)纯化步骤2)中的多抗血清,得到抗早老素5抑制因子多克隆抗体。
本发明的还一方面涉及一种组合物,其包含本发明的抗早老素5抑制因子多克隆抗体。
本发明的还一方面涉及一种早老素5抑制因子检测剂,其包含本发明的抗早老素5抑制因子多克隆抗体。
其中早老素5抑制因子的氨基酸序列(SEQ ID NO:1)如下:
MDQPSNGFAAGGLFLRHIDGQNASPPSVIVIGGGISGIAAARALSNASFKVTLLESRDRLGGRVHTDYSFGCPIDMGASWLHGVCNENSLAPLIRLLGLR LYRTSGDNSVLYDHDLESYALFDKDGRQVPQEIVTKVGETFEKILKETVKVRAEHEDDMPLIQAISIVLDRNPHLKLDGLQYEVLQWCICRLEAWFATDVrGGHGLMVHGYDPVIKALAQDLDIHLNHRVTKIIQRYNKTIVCVEDGTSFVADAAIITVPLGVLKANIIKFEPELPDWKLSSISDLGIGIENKIALRFNSVFWPNVEVLGRVAPTSNACGYFLNLHKATGHPVLVCMVAGRFAYEFEKLSDEESVNFVMSQLKKMLPGATEPVQYLVSRWGTDPNSLGSYSCDLVGKPADLYERFCAPVGNLFFAGEAACIDHSGSVHGAYSSGIVAAEDCRRHLSTQLGISDLFQVGKIIMREEMTEVMVPFQISRL(SEQ IDNO:1)
其中,加边框的序列为SEQ ID NO:3。
本发明的还一方面涉及本发明的抗早老素5抑制因子多克隆抗体在制备检测早老素5抑制因子的药物中的用途。
本发明的还一方面涉及一种检测早老素5抑制因子的方法,所述方法包括使用本发明的抗早老素5抑制因子多克隆抗体的步骤。具体地,包括如下步骤:
1)将待测样品与本发明的抗早老素5抑制因子多克隆抗体孵育,使所述的抗早老素5抑制因子多克隆抗体与待测样品中的早老素5抑制因子特异性结合,由此形成免疫复合物;和
2)检测是否存在免疫复合物。
上述检测早老素5抑制因子的方法可以检测早老素5抑制因子的有无、对其进行半定量(例如western blot方法);在有早老素5抑制因子标准品的情况下,还可以通过ELISA方法对早老素5抑制因子进行定量检测。
在本发明的一个实施方案中,所述早老素5抑制因子为水稻的早老素5抑制因子。具体的,所述水稻为水稻93-11。
发明的有益效果
1)本发明提供的多克隆抗体,特异性和灵敏度高,具有很高的应用价值;
2)本发明提供的早老素5抑制因子抗原合成简易,准确性高。本发明提供的抗原表位是经软件预测选出的抗原表位片段后化学合成的,片段短小,容易合成,空间构象再现容易。
3)本发明提供的抗体制备方法简单,收获量大。取合成的抗原1-2mg免疫新西兰大白兔,每隔14天加强免疫一次;第2次加强免疫后7天耳静脉取血,离心收集多抗血清,获得大量的多克隆抗体。
4)通过本发明获得早老素5抑制因子蛋白多克隆抗体,除了可以用于检测早老素5抑制因子基因在植物中早老素5抑制因子蛋白表达以外,还应用于研究早老素5抑制因子结构与功能相关的多个方面:通过免疫荧光检测,可以检测早老素5抑制因子在转基因植物中的分布;Western blot分析早老素5抑制因子在转基因植物中是否表达;免疫荧光检测可以确定蛋白表达的部位;确定表达的蛋白是在叶片、茎秆、种子、还在根部等.此外,在对水稻的研究中,本发明的多克隆抗体可应用于水稻蛋白质水平的科学研究中,也可以用于免疫共沉淀、蛋白质-蛋白质相互作用、蛋白芯片、免疫组化及细胞定位等实验中,此外还可能用于其它植物的相关研究。
附图说明
图1:使用抗早老素5抑制因子多克隆抗体对早老素5抑制因子在水稻不同组织的免疫印迹检测结果。
具体实施方式
下面将结合实施例对本发明的实施方案进行详细描述。本领域技术人员将会理解,下面的实施例仅用于说明本发明,而不应视为限定本发明的范围。实施例中未注明具体技术或条件者,按照本领域内的文献所描述的技术或条件(例如参考J.萨姆布鲁克等著,黄培堂等译的《分子克隆实验指南》,第三版,科学出版社)或者按照产品说明书进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者,均为可以通过市购获得的常规产品。
实施例1:候选抗原表位的预测
水稻早老素5抑制因子对应的基因在GenBank中的基因ID是:NP_001054219.1。读码框序列如下:
ATGGACCAGCCTTCTAATGGCTTCGCCGCCGGAGGTCTTTTTCTTCGTCACATTGATGGGCAAAATGCCTCTCCCCCTTCTGTCATTGTGATTGGTGGAG GGATTTCAGGCATTGCAGCTGCTCGTGCGCTGTCTAATGCTTCGTTTAAGGTCACACTATTAGAGTCACGGGACCGACTTGGTGGCCGTGTGCATACTGA CTATTCTTTTGGCTGCCCAATTGACATGGGAGCATCTTGGTTGCATGGTGTATGCAATGAGAATTCATTGGCACCACTGATTAGGTTGCTTGGCCTTAGA TTATATCGCACCAGTGGTGATAACTCTGTGCTATATGACCATGATCTGGAGAGCTATGCTCTCTTTGATAAGGATGGTCGTCAAGTTCCCCAGGAGATAG TGACAAAAGTCGGGGAAACATTTGAGAAAATTCTTAAGGAGACGGTGAAAGTAAGAGCTGAACATGAAGATGACATGCCTCTTATTCAAGCCATCTCAAT TGTGCTTGACAGGAATCCACACCTAAAGCTTGATGGTTTGCAATATGAAGTACTGCAGTGGTGCATATGTAGGCTGGAGGCATGGTTTGCCACAGATGTG GATAATATATCTCTGAAAAATTGGGATCAGGAACATGTTCTTACTGGTGGCCATGGGCTTATGGTGCATGGTTATGATCCTGTTATCAAAGCTCTCGCGC
所编码的水稻早老素5抑制因子全长序列如下:
MDQPSNGFAAGGLFLRHIDGQNASPPSVIVIGGGISGIAAARALSNASFKVTLLESRDRLGGRVHTDYSFGCPIDMGASWLHGVCNENSLAPLIRLLGLRLYRTSGDNSVLYDHDLESYALFDKDGRQVPQEIVTKVGETFEKILKETVKVRAEHEDDMPLIQAISIVLDRNPHLKLDGLQYEVLQWCICRLEAWFATDVTGGHGLMVHGYDPVIKALAQDLDIHLNHRVTKIIQRYNKTIVCVEDGTSFVADAAIITVPLGVLKANIIKFEPELPDWKLSSISDLGIGIENKIALRFNSVFWPNVEVLGRVAPTSNACGYFLNLHKATGHPVLVCMVAGRFAYEFEKLSDEESVNFVMSQLKKMLPGATEPVQYLVSRWGTDPNSLGSYSCDLVGKPADLYERFCAPVGNLFFAGEAACIDHSGSVHGAYSSGIVAAEDCRRHLSTQLGISDLFQVGKIIMREEMTEVMVPFQISRL(SEQ IDNO:1,其中加框的序列为SEQ ID NO:3)
早老素5抑制因子来源于水稻(Oryzae Sativa L.),具有序列表中的SEQ ID NO:1序列;及与序列表中SEQ ID NO:I序列中任意连续14个氨基酸的相似性大于80%的多肽片段。
然后根据SEQ ID NO:3,用BEPITOPE软件对水稻早老素5抑制因子基因编码的蛋白质进行抗原表位的预测。本实施例中使用了BEPITOPE软件提供的五种方法Standard、Karplus、Emini、Amphiphi、Pellequer,以及这五种方法的综合方法cons_Sta_Kar_Emi_Amp_Pel,所有参数选择默认。具体方法可以参考Odorico M,Pellequer J L.BEPITOPE:predicting the location of continuous epitopes and patterns in proteins[J].J Mol Recognit,2003,16(1):20-22一共预测得到了40个候选的抗原表位,在TIGR水稻数据库上筛选肽段结构,选出抗原表位峰值较高的片段DNISLKNWDQEHVL(SEQ ID NO:3)。
然后该片段在水稻蛋白质库(RAP-DB数据库,网址:http://rapdb.dna.affrc.go.jp/)进行唯一性检索(蛋白序列比对),确定了该片段在水稻蛋白质库中的唯一性。
实施例2:抗原表位的化学合成
实施例1中得到的候选抗原表位的两端没有半胱氨酸,为了实现与载体的交联,合成的序列需加入半胱氨酸,因此要合成的多肽序列为:CDNISLKNWDQEHVL(SEQ ID NO:4)。
对SEQ ID NO:4所示的多肽序列进行化学合成(由吉尔生化公司合成),得到早老素5抑制因子的抗原表位。
实施例3:抗原表位-KLH复合物的制备
采用戊二醛连接法,将实施例2中合成的抗原表位的N端与交联载体蛋白-钥孔戚血蓝素(KLH)交联,得到抗原表位-KLH复合物。
具体实施步骤如下:
将5mg合成多肽加入7mg KLH中,边震荡边缓慢加入新鲜配制的3g/L戊二醛溶液1ml,室温孵育2h。以pH8.5的硼酸缓冲液透析24h,得到抗原表位-KLH复合物。
实施例4:多抗血清的制备
取1-2mg实施例3中制备的抗原表位-KLH复合物,免疫新西兰大白兔,每隔14天加强免疫一次;第2次加强免疫后7天,耳静脉取血,分离血清(5000rpm离心10min),收集上清,测效价。同时按照相同的步骤,用抗原表位(SEQ ID NO:4)作为对照。
具体步骤如下:
取1-2mg实施例3中制备的抗原表位-KLH复合物与等量的完全福氏佐剂充分乳化,形成油水包,于兔颈部和背部皮下多点注射,每点约100μg。2周后加强免疫,剂量同前,用不完全福氏佐剂充分乳化后,于兔背部皮下多点注射;以后隔2周加强免疫1次;从第2次加强免疫开始,每次免疫7天后,经耳静脉取血测定抗体的效价。
其中,耳静脉取血进行效价检测(ELI SA法)的步骤如下:
在96孔板上,每孔加入50μg/ml磷酸酪氨酸100μl,4℃过夜后,进行包被,洗涤。将按照前述方法制备的耳静脉血的多抗血清稀释为1∶100,1∶500,1∶2500,1∶3200,1∶12800,1∶25600,每孔各加100μl,37℃保温30min,洗涤。各加入1∶100稀释的羊抗兔Ig酶结合物100μl,37℃保温30min,洗涤。加入TMB(3,3,5,5-四甲基联苯胺)100μl,20min后,加2mol/l的H2SO4终止反应
经过2次加强免疫后,效价检测的结果如下:
多抗血清(抗原表位-KLH复合物免疫)>25600(抗原表位-KLH复合物有免疫原性的最大稀释倍数是51200);
裸肽免疫(抗原表位,SEQ ID NO:4)得到的多抗血清>800(仅仅由抗原表位组成的裸肽具有免疫原性的最大稀释倍数是800)。
上述结果已经符合要求,遂于末次加强免疫7天后颈动脉放血,收集血样。将收集的血样在3-4℃下静置3-4小时,然后5000rpm离心10分钟,收集血清,得到多抗血清(耳静脉检测效价符合要求后,颈动脉取的血样不必再检测效价)。无菌分装保存于-80℃备用。
实施例5:抗早老素5抑制因子多克隆抗体(多抗)的制备
将实施例4中制备的多抗血清进行纯化,制得多克隆抗体(多抗)。
将抗原表位DNISLKNWDQEHVL(SEQ ID NO:4)多肽与溴化氰活化的Sepharose 4B偶联,制备多肽亲和层析柱。
将制备的多抗血清加入到以上制备的层析柱中,放置于4℃孵育过夜后,洗脱抗体,即得到抗早老素5抑制因子多克隆抗体(多抗)。
实施例6:多抗对早老素5抑制因子的特异性检验
选取水稻93-11不同发育阶段和不同部位的组织,提取总蛋白质,用Bradford法测定样品水稻总蛋白含量,每个样品分别上样为:苗期地上部上样量:7μL;分蘖期叶片上样量:8μL;孕穗期剑叶上样量:7μL;开花期剑叶上样量:6μL;成熟期剑叶上样量:6μL;苗期地下部上样量:6μL;分蘖期茎上样量:10μL;开花期穗子上样量:3μL;成熟期种子上样量:5μK,利用制备的eEF-1α多克隆抗体检测蛋白质表达(图1)。
总蛋白质样品的制备:用液氮研磨上述新鲜水稻组织至粉末状,分装到预冷离心管中,每300μl粉末加入800μl蛋白质裂解液(62.5mmol/L pH7.4Tris·HCl,10%甘油,2%SDS,20mmol/LNaF,2mmol/L EDTA,1mmol/L PMSF,5%β-巯基乙醇),迅速混匀并置于冰上,冰水混合物中孵育10分钟,约每2分钟震荡混匀1次。4℃,12000r/min离心15分钟。取上清,转移到新的离心管中,-70℃保存。得到水稻总蛋白。
Western印记:
免疫反应western bloting为:将提取的水稻蛋白质进行SDS-PAGE后电转移到PVDF膜上,用5%脱脂奶粉封闭PVDF膜,用制备的抗体室温孵育3h,TTBS(2mmol/L Tris·HClpH7.6,13.6mmol/LNaCl,0.1%Tween一20)洗膜3次,每次5min,之后加入羊抗兔二抗室温孵育1h,TTBS洗膜3次,每次5min,加ECL Plus检测液检测,暗室曝光5min.
免疫反应检测到苗期(地上部)、分蘖期(叶片)、孕穗期(剑叶)、开花期(剑叶)、成熟期(剑叶)五个时期的叶片样品中与理论中的35KD分子量相接近的条带,该蛋白质在不同组织中有特异性表达。需要说明的是,尽管水稻全蛋白中可能有很多分子量与其相似的蛋白,但是与多抗特异性结合的就只有早老素5抑制因子一个。关于特异性的预测:SEQ ID NO:4经过http://rice.plantbiology.msu.edu/blast.shtml(与实施例1中的http://rapdb.dna.affrc.go.jp/作用相同,目的是再次检验唯一性)的检查,确定此多肽序列特异,该序列在水稻总蛋白中唯一确定早老素5抑制因子。
尽管本发明的具体实施方式已经得到详细的描述,本领域技术人员将会理解。根据已经公开的所有教导,可以对那些细节进行各种修改和替换,这些改变均在本发明的保护范围之内。本发明的全部范围由所附权利要求及其任何等同物给出。
Claims (10)
1.一种早老素5抑制因子抗原表位,其由SEQ ID NO:3或SEQID N0:4或SEQ ID NO:5所示的氨基酸序列组成。
2.一种组合物,其中含有权利要求1所述的早老素5抑制因子抗原表位,任选地,还含有用于免疫的佐剂。
3.一种早老素5抑制因子抗原表位-载体复合物,其中,所述早老素5抑制因子抗原表位为权利要求1所述的早老素5抑制因子抗原表位,所述载体选自钥孔戚血蓝素、BSA、以及酪蛋白。
4.一种抗早老素5抑制因子抗体的制备方法,包括使用权利要求1的早老素5抑制因子抗原表位或者权利要求2的组合物或者权利要求3的复合物的步骤;任选地,所述抗早老素5抑制因子抗体是单克隆抗体或者多克隆抗体;具体地,所述制备方法包括如下步骤:
1)将权利要求1所述的早老素5抑制因子抗原表位或者权利要求2的组合物或者权利要求3的复合物免疫动物得到的血样进行离心,得到多抗血清;和
2)纯化步骤1)中的多抗血清,得到抗早老素5抑制因子多克隆抗体。
5.一种多抗血清,其由权利要求1的早老素5抑制因子抗原表位或者权利要求2的组合物或者权利要求3的复合物免疫动物制得。
6.一种抗早老素5抑制因子抗体,其能够特异地结合权利要求1所述的早老素5抑制因子抗原表位,任选地,其为多克隆抗体或者单克隆抗体。
7.一种组合物,其包含权利要求6所述的抗早老素5抑制因子抗体。
8.一种早老素5抑制因子检测剂,其包含权利要求6所述的抗早老素5抑制因子抗体。
9.权利要求6所述的抗体在制备检测早老素5抑制因子的药物中的用途。
10.一种检测早老素5抑制因子的方法,所述方法包括使用权利要求6所述的抗早老素5抑制因子多克隆抗体的步骤;具体地,所述早老素5抑制因子为水稻的早老素5抑制因子。
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Legal Events
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---|---|---|---|
C06 | Publication | ||
PB01 | Publication | ||
C10 | Entry into substantive examination | ||
SE01 | Entry into force of request for substantive examination | ||
C12 | Rejection of a patent application after its publication | ||
RJ01 | Rejection of invention patent application after publication |
Application publication date: 20111005 |