CN101822288A - 海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法 - Google Patents

海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法 Download PDF

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本发明公开了一种海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法。按1%~5%的接种量将海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman接种于酵母培养基中,在20~30℃,100~300转/分钟培养20~50小时,通过离心收集海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman菌体,弃去上清液,用无菌水洗涤2~3次,用血球计数法计数,并用保护剂调整成1×109~1×1011cells/ml细胞悬浮液,将细胞悬浮液孵育0.5-3小时,再进行真空冷冻干燥,得到真空冷冻干燥制品;真空度为0.005~0.01mbar,干燥温度为-55~-65℃,干燥时间12~36小时。本发明制备的真空冷冻干燥制品,可以保持R.paludigenum的存活率≥80%。本发明生产工艺简单,无污染、安全性高,能明显降低果蔬病害,将在多种果蔬的采后贮藏保鲜以及涉及R.paludigenum的产品开发中发挥重要作用。

Description

海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法
技术领域
本发明涉及一种海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法。
背景技术
中国不仅是世界果蔬生产大国,也是农药生产和使用大国。长期频繁、过量的使用化学杀真菌剂,会严重破坏土壤的微生物环境、污染空气和水质、增强病虫害抗性,从而影响农业的出口创汇,危害了民众的身体健康,严重制约我国农业的可持续发展。随着食品安全观念的日益深入人心,越来越多的化学杀菌剂被限制使用。发展更多高效低价、安全无毒的生物保鲜剂成为当务之急。
发达国家目前最常用的非化学保鲜手段是冷链技术。中国地区发展不平衡,冷链技术对设备、成本都有较高的要求,短时间内在全国普及具有较大难度。拮抗酵母不产生抗生素,不需要购置特殊设备、操作简便,利于推广应用,是最有潜力替代化学杀菌剂的果蔬贮藏保鲜方法之一[1]
已有的研究结果显示,拮抗菌的主要作用机理是细胞与病原菌之间营养和空间的竞争,拮抗菌的防治效果取决于细胞的使用浓度和生长活性[2]。生物保鲜已经在实验室积累了很多成功的经验,但是商业化的生防制剂包含了生产、包装、运输、销售和最终在不同果实上使用等诸多环节。因此,生防菌要真正实现产业化,必须形式适合商品销售的产品形式。
真空冷冻干燥具有很多优点,比如干燥过程中的微生物细胞收缩小,产品溶解性高和复水后活性强等,较为适合用于制备活性拮抗酵母干粉[3]。微生物在冻干过程中的存活力受到多种因素的影响,包括起始浓度[4]、保护剂的种类和浓度[5]。此外,冻干的起始浓度对微生物存活力和生产成本也有很大的影响[6]
研究表明,海洋酵母Rhodosporidium paludigenum对多种果实采后真菌病害具有显著的抑制效果[7,8]。考虑到海洋酵母在逆境适应性方面的优势,R.paludigenum极具市场开发应用的潜力。目前,国内外还没有关于海洋酵母R.paludigenum真空冷冻干燥活性干粉的报道。
参考文献:
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发明内容
本发明的目的是提供一种海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell &Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法。
海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法是:按1%~5%的接种量将海洋酵母Rhodosporidium paludigenumFell & Tallman接种于酵母培养基中,在20~30℃,100~300转/分钟培养20~50小时,通过离心收集海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman菌体,弃去上清液,用无菌水洗涤2~3次,用血球计数法计数,并用保护剂调整成1×109~1×1011cells/ml细胞悬浮液,将细胞悬浮液孵育0.5-3小时,再进行真空冷冻干燥,得到真空冷冻干燥制品;真空度为0.005~0.01mbar,干燥温度为-55~-65℃,干燥时间12~36小时。
所述海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman在英国国际真菌研究所(International Mycological Institute)国际农业与生物中心基因资源保藏中心(CABI Genetic Resource Collection)保藏,保藏号为IMI 394084。
所述酵母培养基的组成为:牛肉膏5~10g/L、酵母粉3~6g/L、葡萄糖8~12g/L,氯化钠10~40g/L。
所述保护剂为:质量百分含量为1~5%的蔗糖、质量百分含量为1~5%的海藻糖、质量百分含量为1~5%的脱脂奶粉或质量百分含量为0.5~1%的氯化钠中一种或多种。
本发明制备的真空冷冻干燥制品,可以保持R.paludigenum的存活率≥80%。本发明生产工艺简单,无污染、安全性高,能明显降低果蔬病害,将在多种果蔬的采后贮藏保鲜以及涉及R.paludigenum的产品开发中发挥重要作用。
具体实施方式
实施例1
本发明的保护剂对海洋酵母R.paludigenum真空冷冻干燥制品活菌率的影响
按1%的接种量将海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman接种于酵母培养基中,在20℃,100转/分钟培养50小时,通过离心收集海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman菌体,弃去上清液,用无菌水洗涤2次,用血球计数法计数,并用1%海藻糖调整成1×109cells/ml细胞悬浮液,将细胞悬浮液孵育0.5小时,再进行真空冷冻干燥,得到真空冷冻干燥制品;真空度为0.005mbar,干燥温度为-55℃,干燥时间36小时。
称取上述真空冷冻干燥制品0.1g加入100ml灭菌的生理盐水中,常温下孵育30min后,稀释一定梯度,取0.1ml悬浮液均匀涂布于酵母培养基平板,28℃培养48h后计算菌落数。活菌率计算公式:活菌率=活菌数/总菌数×100%。
从表1可以看出,添加了保护剂的海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell& Tallman的冷冻干燥样品为淡红色粉末,具有酵母的特殊气味,无异味,活菌率≥80%,显著地高于不添加保护剂的对照样品活菌率。
表1  海藻糖对R.paludigenum真空冷冻干燥制品活菌率的影响
Figure GSA00000077101500031
实施例2
本发明的保护剂对海洋酵母R.paludigenum真空冷冻干燥制品活菌率的影响
按5%的接种量将海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman接种于酵母培养基中,在30℃,300转/分钟培养20小时,通过离心收集海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman菌体,弃去上清液,用无菌水洗涤3次,用血球计数法计数,并用2.5%海藻糖、2.5%脱脂乳、2.5%蔗糖和0.85%氯化钠混合的保护剂调整成1×1011cells/ml细胞悬浮液,将细胞悬浮液孵育3小时,再进行真空冷冻干燥,得到真空冷冻干燥制品;真空度为0.01mbar,干燥温度为-65℃,干燥时间12小时。按照上述方法统计活菌率。
从表2可以看出,添加了保护剂的海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell& Tallman的冷冻干燥样品为淡红色粉末,具有酵母的特殊气味,无异味,活菌率≥90%,显著地高于不添加保护剂的对照样品活菌率。
表2  保护剂对R.paludigenum真空冷冻干燥制品活菌率的影响
实施例3
本发明的保护剂对海洋酵母R.paludigenum真空冷冻干燥制品活菌率的影响
按2%的接种量将海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman接种于酵母培养基中,在28℃,200转/分钟培养36小时,通过离心收集海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman菌体,弃去上清液,用无菌水洗涤3次,用血球计数法计数,并用2.5%海藻糖和2.5%蔗糖混合的保护剂调整成1×1010cells/ml细胞悬浮液,将细胞悬浮液孵育1小时,再进行真空冷冻干燥,得到真空冷冻干燥制品;真空度为0.01mbar,干燥温度为-65℃,干燥时间24小时。按照上述方法统计活菌率。
从表3可以看出,添加了保护剂的海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell& Tallman的冷冻干燥样品为淡红色粉末,具有酵母的特殊气味,无异味,活菌率≥83%,显著地高于不添加保护剂的对照样品活菌率。
表3  保护剂对R.paludigenum真空冷冻干燥制品活菌率的影响
Figure GSA00000077101500042
实施例4
本发明的海洋酵母R.paludigenum真空冷冻干燥制品的货架寿命
按3%的接种量将海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman接种于酵母培养基中,在26℃,200转/分钟培养48小时,通过离心收集海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman菌体,弃去上清液,用无菌水洗涤3次,用血球计数法计数,并用2.5%海藻糖、2.5%脱脂乳和2.5%蔗糖混合的保护剂调整成5×1010cells/ml细胞悬浮液,将细胞悬浮液孵育2小时,再进行真空冷冻干燥,得到真空冷冻干燥制品;真空度为0.01mbar,干燥温度为-60℃,干燥时间24小时。将上述冷样品贮藏于4℃冰箱,每隔30天取样,测定样品的活菌率。活菌率测定方法同上。
从表4可以看出,添加了保护剂的海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell& Tallman的真空冷冻干燥制品在贮藏的前4月,活菌率没有显著下降。
表4  海洋酵母R.paludigenum真空冷冻干燥制品货架寿命
Figure GSA00000077101500051
实施例5
本发明的海洋酵母R.paludigenum真空冷冻干燥制品对水果采后青霉病的抑制效果
按4%的接种量将海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell & Tallman接种于酵母培养基中,在26℃,250转/分钟培养30小时,通过离心收集海洋酵母Rhodosporidiumpaludigenum Fell & Tallman菌体,弃去上清液,用无菌水洗涤2次,用血球计数法计数,分别用5%海藻糖、5%脱脂乳、5%蔗糖作为保护剂调整成1×1010cells/ml细胞悬浮液,将细胞悬浮液孵育1小时,再进行真空冷冻干燥,得到真空冷冻干燥制品;真空度为0.01mbar,干燥温度为-65℃,干燥时间24小时。按照上述方法统计活菌率。
根据样品的活菌率,用一定无菌水将将上述样品配制成浓度为1×108cells/ml的酵母细胞悬浮液。本实施例以梨和苹果为试验材料。果实来源于杭州郊区果园。
病原菌:扩展青霉(Penicillium expansum)
果实刺伤后接种样品细胞悬浮液和作为对照的无菌水。接种量30μl为。2小时后,接种15μl浓度为5×104个/mL的病原菌孢子悬浮液。果实处理后20℃下入库贮藏5天,观察果实的发病率。
海洋酵母R.paludigenum真空冷冻干燥制品对果实采后青霉病的防治效果如表5和6所示,该制品可有效降低果实青霉病的发病率。
表5  海洋酵母R.paludigenum真空冷冻干燥制品对梨青霉病的抑制效果
Figure GSA00000077101500061
表6  海洋酵母R.paludigenum真空冷冻干燥制品对苹果青霉病的抑制效果

Claims (4)

1.一种海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法,其特征在于按1%~5%的接种量将海洋酵母Rhodosporidiumpaludigenum Fell&Tallman接种于酵母培养基中,在20~30℃,100~300转/分钟培养20~50小时,通过离心收集海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman菌体,弃去上清液,用无菌水洗涤2~3次,用血球计数法计数,并用保护剂调整成1×109~1×1011cells/ml细胞悬浮液,将细胞悬浮液孵育0.5-3小时,再进行真空冷冻干燥,得到真空冷冻干燥制品;真空度为0.005~0.01mbar,干燥温度为-55~-65℃,干燥时间12~36小时。
2.根据权利要求1所述的一种海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法,其特征在于所述海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman在英国国际真菌研究所(InternationalMycological Institute)国际农业与生物中心基因资源保藏中心(CABI GeneticResource Collection)保藏,保藏号为IMI 394084。
3.根据权利要求1所述的一种海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法,其特征在于所述酵母培养基的组成为:牛肉膏5~10g/L、酵母粉3~6g/L、葡萄糖8~12g/L,氯化钠10~40g/L。
4.根据权利要求1所述的一种海洋酵母Rhodosporidium paludigenum Fell&Tallman的真空冷冻干燥制品的制备方法,其特征在于所述保护剂为:质量百分含量为1~5%的蔗糖、质量百分含量为1~5%的海藻糖、质量百分含量为1~5%的脱脂奶粉或质量百分含量为0.5~1%的氯化钠中一种或多种。
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SE01 Entry into force of request for substantive examination
C02 Deemed withdrawal of patent application after publication (patent law 2001)
WD01 Invention patent application deemed withdrawn after publication

Application publication date: 20100908