AT509307A1 - Verfahren zur herstellung von zuckern aus einem lignocellulosischen material - Google Patents

Verfahren zur herstellung von zuckern aus einem lignocellulosischen material Download PDF

Info

Publication number
AT509307A1
AT509307A1 AT0203009A AT20302009A AT509307A1 AT 509307 A1 AT509307 A1 AT 509307A1 AT 0203009 A AT0203009 A AT 0203009A AT 20302009 A AT20302009 A AT 20302009A AT 509307 A1 AT509307 A1 AT 509307A1
Authority
AT
Austria
Prior art keywords
alcohol
xylose
xylitol
sugars
treated
Prior art date
Application number
AT0203009A
Other languages
English (en)
Inventor
Ortwin Mag Ertl
Marta Dr Sut
Kurt Messner
Nicole Dipl Ing Staunig
Michael Dr Uhl
Martin Dr Karabec
Original Assignee
Annikki Gmbh
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Annikki Gmbh filed Critical Annikki Gmbh
Priority to AT0203009A priority Critical patent/AT509307A1/de
Priority to TW106131021A priority patent/TWI676687B/zh
Priority to TW099113303A priority patent/TW201114906A/zh
Priority to TW099113304A priority patent/TW201114907A/zh
Priority to EP10717481A priority patent/EP2462235A2/de
Priority to BR112012002707-7A priority patent/BR112012002707B1/pt
Priority to PCT/AT2010/000138 priority patent/WO2011014894A2/de
Priority to JP2012523163A priority patent/JP2013500727A/ja
Priority to KR1020187008755A priority patent/KR101898849B1/ko
Priority to CA2757039A priority patent/CA2757039A1/en
Priority to PE2011001871A priority patent/PE20121263A1/es
Priority to PCT/AT2010/000137 priority patent/WO2010124312A2/de
Priority to EP10717480A priority patent/EP2425004B1/de
Priority to CN2010800191615A priority patent/CN102639706A/zh
Priority to US13/318,140 priority patent/US20120094331A1/en
Priority to MX2012001450A priority patent/MX350376B/es
Priority to JP2012507542A priority patent/JP2012528568A/ja
Priority to RU2012108372A priority patent/RU2617938C2/ru
Priority to MX2011011089A priority patent/MX2011011089A/es
Priority to CN2010800348132A priority patent/CN102575268A/zh
Priority to EP16188442.4A priority patent/EP3121285A1/de
Priority to KR1020127005883A priority patent/KR20120055613A/ko
Priority to AU2010281334A priority patent/AU2010281334B2/en
Priority to AU2010242521A priority patent/AU2010242521A1/en
Priority to BRPI1015297-0A priority patent/BRPI1015297A2/pt
Priority to US13/388,725 priority patent/US9970038B2/en
Priority to EA201171324A priority patent/EA201171324A1/ru
Priority to PE2012000172A priority patent/PE20121424A1/es
Priority to KR1020117028732A priority patent/KR20120016119A/ko
Priority to CA2768159A priority patent/CA2768159C/en
Publication of AT509307A1 publication Critical patent/AT509307A1/de
Priority to ZA2011/07231A priority patent/ZA201107231B/en
Priority to ECSP11011426 priority patent/ECSP11011426A/es
Priority to GT201100270A priority patent/GT201100270A/es
Priority to CU20110201A priority patent/CU20110201A7/es
Priority to CO11146151A priority patent/CO6450603A2/es
Priority to CU20120023A priority patent/CU20120023A7/es
Priority to ZA2012/00989A priority patent/ZA201200989B/en
Priority to ECSP12011707 priority patent/ECSP12011707A/es
Priority to CO12038994A priority patent/CO6511213A2/es
Priority to JP2015254620A priority patent/JP6411994B2/ja
Priority to US15/951,027 priority patent/US20180230503A1/en

Links

Classifications

    • DTEXTILES; PAPER
    • D21PAPER-MAKING; PRODUCTION OF CELLULOSE
    • D21CPRODUCTION OF CELLULOSE BY REMOVING NON-CELLULOSE SUBSTANCES FROM CELLULOSE-CONTAINING MATERIALS; REGENERATION OF PULPING LIQUORS; APPARATUS THEREFOR
    • D21C1/00Pretreatment of the finely-divided materials before digesting
    • D21C1/06Pretreatment of the finely-divided materials before digesting with alkaline reacting compounds
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23KFODDER
    • A23K10/00Animal feeding-stuffs
    • A23K10/30Animal feeding-stuffs from material of plant origin, e.g. roots, seeds or hay; from material of fungal origin, e.g. mushrooms
    • A23K10/32Animal feeding-stuffs from material of plant origin, e.g. roots, seeds or hay; from material of fungal origin, e.g. mushrooms from hydrolysates of wood or straw
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/02Monosaccharides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/14Preparation of compounds containing saccharide radicals produced by the action of a carbohydrase (EC 3.2.x), e.g. by alpha-amylase, e.g. by cellulase, hemicellulase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/02Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group
    • C12P7/04Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic
    • C12P7/18Preparation of oxygen-containing organic compounds containing a hydroxy group acyclic polyhydric
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01004Cellulase (3.2.1.4), i.e. endo-1,4-beta-glucanase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/01Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01032Xylan endo-1,3-beta-xylosidase (3.2.1.32), i.e. endo-1-3-beta-xylanase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C13SUGAR INDUSTRY
    • C13KSACCHARIDES OBTAINED FROM NATURAL SOURCES OR BY HYDROLYSIS OF NATURALLY OCCURRING DISACCHARIDES, OLIGOSACCHARIDES OR POLYSACCHARIDES
    • C13K1/00Glucose; Glucose-containing syrups
    • C13K1/02Glucose; Glucose-containing syrups obtained by saccharification of cellulosic materials
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C13SUGAR INDUSTRY
    • C13KSACCHARIDES OBTAINED FROM NATURAL SOURCES OR BY HYDROLYSIS OF NATURALLY OCCURRING DISACCHARIDES, OLIGOSACCHARIDES OR POLYSACCHARIDES
    • C13K13/00Sugars not otherwise provided for in this class
    • C13K13/002Xylose
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P2201/00Pretreatment of cellulosic or lignocellulosic material for subsequent enzymatic treatment or hydrolysis
    • DTEXTILES; PAPER
    • D21PAPER-MAKING; PRODUCTION OF CELLULOSE
    • D21CPRODUCTION OF CELLULOSE BY REMOVING NON-CELLULOSE SUBSTANCES FROM CELLULOSE-CONTAINING MATERIALS; REGENERATION OF PULPING LIQUORS; APPARATUS THEREFOR
    • D21C11/00Regeneration of pulp liquors or effluent waste waters
    • D21C11/0007Recovery of by-products, i.e. compounds other than those necessary for pulping, for multiple uses or not otherwise provided for
    • DTEXTILES; PAPER
    • D21PAPER-MAKING; PRODUCTION OF CELLULOSE
    • D21CPRODUCTION OF CELLULOSE BY REMOVING NON-CELLULOSE SUBSTANCES FROM CELLULOSE-CONTAINING MATERIALS; REGENERATION OF PULPING LIQUORS; APPARATUS THEREFOR
    • D21C3/00Pulping cellulose-containing materials
    • D21C3/20Pulping cellulose-containing materials with organic solvents or in solvent environment
    • DTEXTILES; PAPER
    • D21PAPER-MAKING; PRODUCTION OF CELLULOSE
    • D21CPRODUCTION OF CELLULOSE BY REMOVING NON-CELLULOSE SUBSTANCES FROM CELLULOSE-CONTAINING MATERIALS; REGENERATION OF PULPING LIQUORS; APPARATUS THEREFOR
    • D21C5/00Other processes for obtaining cellulose, e.g. cooking cotton linters ; Processes characterised by the choice of cellulose-containing starting materials
    • D21C5/005Treatment of cellulose-containing material with microorganisms or enzymes
    • DTEXTILES; PAPER
    • D21PAPER-MAKING; PRODUCTION OF CELLULOSE
    • D21CPRODUCTION OF CELLULOSE BY REMOVING NON-CELLULOSE SUBSTANCES FROM CELLULOSE-CONTAINING MATERIALS; REGENERATION OF PULPING LIQUORS; APPARATUS THEREFOR
    • D21C9/00After-treatment of cellulose pulp, e.g. of wood pulp, or cotton linters ; Treatment of dilute or dewatered pulp or process improvement taking place after obtaining the raw cellulosic material and not provided for elsewhere
    • D21C9/10Bleaching ; Apparatus therefor
    • D21C9/16Bleaching ; Apparatus therefor with per compounds
    • D21C9/163Bleaching ; Apparatus therefor with per compounds with peroxides

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Emergency Medicine (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Animal Husbandry (AREA)
  • Physiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Die vorliegende Erfindung stellt ein Verfahren zur Herstellung von Zuckern zur Verfügung, das dadurch gekennzeichnet ist, dass entwederIa. lignocellulosisches Material mit einer wässerigen Lösung, welche einen Alkohol, insbesondere einen C1-4- Alkohol, oder ein Phenol enthält und einen pH-Wert zwischen 11,0 und 14,0 aufweist, unter 100°C behandelt wird, oder Ib. lignocellulosisches Material mit einer wässerigen Lösung, welche Wasserstoffperoxid, einen Alko- hol, insbesondere einen C1-4-Alkohol, oder ein Phenol, und eine Base enthält bei einer Tempe- ratur von unter 100°C behandelt wird, um Lignocellulose zu spalten und Spaltprodukte aus dem Material abzutrennen, wobei ein mit Cellulose und Hemicellulose angereichertes Material erhalten wird, undII. das aus Ia. oder Ib. erhaltene, mit Cellulose und Hemicellulose angereicherte Material mit mindes- tens einem Kohlenhydrat spaltenden Enzym behandelt wird, um die Zucker zu gewinnen

Description

A13498
Verfahren zur Herstellung von Zuckern aus einem lignocellulosischen Material
Die vorliegende Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung von Zuckern, insbesondere Pentosen und Hexoscn, aus einem lignocellulosischen Material. Die Erfindung betrifft ferner ein Verfahren zur Gewinnung von Alkohol aus den Zuckern. Für die Zwecke der vorliegenden Beschreibung und Patentansprüche soll der BejjjäfF^fucker“ auch „Zucker-Oligomere“ umfassen.
Im Zusammenhang mit der Verknappung von Rohöl und der Diskussion um Getreide als Energielieferant gewinnt der nachwachsende Rohstoff Lignocellulose (Stroh, Holz, Papierabialle etc.) als Ausgangsmaterial für Treibstoffe oder chemische Produkte sehr an Bedeutung. Die Konversion der Lignocellulose kann nach zwei grundlegend verschiedenen Wegen erfolgen: 1) der „Thermochemical Plalform“, bei der die Lignocellulose zuerst vergast und die Synthesegase zu gewünschten Produkten synthetisiert werden, und 2) die „Sugar Platform“, bei der das Hauptinteresse in der Nutzung der in den Polymeren Cellulose und Hemicellulosen gebundenen Zucker besteht, während Lignin noch vorwiegend energetisch genutzt wird. Die vorliegende Erfindung ist dem zweiten Weg zuzuordnen.
Im Gegensatz zur Stärke liegen die Zucker der Lignocellulose in eng vernetzten, polymeren, kristallinen Strukturen, der Cellulose und Hemicellulosen vor, die zusätzlich von einem Ligninmantel umhüllt sind, wodurch sich ein äußerst dichter Komplex ergibt. Der naheliegendste Weg, um aus Lignocellulose Zucker zu gewinnen, wäre der direkte Einsatz von Ccllulasen und Hemicellulasen. Dies wird jedoch am Rohstoff Stroh oder Holz durch die Dichte des oben erwähnten Komplexes erschwert. Durch ihr hohes Molekulargewicht sind Enzyme nicht imstande durch die engen Poren in die Lignocellulose einzudringen. Dies bedeutet, dass ein erster Schritt gesetzt werden muss, der die Porosität der Lignocellulose erhöht und dadurch die weitere enzymatische Verzuckerung ermöglicht.
Dieser erste Schritt wird als „Pretreatment“ (Vorbehandlung, Aufschluss) bezeichnet. Er ist durchwegs sehr aufwändig, sodass z.B. bei der Herstellung von „second generation biofuels“ bis zu 1 /3 der Produktionskosten dafür aufgewendet werden müssen, was die Rentabilität negativ beeinflusst. Die angewandten Verfahren zielen entweder darauf ab, primär die
Hemicellulosen zu verflüssigen (z.B. steam explosion-, dilute acid-pretreatment) oder die Erhöhung der Porosität durch Verflüssigung von Lignin (z.B. lime-, ammonia-pretreatment) zu erreichen.
Das aufgeschlossene Lignoccllulose-Substrat kann zur Gewinnung von Zuckern bzw. ihrer Oligomere enzymatisch weiterbehandelt werden, wobei die Art der Vorbehandlung starken Einfluss auf die Enzymaktivität und die Ausbeute haben kann. Bei hohen Reaktionstemperaturen entstehen vielfach toxische Abbauprodukte (z.B. Furfural), welche im Falle einer unmittelbar angeschlossenen Ethanol-Gärung, die Hefen hemmen können (Chandra et al., 2007; Mansfield et al., 1999).
Alle diese Verfahren haben einen gravierenden Nachteil, dass sie sind entweder energieaufwändig sind und vorwiegend bei Temperaturen knapp unter 200°C ablaufen, oder dass sie eine aufwändige Rückgewinnung der Aufschlusschemikalien erfordern.
Eine technologische Verbesserung in diesem Bereich, z.B. durch die Entwicklung von nahezu neutralen Niedertemperaturverfahren (d.h. bei einer Temperatur von unter 100°C), würde einen entscheidenden Fortschritt bei jeglicher stofflicher Nutzung des Rohstoffes Lignocellulose bedeuten. Dies ist die Aufgabe der vorliegenden Erfindung.
Aus der EP 1 025 305 Bl ist ein chemisches Verfahren zur Lignin-Depolymerisation bekannt. Es beruht auf der katalytischen Wirkung von komplexiertem Kupfer in Verbindung mit Wasserstoffperoxid oder organischen Hydroperoxiden und ist im Stande, Lignin bei Temperaturen unter 100°C oxidativ zu spalten. Die dabei eingesetzten Komplexbildner sind Pyridin-Derivate. An synthetischen Ligninmodellen konnte nachgewiesen werden, dass bei Verwendung von H2O2 als Oxidationsmittel eine Spaltung in der Propylseitenkette des Ligninmoleküls erfolgt, wodurch das Ligninpolymer zu oligomeren Untereinheiten zerfällt. Bei Einsatz des Cu-Systcms mit einem Überschuss an organischen Hydroperoxiden ist es möglich, Holz zu delignifizieren. Das auf H2O2 basierte System erscheint technisch besser umsetzbar zu sein und wurde als Bleichzusatz bei der Peroxidbleiche von Kraft-Zellstoff getestet und führte zu einer verbesserten Delignifizierungsrate und höherem Weißegrad.
Ferner ist aus Chupka et al. (1993) bekannt, dass die Effizienz einer alkalischen Katalyse der Oxidation von Holz und Lignin beträchtlich zunimmt, wenn dem wässerigen Rcaktionsmedium ein organisches Lösungsmittel, z.B. DMSO, Aceton, Ethanol, zugegeben wird. Ferner geben die Autoren an, dass bei pH-Werten über 11 ein scharfer Anstieg der Oxidation des Holzes und des Lignins stattfindet.
Aus der WO 01/059204 ist ein Verfahren zur Herstellung von Zellstoff bekannt, bei dem das Ausgangsmaterial einer Vorbehandlung unterzogen wird, wobei das Material mit einer Pufferlösung und einem Delignifizierungskatalysator (Übergangsmetall) behandelt wird. Die Delignifizierung wird in Gegenwart von Sauerstoff, Wasserstoffperoxid oder Ozon durchgeführt.
Demgegenüber ist das erfindungsgemäße Verfahren zur Herstellung von Zuckern dadurch gekennzeichnet dass entweder la. lignocellulosisches Material mit einer wässerigen Lösung, welche einen Alkohol, insbesondere einen C1-4-Alkohol, oder ein Phenol enthält und einen pH-Wert zwischen 11,0 und 13,0 aufweist, unter 100°C behandelt wird, oder lb. lignocellulosisches Material mit einer wässerigen Lösung, welche Wasserstoffperoxid, einen Alkohol, insbesondere einen CM-Alkohol, oder ein Phenol, und eine Base enthält bei einer Temperatur von unter 100°C behandelt wird, um Lignocellulose zu spalten und Spaltprodukte aus dem Material abzutrennen, wobei ein mit Cellulose und Hemicellulose angereichertes Material erhalten wird, insbesonders, wobei das in Ia. und Ib. erhaltene, gelöste Material vom Feststoff abgetrennt, z. B. abfiltriert wird, und II. das aus Ia. und Ib. erhaltene, mit Cellulose und Hemicellulose angereicherte Material mit mindestens einem Kohlenhydrat-spaltenden Enzym behandelt wird, um die Zucker zu gewinnen.
Das lignocellulosisache Material wird entweder gemäß Ia oder gemäß Ib. behandelt. 4
Als Alkohol eignen sich ein- oder mehrwertige Ci.6-Alkohole, insbesondere ein Cm-Alkohol, Glycole (Ethandiole, Propan-, Butan-, Pentan-, Hexandiole), Glycerin, Propenol, Butenol, Cyclopentanol, Cyclohexanol, Benzylalkohol, und Phenole, Cresole, Catechole, Naphthole, aber auch Aminoalkohole, wie Ethanolamin, Methanolamin und Hexanolamin. Der pH Wert in Ia. wird mit einer Base, bevorzugt einer anorganischen Base, beispielweise Natronlauge eingestellt.
Wasserstoffperoxid liegt in einer wässrigen Alkohollösung in Ib. bevorzugt in einem Ausmaß von 0.1 bis 5%, bevorzugt in einem Ausmaß von 0.3 bis 1% vor.
Alkohol liegt in einer wässrigen Lösung gemäß Ia. oder Ib. bevorzugt in einem Ausmaß von 30% bis 70%, z.B. 40% bis 60% vor.
Die wässrige Lösung von Ia. oder Ib. liegt mit einer Konzentration des lignocellulosischen Materialsd in einem Bereich von 3-40 %, insbesondere 5-20% vor.
Die vorliegende Erfindung beruht einerseits auf der Erkenntnis, dass ein mit einer wässerigen, basischen Wasserstofiperoxidlösung, welche einen der oben erwähnten Alkohole, insbesondere einen CM-Alkohol, enthält, behandeltes lignocellulosisches Material enzymatisch in höherer Ausbeute zu Zuckern verarbeitet werden kann, als ein auf eine sonstige Art delignifiziertes Material, insbesondere ohne den Zusatz von Alkohol, andererseits auf der Erkenntnis, dass ein mit einer wässerigen, basischen Lösung, welche einen der oben genannten Alkohole, insbesondere einen CM-Alkohol enthält und einen pH-Wert von 11 bis 14 aufweist, behandeltes lignocellulosisches Material enzymatisch in höherer Ausbeute zu Zuckern verarbeitet werden kann, als ein auf eine sonstige Art delignifiziertes Material, insbesondere ohne den Zusatz von Alkohol.
Als Zucker werden hauptsächlich Pentosen und Hexosen gebildet. Bevorzugte Zucker schließen Xylose und Xylitol ein.
Eine bevorzugte Ausfiihrungsform des erfindungsgcmäßen Verfahrens ist dadurch gekennzeichnet, dass das mit Cellulose und Hemicellulose angereicherte Material mit einer Xylanase und einer Cellulase behandelt wird, um die Zucker zu gewinnen.
Als lignocellulosisches Material wird vorzugsweise Stroh oder Bagasse eingesetzt. Stroh hat eine stark hydrophobe Oberfläche, sodaß die Benetzung mit wässerigen Lösungen ein Problem darstellt. Beim bekannten Steamexplosion-Verfahren wird die Reaktionslösung beispielsweise durch den Druck eingebracht. Es hat sich gezeigt, dass es durch die Verwendung von Alkohol möglich ist, selbst ohne Druck die Reaktionslösung in die Poren des Substrates einzubringen und die vorhandene Luft durch Reaktionslösung zu ersetzen. Sollten mit dem Stroh Metallionen eingebracht werden, welche das Wasserstoffperoxid teilweise zerstören, so sollte ein Komplexbildner für die Metallionen zugegeben werden.
Ferner hat sich gezeigt, dass Alkohol die Extraktion der Spaltprodukte aus Stroh beschleunigt und dazu beiträgt, die Ligninspaltprodukte in Lösung zu halten.
Als Alkohol eignet sich insbesondere Ethanol, Propanol und Butanol, inklusive deren Isomeren.
Es hat sich weiters gezeigt, dass durch die Verwendung von Alkohol beim alkalischen Aufschluss unter 100°C der Abbau der Hemicellulosen weitgehend verhindert wird, sodass annähernd die gesamte Hemicellulose zur weiteren enzymatischen Spaltung und Umwandlung der Xylose zu höherwertigen Produkten zur Verfügung steht und nicht wie bei anderen Verfahren teilweise beim Aufschluss mit abgebaut wird und als Lignin / Zucker-Mischung anfällt
Durch die im Aufschluss durchgcfuhrte Delignifizierung wird die Porosität der Zellwände des lignocellulosischcn Materials erhöht, beispielsweise im Falle von Stroh so weit erhöht, dass die gesamte Xylose für die Xylanase, zugänglich wird und annähernd 100% des Xylans hydrolysiert und Xylose gewonnen werden kann. Dies macht das Verfahren gemäß dem Verfahrensschritt Ia. der vorliegenden Erfindung besonders geeignet um in Verbindung mit einer enzymatischen Konversionen der Xylose höherwertige Produkte herzustellen. Die enzymatische Konversion kann dabei entweder direkt im Gemisch aus Xyloselösung und Feststoff erfolgen oder aber mit der vom Feststoff abgetrennten Xyloselösung.
Bei einer weiteren, nach der enzymatischen Hydrolyse des Xylans und der erfindungsgemäßen Umwandlung der Xylose zu Xylitol folgenden Alkoholproduktion aus dem verbleibendem Feststoff, sind die Enzymkosten ein entscheidender Koslenfaktor. Diese resultieren zum Teil auch aus imspezifischen Bindungen von Enzymen an das Lignin. Die teilweise Entfernung des Lignins reduziert diesen Aktivitätsverlust und wirkt sich kostengünstig aus.
Die Vorteile für ein nachfolgendes enzymatisches Verfahren sind beispielsweise, dass aus der hohen Selektivität des Ligninabbaus bei fast vollständiger Erhaltung der Zuckerpolymere eine sehr geringe Konzentration an Hemicellulose Spaltprodukten in der Extraktionslösung resultiert, die Hemicellulose bleibt im Feststoffanteil und dadurch für die enzymatische Hydrolyse und Zuckergewinnung sowie deren weiterer Umwandlung erhalten.
Daraus ergibt sich erfindungsgemäß eine maximale Stoffnutzungsrate und, beispielsweise in Verbindung mit dem Einsatz von Xylosedehydrogenasen hohe Rentabilität des beschriebenen Prozesses.
Die alkoholische Lösung des Lignin-Extraktes bietet vorteilhafte Optionen sowohl in der weiteren Aufarbeitung der der Lignin-, z. B. Xylan-Spaltprodukte.
Die Durchführung eines Xylose-Umwandlungsprozesses zu Xylitol kann direkt im FeststoffTFlüssigkeitsgemisch, das gemäß dem vorliegenden erfindungsgemäßen Verfahren erhalten wird, durchgelührt werden, was weiterhin die Rentabilität des Gesamtprozesses erhöht.
Im Falle der Umwandlung zu Xylitol kann der Alkohol direkt als Substrat für die Alkoholdehydrogenase zur Regenerierung vonNAD zu NADH genutzt werden. Wenn der Prozess so ausgelegt wird, dass dazu der im Reaktionsgemisch verbleibende Restalkohol aus dem Aufschluss verbraucht wird, wird eine Alkoholcntfemung aus der Produktlösung (teilweise) überflüssig und die Effizienz des Gesamtprozesses dadurch weiters gesteigert.
Im Falle der Umwandlung der Ligninspaltprodukte wirkt der Alkohol als Scavenger und Lösungsmittel für Spaltprodukte aus einer enzymatischen, biomimetischen oder chemischen Depolymerisation der höhermolekularen Lignin-Spaltprodukte zu niedermolekularen.
Der geringe Anteil von Hemicelluose-Spaltprodukten im Extrakt und die erhöhte Löslichkeit des Lignins, erhöhen die Durchsatzraten bei einer Abtrennung des Feststoffes von den Umwandlungsprodukten sowie deren Aufarbeitung durch Filtration.
Das erfindungsgemäße Verfahren erlaubt die Auftrennung der drei Hauptkomponenten des Strohs, nämlich der Glucose, der Xylose sowie des Lignins, in sehr störstoffarmen Stoffströmen und deren weitere Umwandlung zu höherwertigen Produkten wie Xylitol und erfüllt somit die Forderungen eines idealen Bioraffinerie-Verfahrens.
Ein weiterer Vorteil des erfindungsgemäßen Verfahrens im Vergleich zu anderen Aufschlussverfahren, die vorwiegend im Temperaturbereich zwischen 150°C und 200°C ablaufen, ist seine Reaktionstemperatur unter I00°C. Der niedrige Energieaufwand erlaubt es, das beim Aufschluss gewonnene Lignin nicht als Energiequelle für das Aufschlussverfahren, sondern als Wertstoff zu nutzen.
Im erfindungsgemäßen Verfahren wird das lignocellulosische Material vorzugsweise in der wässerigen Lösung in einer Stoffdichte von 5-40 Gew.-% eingesetzt.
Nach Schritt Ia. und Ib. wird die Lignin enthaltende Lösung abgetrennt und der aufgeschlossene Feststoff im Schritt II. bevorzugt mit einer Xylanase, z.B. 12-72 Stunden, bei 30-90°C behandelt und die Flüssigphase vom Feststoff abgetrennt, worauf die Flüssigphase bevorzugt zu Xylitol weiterumgesetzt wird.
Der nach Abtrennung der Flüssigphase verbleibende Feststoff wird bevorzugt mit Cellulase behandelt, wobei durch weitere Fermentation der Feststoff ( Glucoselösung Ethanol, Butanol oder andere Fermenlationsprodukte erhalten werden können; oder der verbleibende Feststoff 8 wird einer thermischen oder thermochemishcen Stoffumwandlung unterzogen und die entstandenen Produkte, wie Treibstoflkomponenten, Treibstoffzusätze und/oder andere kommerzielle Produkte, wie z. B. Phenole, werden abgetrennt; oder der verbleibende Feststoff wird einer mikrobiellen Stofiumwandlung durch Bakterien, Hefen oder Pilze unterzogen wird; oder der verbleibende Feststoff wird einem weiteren Delignifizierungsschritt zum Zwecke der Gewinnung eines Cellulose-Fasermaterials unterzogen.
Der verbleibende Feststoffe kann in einer Biogasanlage fermentiert und zu Biogas weiterverarbeitet werden.
Eines der wirtschaftlich interessantesten Folgeprodukte der Xylose ist Xylitol.
Die Hauptquellen für die Xylose-Gewinnung sind Kochlaugen aus der Zellstoffindustrie, die eine Fülle von Abbauprodukten, hauptsächlich des Lignins und der Hemicellulose enthalten, sodass Xylose erst durch aufwändige Trennungs- und Reingungsschritte gewonnen werden muß. So beschreibt z. B. H. Harms in „Willkommen in der natürlichen Welt von Lenzing, weltweit führend in der Cellulosefaser Technologie, Herbsttagung der österreichischen Papierindustrie, Frantschach (15. 11. 2007) die Gewinnung von Xylose aus der Dicklauge durch Gelfiltration, eine technisch sehr komplexe Methode, die üblicherwiese nicht für Bulkprodukte Anwendung findet. Die solcherart gewonnene Xylose wird dann katalytisch zu Xylitol umgewandelt.
In einem weiteren Aspekt wird die gemäß vorliegender Erfindung gewonnene Xylose fermentationsfrei in Xylitol umgewandelt, durch Umsetzung mit einer Xylosereduktase, beispielsweise aus Candida tenuis, wobei gegebenenfalls eine Xylosereduktase und gegebenenfalls ein Co-Substrat zur Regenerierung des Co-Faktors und gegebenenfalls Alkoholdehydrogenase und gegebenenfalls NAD(P)H zur Xylose Lösung zugesetzt wird; insbesondere, wobei das erhaltene Xylitol durch Filtration von den Ligninspaltprodukten erhalten wird. 9
Mit dem nachstehenden Beispiel 1 und Vergleichsbeispiel 1A wird der Einfluß der Vorbehandlung in Gegenwart von Alkohol auf die Ausbeute an reduzierenden Zuckern nach enzymatischer Hydrolyse dokumentiert.
Beispiel 1
Vorbehandlung von Weizenstroh gemäß Ib.
Weizenstroh wird auf eine Partikelgröße von ca. 2 cm zerkleinert. 2,5 g zerkleinertes Weizenstroh wird in einem 500 mL Reaktionsgefäß in 200 mL einer Lösung, bestehend aus 49,5% Wasser, 50% Ethanol und 0,5% Wasserstoffperoxid suspendiert. Die Suspension wird auf 50 °C im Wasserbad erhitzt, thermostatisiert und der pH-Wert der Suspension mit wässriger NaOH-Lösung auf einen Ausgangs-pH Wert von 11 eingestellt. Die Mischung wird bei 200 rpm, 60°C, 24h kontinuierlich gerührt. Danach wird der Feststoffanteil abfiltriert und mit 1L destilliertem Wasser gewaschen.
Zur enzymatischen Hydrolyse wurden von jedem Parallelversuch 100 mg vorbehandelles Substrat mit 9,8 mL 50mM Na-Acetat Puffer auf pH 4,8 gestellt und mit 200 pL Accellerase 1000 Suspension (www.genencor.com) versetzt. Accellerase ist eine Enzymmischung aus Cellulasen und Hemicellulasen. Die enzymatische Hydrolyse wurde bei 50°C in einem Schüttelwasserbad durchgeführt. Die nach 48 h freigesetzten löslichen Monomere aus Hexosen und Pentosen wurden in Form reduzierender Zucker nach der DNS Methode in ImL flüssigem Überstand bestimmt, auf die Menge eingewogenen vorbehandelten Substrates bezogen und in Prozent der maximalen theoretischen Ausbeute ausgedrückt.
Die theoretische maximale Ausbeute reduzierender Zucker w'urde gesondert bestimmt und beträgt 705 mg +/- 5% pro g unbehandeltes Stroh.
Pro Versuchsansatz wurden jeweils 5 Parallelversuche durchgefiihrt. Die Ausbeute an reduzierenden Zuckern betrug 99% +/- 4%.
10
Vergleichs beispiel 1A
Das Beispiel 1 wurde wiederholt, jedoch ohne Alkoholzusatz. Die Ausbeute an reduzierenden Zuckern betrug lediglich 64% +/- 3%.
Beispiel 2
Vorbehandlung von Weizenstroh gemäß la.
Weizenstroh wird auf eine Partikelgröße von ca. 2 cm zerkleinert. 2,5 g zerkleinertes Weizenstroh wird in einem 500 mL Reaktionsgefaß in 200 mL einer Lösung, bestehend aus 49,5% Wasser und 50% Isopropanol suspendiert. Die Suspension wird auf 50 °C im Wasserbad erhitzt, thermostatisiert und der pH-Wert der Suspension mit wässriger NaOH-Lösung auf einen Ausgangs-pH Wert von 13 eingestellt. Die Mischung wird bei 200 rpm, 60°C, 24h kontinuierlich gerührt. Danach wird der Feststoffanteil abfiltriert und mit 1L destilliertem Wasser gewaschen.
Zur enzymatischen Hydrolyse wurden von jedem Parallelversuch 100 mg vorbehandeltes Substrat mit 9,8 mL 50mM Na-Acetat Puffer auf pH 4,8 gestellt und mit 200 pL Accellerase 1000 Suspension (www.genencor.com) versetzt. Accellerase ist eine Enzymmischung aus Cellulasen und Hemicellulasen. Die enzymatische Hydrolyse wurde bei 50°C in einem Schüttelwasserbad durchgeflihrt. Die nach 48 h freigesetzten löslichen Monomere aus Hexosen und Pentosen wurden in Form reduzierender Zucker nach der DNS Methode in ImL flüssigem Überstand bestimmt, auf die Menge eingewogenen vorbehandelten Substrates bezogen und in Prozent der maximalen theoretischen Ausbeute ausgedrückt.
Die theoretische maximale Ausbeute reduzierender Zucker wurde gesondert bestimmt und beträgt 705 mg +/- 5% pro g unbehandeltes Stroh.
Beispiel 3 11
Enzymatische Xylitol Produktion aus einer Xylosclösung, die aus Stroh nach dem im Beispiel 2 beschriebenen Verfahren hergestcllt wurde. Als Kosubstrat wird Isopropanol verwendet.
Die Reaklionslösung enthält 5 mg/mL Xylose.
Xylosereduktase (XR) aus Candida tenuis reduziert Xylose zu Xylitol. XR benötigen als Koenzym NADH (Nicotinamidadenindinukleotid reduziert), das bei der Reaktion zum Koenzym NAD^ oxidiert wird. Die Regenerierung des oxidierten Kofaktors erfolgt durch parallele Aktivität einer Alkohol-Dehydrogenase(ADH: Enzym-gekoppelte Regenerierung). Als Kosubstrat wird Isopropanol eingesetzt. Isopropanol und NAD+ werden durch die ADH zu NADH und Aceton umgesetzt, wie im Reaktionsschema 1 gezeigt: REAKTIONSSCHEMA 1
CHO
OH
CH2OH
OH
HO
OH
XR
HO
OH
CH2OH
CH2OH NADH + H+ NAD+ Xylit
Aceton Isopropanol
Xylose
In der Tabelle 1 sind die Reaktionsverhältnisse in den 5 verschiedenen Versuchsreaktionen #049, #050, #051, #052, #053 und #054 dargestellt: 12
Tabelle 1
Reaktions Nummer #049 #050 #052 #053 #054 Substrat batch I [μΐ] 250 250 250 500 500 XR C.tenuis 2 U/mL [pL] 50 50 50 20 mM NADH [pL] 50 50 50 ADH L.kefir 5U/ml [pL] 50 50 Isopropanol [pL] 50 50 50 mM Na-Phosphate Puffer, pH 7.0 [pL] 750 650 550 500 300
Gesamtvolumen: 1 mL Temperatur: 26 ± 2°C Magnetrührer: 200 rpm Zeit 15 Stunden
Zur Deaktivierung der Enzyme wurden alle Proben auf 95eC für 15 min aufgeheizt und als Vorbereitung für die anschließende HPLC-Analyse zentrifugiert.
Analyse - HPLC:
Säule SUGAR SP0810 + Vorsäule SUGAR SP-G
Detektor: Refraktionsindex-Detektor
Eluent: entionisiertes H20
Fluss: 0.75 ml/min
Probenmenge: 10 pL HPLC Quantifizierung Präzision: ± 10%
Retentionszeit:
Xylose: 13,97 min Xylitol: 37,73 min Isopropanol: 16,69 min Aceton: 16,54 min ·· · ta »fr ·· aall i · f * · a i · · * i* · * · » *« * ► * · »«fr··» f · * · fr»«·* »« *·«»·«+ fr* t· fr 13
Ergebnisse:
Die Substratkonzentration von Probe #049 wurde mittels HPLC bestimmt und lag bei 0.9 mg/tnL.
Die Reaktionmischung #050 beinhaltet nur Xylosereduktase (0.1 U/mL) und NADH (ImM). Nach der 15 Stunden langen Reaktion waren 0.085 mg Xylose verbraucht. Die Xylitol Konzentration war unter dem Detektionslimit.
Die Reaktion #052 ist vergleichbar mit der Reaktion #050, jedoch mit dem Unterschied, dass hier das Regenerationsystem angewendet wird. Es kommt zum Totalumsatz der eingesetzten Xylose. Verwendete Konzentrationen: XR (0.1 U/mL), NADH (1 mM), ADH (0.25 U/mL) und Isopropanol (5%).
Die Xylosekonzentration der Probe #053 wurde mit 2.121 mg/mL bestimmt, was der erwarteten Xylosekonzentration entspricht..
Die Reaktion #054 ist vergleichbar mit Reaktion #052, beinhaltet jedoch eine um den Faktor 2 erhöhte Xylose-Startkonzentration (50 % Substrate in der Reaktion). Die Konzentration des erzeugten Xylitols wurde mit 0.945 mg Xylitol gemessen. Verwendete Konzentrationen: XR (0.1 U/mL), NADH (1 mM), ADH (0.25 U/mL) und Isopropanol (5%).
In der Tabelle 2 sind die Ergebnisse der Reaktionen basierend auf den HPLC-Messdaten zusammengefasst (Xylose verbraucht und Xylitol gewonnen; u.D.L. bedeutet „unter dem DetektionslimiU).
Tabelle 2
Reaktionsnummer 049 050 052 053 054 Xylose vor der Reaktion [mg/mL] 0,9 0,815 0,8 2,121 1,945 Xylose nach der Reaktion [mg/mL] - 0,815 u.D.L. - 1,013 Xylose verbraucht in der Reaktion [mg/mL] - u.D.L. - 0,932
««* ··* ·* • · · · · · φ * 14
Rcaktionsnummer 049 050 052 053 054 Gewinnung von Xylitol [mg/mL] - u.D.L. 0,994 - 0,945 Xylitol-Ausbeutc relativ zur Xylosekonzentration [%] - u.D.L. 100 - 47,9
Beispiel 3 b
Enzymatische Xylitol Produktion aus einer Xyloselösung, die aus Stroh nach dem im Beispiel 2 beschriebenen Verfahren hergestellt wurde. Als Kosubstrat wird Ethanol verwendet.
Das Volumen der Substratlösung wurde (vgl. Beispiel 2) mittels eines Rotovapors auf 50% vermindert, um die Xylosekonzentration zu erhöhen (~ 10 mg/mL Xylose).
Die Regenerierung des oxidierten Kofaktors erfolgte durch die Aktivität der eingesetzten Xylose-Reduktase (XR) aus Candida lenius und die zusätzliche Aktivität einer eingesetzten Aldehyd-Dehydrogenase aus Saccharomyces cerevisiae (Sigma-Aldrich: Katalognummer A6338; (EC) Number: 1.2.1.5;. CAS Number: 9028-88-0). Dabei handelt es sich sowohl um eine Substrat-gekoppelte, als auch um eine Enzym-gekoppelte Reaktion. Als Kosubstrat wird Ethanol eingesetzt. Ethanol und NAD' werden im ersten Schritt durch die Aktivität der XR zu NADH und Acetaldehyd umgesetzt. Im zweiten Schritt werden Acetaldehyd und NAD+ durch die Aktivität der Aldehyd-Dehydrogenase (AldDH) zu Acetat umgesetzt (vgl. dazu Sigma-Aldrich: Katalognummer A6338; bzw. „Wang et al, Molecular Cloning, Characterization, and Potential Roles of Cytosolic and Mitochondrial Aldehyde Dehydrogenases in Ethanol Metabolism in Saccharomyces cerevisiae, 1998, Journal of Bacteriology, p. 822 - 830”). Pro Mol umgesetztes Kosubstrat würden in diesem Fall 2 Mol Reduktionsäquivalente (NADH) entstehen (vgl. Reaktionsschema 2). REAKTIOMSSCHEMA 2 • · » · ·· » » # * »«·«·· · • * * * + « 15
CHO —OH HO—
—OH CH2OH
Xylose
NADH + H+ NAD
ch2oh —OH ho— —OH ch2ohXylit
CH3CH2OH Ethanol CH3CHO Acetaldehyd
Essigsäureanion
In der Tabelle 3 sind die Reaktionsverhältnisse der 4 veschiedenen Versuchsreaktionen 247. 249, 250 und 253 dargestellt. Es wurden unterschiedliche Ethanolkonzentrationen und AldDH-Konzenlrationen verwendet. Die Kofaktor- und Subtratkonzentrationen wurden konstant gehalten.
Tabelle 3
Reaktionsnummer 247 249 250 253 Substrat batch III [μΕ] 300 (56 mM) 300 (56 mM) 300 (56 mM) 300 (56 mM) XR C. tenius 5U/mL [μι] 25 (0,25 U/mL) 25 (0,25 U/mL) 25 (0,25 U/mL) 25 (0,25 U/mL) 20 mMNADf fgL] 10 (0,4 mM) 10(0,4 mM) 10(0,4 mM) 10 (0,4 mM) AldDH S, cervisiae 5U/mL [gL] 25 (0,25U/mL 25 (0,25U/mL) 0 0 * *
• ♦ · *·* * · · · · *
16
Reaktionsnummer 247 249 250 253 Ethanol 50% [pL] 75(1286 mM) 70 (1200 mM) 75 (1286 mM) 70 (1200 mM) 50 mM TrisHCl Puffer 65 70 90 95 pH 7.0 [pL]
Gesamtvolumen: 0,5 ml
Temperatur: 25 ± 2°C Thermomixer: 500 rpm Zeit 112 Stunden
Zur Deaktivierung der Enzyme wurden alle Proben auf 70°C fiir 15 min aufgeheizt und als Vorbereitung für die anschließende HPLC-Analyse zentrifugiert und filtriert (PVDF; 0,2 pm)
Analyse - HPLC:
Säule SUGAR SP0810 + Vorsäule SUGAR SP-G
Säulentemperatur: 90°C
Detektor: Refraktionsindex-Detektor
Eluent: entionisiertes H2O
Fluss; 0.90 mL/min
Probenmenge: 10 pL HPLC Quantifizierung Präzision: ±10%
Retentionszeit:
Xylose: 11,5 min Xylitol: 28,8 min Ethanol: 13,5 min
Ergebnisse: 17
Die maximalen Ausbeute (Reaktion 249) konnte mit einer Ethanolkonzentration von 1,2 Mol/L erreicht werden. Dabei wurden insgesamt 1,38 mg/mL Xylitol erzeugt, was einer Ausbeute von 21,2% der Theorie an Xylitol entspricht. ln der Tabelle 4 sind die Ergebnisse der Reaktionen basierend auf den HPLC-Messdaten zusammengefasst.
Tabelle 4
Reaktionsnummer 247 249 250 253 Theoretische Gesamtkonzentration [mg/ml] 6,288 6,407 6,268 6,150 Xylose nach der Reaktion [mg/mL] 5,057 5,046 5,385 5,365 Xylose verbraucht in der Reaktion [mg/mL] 1,231 1,361 0,883 0,785 Gewinnung von Xylitol [mg/mL] 1,248 1,379 0,894 0.796 Xylitol-Ausbeute in Bezug auf die Gesamtxylosekonzentration [%] 65 70 90 95
Aus den Ergebnissen ist ersichtlich, dass Ethanol als Kosubstrat verwendet werden kann. Wie durch den Vergleich der Reaktion 249 (Reaktionsgemisch beinhaltet AldDH) und 253 (Reaktionsgemisch ohne AldDH) eindeutig gezeigt werden kann, fuhrt die Zugabe der Aldehyd-Dehydrogenase zu einer deutlichen Erhöhung der Ausbeute an Xylitol. Der Unterschied an umgesetzter Xylose zu Xylitol beträgt ~8%. Dieses Ergebnis in Verbindung mit den oben erwähnten Literaturzitaten lässt nur den Schluss zu, dass AldDH den in der ersten Teilreduktion entstehenden Acetaldehyd weiter zu Essigsäure oxidiert (vgl. Reaktionsschema 2). Diese energetisch günstige Reaktion und die damit einhergehende erhöhte Konzentration an NADH verschiebt das Gleichgewicht vom Edukt in Richtung des Produktes Xylitol in der ersten Teilreaktion.

Claims (11)

  1. • · · ♦ » # · # · 18 Ansprüche 1. Verfahren zur Herstellung von Zuckern dadurch gekennzeichnet dass entweder la. lignocellulosisches Material mit einer wässerigen Lösung, welche einen Alkohol, insbesondere einen C 1.4-Alkohol, oder ein Phenol enthält und einen pH-Wert zwischen 11,0 und 14,0 aufweist, unter 100°C behandelt wird, oder lb. lignocellulosisches Material mit einer wässerigen Lösung, welche Wasserstoffperoxid, einen Alkohol, insbesondere einen C 1.4-Alkohol, oderein Phenol, und eine Base enthält bei einer Temperatur von unter 100°C behandelt wird, um Lignocellulose zu spalten und Spaltprodukte aus dem Material abzutrennen, wobei ein mit Cellulose und Hemicellulose angereichertes Material erhalten wird, insbesonders, wobei das in Ia. und Ib. erhaltene, gelöste Material vom Feststoff abgetrennt wird, II, das aus Ia. oder Ib. erhaltene, mit Cellulose und Hemicellulose angereicherte Material mit mindestens einem Kohlenhydrat-spaltenden Enzym behandelt wird, um die Zucker zu gewinnen,
  2. 2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, dass das mit Cellulose und Hemicellulose angereicherte Material mit einer Xylanase und/oder einer Cellulase behandelt wird, um die Zucker zu gewinnen.
  3. 3. Verfahren nach einem der Ansprüpche 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, dass als lignocellulosisches Material Stroh oder Bagasse eingesetzt wird.
  4. 4. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 3, dadurch gekennzeichnet, dass das lignocellulosische Material in der wässerigen Lösung in einer Stoffdichte von 5-40 Gew.-% vorliegt.
  5. 5. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass die Lignocellulose bei einer Temperatur unter 80°C gespalten wird.
    * · · · · fr · fr · # • #1 4 · * · > t| »C * * · 9 * * · • * fr * · I fr fr 4 fr fr fr* * fr fr 19
  6. 6. Verfahren nach einem der Ansprüche 1 bis 4, dadurch gekennzeichnet, dass die Lignocellulose bei einer Temperatur unter 60°C gespalten wird.
  7. 7. Verfahren nach einem der vorherigen Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass aus einer im Schritt 2 erhaltenen Xylosc Xylitol unter Verwendung einer Xylosereduklase hergestellt wird, insbesondere wobei das erhaltene Xylitol durch Abtrennung von den Ligninspaltprodukten erhalten wird.
  8. 8. Verfahren nach Anspruch 7, dadurch gekennzeichnet, dass eine Xylosereduktase und gegebenenfalls ein Co-Substrat zur Regenerierung des Co-Faktors und gegebenenfalls Alkoholdehydrogenase und gegebenenfalls weiteres NAD(P)H zur Xylose Lösung zugesetzt wird.
  9. 9. Verfahren nach einem der Ansprüche Anspruch 1 bis 6, dadurch gekennzeichnet, dass der nach der Behandlung in Ia. oder Ib. aufgeschlossene Feststoff im Schritt II. mit einer Xylanase umgesetzt und die erhaltene Flüssigphase gegebenenfalls nach einem der Ansprüche 7 oder 8 zu Xylitol umgesetzt, und der verbleibende Feststoff - weiter mit Cellulase zum Erhalt verschiedemer Fermentationsprodukte umgesetzt wird; oder - einer thermischen oder thermochemischen Stoffumwandlung unterzogen wird; oder - einer mikrobiellen Stoflumwandlung durch Bakterien, Hefen oder Pilze unterzogen wird; oder - einem weiteren Delignifizicrungsschritt zum Zwecke der Gewinnung eines Cellulose-Fasermaterials unterzogen w ird.
  10. 10. Verfahren nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichent dass der nach Abtrennung der (Fermentations)Produkte verbleibende Feststoff in einer Biogasanlage fermentiert und zu Biogas weiterverarbeitet wird. 20
  11. 11. Verfahren nach einem der Ansprüche 8 oder 9, dadurch gekennzeichnet, dass als Kosubstrat Ethanol eingesetzt wird, welches über Acetaldehyd weiter zu Essigsäure oxidiert wird.
AT0203009A 2009-04-30 2009-12-23 Verfahren zur herstellung von zuckern aus einem lignocellulosischen material AT509307A1 (de)

Priority Applications (41)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AT0203009A AT509307A1 (de) 2009-12-23 2009-12-23 Verfahren zur herstellung von zuckern aus einem lignocellulosischen material
TW106131021A TWI676687B (zh) 2009-08-06 2010-04-27 用以由木質纖維素材料製造醣類裂解產物之方法
TW099113303A TW201114906A (en) 2009-04-30 2010-04-27 Process for the production of carbohydrate cleavage products from a lignocellulosic material
TW099113304A TW201114907A (en) 2009-08-06 2010-04-27 Process for the production of carbohydrate cleavage products from a lignocellulosic material
CN2010800348132A CN102575268A (zh) 2009-08-06 2010-04-30 由木质纤维素生物质制糖的方法,包括醇-碱脱木质化步骤
AU2010242521A AU2010242521A1 (en) 2009-04-30 2010-04-30 Method for producing sugars from lignocellulosic biomass, comprising the step of alcoholic-alkaline delignification in the presence of H2O2
PCT/AT2010/000138 WO2011014894A2 (de) 2009-08-06 2010-04-30 Verfahren zur herstellung von kohlenhydratspaltprodukten aus einem lignocellulosischen material
JP2012523163A JP2013500727A (ja) 2009-08-06 2010-04-30 リグノセルロース原料から炭水化物分解産物を製造するプロセス
KR1020187008755A KR101898849B1 (ko) 2009-08-06 2010-04-30 리그노셀룰로오스 물질로부터 카보하이드레이트 절단 생성물의 제조방법
CA2757039A CA2757039A1 (en) 2009-04-30 2010-04-30 Method for the preparation of carbohydrate cleavage products from a lignocellulosic material
PE2011001871A PE20121263A1 (es) 2009-04-30 2010-04-30 Metodo para producir azucares de biomasa lignocelulosica que comprende una etapa de deslignificado alcoholico-alcalino en la presencia h2o2
PCT/AT2010/000137 WO2010124312A2 (de) 2009-04-30 2010-04-30 Verfahren zur herstellung von kohlenhydratspaltprodukten aus einem lignocellulosischen material
EP10717480A EP2425004B1 (de) 2009-04-30 2010-04-30 Verfahren zur Herstellung von Zuckern aus lignocellulosehaltiger Biomasse, umfassend einen Schritt der alkoholisch-alkalinen Delignifikation in Anwesenheit von H2O2
CN2010800191615A CN102639706A (zh) 2009-04-30 2010-04-30 从含木质纤维素的生物质制备糖的方法,包括在h2o2存在下醇-碱脱木质化的步骤
US13/318,140 US20120094331A1 (en) 2009-04-30 2010-04-30 Method for the preparation of carbohydrate cleavage products from a lignocellulosic material
MX2012001450A MX350376B (es) 2009-08-06 2010-04-30 Metodo para producir azucares de biomasa lignocelulosica que comprende una etapa de deslignificado alcoholico-alcalino.
JP2012507542A JP2012528568A (ja) 2009-04-30 2010-04-30 リグノセルロース原料から炭水化物分解産物を製造する方法
RU2012108372A RU2617938C2 (ru) 2009-08-06 2010-04-30 Способ получения продуктов расщепления углеводов из лигноцеллюлозных материалов
MX2011011089A MX2011011089A (es) 2009-04-30 2010-04-30 Metodo para producir azucares de biomasas lignocelulosica que comprende una etapa de deslignificado alcoholico-alcalino en la presencia de h2o2.
EP10717481A EP2462235A2 (de) 2009-08-06 2010-04-30 Verfahren zur herstellung von zuckern aus lignocellulosehaltiger biomasse, umfassend einen schritt der alkoholisch-alkalinen delignifikation
EP16188442.4A EP3121285A1 (de) 2009-08-06 2010-04-30 Verfahren zur herstellung von xylitol aus lignocellulosehaltiger biomasse, umfassend einen schritt der alkoholisch-alkalinen delignifikation
KR1020127005883A KR20120055613A (ko) 2009-08-06 2010-04-30 리그노셀룰로오스 물질로부터 카보하이드레이트 절단 생성물의 제조방법
AU2010281334A AU2010281334B2 (en) 2009-08-06 2010-04-30 Process for the production of carbohydrate cleavage products from a lignocellulosic material
BR112012002707-7A BR112012002707B1 (pt) 2009-08-06 2010-04-30 Processo para fabricação de xilitol
BRPI1015297-0A BRPI1015297A2 (pt) 2009-04-30 2010-04-30 "método para a preparação de produtos de clivagem de carboidratos a partir de um material lignocelulósico".
US13/388,725 US9970038B2 (en) 2009-08-06 2010-04-30 Process for the production of carbohydrate cleavage products from a lingnocellulosic material
EA201171324A EA201171324A1 (ru) 2009-04-30 2010-04-30 Способ получения продуктов расщепления углеводов из лигноцеллюлозных материалов
PE2012000172A PE20121424A1 (es) 2009-08-06 2010-04-30 Proceso para la produccion de productos de escision de carbohidratos a partir de un material lignocelulosico
KR1020117028732A KR20120016119A (ko) 2009-04-30 2010-04-30 H2o2의 존재하에서 알콜-염기성 탈리그닌 단계를 포함하는 리그노셀루로스계 바이오매스로부터 당의 제조방법
CA2768159A CA2768159C (en) 2009-08-06 2010-04-30 Process for the production of carbohydrate cleavage products from a lignocellulosic material
ZA2011/07231A ZA201107231B (en) 2009-04-30 2011-09-30 "method for the preparation of carbohydrate cleavage products from a lignocellulosic matarial"
ECSP11011426 ECSP11011426A (es) 2009-04-30 2011-10-28 Metodo para producir azucares de biomasa lignocelulósica que comprende una etapa de deslignificado alcohólico-alcalino en la presencia de h2o2
GT201100270A GT201100270A (es) 2009-04-30 2011-10-28 Metodo para producir azucares de biomasa lignocelulosica que comprende una etapa de deslignificado alcoholico-alcalino en la presencia de h2o2
CU20110201A CU20110201A7 (es) 2009-04-30 2011-10-28 Método para producir azúcares de biomasa lignocelulósica que comprende una etapa de deslignificado alcohólico-alcalino en la presencia de h2o2
CO11146151A CO6450603A2 (es) 2009-04-30 2011-10-28 Método para producir azucares de biomasa lignocelulosica que comprende una etapa de deslignificado alcoholico-alcalino en la presencia de h202
CU20120023A CU20120023A7 (es) 2009-08-06 2012-02-03 Método para producir azúcares de biomasa lignocelulosica que comprende una etapa de deslignificado alcoholico - alcalino.
ZA2012/00989A ZA201200989B (en) 2009-08-06 2012-02-10 " process for the production of carbohydrate cleavage products from a lignocellulosic material"
ECSP12011707 ECSP12011707A (es) 2009-08-06 2012-03-05 Método para producir azúcares de biomasa lignocelulósica que comprende una etapa de deslignificado alcohólico-alcalino
CO12038994A CO6511213A2 (es) 2009-08-06 2012-03-06 Proceso para la producciòn de productos de escisión de carbohidratos a partir de un material lignocelulósico
JP2015254620A JP6411994B2 (ja) 2009-08-06 2015-12-25 リグノセルロース原料からキシリトールを製造するプロセス
US15/951,027 US20180230503A1 (en) 2009-08-06 2018-04-11 Process for the production of carbohydrate cleavage products from a lignocellulosic material

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AT0203009A AT509307A1 (de) 2009-12-23 2009-12-23 Verfahren zur herstellung von zuckern aus einem lignocellulosischen material

Publications (1)

Publication Number Publication Date
AT509307A1 true AT509307A1 (de) 2011-07-15

Family

ID=44257124

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
AT0203009A AT509307A1 (de) 2009-04-30 2009-12-23 Verfahren zur herstellung von zuckern aus einem lignocellulosischen material

Country Status (1)

Country Link
AT (1) AT509307A1 (de)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US10233119B2 (en) 2012-07-20 2019-03-19 US Concrete, Inc. Concrete having reduced surface drying time and cementitious compositions and methods for manufacturing same
US10563237B2 (en) 2012-11-14 2020-02-18 Annikki Gmbh Method for obtaining sugar derivatives

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US10233119B2 (en) 2012-07-20 2019-03-19 US Concrete, Inc. Concrete having reduced surface drying time and cementitious compositions and methods for manufacturing same
US10563237B2 (en) 2012-11-14 2020-02-18 Annikki Gmbh Method for obtaining sugar derivatives

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP2425004B1 (de) Verfahren zur Herstellung von Zuckern aus lignocellulosehaltiger Biomasse, umfassend einen Schritt der alkoholisch-alkalinen Delignifikation in Anwesenheit von H2O2
WO2011014894A2 (de) Verfahren zur herstellung von kohlenhydratspaltprodukten aus einem lignocellulosischen material
EP2611820B1 (de) Verfahren zur ligningewinnung
Martín et al. Hydrothermal pretreatment of lignocellulosic feedstocks to facilitate biochemical conversion
Odorico et al. Pretreatment of Guinea grass (Panicum maximum) with the ionic liquid 1-ethyl-3-methyl imidazolium acetate for efficient hydrolysis and bioethanol production
Valenzuela et al. Fiber modifications by organosolv catalyzed with H2SO4 improves the SSF of Pinus radiata
EP2265721B1 (de) Verfahren zur Herstellung von Ethanol aus lignocellulosehaltiger Biomasse
AT509307A1 (de) Verfahren zur herstellung von zuckern aus einem lignocellulosischen material
FI120878B (fi) Menetelmä hiilihydraattipitoisen raaka-aineen prosessoimiseksi
US11193177B2 (en) Process for recovering higher sugar from biomass
AT512345A2 (de) Ligningewinnung
AT508867A1 (de) Verfahren zur herstellung von zuckern aus einem lignocellulosischen material
AT508725A1 (de) Verfahren zur herstellung von zuckern aus einem lignocellulosischen material
AT508330A1 (de) Verfahren zur herstellung von zuckern aus einem lignocellulosischen material
Gomes et al. Fractionation of broom (Cytisus striatus) biomass components via mild sulfite pretreatment and enzymatic hydrolysis
Um Evaluation of Acid and Enzymatic Hydrolysis of Hemicellulose Extracts Produced from Northeast Hardwood

Legal Events

Date Code Title Description
REJ Rejection

Effective date: 20160515